Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

تحديد الأحماض السياليك في الكبد وعينات الحليب من البرية من نوع و Published: July 14, 2017 doi: 10.3791/56030

Summary

نحن تصف طريقة القائم على هبلك لتحديد N- حمض أسيتيلنورامينيك وحمض N- جليكوليلورامينيك في الكبد الماوس والحليب.

Abstract

كماه (سيتيدين مونوفوسفهات-N-أسيتيلنورامينيك حامض هيدروكسيلاز) هو المسؤول عن أكسدة أحماض سيتيدين أحادي فوسفات - N- أسيتيلنورامينيك في الثدييات. ومع ذلك، لا يمكن للبشر أكسدة حمض السيتيدين مونوفوسفهات-N- أسيتيلنورامينيك إلى حمض سيتيدين مونوفوسفهات-N- جليكولنورامينيك بسبب حذف اكسون الابتدائي للجين كماه . لفهم الآثار والآثار المترتبة على عدم وجود نشاط سماه بمزيد من التفصيل، ونموذج تدق كماه في الفئران هو من اهتمام كبير في البحوث الأساسية والتطبيقية. طريقة التحليل لتحديد النمط الظاهري لهذا النموذج الماوس هو موضح هنا بالتفصيل، ويستند على الكشف عن كل من N- حمض أسيتيلنورامينيك وحمض N- غليكوليلورامينيك في الكبد وحليب البرية من نوع و كماه تدق الفئران. يتم الافراج عن الأحماض السياليك الذاتية و ديريفاتيزد مع o- فينيلينديامين لتوليد المشتقات الفلورية، والتي يمكن تحليلها لاحقا من قبل هبلك. يمكن أن يكون البروتوكول المقدمكما طبقت لتحليل عينات الحليب والأنسجة من مختلف الأصول الأخرى، ويمكن أن تكون مفيدة للتحقيق في الآثار الغذائية والصحية للحمض N-غليكوليلورامينيك.

Introduction

N- حمض أسيتيلنورامينيك (Neu5Ac) وحمض N- جليكولنورامينيك (Neu5Gc) هي الأحماض السياليك الأكثر شيوعا في معظم الثدييات 1 . على الرغم من أن قادرة على تصنيع Neu5Ac داخليا، والبشر ليست قادرة على إنتاج Neu5Gc بسبب حذف اكسون الابتدائي على ترميز الجينات سماه ل هيدروكسيلاز سمب-Neu5Ac 2 ، 3 . ومع ذلك، يمكن للمنتجات الغذائية الحيوانية القائمة على مصادر غذائية من Neu5Gc 4 ، 5 ، 6 ، مما يؤدي إلى إنتاج الأجسام المضادة لمكافحة Neu5Gc، وبالتالي تؤدي إلى استجابة مناعية تجاه Neu5Gc 7 . ويشتبه هذا التأثير الغذائي لل Neu5Gc للمساهمة في التهاب مزمن وأمراض أخرى مختلفة 8 ، 9 ، 10 . من أجل فهم شامل لآثار Neu5Gc في حأومانز، نموذج حيواني للدراسة المنهجية لآثار الأحماض السياليك التي تنقلها الأغذية هو مرغوب فيه للغاية. على الرغم من أن البروتوكولات القائمة على البوليميراز سلسلة من ردود الفعل (ير) لتحليل الفئران التدقرج هي راسخة وطريقة مريحة للتقييم الجيني، والتحليل الوظيفي للنمط الظاهري على مستوى التمثيل الغذائي يتطلب أساليب تحليل أكثر تحديدا. يمكن تقييم النمط الظاهري للماوس تدق نموذج الماوس من خلال عزل وتحليل تكوين الأحماض السياليك في عينات الكبد أو الحليب. وقد تم الإبلاغ عن عدة طرق للكشف عن الأحماض السياليك في أنسجة الحيوانات في وقت سابق: رد فعل الأحماض السياليك مع ريسورسنول 11 أو حمض الثيوباربيتوريك 12 يؤدي إلى تشكيل منتج كروموفوريك ويمكن تحليلها ببساطة باستخدام الإعداد بلاتريدر مقرها، ولكن فقط مجموع سياليك قد يتم تحديد محتوى الحمض. بدلا من ذلك، تم وصف تحليل الأحماض السياليك أيضا باستخدام اللوني للغاز13 ، مالدي-توف الطيف الكتلي 14 أو أساليب أمبيروميتريك 15 . ومع ذلك، فإن أساليب تحليل حمض السياليك الأكثر شيوعا تعتمد على الإفراج التحلل، تليها مشتق مضان واللاحقة عالية الأداء اللوني السائل 16 ، 17 ، 18 .

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

وقد وافقت اللجنة الأخلاقية لمركز الحيوان التجريبي في جامعة نانجينغ الزراعية وفقا للإجراءات الوطنية لرعاية الحيوان التجريبي (وزارة العلوم والتكنولوجيا، العلاقات العامة في الصين، 2006) مع الحيوانات الموجودة في سف منشأة (رقم التصريح: سيكسك-J-2011-0037).

1. كماه المغلوب خارج الماوس نموذج

  1. استخدام البرية من نوع C57Bl / 6 الفئران من مركز الطب المقارن من جامعة يانغتشو (الصين).
    ملاحظة: تم إنشاؤها كماه تدق الفئران خارج استنادا إلى المعلومات المقدمة من السابق كماه تدق التدريجي الدراسات 17 ، 19 والحصول تجاريا باستخدام استراتيجية كريسبر / Cas9 20 عن طريق إزالة 92 أزواج قاعدة من اكسون 6 من الجينات كماه ، والذي هو أيضا محذوف في الجين البشري كماه 19 . إيجابي F 0 </ الفرعية> -mice (2 أفراد) عبرت مع الفئران نوع البرية للحصول على متخالف F 1 -mice. بعد عبور متخالف F 1 -mice (5 أفراد)، متماثل Cmah خروج المغلوب F 2 -mice يمكن الحصول عليها بنجاح (3 أفراد).
  2. إجراء التنميط الجيني من الفئران باستخدام الحمض النووي الجيني وفقا للطريقة التي أظهرها زانغالا 21 باستخدام مجموعة تنقية الحمض النووي التجارية.
    1. تضخيم المقابلة جزء الحمض النووي للجين Cmah باستخدام البلمرة DNA التجاري والزوج التمهيدي 5'gaaagggctcggctctgtatgaa3 "و5'tttaaaatgtcccgggtgagaagc3. أداء التضخيم الجيني باستخدام 34 دورة ير تتكون من تمسخ في 94 درجة مئوية لمدة 40 ثانية، الصلب عند 63 درجة مئوية لمدة 40 ثانية، واستطالة عند 72 درجة مئوية لمدة 1 دقيقة.
    2. تصور المنتجات ير على هلام الاغاروز 1٪. ينبغي للمرء أن يراقب فرقة واحدة (0.5 كيلو بايت) للفرد من نوع البرية، ونطاق مزدوج (0.4 و 0.5 كيلو بايت) لمتفرقة متخالف الفردي، والفرقة واحدة (0.4 كيلو بايت) لفرد متماثل ضرب المغلوب.

2. جمع العينات

  1. جمع الحليب الماوس باستخدام بروتوكول وصفها ويلينغهام وآخرون. 22-
  2. جمع الأنسجة الماوس الكبد باستخدام بروتوكول وصفها غونكالفس وآخرون. 23 وتخزين العينات في -80 درجة مئوية.

3. عزل الأحماض السياليك من الحليب

  1. إعداد 100 مل من محلول حمض الخليك 2 M عن طريق إضافة 12 مل من حمض الخليك الجليدي إلى 88 مل من المقطر H 2 O.
  2. نقل 50 ميكرولتر من الحليب إلى أنبوب الطرد المركزي 1.5 مل وإضافة 1.2 مل من محلول حمض أسيتيك مائي أعدت.
  3. احتضان تعليق لمدة 4 ساعات في 80 درجة مئوية وأجهزة الطرد المركزي العينة في 14،000 x ج لمدة 10 دقيقة.
  4. نقل أعلى 1000 ميكرولتر من طاف في أنبوب الطرد المركزي 1.5 مل الطازجة و ريمفوق المذيب عن طريق التبخر الطرد المركزي في درجة حرارة الغرفة لاستكمال جفاف (اعتمادا على مضخة فراغ المرفقة هذا وسوف يستغرق 4-20 ساعة). إعادة حل العينة في 500 ميكرولتر من المقطر H 2 O.
  5. إعداد عمود الصرف أنيون الصغرى. هذه الخطوة سوف تثري على وجه التحديد المركبات الأيونية وإزالة المركبات الموجبة والمحايدة من عينات الحليب والكبد، وبالتالي يزيد من الانتقائية من وكيل أوبد الفلوروجينيك المسمى وسم مشتقات حمض سياليك.
    1. نقل لكل عينة 200 ملغ من راتنج التبادل أنيون (داوكس 1X8) إلى أنابيب عمود فارغة 3 مل مع محبس المرفقة.
    2. إضافة 2 مل من محلول حمض أسيتيك مائي أعدت في الخطوة 3.1 لاستبدال أيونات الكلوريد في الراتنج مع أيونات خلات. إغلاق محبس في أقرب وقت المذيبات تصل إلى الجزء العلوي من الراتنج.
    3. إضافة بلطف 2 مل من H المقطر O 2 ، فتح محبس ووقف تدفق في أقرب وقت معظم المذيبات تصلالجزء العلوي من الراتنج. تأكد من أن الراتنج مغطى دائما مع المذيبات.
    4. غسل عمود الراتنج مرتين أكثر مع 2 مل من H المقطر H 2 O لإزالة خلات الزائدة.
  6. نقل الناتجة ميكرولتر 500 من عينة المذيبات من الخطوة 3.4. على عمود الراتنج وتجاهل تدفق من خلال. غسل بلطف الراتنج مع 2 مل من المقطر H 2 O. أزل العينة الأنيونات من الراتنج باستخدام 1 مل من 50 ملي محلول الأمونيوم خلات (386 ملغ من خلات الأمونيوم الذائبة في 100 مل من المقطر H 2 O) إلى 1.5 مل أنبوب الطرد المركزي. إزالة المذيب عن طريق التبخر الطرد المركزي في درجة حرارة الغرفة إلى جفاف.
    ملاحظة: يمكن تخزين العينات الجافة في 4-6 درجة مئوية لمدة تصل إلى 12 شهرا.

4. عزل الأحماض السياليك من أنسجة الكبد

  1. ذوبان الجليد بلطف 20 - 50 ملغ من الكبد الماوس ونقله إلى دونس طاحونة الأنسجة (1 مل أو 2 مل من حجم). إضافة 1.2 مل من محلول حمض أسيتيك مائيأعدت في الخطوة 3.1 وتجانس الأنسجة عن طريق القص لطيف لمدة 10 ثانية. نقل تعليق الناتجة في أنبوب الطرد المركزي 1.5 مل.
  2. اتبع الخطوات 3.3. إلى 3.6.
    ملاحظة: يمكن تخزين العينات الجافة في 4-6 درجة مئوية لمدة تصل إلى 12 شهرا.

5. إعداد معيار حمض سياليك مختلطة

  1. تزن في ما بين 5-8 ملغ من حمض N- أسيتيلنورامينيك على التوازن التحليلي في أنبوب الطرد المركزي 1.5 مل. لاحظ الوزن الدقيق وإضافة 164 ميكرولتر من H المقطر H 2 O لكل ملغ ( أي إذا كان وزن Neu5Ac هو 7.2 ملغ ثم إضافة 7.2 × 164 = 1، 181 ميكرولتر من المقطر H 2 O). هذا يؤدي إلى حل الأسهم 20 ملي Neu5Ac التي يمكن تخزينها في -20 درجة مئوية لمدة تصل إلى 12 شهرا.
  2. الحصول على حمض N- جليكولنورامينيك بكميات أصغر بسعر معتدل مثل في 1 ملغ أليكوتس. إضافة 154 ميكرولتر من المقطر H 2 O مباشرة إلى المجمع من أجل الحصول على ~ 20 ملي حل الأسهم NE5Gc. نقلحل في أنبوب الطرد المركزي 1.5 مل. يمكن تخزين هذا الحل في -20 درجة مئوية لمدة تصل إلى 12 شهرا.
  3. الجمع بين 5 ميكرولتر من كل حل المخزون من الخطوة 5.1 و 5.2 إلى الطازجة 1.5 مل أنبوب الطرد المركزي وإزالة المذيبات بواسطة التبخر الطرد المركزي في درجة حرارة الغرفة إلى جفاف.
    ملاحظة: يمكن تخزين معيار حمض السياليك مختلطة في 4-6 درجة مئوية لمدة تصل إلى 12 شهرا.

