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Research Article
Ruslan Kuts*1, Israel Melamed*2, Honore N. Shiyntum3, Benjamin F. Gruenbaum4, Dmitry Frank1, Boris Knyazer5, Dmitry Natanel1, Olena Severynovska3, Max Vinokur1, Matthew Boyko1
1Division of Anesthesiology and Critical Care, Soroka University Medical Center and the Faculty of Health Sciences,Ben-Gurion University of the Negev, 2Department of Neurosurgery, Soroka University Medical Center and the Faculty of Health Sciences,Ben-Gurion University of the Negev, 3Department of Biochemistry and Physiology, Faculty of Biology, Ecology, and Medicine,Oles Honchar Dnipro National University, 4Department of Anesthesiology,Yale University School of Medicine, 5Department of Ophthalmology, Soroka University Medical Center and the Faculty of Health Sciences,Ben-Gurion University of the Negev
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
此处介绍的协议显示了创建脑损伤啮齿动物模型的技术。此处描述的方法使用激光照射和目标运动皮层。
在实验啮齿动物模型中诱导中风的一种常见技术涉及使用导管的中脑动脉(MCA)的瞬态(通常表示为 MCAO-t)或永久(指定为 MCAO-p)闭塞。然而,这种普遍接受的技术有一些局限性,从而限制了其广泛使用。该方法的中风诱导通常表现为缺血区定位和大小变化大、出血周期性发生、死亡率高等。此外,成功完成任何临时或永久程序都需要专业知识,通常持续约 30 分钟。在该协议中,提出了一种激光辐照技术,可以作为诱导和研究啮齿动物模型中脑损伤的替代方法。
与对照组和MCAO组大鼠相比,激光诱导的脑损伤在体温、梗塞量、脑水肿、颅内出血和死亡率方面变化减小。此外,使用激光引起的损伤只对运动皮层的脑组织造成损害,这与在 MCAO 实验中不同,在 MCAO 实验中观察到运动皮层和石体组织的破坏。
这项调查的结果表明,激光照射可以作为诱导运动皮层脑损伤的替代和有效的技术。该方法还缩短了完成该过程的时间,不需要专家处理程序。
从全球程度上,中风是第二大死因,也是第三大残疾原因。中风还会导致严重的残疾,往往需要医务人员和亲属的额外护理。因此,需要了解与疾病相关的并发症,并提高取得更积极结果的潜力。
使用动物模型是了解疾病的第一步。为了确保最佳的研究成果,典型的模型将包括简单的技术、可负担性、高可重复性和最小的可变性。缺血性中风模型中的决定因素包括脑水肿体积、梗塞大小、血脑屏障(BBB)分解程度以及通常通过神经严重性评分2评估的功能损伤。
啮齿动物模型中应用最广泛的中风诱导技术暂时或永久地遮挡了中脑动脉(MCA)。3这种技术产生一个类似于人类的中风模型:它有一个五角体围绕中风区域,是高度可重复的,并调节缺血持续时间和再灌注4。然而,MCAO方法有一些并发症。该技术容易颅内出血和损伤的ipilater视网膜与视觉皮层功能障碍和常见的体温过高,往往导致额外的结果5,6,7。,6,7其他限制包括诱发性中风的高变异性(由于缺血可能扩展至意外区域(如外部胡萝卜动脉区域)、MCA 的闭塞不足以及过早再灌注。此外,不同菌株和大小的大鼠表现出不同的梗塞卷8。除了上述所有缺点外,MCAO模型不能诱发脑深区域的小孤立中风,因为它在技术上限制了其对导管最小体积的要求。这使得对替代模型的需要变得更加关键。另一种方法,光膜形成,提供了一个可能的替代MCAO程序,但没有提高效率9。此技术以光描边为目标,并针对以前的模型提供了一些改进。然而,光膜形成需要与继发性复合9相关的侵入性颅骨切除术。
鉴于概述的缺点,这里介绍的协议提供了一种能够替代激光技术,诱导啮齿动物的脑损伤。激光技术的作用机制基于激光对活组织产生光热效应,导致人体组织吸收光束并转化为热量。使用激光技术的优点是它的安全性和操作方便性。激光产生热量以阻止出血的能力使它在医学上非常重要,而它在给定的满足点上放大不同光束的能力确保激光避免破坏影响目标点10的健康组织。该协议中使用的激光束可以通过低液体介质(如骨骼),而不会释放其能量和/或造成任何破坏。一旦它达到高液体介质,如脑组织,它消耗其能量来摧毁目标组织。因此,这项技术只能在大脑的适当区域诱发脑损伤。
这里介绍的技术显示了巨大的能力来调节其辐照水平,产生从一开始所选择的脑损伤变异。与影响皮层和线状体的原始 MCAO 不同,激光技术能够调节脑损伤的影响,仅对预期的运动皮层造成伤害。本文提供了激光诱发脑损伤方案,并总结了对大鼠大脑皮层的手术具有代表性的结果。
下列程序是按照欧洲共同体实验动物使用准则进行的。这些实验还得到了内盖夫本-古里安大学动物护理委员会的批准。
1. 动物选择和准备
2. MCAO 程序
3. 激光引脑损伤实验程序
4. 神经严重性评分 (NSS)
5. 受伤后操作
6. 脑损伤评估
对照组或实验组无死亡或SAH登记(表1)。MCAO组的死亡率和SAH死亡率均达到20%。
尽管两组大鼠的变异性不同(表1),但两组大鼠的相对体温变化也相似。
与假操作对照组(1 ± 0.3)相比,激光(16 ±1.1)和MCAO(20±1.5)型号的NSS明显恶化。 表 1;p<0.01)。
与假操作对照组(2.4% = 0.3% 对 0.5% = 0.1) 相比,激光引起的脑损伤也导致目标半球的梗塞体积显著增加; 表 2 和 图 1A;p<0.01),根据曼-惠特尼U测试。然而,与 MCAO 技术相比,激光模型的法化体积较小(2.4% = 0.3 与 9.9% = 2.9)。
脑水肿确定24小时脑损伤后,如图 1B 和 表2所示。激光诱发脑损伤模型与假操作对照组(3.4% = 0.6 对 0.7% = 1.2)在脑水肿方面没有差异。激光模型和 MCAO 技术(3.4 ± 0.6 vs 7 = 2.6°)在脑水肿方面存在显著差异。数据以均值 = SEM 表示。
与假操作对照组相比,激光引起的脑损伤和MCAO技术在非损伤半球(563纳克/克=66和1176纳克=168,对141纳克/克=14)的BBB破损显著增加;图2A和表2;p<0.01) 和目标半球 (2204 ng/g = 280 和 2764 ng/g = 256,分别与 134 ng/g = 11;图2B和表2;p<0.01)。
图3显示了对大鼠大脑的 组织学检查。
| Nss | 温度,°C | SAH, % | 死亡率, 百分比 | |||
| 组 | 均值 = Sem | 变异性,百分比 | 均值 = Sem | 变异性,百分比 | ||
| 沙姆操作控制 | 1 ± 0.3 | 97 | 37.2 × 0.1 | 59 | 0 | 0 |
| 激光 50J x10 | 16 × 1.1* | 30 | 37.4 × 0.1 | 84 | 0 | 0 |
| p - mcao | 20 × 1.5* | 37 | 38.3 = 0.1* | 129 | 20* | 20* |
表1:NSS、体温、亚拉奇诺类出血和死亡率的评估。
| Bbb | 已法处理卷 | 脑水肿 | ||||
| 组 | 均值 = Sem | 变异性,百分比 | 均值 = Sem | 变异性,百分比 | 均值 = Sem | 变异性,百分比 |
| 沙姆操作控制 | 134 × 11 | 25 | 0.5 × 0.1 | 77 | 0.7 × 1.2 | 573 |
| 激光 50J x10 | 2204 × 280* | 40 | 2.4 × 0.3* | 34 | 3.4 × 0.6 | 58 |
| p - mcao | 2764 × 256* | 29 | 9.9 × 2.9* | 92 | 7 × 2.6* | 115 |
表2:BBB分解、梗塞区和脑水肿的评估。 \ p < 0.01

图1:与MCAO模型和假操作控制相比,激光模型24小时脑损伤的评估。 (A) 评估梗塞量。与假操作控制(*p<0.01)相比,激光模型中的梗塞体积增加了。但是,与 MCAO 模型 (*p<0.01) 相比,激光模型中的法能体积较小。(B) 脑总水肿评估。与激光模型或假操作控制相比,MCAO 模型中脑水肿增加。激光模型和假操作控制在脑水肿方面没有区别。数据以百分比为单位对反面半球进行测量,并 表示为均值 = SEM。请单击此处查看此图的较大版本。

图 2:与虚假控件相比,BBB 分解的程度。(A) 反面(非伤害)半球。与假操作对照组(*p<0.01)相比,激光和 MCAO 模型在非伤害半球的 BBB 破损显著增加。(B) 伊普西拉特拉尔(受伤)半球.与假操作控制(*p<0.01)相比,激光和MCAO模型中的异位BBB分解有区别。请单击此处查看此图的较大版本。

图3:从假、激光和MCAO组对大鼠大脑进行组织学检查。请单击此处查看此图的较大版本。
作者没有什么可透露的。
此处介绍的协议显示了创建脑损伤啮齿动物模型的技术。此处描述的方法使用激光照射和目标运动皮层。
我们要感谢索罗卡大学医学中心麻醉学系和内盖夫本-古里安大学的实验室工作人员在进行这一实验时提供的帮助。
| 2,3,5-三苯基四唑氯化物 | SIGMA - ALDRICH | 298-96-4 | |
| 50%三氯乙酸 | SIGMA - ALDRICH | 76-03-9 | |
| 脑 &组织基质 | SIGMA - ALDRICH | 15013 | |
| 套管 Venflon 22 G | KD-FIX | 1.83604E+11 | |
| 离心机 Sigma 2-16P | SIGMA - ALDRICH | Sigma 2-16P | |
| 紧凑型分析天平 | SIGMA - ALDRICH | HR-AZ/HR-A | |
| 数字称重秤 | SIGMA - ALDRICH | Rs 4,000 | |
| 解剖剪刀 | SIGMA - ALDRICH | Z265969 | |
| Eppendorf 移液器 | SIGMA - ALDRICH | Z683884 | |
| Eppendorf Tube | SIGMA - ALDRICH | EP0030119460 | |
| 乙醇 96 % | ROMICAL | 易燃液体 | |
| 伊文思蓝 2% | SIGMA - ALDRICH | 314-13-6 | |
| 荧光检测器 | Tecan, Männedorf 瑞士 | 型号 Infinite 200 PRO 多功能阅读器 | |
| 带温度计的加热器 | Heatingpad-1 | 型号:HEATINGPAD-1/2 | |
| 输液袖带 | ABN | IC-500 | |
| 异氟烷,USP 100% | Piramamal Critical Care, Inc | NDC 66794-017 | |
| 多套 | TEVA MEDICAL | 998702 | |
| 奥林巴斯 BX 40 显微镜 | 奥林巴斯 | ||
| 光学扫描仪 | 佳能 | Cano Scan 4200F | |
| 培养皿 | SIGMA - ALDRICH | P5606 | |
| 手术刀刀片 11 | SIGMA - ALDRICH | S2771 | |
| Sharplan 3000 Nd:YAG(掺钕钇铝石榴石)激光机 | Laser Industries Ltd | ||
| 立体定位头架 | KOPF | 900LS | |
| 无菌注射器 2 ml | Braun | 4606027V | |
| 注射器针头 27 G | Braun | 305620 |