Summary
自由浮动技术允许研究人员进行基于组织学的染色，包括对固定组织切片进行免疫组织化学，以可视化生物结构、细胞类型以及蛋白质表达和定位。这是一种高效可靠的组织化学技术，可用于研究多种组织，例如大脑、心脏和肝脏。
Abstract
免疫组织化学是一种广泛使用的技术，用于可视化特定组织结构以及蛋白质表达和定位。在染色过程中，两种替代方法广泛用于处理组织切片，一种方法包括将切片直接安装在载玻片上，而第二种方法，自由浮动，允许在悬浮在溶液中时保持固定切片并进行染色。尽管载玻片安装和自由浮动方法可能会产生类似的结果，但自由浮动技术可以更好地穿透抗体，因此当较厚的切片用于组织的3D重建时，例如当实验的重点是获得有关大脑区域的树突状和轴突投影的信息时，应该是首选方法。此外，由于切片保存在溶液中，因此单个等分试样可以轻松容纳 30 到 40 个切片，处理这些切片的工作量较小，尤其是在大规模生物医学研究中。在这里，我们说明了如何将自由浮动方法应用于荧光免疫组化染色，主要关注脑切片。我们还将讨论如何轻松修改自由浮动技术以满足研究人员的个性化需求，并适应其他组织以及其他基于组织化学的染色，如苏木精和伊红和甲酚紫，只要组织样品正确固定，通常用多聚甲醛或福尔马林。
Introduction
免疫染色是一种流行的研究实践，始于 130 年前冯·贝林 1890 年发现的血清抗体1.在20世纪初 ，染料附着在抗原上，后来附着在抗体上，作为量化和可视化反应的一种方式1，1941年，Albert Coons开发了第一个荧光抗体标记，这一发现彻底改变了光学显微镜2，3。术语“免疫染色”包括使用该原理开发的许多技术，包括蛋白质印迹、流式细胞术、ELISA、免疫细胞化学和免疫组织化学3，4。蛋白质印迹法检测组织或细胞提取物中是否存在特定蛋白质5。使用凝胶电泳按大小分离蛋白质，转移到膜上，并使用抗体进行探测。该技术指示蛋白质的存在以及存在多少蛋白质;然而，它不会揭示有关蛋白质在细胞或组织内定位的任何信息。另一种方法是免疫细胞化学（ICC），标记细胞内的蛋白质，通常是体外培养的细胞。ICC显示细胞区室内的蛋白质表达和定位6。为了在组织水平上检测和可视化特定蛋白质，使用了免疫组织化学（IHC）。
IHC是研究人员用来靶向组织内特定抗原的方法，利用免疫系统的化学特性7，8。通过产生与酶或荧光染料相连的特异性一抗和二抗，可以在大多数组织中标记和揭示感兴趣的抗原（如Mepham和Britten所述）9。术语“免疫组织化学”本身并未指定用于揭示目标抗原的标记方法;因此，该术语通常与检测技术相结合，以清楚地描述标记方法：显色免疫组织化学（CIH），用于指示二抗何时与酶（例如过氧化物酶）偶联;或荧光 IHC，以指示二抗何时与荧光团偶联，例如异硫氰酸荧光素 （FITC） 或四甲基罗丹明 （TRITC）。IHC的选择性使临床医生和研究人员能够可视化蛋白质在整个组织中的表达和分布，跨越各种健康和疾病状态10。在临床领域，IHC通常用于诊断癌症，以及确定各种类型癌症的差异。IHC还被用于确认体内不同类型的微生物感染，如乙型肝炎或丙型肝炎11。在生物医学研究中，IHC通常用于绘制组织中的蛋白质表达图谱，并且在识别疾病状态下的异常蛋白质方面很重要。例如，神经变性通常伴随着大脑中异常蛋白质的积累，例如阿尔茨海默病中的Αβ斑块和神经原纤维缠结。然后通常开发动物模型来模拟这些病理状态，IHC是研究人员用来定位和量化感兴趣的蛋白质的一种方法10，12，13。反过来，我们可以更多地了解这些疾病的原因以及随之引起的并发症。