6. مضان اشتقاق الأحماض السياليك

  1. إعداد 10 مل من أوبد الحل، ويتألف من 100 ملغ من o- فينيلينديامين و 208 ملغ من كبريتات الهيدروجين الصوديوم في 10 مل من H المقطر H 2 O.
  2. إضافة 20 ميكرولتر من حل أوبد لعينات حمض السياليك المستمدة من حليب الماوس (الخطوة 3)، كبد الفأر (الخطوة 4)، أو مختلطة حمض سياليك القياسية (الخطوة 5). دوامة بقوة لمدة 30 ثانية واحتضان عينات لمدة 4 ساعات في 80 درجة مئوية في الظلام ( أي التفاف ميكروتوبس في رقائق الألومنيوم).
  3. السماح للعينات يبرد لمدة 5 دقائق، إضافة 80 μ؛ L المقطر H 2 O وأجهزة الطرد المركزي أنابيب في 14،000 x ج لمدة 1 دقيقة.
  4. نقل 80 ميكرولتر من طاف في 300 ميكرولتر عالية الانتعاش قارورة هبلك. يمكن تخزين عينات حمض السياليك ديريفاتيزد في 4-6 درجة مئوية لمدة تصل إلى أسبوع واحد.

7. تحليل هبلك من المشتقات حمض سياليك

  1. تحليل العينات باستخدام نظام هبلك القياسية متصلة كاشف مضان على الانترنت.
  2. استخدام عمود المرحلة C18 عكس مع الأبعاد القياسية من 250 مم طول و 4.6 مم قطر للتحليل.
  3. إعداد المذيب A عن طريق تمييع 200 مل من محلول المخزون مع 800 مل من المياه لمس الصف (لمس - اللوني السائل الكتلة الطيفية). الحل الأسهم نفسها يمكن إعدادها على النحو التالي:
    1. إضافة 46 غرام من حمض الفورميك إلى 800 مل من LMS- الصف H 2 O.
    2. ضبط درجة الحموضة إلى 4.5 بواسطة قطرة قطرة إضافة محلول هيدروكسيد الأمونيوم (بوريس.
    3. نقل المذيب إلىقياس اسطوانة وملء ما يصل إلى 1000 مل مع LMS- الصف H 2 O. ويمكن تخزين هذا الحل المخزون في 4-6 درجة مئوية لمدة تصل إلى 3 أشهر.
  4. بالنسبة للمذيب B، استخدم أسيتونيتريل لمس-غريد.
  5. فصل المشتقات الأحماض سياليك بمعدل تدفق 1 مل / دقيقة مع شطف التدرج التالية:
    1. ابدأ بإضافة 10٪ من المذيب B المختلط إلى المذيب A.
    2. من 0 دقيقة إلى 15 دقيقة، وزيادة تدريجية في نسبة المذيب B مع التدرج الخطي إلى 60٪.
    3. من 15 دقيقة إلى 16 دقيقة، بسرعة زيادة نسبة المذيب B مع التدرج الخطي من 60٪ إلى 90٪. هذا يبدأ غسل العمود هبلك.
    4. لمزيد من غسل العمود هبلك، والحفاظ على مستوى المذيب B في 90٪ بين 16 دقيقة و 18 دقيقة قبل الحد تدريجيا من مستوى المذيب B مرة أخرى إلى 10٪ بين 18 دقيقة و 19 دقيقة.
    5. إعادة توازن عمود هبلك إلى ظروف انطلاق 10٪ B بين 19 و 24 دقيقة.
  6. فيجيكت 50 ميكرولتر من العينة في نظام هبلك.
  7. رصد خيوط باستخدام مضان كاشف الإثارة / انبعاث موجات من 373/448 نانومتر، والأحماض سياليك ديريفاتيزد يمكن أن يتوقع في أوقات الاحتفاظ التقريبي من 9 دقيقة (ل Neu5Gc-أوبد) و 10 دقيقة (ل Neu5Ac-أوبد).
  8. حساب المبلغ النسبي لل Neu5Gc (F Neu5Gc ) من المناطق ذروة مضان من Neu5Ac (A Neu5Ac ) و Neu5Gc (A Neu5Gc ) على النحو التالي: F Neu5Gc [٪] = 100 × و Neu5Gc / (A ne5Ac + A Neu5Gc ). في حالة عينات الحليب والكبد من متماثل متماثلة كماه ضرب المغلوب الماوس F Neu5Gc ينبغي أن يكون 0٪، في حين أن القيم ل F Neu5Gc من متخالف والبرية من نوع الفئران قد تختلف على نطاق واسع اعتمادا على عصر الماوس ونوع الأنسجة (بين 2٪ و> 90٪) مع هوامش الخطأ المتوقعة ± 12٪.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

ويرد نظرة عامة التخطيطي لطريقة تحليل وصفها في الشكل 1 ، ويتضمن عزل الأحماض السياليك من عينات الحليب والكبد من نوع البرية و كماه تدق الطرد الفئران متحولة، ومشتق مضان وتحليل هبلك من هذه المكونات. الشكل 2 والشكل 3 تظهر كروماتوغرامز هبلك ممثل من أحماض سياليك ديريفاتيزد من عينات الحليب والكبد من هومو- متخالف المغلوب خارج الفئران سماه (- / - و +/-) والفئران نوع البرية. ويبين الشكل 4 كميات النسبية التي تم الحصول عليها من حمض N- غليكوليلورامينيك (Neu5Gc) من عينات الماوس تحليلها محسوبة من المناطق ذروة هبلك.

شكل 1
الشكل نغ كلاس = "زفيغ"> 1 : تخطيطي نظرة عامة على طريقة تحليل وصفها للأحماض السيالية من الحليب المستمدة من الماوس وعينات الكبد. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 2
الشكل 2 : كروماتوغرامز هبلك من الإسفار المسمى الأحماض السياليك من عينات الحليب مشتقة من هومو ومتخالف المغلوب خارجا الفئران سماه (- / - و +/-) والفئران من نوع البرية. الكروماتوغرام العلوي هو مختلطة معيار حمض سياليك. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

"سرك =" / فيليز / ftp_upload / 56030 / 56030fig3.jpg "/>
الشكل 3 : كروماتوغرامز هبلك من الإسفار المسمى الأحماض السياليك من عينات الكبد المشتقة من هومو ومتخالف المغلوب خارجا الفئران سماه (- / - و +/-) والفئران من نوع البرية. الكروماتوغرام العلوي هو مختلطة معيار حمض سياليك. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 4
الشكل 4 : المبالغ النسبية للحمض N-غليكولنورامينيك (Neu5Gc) من عينات الماوس تحليلها محسوبة من مناطق ذروة هبلك. الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

يسمح البروتوكول هنا تقديم التقييم phenotypical من متماثل الفئران خروج المغلوب Cmah من خلال تحليل وقياس كميات النسبية Neu5Gc من الحليب والكبد العينات. تم إجراء التحليل باستخدام إعداد هبلك القياسية مع الكشف مضان. الخطوة الأكثر أهمية من هذا الإجراء هو إعداد الأعمدة تبادل أنيون وأداء اللوني التبادل أنيون. لتسوية الراتنج بشكل صحيح وجمع الحق غسل وكسور شطف يأخذ قليلا من الممارسة.

بدلا من ذلك، هنا يستخدم وكيل المشتقة أوبد يمكن استبدالها بسهولة مع وكيل اشتقاق أكثر تكلفة دمب (1،2-ديامينو-4،5-ميثيلينديوكسيبنزين). وعلاوة على ذلك، وتحليل المشتقات حمض السياليك التي تم الحصول عليها من الخطوة 6.5. يمكن تحليلها أيضا باستخدام الكشف عن الطيف الكتلي بدلا من الكشف مضان ( أي نظام شيمادزو نيكسيرا أوبلك إلى جانب كاشف مس-2020). افتر تطبيق الخطوات 7،2 - 7،6، يتم الكشف مباشرة عن مشتقات حمض السياليك باستخدام إيجابي التأين وضع المسح لنسب م / ض من 382.0 و 398.0 (هذه هي H + -adducts من Neu5Ac-أوبد و Neu5Gc-أوبد، على التوالي).

واحد الحد من هذه الطريقة هو أن محتوى Neu5Gc يمكن إلا أن يكون كميا بالنسبة إلى كمية Neu5Ac، ولكن ليس بطريقة مطلقة. وللقيام بذلك، ستكون هناك حاجة إلى إضافة حمض سياليك متميز وقابل للقياس كمعيار داخلي في المرحلة الأولية من إعداد العينة. وهناك عيب آخر هو أن متماثل فقط ولكن ليس متخالف كماه ضرب تدق الفئران يمكن تحديدها بشكل لا لبس فيه، كما أن المبلغ النسبي لل Neu5Gc متخالف تدق الفئران قد تختلف بقوة اعتمادا على نوع العينة ( أي الأنسجة) وعمر الفئران الفردية. التطورات المستقبلية لهذه الطريقة قد تشمل إضافة المعايير الداخلية والتقدير المطلق للأحماض السياليك في الفئران.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

الكتاب ليس لديهم ما يكشف.

Acknowledgments

وقد دعم هذا العمل جزئيا من قبل مؤسسة العلوم الطبيعية في الصين (أرقام المنحة 31471703، A0201300537 و 31671854 ل جف و ل)، و 100 خطة المواهب الخارجية (منحة رقم JSB2014012 إلى جف).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Chemicals:
N-acetylneuraminic acid Sigma A0812
N-glycolylneuraminic acid Sigma 50644 1 mg aliquot should be sufficient
o-Phenylenediamine Sigma 694975
Sodium hydrogen sulfite J&K Scientific Ltd 75234
Tools/Materials:
3 mL SPE tubes Supelco Sigma 57024 empty solid phase extraction columns
Luer stopcock Sigma S7396 to stop the flow of the SPE tube
Dowex 1X8 Dow Chemicals Sigma 44340 200 - 400 mesh
Dounce tissue grinder Sigma D8938 tight fit
HPLC Analysis:
High-recovery HPLC vial Agilent Technologies #5188-2788
HPLC System Shimadzu Nexera
Fluorescence Detector for HPLC Shimadzu RF-20Axs
HPLC Column Phenomenex Hyperclone ODS 250 x 4.6 mm
LCMS-grade H2O Merck Millipore #WX00011
LCMS-grade Acetonitrile Merck Millipore #100029 Hypergrade
Ammonium hydroxide solution Fluka #44273 puriss. P.a.

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Lamari, F. N., Karamanos, N. K. Separation methods for sialic acids and critical evaluation of their biologic relevance. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci. 781 (1-2), 3-19 (2002).
  2. Irie, A., Koyama, S., Kozutsumi, Y., Kawasaki, T., Suzuki, A. The molecular basis for the absence of N-glycolylneuraminic acid in humans. J Biol Chem. 273 (25), 15866-15871 (1998).
  3. Chou, H. H., et al. A mutation in human CMP-sialic acid hydroxylase occurred after the Homo-Pan divergence. Proc Natl Acad Sci U S A. 95 (20), 11751-11756 (1998).
  4. Rehan, I. F., et al. Large-Scale Glycomics of Livestock: Discovery of Highly Sensitive Serum Biomarkers Indicating an Environmental Stress Affecting Immune Responses and Productivity of Holstein Dairy Cows. J Agric Food Chem. 63 (48), 10578-10590 (2015).
  5. Wang, B., McVeagh, P., Petocz, P., Brand-Miller, J. Brain ganglioside and glycoprotein sialic acid in breastfed compared with formula-fed infants. Am J Clin Nutr. 78 (5), 1024-1029 (2003).
  6. Yao, H. L., et al. Quantification of sialic acids in red meat by UPLC-FLD using indoxylsialosides as internal standards. Glycoconj J. 33 (2), 219-226 (2016).
  7. Nguyen, D. H., Tangvoranuntakul, P., Varki, A. Effects of natural human antibodies against a nonhuman sialic acid that metabolically incorporates into activated and malignant immune cells. J Immunol. 175 (1), 228-236 (2005).
  8. Byres, E., et al. Incorporation of a non-human glycan mediates human susceptibility to a bacterial toxin. Nature. 456 (7222), 648-652 (2008).
  9. Hedlund, M., Padler-Karavani, V., Varki, N. M., Varki, A. Evidence for a human-specific mechanism for diet and antibody-mediated inflammation in carcinoma progression. Proc Natl Acad Sci U S A. 105 (48), 18936-18941 (2008).
  10. Tangvoranuntakul, P., et al. Human uptake and incorporation of an immunogenic nonhuman dietary sialic acid. Proc Natl Acad Sci U S A. 100 (21), 12045-12050 (2003).
  11. Svennerholm, L. Quantitative estimation of sialic acids. II. A colorimetric resorcinol-hydrochloric acid method. Biochim Biophys Acta. 24 (3), 604-611 (1957).
  12. Warren, L. The thiobarbituric acid assay of sialic acids. J Biol Chem. 234 (8), 1971-1975 (1959).
  13. Kakehi, K., Maeda, K., Teramae, M., Honda, S., Takai, T. Analysis of sialic acids by gas chromatography of the mannosamine derivatives released by the action of N-acetylneuraminate lyase. J Chromatogr. 272 (1), 1-8 (1983).
  14. Wheeler, S. F., Domann, P., Harvey, D. J. Derivatization of sialic acids for stabilization in matrix-assisted laser desorption/ionization mass spectrometry and concomitant differentiation of alpha(2 --> 3)- and alpha(2 --> 6)-isomers. Rapid Commun Mass Spectrom. 23 (2), 303-312 (2009).
  15. Hurum, D. C., Rohrer, J. S. Determination of sialic acids in infant formula by chromatographic methods: a comparison of high-performance anion-exchange chromatography with pulsed amperometric detection and ultra-high-performance liquid chromatography methods. J Dairy Sci. 95 (3), 1152-1161 (2012).
  16. Ito, M., et al. An improved fluorometric high-performance liquid chromatography method for sialic acid determination: an internal standard method and its application to sialic acid analysis of human apolipoprotein. E. Anal Biochem. 300 (2), 260-266 (2002).
  17. Naito, Y., et al. Germinal Center Marker GL7 Probes Activation-Dependent Repression of N-Glycolylneuraminic Acid, a Sialic Acid Species Involved in the Negative Modulation of B-Cell Activation. Mol Cell Biol. 27 (8), 3008-3022 (2007).
  18. Manzi, A. E., et al. High-pressure liquid chromatography of sialic acids on a pellicular resin anion-exchange column with pulsed amperometric detection: a comparison with six other systems. Anal Biochem. 188 (1), 20-32 (1990).
  19. Hedlund, M., et al. N-glycolylneuraminic acid deficiency in mice: implications for human biology and evolution. Mol Cell Biol. 27 (12), 4340-4346 (2007).
  20. Platt, R. J., et al. CRISPR-Cas9 knockin mice for genome editing and cancer modeling. Cell. 159 (2), 440-455 (2014).
  21. Zangala, T. Isolation of genomic DNA from mouse tails. J Vis Exp. (6), e246 (2007).
  22. Willingham, K., et al. Milk collection methods for mice and Reeves' muntjac deer. J Vis Exp. (89), (2014).
  23. Goncalves, L. A., Vigario, A. M., Penha-Goncalves, C. Improved isolation of murine hepatocytes for in vitro malaria liver stage studies. Malar J. 6, 169 (2007).

Tags

الكيمياء الحيوية، العدد 125، سماه، حمض السياليك، Neu5Gc، N- حمض غليكولنورامينيك، Neu5Ac، هبلك-فلد، حليب الماوس
تحديد الأحماض السياليك في الكبد وعينات الحليب من البرية من نوع و<em&gt; CMAH</em&gt; خروج المغلوب الفئران.
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Cao, C., Wang, W. J., Huang, Y. Y.,More

Cao, C., Wang, W. J., Huang, Y. Y., Yao, H. L., Conway, L. P., Liu, L., Voglmeir, J. Determination of Sialic Acids in Liver and Milk Samples of Wild-type and CMAH Knock-out Mice.. J. Vis. Exp. (125), e56030, doi:10.3791/56030 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter