Opsonophagocytic убийства Assay оценить иммунологические реакции против бактериальных патогенов

Immunology and Infection

Your institution must subscribe to JoVE's Immunology and Infection section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Этот assay убийство opsonophagocytic используется для сравнения способность фагоцитирующих иммунных клеток реагировать и убивают бактерии, основанные на различных методов лечения и/или условий. Классически этот assay служит золотой стандарт для оценки эффекторные функции антител против бактерий как опсонин.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Paschall, A. V., Middleton, D. R., Avci, F. Y. Opsonophagocytic Killing Assay to Assess Immunological Responses Against Bacterial Pathogens. J. Vis. Exp. (146), e59400, doi:10.3791/59400 (2019).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Ключевым аспектом иммунного ответа на бактериальной колонизации хоста является фагоцитоза. Assay убийство opsonophagocytic (OPKA) является экспериментальной процедуры, в котором фагоцитирующих клеток совместно культивируемых с бактериальной единиц. Иммунные клетки фагоцитоз и убить бактериальных культур в духе дополнение зависимых. Эффективность убийства клеток иммунной системы зависит от целого ряда факторов и может использоваться для определения различных бактериальных культур сравнения в отношении устойчивости к смерти клетки. Таким образом можно оценить эффективность потенциал на основе иммунной терапии против конкретных штаммов бактерий и/или серотипов. В этом протоколе мы описываем упрощенная OPKA, которая использует основные культуры условий и клеток подсчета для определения жизнеспособности бактериальных клеток после совместного культуры с условий лечения и иммунных клеток HL-60. Этот метод был успешно использован с рядом различных серотипов пневмококков, капсульные и acapsular штаммов и других бактериальных видов. Преимущества этого протокола OPKA являются его простота, универсальность (как этот assay не ограничивается лечения антителами как опсонины) и минимизации времени и реагенты для оценки основных экспериментальных групп.

Introduction

Opsonophagocytic убийства пробирного (OPKA) является важнейшим инструментом для увязки изменения в бактериальных структуры или функции для последующих изменений в иммунной реакции и функции. Таким образом он часто используется в качестве дополнительного анализа для определения на основе иммунной эффективность лечения антителами, вакцин-кандидатов, оптимизация фермента и т.д. Хотя в естественных условиях анализы необходимы для определения эффективного разминирования или защиты в модели бактериальной инфекции, OPKA может использоваться для оценки иммунного вклад в бактериальной клетке смерти на самых основных компонентов: бактерии, иммунные клетки и экспериментальные лечение. Предыдущие исследования показали, что OPKAs могут быть модифицировать и использовать для различных бактерий и серотипов, включая Streptococcus pneumoniae1,2 золотистый стафилококк, синегнойная3. Кроме того эти оптимизированные анализов может использоваться для оценки различных экспериментальных процедур, включая фермента возможность сделать более доступными для дополнения опосредованных иммунных клеток4 и антитела лечение для улучшения бактерии опсонизацию5. Классически, OPKA пробирного успешно используется в фундаментальных и клинических исследованиях параметры как мощный индикатор для защиты индуцированных возбудителя специфические антитела6,,78,9 .

Различные типы иммунных клеток может использоваться для оценки opsonophagocytic убийства. Один из часто используемых фагоцитарной населения является линия человека лейкозных клеток HL-60. Эта линия клетки могут храниться как инактивированных promyelocytes в культуре; Однако они могут быть продифференцированы в различных активированных государства через различных наркотиков лечения10,11. Лечение HL60 с N, N-Диметилформамид дифференцирует линии клетки в активированных нейтрофилов с сильным фагоцитарной активности11. В то время как клеток HL-60 были оптимизированы и часто используются для этих анализов фагоцитоза10, других первичных полиморфноядерных лейкоцитов может использоваться как иммунные руку эксперимент12.