执行 IHC 涉及许多步骤。首先，收集感兴趣的组织并准备染色。可以说，大多数研究人员制备固定组织样本，通过循环系统灌注固定剂是最佳的，因为它保留了形态14，15。也可以使用组织样本的固定后，但可能产生的结果可能不理想16。交联固定剂，如甲醛，通过在组织中的蛋白质之间产生化学键来起作用17。然后使用切片机将固定组织切成非常薄的层或切片，许多研究人员更喜欢使用低温恒温器收集冷冻切片。从那里收集组织并直接安装在显微镜载玻片上（载玻片安装方法），或悬浮在溶液中（自由浮动方法），例如磷酸盐缓冲盐水（PBS）18。所使用的收集方法是根据研究人员的需求预先确定的，这两种方法中的每一种都有自己的优点和缺点。
滑块安装方法是迄今为止最常用的方法，其重要优点是可以制备非常薄的切片（10-14μm），这对于研究蛋白质-蛋白质相互作用非常重要。对标本的处理也最少，这减少了对组织结构完整性的潜在损害19。研究人员经常将这种技术用于新鲜冷冻组织（使用干冰，异戊烷等立即冷冻的组织），与固定组织相比，该技术非常脆弱，需要非常小心地防止样品解冻。使用载玻片安装切片的另一个优点是通常不需要大量染色溶液4。因此，研究人员可以使用少量昂贵的抗体或其他化学物质来完成染色。此外，可以在同一张载玻片上安装来自多个不同实验组的切片，这可能是有利的，尤其是在图像采集期间。另一方面，使用载玻片安装切片存在一些缺点，最明显的是组织切片粘附在切片上，从而限制了抗体渗透到切片的一侧，这限制了切片厚度和组织的3D表示。也可能在洗涤过程中，纸巾的边缘和整个切片可能会从载玻片上脱落，从而使整个实验变得无用。此外，当使用载玻片安装方法时，通常必须相对快速地进行IHC，以避免抗原表位20，21的降解，未处理的载玻片通常储存在-20或-80°C，通常盖玻片并水平或储存在载玻片盒中，导致相对较大的存储足迹。最后，如果研究人员必须处理大量载玻片来处理大量组织切片，则载玻片安装技术也可能非常耗时。
由于使用滑动安装方法的一些挑战，一种称为自由浮动方法的修改已成为一种流行的替代方案。这种技术在 1960-70 年代 22，23，24 进入文献，在 1980 年代25，26，27，28，29 中流行起来，现在是一种成熟的方法，涉及在悬浮液中对收集的部分进行染色而不是粘附在载玻片上12，30，31.当组织切片小于20μm时，不建议使用自由浮动方法;然而，根据我们的经验，当要染色较厚（40-50μm）的切片时，这是首选的方法。一个明显的好处是，抗体可以从各个角度穿透自由漂浮的部分，并且由于更有效的洗涤而产生更少的背景染色，所有这些都可以在成像时产生更好的信号传导。此外，切片在处理后安装在载玻片上，从而消除了组织脱落的可能性，并减少了占用低温恒温器的时间。自由浮动方法的劳动强度也低得多，特别是对于大规模的生物医学研究。例如，可以在同一孔中将同一样品中的许多（18-40）切片一起染色，从而节省执行洗涤和抗体孵育步骤的时间。此外，由于使用这种方法可以在每张载玻片上安装更多（12-16）个切片，因此研究人员查看和成像切片通常更方便、更快捷。值得注意的是，在载玻片上安装组织切片的过程中，可以连接和分离切片，直到获得所需的方向。研究人员还经常使用自由浮动方法使用浓度稍低的抗体，并且由于孵育是在微量离心管中进行的，因此可以很容易地收集抗体并用叠氮化钠保存以供重复使用（参见步骤5.1）。另一个优点是，切片可以直接在-80°C下储存在装有冷冻保护剂溶液32的小型微量离心管中，从而最大限度地减少存储空间并最大限度地延长样品33的使用寿命。使用这种技术的缺点是这些部分处理得很多，因此容易损坏。然而，这可以通过使用低振动和旋转速度以及适当培训研究人员如何转移样品并将切片安装到载玻片上来缓解。
综上所述，IHC是临床和生物医学研究领域可视化和定位蛋白质表达的成熟基本工具。自由漂浮的IHC是一种高效，灵活且经济的方法，特别是在进行大规模组织学研究时。在这里，我们为科学界提供了一种可靠的自由浮动荧光IHC方案，可以相应地适用于显色IHC和其他染色，如苏木精和伊红或甲酚紫染色。
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Protocol
1. 冷冻切片的组织准备
- 将固定组织嵌入适当的包埋模具中（见材料表），以使用适当的试样基质（见材料表）创建试样块，并在干冰上冷冻。将试样块储存在-80°C，直到准备切片。
注意：固定组织通常通过灌注成年（约2.5 - 30个月大）雄性或雌性啮齿动物（小鼠或大鼠）34，根据可用的道德许可，用适当的固定剂（例如10%福尔马林）制备，然后在4°C下在同一固定剂中固定组织12小时，用1x PBS洗涤组织三次， 并将组织放入 15% 和 30% 蔗糖中放入 1x PBS 中过夜或直到组织下沉35。研究人员可能会尝试使这种通用协议适应不同的发展阶段。
2. 冷冻切片
- 准备切片时，在切片前将样品在低温恒温器中适应至少1-2小时，以防止组织破碎。
- 使用低温恒温器将组织切成切片（20-50μm），并收集在填充有1x PBS溶液的6或12孔插入物（参见 材料表）中。
注意：根据切片厚度，要收集的组织数量以及使用的孔插入物数量，每个孔将包含可变数量的切片，范围从大约10到40个孔切片不等。例如，如果将整个大脑切片为40μm，则使用12孔插入物在每个孔中收集大约18-24个切片。此外，20 μm 切片的处理可能有些困难，因此建议使用 40 μm 进行批量染色（参见讨论）。
3. 存储部分
- 收集后，用新鲜制备的1x PBS清洗切片5分钟。重复3次。
- 将切片转移到装有 1-1.5 mL 储存溶液的 2 mL 微量离心管中（对于 250 mL，混合 70 g 蔗糖、75 mL 乙二醇，并用 0.1 M 磷酸盐缓冲液体积增大）。
- 储存在-80°C直至准备染色。
4. 染色日 I
- 从冰箱中取出样品并在室温（RT）下平衡10-20分钟。
- 将切片倒入 6 孔板的孔插入物中，以将存储溶液与切片分开。
- 将孔插入物移至另一个含有约 6 mL 1x TBS 的孔中。 用 1x TBS 洗涤 3 次，每次 5 分钟，在轨道振荡器上使用室温低速洗涤 5 分钟。
- 在切片洗涤时，准备 7 mL（每个样品）的封闭-透化溶液，该溶液由 1x TBS 和 0.3% Triton X-100 和 3% 正常血清（例如，正常马血清）组成。在轨道振动台上的室温下，使用低速块部分30分钟。
注意：用血清封闭可防止抗体与组织或非特异性Fc受体的非特异性结合 - 建议使用与二抗种类匹配的血清，但如果不可用，则可以使用来自与一抗宿主动物不同的物种的任何正常血清。洗涤剂Triton X-100通过透化组织来更好地渗透抗体。 - 在含有0.3%Triton X-100和1%正常血清的1x TBS中制备每个由选定的一抗（适当稀释）组成的一抗溶液样品1 mL（参见步骤4.4注意）。将孔中的切片插入到含有一抗溶液的 2 mL 微量离心管中，以与目标抗原结合。
注意：可以使用多种一抗（在不同的宿主物种中产生）。 - 使用低速（例如，速度7rpm）将2mL微量离心管与切片放在旋转混合器上，并在4°C下孵育过夜12-16小时。
5. 染色日 II
- 第二天，将切片倒入 6 孔板的孔插入物中，以将切片与一抗溶液分离。
注意：抗体溶液可以收集和重复使用;加入0.02%（W / V）叠氮化钠以抑制微生物生长。 - 在室温下用 1x TBS 洗涤切片 3 次（前 2 次洗涤为 30 秒，最后一次洗涤为 10 分钟）。
- 在含有 0.3% Triton X-100 和 1% 正常血清（避光溶液）的 1x TBS 中，每个由适当的二抗（相应地稀释）组成的二抗溶液样品制备 1 mL。
注意：使用偶联二抗进行间接标记可放大信号，并允许对蛋白质靶标进行比色或荧光可视化。 - 将切片转移到含有二抗溶液的 2 mL 微量离心管中。在轨道振荡器上用低速（屏蔽溶液避光）在室温下孵育2小时。
- 将切片倒入 6 孔板的孔插入物中，以将切片与二抗溶液分离。
- 继续将样品避光，在室温下用 1x TBS 洗涤 2 次 30 秒。然后在 1x TBS 中洗涤 15 分钟，如果需要，加入 DAPI （1-0.1 μg/ml）。
6. 安装
- 将切片倒入玻璃矩形组织学室中，其中四分之三充满 1x TBS。
- 将载玻片浸入 1x TBS 中，然后用细画笔将切片哄骗到载玻片上。
- 轻轻敲击幻灯片上的部分，确保没有皱纹或褶皱。
- 重复上述步骤，直到所有部分都安装到载玻片上。
注意：例如，当整个大脑在40μm处切片时，收集在12孔插入物中，一个等分试样包含18-24个切片;切片通常安装在 1-2 张载玻片上，但根据研究人员的喜好，每张载玻片也可以安装更少的切片。
7. 盖玻片
- 切片干燥到载玻片上后，在室温下约10-15分钟或直到切片看起来不透明（请记住保护载玻片免受光照），应用适当的水性封片介质（硬化或非硬化）。如果使用荧光偶联二抗，则首选抗褪色。
注意：使用硬化封片剂时，荧光质量可能较低，但载玻片的使用寿命应更长。 - 使用镊子将盖玻片放在培养基顶部。盖上滤纸并用力按压以去除多余的安装介质。
注意：如果使用非硬化安装座，请在盖玻片的边缘涂上透明的指甲油以密封。 - 使用适当的显微镜对切片进行成像。储存在4°C的深色载玻片盒中。
注意：根据研究人员的需要，可以使用各种显微镜对切片进行成像，例如激光扫描共聚焦和倒置或直立宽场荧光，放大倍率（例如，10x，20x，40x）。
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Representative Results
使用自由浮动法进行荧光免疫组织化学测定的总体方案如图 1所示。使用自由浮动方法在小鼠脑中检查神经胶质原纤维酸性蛋白（GFAP）表达的荧光IHC的代表性示例如图 2 所示，在较低和较高的放大倍率下以说明染色的整体质量。这种方法也适用于揭示低表达蛋白， 图3所示为GFP低表达转基因小鼠大脑的示例。自由浮动方法也可用于其他组织化学染色方案，例如甲酚紫，如图4所示，按照实验方案的步骤1至 4.3进行操作，然后按照步骤6中的指示安装切片。此后，可以使用任何需要滑动安装切片的染色来处理切片。当将该方案用于显色IHC时，请遵循步骤1至5.6中的方案（不要将DAPI添加到最后一次洗涤中），如果使用扩增步骤（例如，亲和素-生物素复合物），则进行相应调整。用染色原/底物试剂替换缓冲液，孵育5-20分钟，直到组织变成所需的颜色。可以通过用低倍显微镜定期检查组织来监测反应。通过将带有切片的孔插入物移动到新鲜缓冲液中，洗涤三次，每次至少5分钟来终止反应。继续执行步骤6，将切片安装到载玻片上，让切片在载玻片加热器上干燥至少3-4小时。用增加乙醇浓度（即，70%，90%，95%，99.5%，每个2-5分钟）使载玻片脱水，然后用二甲苯（5-10分钟），然后用硬质安装介质（例如Entellan）盖玻片，使载玻片在通风区域干燥至少1-2小时。如果背景太高，在室温下用3%H2O2 在1x TBS中淬灭内源性过氧化物酶活性15分钟，然后进行三次缓冲液洗涤，每次15-20分钟，然后封闭（步骤4.4）。几种外周组织也适合使用这种技术，无需修改方案， 图5所示为表达GFP的小鼠的肝脏切片示例。
图1：自由浮动荧光免疫组织化学测定的流程图。 解剖感兴趣的器官（最好是固定组织）并使用标本基质（见材料表）将组织嵌入嵌入模具中（见材料表），然后在干冰上冷冻并储存在-80°C。 使用20-50μm的低温恒温器切片组织，并在填充有1x PBS的孔插入物（参见材料表）中收集切片。使用低速轨道摇床，在 1x PBS 中洗涤 3 次，每次 5 分钟。此时，将额外的部分储存在-80°C的存储缓冲液中，直到需要为止。用 1x TBS 清洗剩余部分 3 次 5 分钟。 在室温下低速振荡块部分 30 分钟。制备一抗溶液，并在4°C（12-14小时）的微量离心管中孵育切片过夜。第二天，用1x TBS 3x洗涤切片，前两次洗涤30秒，第三次洗涤10分钟。在室温下将二抗溶液中的切片在微量离心管中孵育2小时，确保从这一步开始尽可能将切片遮挡光线。然后用1x TBS洗涤3次，前两次洗涤30秒，第三次洗涤15分钟。如果需要，如果封片剂中不存在，则在最后一次洗涤时添加 DAPI。将部分倒入装有 1x TBS 的四分之三腔室中，并使用画笔将部分粘附在幻灯片上。让载玻片干燥（~10-15分钟），然后用所选的安装介质盖玻片。使用适当的显微镜对切片进行成像。请点击此处查看此图的大图。
图 2：使用自由浮动脑切片的荧光免疫组织化学。 显示检查成年小鼠GFAP表达的海马脑区域，并使用在兔中产生的抗GFAP一抗和在驴中产生的抗兔Alexa568二抗进行标记。DAPI在最后一次洗涤中使用来标记细胞核。使用低温恒温器在40μm处切片组织。使用激光点扫描共聚焦显微镜以10倍（上）和40倍（下）放大倍率拍摄图像。10x 图像比例尺 = 400 μm。40x 图像比例尺 = 100 μm。 请点击此处查看此图的大图。
图3：使用自由浮动法对低表达蛋白的荧光免疫组织化学。 显示了来自低表达GFP转基因成年小鼠的海马脑区域。使用在山羊中产生的抗GFP一抗和在驴中产生的抗山羊Alexa488二抗标记表达GFP的神经元。DAPI在最后一次洗涤中使用来标记细胞核。使用低温恒温器在40μm处切片组织。使用激光点扫描共聚焦显微镜以40倍放大倍率拍摄图像。比例尺 = 100 μm。 请点击此处查看此图的大图。
图 4：使用自由浮动的脑切片进行克甲苯紫染色。 使用低温恒温器，收集从成年小鼠嗅球到小脑的40μm切片，洗涤，安装在载玻片上，用甲酚紫染色并盖玻片。使用倒置宽场显微镜以10倍放大倍率拍摄图像。比例尺 = 1 mm。 请点击此处查看此图的大图。
图5：使用自由浮动肝切片的荧光免疫组织化学。 显示了使用低温恒温器从表达低水平GFP的转基因成年小鼠的40μm处采集的肝脏切片。在山羊中产生的抗GFP一抗和在驴中产生的抗山羊Alexa488二抗用于标记表达GFP的细胞。将DAPI添加到最后一次洗涤中以标记细胞核。使用激光点扫描共聚焦显微镜以40倍放大倍率收集图像。比例尺 = 100 μm。 请点击此处查看此图的大图。
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Discussion
免疫组织化学（IHC）是一种多功能技术，对于识别组织切片内的蛋白质表达和定位至关重要。该测定法用于整个科学界，以进一步了解组织在正常功能到疾病状态的各个阶段的特征。IHC用于各个领域，从癌症等疾病的临床诊断到临床前研究的初步发现10，36。
最常用于执行IHC的技术是载玻片安装方法，其中切片后切片后立即将切片粘附在载玻片上。使用这种技术的一些优点是，研究人员可以处理蛋白质共定位研究所需的非常薄的切片，并且使用很少的溶液来染色每张载玻片的切片。抗体通常很昂贵;因此，如果要处理的节数很少，这种方法可能是一种经济的选择。这也是使用新鲜冷冻标本的研究人员的首选方法，因为组织的处理最少，因此组织的结构完整性将得到保护。如果只收集几个切片并立即染色，则使用载玻片安装方法也是合适的，就像临床病理学中的情况一样。另一方面，也存在一些缺点，例如在染色过程中仅进入组织的暴露侧，因此由于抗体渗透不良和有效洗涤而限制了切片厚度。另一个缺点是，一旦组织被切片并收集到载玻片上，IHC通常必须相当快地完成，存储未处理的载玻片会占用大量的冷冻空间。此外，当处理较大的实验（例如，具有多个代表性水平的多个大脑区域）时，这种方法实际上可能使用更多的试剂，相当耗时，并且通常会限制每个实验要处理的载玻片数量。
与载玻片安装方法相关的一些限制可以通过自由浮动染色技术来克服，在处理较厚的切片时，该技术已成为越来越流行的替代方案。虽然这种方法不是一种新颖的方法，但根据我们的经验，它是一种可靠、可重现且灵活的方法，特别是对于批量组织样品染色，从而允许以有效的方式处理更大规模的研究。研究人员还可以使用这种方法同时有效地进行多个大型IHC实验。此外，样品以悬浮液染色，因此溶液可以从各个角度穿透切片，对于较厚的切片尤其重要，通常会导致更高质量的染色（图2、图3 和 图5）。自由浮动切片可以在厚度为37的20-50μm的任何地方切片，较厚的切片有助于研究人员在不同的视野中观察结构或细胞。例如，在脑组织中，较厚的切片使研究人员能够在整个样品中看到树突和轴突的结构。收集更薄切片（20 μm）的能力进一步拓宽了应用范围;然而，较薄的切片可能难以处理，并且通常需要更多的时间和精力来最大程度地减少损坏，因此切片不应小于40μm以进行批量染色。自由浮动方法的一个关键好处是研究人员可以快速切片整个大脑（或其他组织），将所有切片收集在小管中，每个等分试样对所有不同的大脑区域都有一个代表性切片，从而使研究人员能够快速染色整个大脑。含有切片的试管可以在-80°C的冷冻保护剂中储存数年33，等分试样不占用太多的冷冻空间，有效地允许研究人员生成“组织库”。这种方法还减少了浪费材料的数量，包括载玻片、盖玻片，尤其是抗体，这些抗体可以很容易地回收和保存以供重复使用，以及珍贵的动物组织，因为只要用户选择，切片就可以存储和保存。
这里介绍的自由浮动方法和协议也为研究人员提供了轻松修改协议或重新利用资源的选择。例如，收集的切片可用于许多不同的组织化学染色剂，除了具有简单方案修改的免疫荧光外，例如显色IHC，苏木精和伊红（H&E），甲酚紫（图4）和RNAscope38。显色IHC允许当可溶性底物被与二抗偶联的酶转化为不溶性显色产物时，抗原表达的可视化。最常用的两种酶是辣根过氧化物酶（HRP），它将3，3'二氨基联苯胺（DAB）转化为深棕色终产物，以及碱性磷酸酶（AP），将3-氨基-9-乙基咔唑（AEC）底物转化为红色产物39。我们常规进行甲酚紫染色并使用自由漂浮切片来检查大脑组织和形态40。我们还成功地将该协议应用于许多不同的组织，包括大脑，肝脏，心脏，肾脏和脾脏（图5）。其他研究人员也成功地将这种技术用于外周组织，包括肝脏，肾脏和卵巢22，23，24。
使用自由浮动技术时的一个主要问题是组织切片（尤其是脑切片）结构损伤的可能性，因为在整个方案中，样品几乎在每一步中都在摇床和旋转器上，以确保它们被均匀洗涤、阻塞和染色。偶尔，特定的大脑区域可能会变得分离，尤其是在小脑水平;但是，在安装过程中使用大脑图谱和放大形式（例如珠宝商的灯）有助于将部分拼凑在一起。通常可以通过轻柔地处理样品并保持旋转机器处于正确的低设置来防止这一挑战。
总之，我们提出了一种成熟的自由浮动IHC技术，该技术已被证明是一种不可或缺，可靠，灵活和有效的方式，我们经常使用它来可视化蛋白质表达和定位以及各种组织中的组织结构。本文中的协议可以很容易地修改以适应个人研究需求，使其对科学界有价值。
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Disclosures
没有什么可透露的
Acknowledgments
我们要感谢国家老龄化研究所（K99 / R00 AG055683至JMR），George and Anne Ryan神经科学研究所（EP，GC，JMR），罗德岛大学药学院（EP，GC，JMR）和Konung Gustaf V：s och Drottning Victorias Frimurarestiftelse（JMR）。我们感谢博士生Rebecca Senft，与哈佛医学院遗传学系的Susan Dymecki教授一起培训，向我们介绍了自由浮动方法。图1中使用的一些图像是从“免费使用，共享或修改，甚至商业上”的来源获得的：小鼠和微量离心管（Pixabay），小鼠大脑（Jonas Töle，维基共享资源），低温恒温器和小鼠大脑部分（数据库生命科学中心，维基共享资源），玻璃容器（OpenClipart，FreeSvg.org）和显微镜（Theresa Knott，Open Clip Art Library）。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 12-well plates | Corning | 3513 | |
| 6-well plates | Corning | 3516 | |
| Clear nail polish | User preference | N/A | |
| DAPI | Sigma-Aldrich | D9542 | |
| Embedding molds | Thermo Scientific | 1841 | |
| Ethylene glycol | User preference | N/A | |
| Formalin solution | Fisher Scientific | SF98-4 | |
| Horse serum, heat inactivated | Gibco | 26050088 | |
| Microscope slide boxes | Electron Microscopy Services | 71370 | |
| PBS | User preference | N/A | |
| Primary antibody | User preference | N/A | |
| Rectangular Coverslips | VWR | 48393-081 | 24 x 50 mm |
| Rectangular staining dish | Electron Microscopy Services | 70312 | |
| Round artist paintbrush #2 | Princeton Select Series | 3750R | Brand not important |
| Secondary antibody | User preference | N/A | |
| Specimen matrix for embedding | OCT Tissue-Tek, Sakura | 4583 | |
| Stain tray – slide staining system | Electron Microscopy Services | 71396-B | Use dark lid |
| Sucrose | User preference | N/A | |
| Superfrost Plus Micro Slides | VWR | 48311-703 | |
| TBS | User preference | N/A | |
| Triton X-100 | Sigma-Aldrich | X100 | |
| Vectashield antifade mounting medium | Vector Laboratories | H-1000 | Non-hardening |
| Well inserts for 12-well plates | Corning Netwells | 3477 | |
| Well inserts for 6-well plates | Corning Netwells | 3479 | |
| Whatman filter paper | Millapore-Sigma | WHA1440042 |
References
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