La méthode MODS pour le diagnostic de la tuberculose et la tuberculose multirésistante

Published 8/11/2008
4 Comments
  CITE THIS  SHARE 
Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





By clicking "Submit", you agree to our policies.

 

Summary

L'observation microscopique-sensibilité aux médicaments (MODS) de dosage est un faible coût, faible technicité outil de haute performance de détection de la tuberculose (TB) et la tuberculose multirésistante (tuberculose à bacilles multirésistants). Cette vidéo décrit le liquide MODS la méthode de culture des médias.

Cite this Article

Copy Citation

Brady, M. F., Coronel, J., Gilman, R. H., Moore, D. A. The MODS method for diagnosis of tuberculosis and multidrug resistant tuberculosis. J. Vis. Exp. (18), e845, doi:10.3791/845 (2008).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Les patients atteints de tuberculose pulmonaire (TB) active infecter d'autres personnes de 10 à 15 par an, ce qui rend le diagnostic de tuberculose active essentielle à la fois à guérir le patient et la prévention des nouvelles infections. Par ailleurs, l'émergence de la tuberculose multirésistante (tuberculose à bacilles multirésistants) signifie que la détection de la résistance aux médicaments est nécessaire pour arrêter la propagation de souches résistantes aux médicaments. L'observation microscopique-sensibilité aux médicaments (MODS) de dosage est un faible coût, faible technicité outil de haute performance de détection de la tuberculose et TB-MR. Le test MODS est basé sur trois principes: 1) de Mycobacterium tuberculosis (MTB) croît plus vite dans les milieux liquides que sur milieu solide 2) la croissance VTT microscopiques peuvent être détectés plus tôt dans les milieux liquides que d'attendre que l'aspect macroscopique des colonies sur milieu solide, et que la croissance est caractéristique de VTT, qui lui permet d'être distinguée de la contamination mycobactéries ou fongiques ou bactériennes atypiques 3) les médicaments isoniazide et la rifampicine peuvent être incorporés dans le test MODS pour permettre une détection directe simultanée de tuberculose à bacilles multirésistants, éliminant la nécessité d'une sous-culture à effectuer un test de drogue indirects susceptibilité. La concurrence des diagnostics actuels sont entravés par une faible sensibilité aux frottis de crachats, de longs délais jusqu'à ce diagnostic avec la culture médiatique solide, avec des coûts prohibitifs des méthodes existantes de liquide milieux de culture, et la nécessité de ne sous-culture pour les tests de sensibilité aux médicaments indirectes pour détecter la tuberculose multirésistante. En revanche, la méthode non-propriétaires MODS a une sensibilité élevée pour la tuberculose et tuberculose à bacilles multirésistants, est une méthode de culture relativement rapide, offre simultanée des tests de sensibilité aux médicaments pour la tuberculose multirésistante, et est accessible aux ressources limitées à un peu moins 3 $ pour les tests pour la tuberculose et TB-MR.

Protocol

  1. Préparer des solutions étalons
    1. Stock tampon phosphate
      1. Mélanger 950ml de sodium dibasique solution (9.47g de phosphate dibasique de sodium dissous dans l'eau distillée 1000ml) avec 950ml de solution de phosphate de potassium monobasique (9.07g de phosphate de potassium monobasique dissous dans l'eau distillée 1000ml) et remuer; retenir 50ml de chaque solution pour ajuster pH si nécessaire
      2. Ajuster le pH à 6,8 ± 0,2: ajouter le phosphate de sodium dibasique solution pour augmenter le pH, ajouter une solution de phosphate de potassium monobasique pour abaisser le pH
      3. Autoclave à 121-124 ° C pendant 15 minutes pour stériliser
      4. Assiette une aliquote de 100 ul de la solution tampon phosphate sur milieu nutritif gélosé dans une boîte de Pétri et incuber à 37 ° C pendant 48 heures pour confirmer la stérilité
      5. Conserver au réfrigérateur à 2-8 ° C pendant jusqu'à un mois

        Remarque: Chaque échantillon d'expectoration nécessite 10ml de solution tampon phosphate
    2. Décontamination des stocks
      1. Combiner des volumes égaux de solution d'hydroxyde de sodium (8.0g d'hydroxyde de sodium dissous dans 200ml d'eau distillée stérile) et la solution de citrate de sodium (5.8g de citrate de sodium distillée dans 200ml d'eau distillée stérile)
      2. Mélanger et autoclave à 121-124 ° C pendant 15 minutes
      3. Conserver au réfrigérateur à 2-8 ° C pendant jusqu'à un mois

        Remarque: Chaque échantillon d'expectoration nécessite 2ml de stock de décontamination
    3. Milieux de culture des stocks
      1. Into 900ml d'eau distillée stérile ajouter 3.1ml de glycérol et 1,25 g d'casitone et 5,9 g de poudre de support 7H9; mélanger avec une agitation constante jusqu'à dissolution complète
      2. Autoclave à 121-124 ° C pendant 15 minutes
      3. Laisser refroidir et diviser le milieu stérile en aliquots de 4,5 ml de stériles 16x 100 mm pour des tubes de verre de préparation d'échantillon, et 10.8ml aliquotes pour la préparation des solutions antibiotiques et des contrôles internes
      4. Incuber à 37 ° C pendant 48 heures pour vérifier la stérilité (absence de turbidité)
      5. Conserver à 2-8 ° C avec bouchon fermé pour jusqu'à un mois

        Remarque: Chaque échantillon d'expectoration nécessite 4,5 ml d'un tube contenant du milieu 7H9
    4. Solutions concentrées d'antibiotiques
      1. A. isoniazide stock (8 mg / ml)
        1. Dissoudre 20 mg d'isoniazide complètement dans 2.5ml d'eau distillée stérile
        2. Filtre avec filtre seringue 0,2 um pour le solvant aqueux
        3. Boutique en aliquots de 20 pi stériles tubes de centrifugation micro à -20 ° C pendant jusqu'à 6 mois

          Remarque: Chaque aliquote stocké 20 pi est suffisant pour un maximum de 100 échantillons (y compris les pertes)
      2. B. La rifampicine stock (8 mg / ml)
      1. Dissoudre la rifampicine 20mg complètement dans 1,25 ml de DMSO
      2. Ajouter 1,25 ml d'eau distillée stérile et mélanger
      3. Filtre avec filtre seringue 0,2 um pour les solvants organiques
      4. Boutique en aliquots de 20 pi microtubes stériles à -20 ° C pendant jusqu'à 6 mois

        Remarque: Chaque aliquote stocké 20 pi est suffisant pour un maximum de 100 échantillons (y compris les pertes)
  2. Préparer des solutions de travail
    1. Solution de décontamination de travail
      1. Dissoudre 0,1 g de cristaux NALC dans toutes les 20ml de solution de décontamination requis

        Remarque: Chaque échantillon doit de 2ml de solution de décontamination

        Remarque: Jeter toute solution de décontamination NaOH NALC qui reste inutilisée après 24 heures que NALC perd son activité mucolytique au fil du temps
    2. Milieux de culture solution de travail
      1. Partez:
        1. 1 tube avec support 7H9 pour chaque échantillon d'expectoration à traiter, plus 1 tube supplémentaire pour chaque plaque (pour la colonne de contrôle négatif)
        2. 2 tubes de milieu 7H9 pour les contrôles positifs (3 si des souches monorésistants sont utilisés)
        3. 1-2 tubes avec 7H9 10.8ml pour la préparation de solution d'antibiotiques
      2. Ajouter 0,5 ml OADC à l'4,5 ml d'7H9 dans chaque tube d'échantillon
      3. Ajouter 1,2 ml d'OADC tubes avec 7H9 10.8ml
      4. Mettez de côté deux tubes avec 5ml 7H9-OADC pour les contrôles positifs, et le tube (s) avec 12ml 7H9-OADC être utilisé pour la préparation solution antibiotique (ceux-ci ne nécessitent PANTA)
      5. PANTA Reconstituer et ajouter 0,1 ml dans chaque tube d'échantillon et les tubes de contrôle négatif (7H9-OADC-PANTA: volume total = 5.1ml)

        Remarque: milieu complet avec PANTA (7H9-OADC-PANTA) est utilisée pour les échantillons de crachats et les contrôles négatifs, l'utilisation 7H9-OADC sans PANTA pour les contrôles positifs et pour la préparation de solution d'antibiotiques
    3. Antibiotique solutions de travail
      1. 1. Voir la Figure 1 pour les étapes à faire de la solution antibiotique travaillant dans une partie inutilisée de 24 puits Plaque

        Note: Pour les résultats de sensibilité précis, les concentrations finales des antibiotiques sont essentiels. La procédure suivante est adapté pour lABORATOIRES équipé micropipettes. Si micropipettes sont pas disponibles, des seringues à tuberculine peut être utilisé avec une autre série de dilutions décrites dans le Guide de l'utilisateur Annexe 3 au modsperu.org

        Note: Ne pas recongeler ou réutilisation de travail des antibiotiques ou des solutions de stock que l'activité des médicaments peuvent être perdus Ecarter les solutions inutilisées aux antibiotiques à la fin de la figure 1 jour de traitement.. Rendre les solutions antibiotiques de travail (de Guide de l'utilisateur au modsperu.org)
  3. Échantillon de crachats et de la plaque préparation
    1. De décontamination
      1. 2ml Lieu de crachats dans un tube à centrifuger 15ml (si moins, faire jusqu'à 2ml avec un tampon phosphate; si plus, utilisez uniquement 2ml)
      2. Ajouter 2 ml de NaOH NALC solution
      3. Tube de Cap hermétiquement et vortex pendant 20 secondes; Retourner le tube d'assurer des contacts solution de NaOH-NALC toute la surface intérieure du tube et le couvercle
      4. Laisser reposer pendant un minimum de 15 minutes - peut prolonger de quelques minutes si l'échantillon est particulièrement visqueux. Pour éviter plus de traitement, ne doivent pas dépasser 20 minutes
      5. Remplir le tube d'14ml avec un tampon phosphate (pH 6,8) pour neutraliser les alcalis et terminer le processus de décontamination, et bien mélanger en inversant le tube 4 fois
      6. Centrifuger à 3000 g pendant 15 minutes (voir l'annexe 2 du Guide de l'utilisateur au modsperu.org pour l'équation de rotations par minute nécessaire pour atteindre 3000 g)
      7. Versez délicatement le surnageant dans un récipient de déchets liquides à l'hypochlorite de sodium à 10% ou un autre désinfectant approprié et conserver le culot
    2. Préparation de la suspension de l'échantillon final et de sauvegarde
      1. Utiliser 7H9-OADC-PANTA (à partir du tube contenant 5.1ml), resuspendre le culot de l'échantillon dans un volume total de 2ml dans le tube de centrifugeuse avec une pipette Pasteur et bien mélanger
      2. Retirer 1ml de la suspension de l'échantillon et de stocker dans un microtube à 2-8 ° C en tant que sauvegarde
      3. Ajouter la seconde 1ml de la suspension de l'échantillon dans le tube avec le reste 7H9-OADC-PANTA et bien mélanger. C'est la solution de l'échantillon final soit prêt pour le placage
    3. Placer l'échantillon dans les suspensions de 24 puits Plaque
      1. 900μl lieu de la suspension de l'échantillon final dans chacun des 4 puits d'une colonne dans la plaque de 24 puits
      2. Répétez l'opération avec d'autres échantillons jusqu'à ce que toutes les colonnes de la plaque, sauf la colonne 3, sont remplies (ou jusqu'à ce que tous les échantillons sont plaqués)
      3. Lieu de 900μl 7H9-OADC milieu sans échantillon dans le puits 4 de la colonne 3 de chaque plaque échantillon (négatif contrôles internes)
    4. Ajout d'antibiotiques à des échantillons
      1. Avec une pipette multi-canaux, remplir soigneusement quatre pointes avec 100 ul dans les puits avec 7H9-OADC et antibiotique solutions de travail (colonne 2 de la dilution des antibiotiques plaques voir figure 1)
      2. Ajouter les aliquotes 100 ul de la colonne 1 puits avec des solutions d'échantillon 900μl sans toucher la plaque ou un échantillon
      3. Répétez jusqu'à ce que toutes les colonnes ont reçu les 100 ul supplémentaires de moyenne (sans drogue puits) ou des solutions antibiotiques (y compris les colonnes de contrôle négatif 3)
      4. Refermez la plaque avec son couvercle et placer dans un refermable en polyéthylène (Ziplock) sac et sceller (sac n'est pas ouvert à nouveau à partir de ce point)
      5. Incuber à 37 ° C (enrichissement en CO 2 n'est pas nécessaire)
  4. Contrôle de la qualité
    1. Des contrôles négatifs sont exécutés sur chaque assiette. La présence de toute la croissance dans l'un des puits dans la colonne de contrôle négatif indique une contamination croisée, par conséquent toute la plaque doit être mis au rebut et les échantillons re-plaqué.
    2. Les contrôles positifs sont exécutés sur une plaque séparée, à la fin de la journée. Un totalement sensibles aux médicaments souche est exécuté dans une colonne et une souche résistante à l'INH et RIF est exécuté dans une autre colonne. Si on se préoccupe de l'exécution d'une souche multirésistante, à la fois une contrainte et une INH monorésistants FRR souche monorésistants peut être exécuté à l'endroit des souches sensibles et MDR. Tous les contrôles positifs doivent avoir une croissance dans le puits sans médicament pour démontrer que le soutien à la croissance des médias. Pour démontrer que les concentrations de médicament sont corrects, la souche sensible ne devraient pas croître dans l'INH ou FRR puits, mais la souche multirésistante doit croître aussi se développer dans l'INH et RIF puits.
  5. Lecture des plaques
    1. Avec le jour de plaquage comme «Jour 0", la lecture de la plaque commence le jour 5, et si elle est négative le jour 5 lecture se fait chaque jour (ou deux jours selon la charge de travail) jusqu'au jour 14, puis tous les 2-3 jours à partir de 15 jours -21. Les plaques sont examinées sur unemicroscope inversé la lumière avec l'objectif 10x
    2. Une culture positive est celle dans laquelle il ya deux ou plusieurs unités formant colonies (> 2 UFC) dans les deux puits sans drogue. Au début de croissance mycobactérienne ressemble petites virgules courbes ou spirales (jours 5-9). La formation de colonies progresse habituellement de «cordes» ou «enchevêtrements» (voir la bibliothèque d'images sur le modsperu.org)
    3. Le jour d'une culture est positive dans les deux puits sans drogue, les puits contenant un médicament doit être lu. Toute la croissance de la présence d'un médicament indique la résistance à ce médicament.

      Remarque: Si la lecture des puits contenant des médicaments se fait> 1 semaine après une culture positive est noté dans le puits sans drogue, cela peut ne pas représenter la résistance que la percée de croissance est parfois observée
    4. Les échantillons qui ne sont pas positifs au jour 21 sont considérées comme des cultures négatives
    5. La nébulosité des puits est le résultat d'une prolifération de contamination, alors que la croissance mycobactérienne ne résulte pas de la nébulosité
    6. Au terme de 21 jours des cultures peut être jeté. Cultures rester dans leurs sacs scellés et sont placés dans des sacs en autoclave et autoclave à 121-124 ° C pendant 45-60 minutes

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Le test MODS est destiné aux ressources limitées. Pour la première fois, MODS apporte la capacité de détection rapide de la culture liquide de la tuberculose et la tuberculose multirésistante aux ressources limitées à un peu moins de 3 $ par test. MODS est un non-propriétaires, méthodologie itérative, et la communauté MODS est toujours intéressé à l'amélioration d'autres laboratoires ont réussi à faire.

Une préoccupation récurrente est la biosécurité de la culture des milieux liquides de la tuberculose, car les liquides peuvent être renversé ou en aérosol. Nous pensons que le dosage MODS est plus que tout autre BioSafe test qui consistait à tester la sensibilité médicamenteuse indirects parce indirects tests de sensibilité aux médicaments implique la manipulation de solutions très concentrées de mycobactéries avec les risques de déversement et aérosolisation; en revanche, MODS implique simplement l'inoculation de un échantillon de crachats dans une assiette, après quoi la plaque est scellée dans un sac en plastique et jamais ouvert. Ceci est appuyé par des données de la Corée (Kim 2007) qui a montré que le risque professionnel pour les travailleurs de laboratoire qui étale des échantillons d'expectorations sans faire tests de sensibilité n'est pas supérieure à celle de travailleurs faisant examen microscopique de frottis, en revanche, ceux qui font de drogue tests de sensibilité ont beaucoup plus de risques professionnels pour la tuberculose.

Nous recommandons fortement qu'aucune de ces procédures soient menées sans les précautions appropriées pour les travailleurs de laboratoire. Cela inclut masques N-95 pour la protection respiratoire individuelle, une classe 2 enceinte de sécurité biologique de l'air épuisée filtrée à travers des filtres HEPA et un verrou sur la porte du laboratoire d'arrêter les turbulences du flux d'air tandis que les échantillons sont manipulés.

Les procédures d'exploitation standard pour le traitement des échantillons extrapulmonaires, une photothèque de Mycobacterium tubercuclosis et d'autres mycobactéries et la contamination bactérienne et fongique, une stratégie de qualité recommandée d'assurance, une procédure d'accréditation des laboratoires pour commencer à utiliser MODS, et une page de FAQ sont disponibles à modsperu.org

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Acknowledgements

Nous tenons à remercier Sean Fitzwater et Carmen Luna Giannina de Colombo pour le segment de croissance de tuberculose vidéo time-lapse. Nous tenons à remercier Marty Roper pour sa rétroaction approfondie et un excellent cours de l'édition et co-auteur du Guide de l'utilisateur, à partir de laquelle le protocole actuel a été prise essentiellement verbatim. La production de cette vidéo a été financée par le NIH / Fogarty International Center http://www.fic.nih.gov/ David Moore AJ contribué en tant que boursier de recherche clinique de Wellcome Trust en Médecine Tropicale et Reader en maladies infectieuses de l'Imperial College de Londres (Fellowship 078067/Z/05 plusieurs prix). Mark F. Brady contribué tant que boursier du NIH / Fogarty International Research Center.

Materials

Name Type Company Catalog Number Comments
Refrigerator/ freezer Equipment to store pre-prepared broth and antibiotic stocks
Vortex Equipment to aid sputum decontamination
Centrifuge Equipment for sputum concentration; capable of reaching 3000 g; d–s not need to be refrigerated, but MUST be biosafe (buckets can be sealed)
Incubator (37 degree C) Equipment for culture; need not be CO2 enriched
Inverted light microscope Microscope to read MODS plates
Autoclave Equipment to sterilize media, PBS and used plates
Balance Equipment to weigh isoniazid, rifampicin and NALC
Middlebrook 7H9 broth (Difco) Reagent Fisher Scientific DF0713-17-9 500gr/bottle; culture media base
Casitone (pancreatic digest casein) Reagent Fisher Scientific DF0259‐17‐9 500gr/bottle; culture media base
Glycerol (glycerin) lyophilized Reagent Sigma-Aldrich G‐33‐500 500ml/bottle; culture media base
PANTA (Antibiotic mixture lyophilized BD) Reagent Fisher Scientific B4345114 6 bottles/pack; antibiotic media supplement
OADC (Middlebrook OADC enrichment BD) Reagent Fisher Scientific B11886 10 x 20ml/pack; nutritional media supplement
Dimethyl sulphoxide (Hibri-Max) Reagent Sigma-Aldrich D-2650 100ml/bottle; to prepare rifampicin stock
Antibiotic stocks: isoniazid Reagent Sigma-Aldrich I-3377 50gr/bottle; direct susceptibility testing
Antibiotic stocks: rifampicin Reagent Sigma-Aldrich R-3501 1gr/bottle; direct susceptibility testing
Sodium hydroxide (pellets) Reagent Sigma-Aldrich 221465 500gr/bottle; sputum decontamination
Sodium citrate (trisodium salt dihydrate) Reagent Sigma-Aldrich S-4641 500gr/bottle; sputum decontamination
N-acetyl-L-cysteine Reagent Sigma-Aldrich A-7250 50gr/bottle; sputum decontamination
Potassium Phosphate Monobasic crystal. KH2PO4 Reagent Sigma-Aldrich P0662 500gr/bottle; sputum decontamination
Sodium Phosphate Dibasic, anhydrous. Na2HPO4 Reagent Sigma-Aldrich S0876 500gr/bottle; sputum decontamination
Sodium hypochlorite Reagent household bleach to discard contaminated waste
15ml centrifuge tubes (polypropylene 15ml Falcon 35‐2096) Consumable Fisher Scientific 14‐959‐49B 500ea/case; for sputum decontamination and concentration
24 well plates (Plates Tissue 24 wells BD Falcon 35‐3047) Consumable Fisher Scientific 08-772-1 50 plates/case; for culture and reading
Sealable polythene bags 6 X 6 “ (ziplock) Consumable for biosecurity to contain 24 well plate
Glass tubes with lid (16 x 100mm and 18 x 145mm) Consumable VWR international 47729-583 500 tubes/case; to store aliquots of prepared broth
Screw cap microcentrifuge tubes (1.5ml) Consumable Fisher Scientific 05‐669‐22 1000ea/case; to store aliquots of antibiotic stocks
0.22μm filters (aqueous solvents) Syringe filter Millex blue Consumable Fisher Scientific SLGL 025 OS 50 units/case; to filter antibiotic stocks
0.22μm filters (organic solvents) Syringe filter Millex yellow Consumable Fisher Scientific SLGV 033 RS 50 units/case; to filter antibiotic stocks
Disposable Pasteur pipettes borosilicate glass 9″ Consumable Fisher Scientific 13‐678‐20C 720ea/case; to mix PANTA with media mix
Aerosol barrier tips 1000‐1300μl Consumable Fisher Scientific 02‐707‐51 1000ea/pk; to dispense media into plate
USA Scientific Tips One 1‐200μl yellow tips Consumable Fisher Scientific 1111‐0006 1000 tips/bag; to dilute antibiotic stocks

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Arias, M. Clinical evaluation of the microscopic-observation drug-susceptibility assay for detection of tuberculosis. Clin Infect Dis. 44, 674-674 (2007).
  2. Caviedes, L. Rapid, efficient detection and drug susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis in sputum by microscopic observation of broth cultures. The Tuberculosis Working Group in Peru. J Clin Microbiol. 38, 1203-1203 (2000).
  3. Caviedes, L., Moore, D. A. Introducing MODS: a low-cost, low-tech tool for high-performance detection of tuberculosis and multidrug resistant tuberculosis. Indian J Med Microbiol. 25, 87-87 (2007).
  4. Caws, M. Evaluation of the MODS culture technique for the diagnosis of tuberculous meningitis. PLoS ONE. 2, e1173-e1173 (2007).
  5. Ejigu, G. S. Microscopic-observation drug susceptibility assay provides rapid and reliable identification of MDR-TB. Int J Tuberc Lung Dis. 12, 332-332 (2008).
  6. Kim, S. J. Risk of occupational tuberculosis in National Tuberculosis Programme laboratories in Korea. Int J Tuberc Lung Dis. 11, 138-138 (2007).
  7. Mello, F. C. Clinical evaluation of the microscopic observation drug susceptibility assay for detection of Mycobacterium tuberculosis resistance to isoniazid or rifampin. J Clin Microbiol. 45, 3387-3387 (2007).
  8. Moore, D. A. Future prospects for the MODS assay in multidrug-resistant tuberculosis diagnosis. Future Microbiol. 2, 97-97 (2007).
  9. Moore, D. A. Infrequent MODS TB culture cross-contamination in a high-burden resource-poor setting. Diagn Microbiol Infect Dis. 56, 35-35 (2006).
  10. Moore, D. A. Microscopic-observation drug-susceptibility assay for the diagnosis of TB. N Engl J Med. 355, 1539-1539 (2006).
  11. Moore, D. A. Microscopic observation drug susceptibility assay, a rapid, reliable diagnostic test for multidrug-resistant tuberculosis suitable for use in resource-poor settings. J Clin Microbiol. 42, 4432-4432 (2004).
  12. Moore, D. A., Roper, M. H. Diagnosis of smear-negative tuberculosis in people with HIV/AIDS. Lancet. 370, 1033-1033 (2007).
  13. Oberhelman, R. A. Improved recovery of Mycobacterium tuberculosis from children using the microscopic observation drug susceptibility method. Pediatrics. 118, e100-e100 (2006).
  14. Palomino, J. C., Martin, A., Portaels, F. MODS assay for the diagnosis of TB. N Engl J Med. 356, 188-189 (2007).
  15. Park, W. G., Bishai, W. R., Chaisson, R. E., Dorman, S. E. Performance of the microscopic observation drug susceptibility assay in drug susceptibility testing for Mycobacterium tuberculosis. J Clin Microbiol. 40, 4750-4750 (2002).
  16. Shiferaw, G. Evaluation of microscopic observation drug susceptibility assay for detection of multidrug-resistant Mycobacterium tuberculosis. J Clin Microbiol. 45, 1093-1093 (2007).
  17. Tovar, M. Improved diagnosis of pleural tuberculosis using the microscopic- observation drug-susceptibility technique. Clin Infect Dis. 46, 909-909 (2008).
  18. Vargas, D. Diagnosis of sputum-scarce HIV-associated pulmonary tuberculosis in Lima, Peru. Lancet. 365, 150-150 (2005).

Comments

4 Comments

  1. I think it is an interesting video about the rapid diagnosis of tuberculosis by MODS assay but I also think this assay might be improve if the casein is replaced by simple amino acids in order to generate a chemically culture medium.

    Reply
    Posted by: Anonymous
    January 10, 2009 - 11:21 AM
  2. nice work.  how dŒs this compare to the MABA method?  what is the false positive and false negative rates with samples from adult humans?

    Reply
    Posted by: Anonymous
    March 9, 2009 - 9:47 AM
  3. very good site for TB, but method lacks the video of reading a plate on inverted microscope.

    Reply
    Posted by: Anonymous
    March 31, 2009 - 3:38 PM
  4. Excelente trabajo, el MODS es una tecnica infalible, considero que existe buena concordancia con las pruebas confirmatorias de sensibilidad a drogas como metodo proporciones, APP, TEMA, MABA e incluso Fagotipificacion.

    Reply
    Posted by: cesar augusto r.
    November 3, 2009 - 11:17 PM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Video Stats