Кроме того эти анализы может быть упрощенной13 или мультиплексированных14 взглянуть на несколько устойчивых к антибиотикам штаммов бактерий для проверки. Мультиплексированных метод был достигнут более реальным путем разработки программного обеспечения, которое может эффективно рассчитывать бактериальные колонии, образуя единиц (CFUs) за пятно на плиты агара15. Здесь мы описываем рациональный метод, используя один штамм бактерий, клеток HL-60, ребенок кролика дополнением и плиты агара крови. С помощью этого метода несколько процедур можно быстро оценить вопросы конкретных исследований на как можно модулировать врожденный иммунный ответ к бактериальной инфекции.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. Культура, дифференциация и проверки клеток HL-60

  1. Подготовьте СМИ культуры клеток HL-60 состоит из 500 мл RPMI с L-глютамина и 50 мл тепло инактивированная плода бычьим сывороточным. Не добавляйте антибиотики, как это может повлиять на дифференциацию клеток HL-60.
  2. Для распространения/обслуживание клеток HL-60 культуры 5 х 106 клеток в 10 мл средства массовой информации культуры клеток HL-60 75 см2 вентилируемые фляги при 37 ° C и 5% CO2. Проход клетки каждые 3−4 дней для поддержания оптимального клеток концентрации.
    Примечание: Клетки концентрация не должна превышать 5 x 10-6/мл.
  3. Создайте рабочие запасы клеток HL-60, aliquoting примерно 1 х 106 клеток/мл в HL60 культуре СМИ с 10% диметилсульфоксида (ДМСО) в 1 мл криогенных трубы.
    Примечание: Рабочие запасы могут храниться при температуре-80 ° C. Основной запас должен храниться при-120 ° C.
  4. Дифференцировать клеток HL-60, культивирования 1,5 x 10-7 клеток в 15 мл средства массовой информации культуры клеток HL-60 с 0,6% N, N-Диметилформамид (DMF) при 37 ° C и 5% CO2 в стерильных фильтр максимум 75 см2 фляги для 3 дней до OPKA.
  5. Проверить что клеток HL-60 успешно дифференцированной и подходят для использования в OPKA assay путем тестирования жизнеспособность и поверхностных маркеров ячейки согласно установленным потока цитометрии протоколы16,17, 18,19. После дифференциации урожай клеток HL-60 и пятна примерно 1 х 104 клетки с дневно конъюгированных антител/пятна для CD71, CD35, annexin V и пропидий йодидом.
    Примечание: Дифференцированных клеток должно быть ≥65 жизнеспособным, ≥55% CD35+и ≤20% CD71 создана+ определяется путем проверки протоколов14 (рис. 1).

2. Подготовка OPKA буферов и реагенты

  1. Подготовка 50 мл стерильного опсонизацию буфера B (OBB) путем смешивания 42,5 мл стерильного 1 x фосфат амортизированное saline (PBS) с Ca2 +/Mg2 +, 5 мл сыворотки тепла инактивированная плода говядину и 2,5 мл 0,1% стерильный желатина. Хранить при 4 ° C.
  2. Получить ребенок кролика дополнением и хранить при температуре-80 ° C.
  3. Получить или подготовить бактериальной культуры (то есть, 15 x 100 мм2 5% овец крови агар Знаки номерные знаки).

3. Подготовка образцов бактериальных запасов

  1. Получите запас бактериальный strain(s) тестируемых.
    Примечание: Для этого протокола, серотипа 3 пневмококк (WU2, щедро предоставленных д-р Муна Nahm) используется.
  2. Расти бактериальный штамм в соответствующей бульон (т.е., Тодд-Хьюитт бульон + 0,5% экстракт дрожжей для этого штамма WU2) для приблизительно 2−4 ч при 37 ° C.
    Примечание: Оптическая плотность при 600 Нм (600OD) культуры должно составлять 0,6 и 0,8.
  3. Пелле бактерии центрифугированием при 6000 x g на 2 мин и Ресуспензируйте клетки в 10−30 мл 15% глицерина в соответствующие бульон. Алиготе бактериальной культуры (500 мкл на Алиготе) в стерильных 1.5 мл пробирок и хранить при температуре-80 ° C.
  4. Оттаять одного флакона бактериальных акций в ванну воды 37 ° C. Пелле бактериальные клетки и Ресуспензируйте в 500 мкл OBB в стерильных условиях.
  5. Подготовка различных разведениях бактериальной акций в «OBB» (т.е., 10 мкл неразбавленный, 10 мкл 1:10, 10 мкл масштаба 1: 100 и т.д.). Выполните OPKA пробу (разделы 4 – 6, включая HL-60/дополнением сотрудничества культуры), как описано ниже с использованием различных разведениях Необработанные бактериальных запасов. Культура пластины на ночь на 30 ° C (CO2).
    Примечание: Температура 30 ° C для WU2 предотвратить разрастание; другие штаммы/серотипы могут расти оптимально при 37 ° C.
  6. Подсчет колоний для каждого разведения Необработанные бактериальных акций совместно культивируемых клеток HL-60 и дополнения. Определите, какие разведения бактерий дает оптимальное количество countable колоний (примерно 80−120 CFUs для без лечения бактерий, совместно культивируемых клеток HL-60). Обратите внимание, это раствора для будущих OPKAs с участием этой бактериальные фондовом.

4. бактериальных лечения и культура

  1. Разморозить один трубки бактериальной акций, подготовленную на этапе 3.3. Пелле бактерий (6000 x g на 2 мин) и Ресуспензируйте Пелле клеток в OBB на оптимальное разведение, определенных на шаге 3.6.
  2. Пипетка 10 мкл ресуспензированы бактериальной разрежения в колодец в раунд нижнюю ячейку 96-луночных культуры пластине.
  3. 20 мкл соответствующего лечения антителами или наркотиков, для каждой экспериментальной скважины в двух экземплярах.
    Примечание: В этом протоколе серотип специфические антитела, сгенерирована мышей добавляется в качестве лечения X и гликозид гидролазы фермента, известного деградировать серотипа 3 полисахаридной капсулы добавляется в качестве лечения Y (рис. 2)4,20. Для контроля скважин используйте 1 x PBS или OBB, в зависимости от буфер, используемый для лечения скважин.
  4. Встряхните образца пластины на приблизительно 90 об/мин за 1 ч при комнатной температуре. Настройте эти условия в зависимости от оптимальной температуры или встряхивания условий лечения проходит испытания.

5. HL-60 Бактериальная культура сотрудничества

  1. Подготовьте клеток HL-60, уборки HL-60 дифференцированной клетки, которые обращаются с ДМФ три дня до (см. шаг 1.4) в 15 мл конические трубы. Пелле клетки (500 x g, 3 мин), удалить супернатант и мыть с по крайней мере 10 мл ПБС.
  2. Пелле вымыть клетки (500 x g, 3 мин), удалить супернатант и Ресуспензируйте клетки в OBB (начать с 1 мл OBB и настроить для окончательного концентрации 1 x 10-7/мл после подсчета клеток).
  3. Добавьте дополнение кролик baby (стерильные, неразбавленное baby кролик сыворотки, возраст 3−4 недель) на окончательный объем 1:5.
    Примечание: Конечная концентрация HL-60-дополнения смесь должна быть 1 x 10-7/мл. Если тестирование дополнения зависимостей, второй раствор, содержащий активных клеток HL-60 с тепло инактивированная дополнением может использоваться (дополнением может инактивированная по инкубации в водяной бане при > 55 ° C для по крайней мере 30 минут).
  4. После того, как 1 h бактериальной культуры является полным (шаг 4.4), разделите дублировать скважин для двух групп (например, использование только 20 мкл самобытной культуры 30 мкл совместного учета для дозирования ошибка) каждый образец (т.е., 10 мкл каждого 30 мкл пример хорошо в две новые скважины) : один набор будет совместно культивируемых с HL-60-дополнение и один будет включать в себя только бактерии. Добавьте 50 мкл HL-60-дополнения смесь (из шага 5.3) для каждого экспериментального набора скважин (делегированных + HL-60); Добавьте 50 мкл OBB только скважин бактерий только (делегированных -HL-60).
    Примечание: Для этого примера примерно 800 бактериальный CFUs используются для первоначального совместного культуры клеток HL-60 мкл5/50 5 x 10. Если это многообразие инфекции является слишком высокой или слишком низкой, как указано в заключительном колонии числами, скорректировать первоначальный бактериальных разрежения в отличие от числа клеток HL-60.
  5. Встряхните 96-луночных пластины при 37 ° C в течение 1 ч (CO2).

6. образец покрытия и ночь инкубации

  1. Разбавьте каждый хорошо 1:5 с «OBB», так что каждый образец имеет объем по крайней мере 50 мкл.
  2. Пипетка 50 мкл каждого образца непосредственно на заданном районе бактериальной культуры пластины, обеспечивая достаточное расстояние между образцами. 15 x 100 мм2 раунд плиты агара, накапайте приблизительно 4 образцы на одну пластину.
  3. Накрыть и образцы сохнуть в течение приблизительно 15 минут при комнатной температуре.
  4. Инвертируйте пластины и культуры на ночь на 30 ° C (CO2). Кроме того культура пластины в анаэробных баночки для проверки ли бескислородные условия влияют на рост бактерий или управления для морфологии.
  5. После ночи культуры счетчик колоний в каждой области указанного образца. Анализ данных, сравнивая количество живых клеток в каждом наборе для соответствующего элемента управления и/или образцы, которые не получают совместно культуры клеток HL-60 (ориентировочный выживания клетки 100%, 0% клеток убийство).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Проверка HL-60 дифференциации должны выполняться перед началом OPKA. Это может быть достигнуто с помощью проточной цитометрии для определения внеклеточного выражение CD11b, CD35, CD71 и annexin V (рис. 1). Пропидий йодидом может также использоваться в качестве маркера жизнеспособности. После 3 дней лечения с ДМФ, должна быть увеличена выражение CD35 (≥55% от всех клеток) и выражение CD71 должна быть уменьшена (≤20% от всех клеток). Процент annexin V + и пропидий йодидом (PI +) клетки вместе должно быть < 35% для обеспечения достаточной жизнеспособность клеток. Если эти показатели не соответствуют минимальным требованиям, в условиях культуры должна быть скорректирована, как описано в ходе обсуждения.

Количество CFUs, полученных из шага 6.5 может использоваться для сравнения выживание бактериальной клетки различных групп, по сравнению с необработанными контрольной группы (100% выживаемость клеток), как показано на рисунке 2. Например средняя графов получены из скважин, которые не получал лечения, но были совместно культивируемых с HL-60 должно быть относительно близко в номер к клеткам, которые получили лечение не и не совместного культура HL-60, который будет свидетельствовать о 100% клеток выживания, или 0 % клеточной смерти. С эффективное лечение количество колоний должно быть более различными между HL-60 совместно культуры и не клеток HL-60 (рис. 2 и рис. 3). Большие различия между HL-60 и не HL-60 наборы свидетельствует о более эффективной фагоцитоза. Однако лечение может действительно улучшить рост бактериальных клеток в наборе, которая не является совместно культивируемых клеток HL-60. Следует отметить, эта разница в обработанных и необработанных образцов. Если бактериальная разрежения не оптимизирован (шаг 3,6) или колонии не наблюдается рост тщательно после покрытия (шаг 6.5 или просмотреть обсуждение), разрастание колоний могут помешать точный подсчет колоний (рис. 4).

Figure 1
Рисунок 1 : Проверка дифференцировки клеток HL-60 через проточной цитометрии. Дифференцированных клеток HL-60 были собраны, промывают и высокомобильна 1 х 105 клеток/мл PBS. Клетки были затем aliquoted в 12 скважин (100 мкл/а) в 96-луночных пластине. Клетки окрашивали затем дневно конъюгированных анти CD35, анти CD71, annexin V и пропидий йодидом. Безупречная клетки или клетки окрашивали дневно конъюгированных isotype антитела были использованы как элементы управления. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 2
Рисунок 2 : Лечение Y улучшает клеток HL-60-опосредованной убийства бактерий. Образцы S. pneumoniae были относиться с лечения X (антитела) или Y (фермента). OPKA была выполнена согласно протоколу и бактериальных CFUs были подсчитаны в двух экземплярах. Образцы, которые не обращались с клеток HL-60 были использованы в качестве элемента управления (100% выживаемость клеток). Изображены средний процент бактериального CFUs в группах HL-60 лечение, по сравнению с соответствующими группами не HL-60-лечение. Бары представляют стандартная ошибка. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 3
Рисунок 3 : Бактериальный CFUs после OPKA и ночь культуры. Бактериальные образцы были рассматриваться и совместно культивируемых без (A) или с клеток HL-60 (B) за 1 ч при 37 ° C. Образцы были разбавленным согласно протоколу и покрытием на агаре крови, которую пластины на ночь на 30 ° C (CO2). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 4
Рисунок 4 : Бактериальные CFU разрастание. Бактериальные образцы были обработаны и OPKA была выполнена. Образцы были разведен и покрытием на агаре крови, которую пластины на ночь при 37 ° C (CO2). Точную оценку числа колония не может быть определено как показано разрастание колоний. Как 37 ° C (CO2) привело к бактериальной разрастание, температуры инкубации для будущей пластинки был снижен до 30 ° C (CO2) для поддержания countability колоний. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

OPKAs служат существенно важную роль в оценке антител при посредничестве иммунных реакций, вызванных прививки6,8. Основной смысл этой упрощенной OPKA является адаптируемость в условиях для проверки (то есть, антитела, фермента лечения и т.д.). В этом смысле в то время как этот assay может использоваться для тестирования участие опсонины (то есть, антитела) в фагоцитоза, она может также использоваться для оценки путей преодоления Факторы вирулентности (т.е., капсульной полисахариды), которые обычно препятствуют фагоцитарной пути. Свести к минимуму количество шагов, которые обычно используются в мультиплексированном OPKA потенциально уменьшает шансы на технические ошибки, которые могут повлиять на результаты экспериментов и уменьшает количество неполадок и оптимизации для получения используемых данных. Поскольку этот протокол предназначен для изменения условий лечения, она позволяет много универсальность.

Предварительное установление assay через культуру HL-60 и создание запасов для бактериальной имеет важное значение для предотвращения шагов посторонние оптимизации при выполнении OPKA. Время должны быть посвящены убедившись, что все реагенты и типы клеток готовы и функциональных до эксперимент выполняется. Эти шаги включают в себя распространение HL-60 линия клетки в культуре (около двух недель), проверка, что конкретные концентрации ДМФ эффективно дифференцировать клеток HL-60 (около недели) и создание свободной от загрязнений и оптимизированный бактериальные фондовом разведений (около двух недель).

Некоторые шаги этого протокола являются критическими для получения countable колоний и адекватных данных. Этот протокол использует клеток HL-60 как фагоциты благодаря простоте с относительно нескольких шагах линии клеток человека, которая может быть сохранена в культуре и дифференцированной. Может также использоваться мононуклеаров периферической крови человека (получения); Однако получение этих клеток и оптимизации условий для их использования могут быть более сложными. Для того, чтобы функционировать в качестве фагоцитов против бактерий должны быть дифференцированы клеток HL-60. Для проверки дифференциация после 3 дней лечения с ДМФ, проточной цитометрии должен использоваться для проверки выражения CD11b и CD35 на большинство клеток до попытки любого OPKA, как описано на шаге 1.5. Следует также проверить жизнеспособность клеток (желательно с annexin V и окрашиванию пропидий йодидом). Если большое количество клеток мертвых, апоптоза, или недифференцированные как заметил с проточной цитометрии, 3 день дифференциации с 0,6% ДМФ в RPMI средства массовой информации могут быть изменены (0,4% −0. 8% ДМФ, 2−6 день культуры время) до тех пор, пока маркеры жизнеспособность и дифференциации клеток улучшены. Эта дифференциация должна быть первая оптимизация OPKA как функция HL-60 имеет решающее значение для эффективного бактериальных убийства. Мы рекомендуем, проверка HL-60 дифференциация перед каждой OPKA эксперимент.

Количество бактерий CFUs (шаг 3,6) первоначально обойтись в 96-луночных пластину (шаг 4.2) также является критичным: слишком много клеток сделают подсчет трудным и неточными (шаг 6.5) и может уменьшить смерть клетки, наблюдаемых с HL-60 совместно культуры, тогда как дозирование слишком мало клеток может увеличить количество отклонения между дубликатами и не может показать любой countable колоний после совместного культуры HL-60. Оптимизация запасов разрежения поэтому является критически важным и должно быть протестировано с полным Протоколом, включая HL-60/дополнением сотрудничества культуру.

Важность дополнения также может испытываться с настоящим Протоколом, включая два комплекта образцов: один с активного ребенка кролика дополнением и один с тепло инактивированная дополнением. Клеток HL-60 должна быть совместно культивируемых с обоих, хотя бактерий только набор по-прежнему должны быть включены в качестве базового выживания 100% клеток.

Для некоторых бактериальных серотипов морфология колоний может сделать подсчет клеток или видимость проблематичным. Mucoid серотипов например тип 3 пневмококк, например, может легко перерасти и уменьшить отсчеты кое. Это может оказаться особенно проблематичным, когда тестирование методов лечения, которые влияют на капсулу, как бы предотвратить разрастание в группе лечение, но большее количество небольших колоний будет учитываться. Чтобы предотвратить это несоответствие, контроль роста клеток имеет решающее значение. Культивирования покрытием колонии при 30 ° C ночь, скорее всего, позволит для улучшения мониторинга роста бактерий и пластины могут быть удалены, когда все колонии достигают различимы, исчисляемые размеров. Кроме того различные агар плиты могут использоваться для улучшения видимости отдельных колоний. Таким образом этот протокол является выгодным, как небольшие изменения для оптимизации условий таким образом могут быть использованы для учета ряда бактериальных штаммов или различные варианты лечения.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы не имеют ничего сообщать.

Acknowledgments

Мы благодарим д-р Муна Nahm (Университет штата Алабама Бирмингем) за его неоценимую помощь в создании OPKA анализы в нашей лаборатории. Эта работа была поддержана национальными институтами здравоохранения грант 1R01AI123383-01A1 для FYA.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Annexin V (APC conjugated) BioLegend 640919
anti-CD35, human (PE conjugated) BioLegend 333405
anti-CD71, human (PE conjugated) BioLegend 334105
bacterial strain to be used (i.e., Streptococcus pneumoniae, WU2) Bacterial Respiratory Reference Laboratory (Dr. Moon Nahm) 
blood agar plates Hardy Diagnostic A10
Fetal Clone serum HyClone SH30080.03
glycerol Sigma G9012-1L
HL-60 cells ATCC CCL-240
IgG Isotype Control (PE conjugated) BioLegend 400907
N,N-dimethylformamide (DMF) Fisher Chemical UN2265
propidium iodide Sigma P4864
RPMI media with L-glutamine Corning 10-040-CV

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Romero-Steiner, S., et al. Standardization of an opsonophagocytic assay for the measurement of functional antibody activity against Streptococcus pneumoniae using differentiated HL-60 cells. Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology. 4, (4), 415-422 (1997).
  2. Nanra, J. S., et al. Capsular polysaccharides are an important immune evasion mechanism for Staphylococcus aureus. Human Vaccines and Immunotherapeutics. 9, (3), 480-487 (2013).
  3. Ishibashi, K., Yamaguchi, O., Shiraiwa, Y., Ogihara, M., Shigeta, S. Combination therapy of Pseudomonas aeruginosa pyelonephritis in neutropenic mice with human antilipopolysaccharide monoclonal antibody and cefsulodin. Journal of Urology. 155, (6), 2094-2097 (1996).
  4. Middleton, D. R., Paschall, A. V., Duke, J. A., Avci, F. Y. Enzymatic Hydrolysis of Pneumococcal Capsular Polysaccharide Renders the Bacterium Vulnerable to Host Defense. Infection and Immunity. (2018).
  5. Baker, C. J., Noya, F. J. Potential use of intravenous immune globulin for group B streptococcal infection. Reviews of Infectious Diseases. 12, Suppl 4 476-482 (1990).
  6. Tian, H., Weber, S., Thorkildson, P., Kozel, T. R., Pirofski, L. A. Efficacy of opsonic and nonopsonic serotype 3 pneumococcal capsular polysaccharide-specific monoclonal antibodies against intranasal challenge with Streptococcus pneumoniae in mice. Infection and Immunity. 77, (4), 1502-1513 (2009).
  7. Parameswarappa, S. G., et al. A Semi-synthetic Oligosaccharide Conjugate Vaccine Candidate Confers Protection against Streptococcus pneumoniae Serotype 3 Infection. Cell Chemical Biology. 23, (11), 1407-1416 (2016).
  8. Jackson, L., et al. Randomized clinical trial of a single versus a double dose of 13-valent pneumococcal conjugate vaccine in adults 55 through 74 years of age previously vaccinated with 23-valent pneumococcal polysaccharide vaccine. Vaccine. 36, (5), 606-614 (2018).
  9. Cywes-Bentley, C., et al. Antibody to a conserved antigenic target is protective against diverse prokaryotic and eukaryotic pathogens. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 110, (24), 2209-2218 (2013).
  10. Fleck, R. A., Romero-Steiner, S., Nahm, M. H. Use of HL-60 cell line to measure opsonic capacity of pneumococcal antibodies. Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology. 12, (1), 19-27 (2005).
  11. Collins, S. J., Ruscetti, F. W., Gallagher, R. E., Gallo, R. C. Terminal differentiation of human promyelocytic leukemia cells induced by dimethyl sulfoxide and other polar compounds. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 75, (5), 2458-2462 (1978).
  12. Melnick, N., Rajam, G., Carlone, G. M., Sampson, J. S., Ades, E. W. Evaluation of a novel therapeutic approach to treating severe pneumococcal infection using a mouse model. Clinical and Vaccine Immunology. 16, (6), 806-810 (2009).
  13. Dwyer, M., Gadjeva, M. Opsonophagocytic assay. Methods in Molecular Biology. 1100, 373-379 (2014).
  14. Burton, R. L., Nahm, M. H. Development of a fourfold multiplexed opsonophagocytosis assay for pneumococcal antibodies against additional serotypes and discovery of serological subtypes in Streptococcus pneumoniae serotype 20. Clinical and Vaccine Immunololgy. 19, (6), 835-841 (2012).
  15. Clarke, M. L., et al. Low-cost, high-throughput, automated counting of bacterial colonies. Cytometry Part A. 77, (8), 790-797 (2010).
  16. Aanei, C. M., et al. Database-guided Flow-cytometry for Evaluation of Bone Marrow Myeloid Cell Maturation. Journal of Visualized Experiments. (141), e57867 (2018).
  17. Hirz, T., Dumontet, C. Neutrophil Isolation and Analysis to Determine their Role in Lymphoma Cell Sensitivity to Therapeutic Agents. Journal of Visulaized Experiments. (109), e53846 (2016).
  18. Rieger, A. M., Nelson, K. L., Konowalchuk, J. D., Barreda, D. R. Modified annexin V/propidium iodide apoptosis assay for accurate assessment of cell death. Journal of Visualized Experiments. (50), 2597 (2011).
  19. Blair, O. C., Carbone, R., Sartorelli, A. C. Differentiation of HL-60 promyelocytic leukemia cells: simultaneous determination of phagocytic activity and cell cycle distribution by flow cytometry. Cytometry. 7, (2), 171-177 (1986).
  20. Middleton, D. R., et al. Identification and characterization of the Streptococcus pneumoniae type 3 capsule-specific glycoside hydrolase of Paenibacillus species 32352. Glycobiology. 28, (2), 90-99 (2018).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics