Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Biology
Click here for the English version

Biology

جمع طفيليات أسماك Gnathiid Isopod البحرية مع الفخاخ الخفيفة

Published: September 25, 2023 doi: 10.3791/65059
Automatic Translation
1, 1, 1,2, 3,4
1Institute of Environmental and Marine Sciences, Silliman University, 2Neurolinx Research Institute, 3Department of Marine Biology and Ecology, Rosenstiel School of Marine Atmospheric and Earth Sciences, University of Miami, 4Water Research Group, Unit for Environmental Sciences and Management, North-West University

Summary

نقدم طريقة لجمع طفيليات أسماك الأيزوبود البحرية باستخدام مصائد ضوئية موضوعة في مواقع ميدانية عن طريق الغوص أو الغوص.

Abstract

يتم تقديم طريقة لجمع طفيليات أسماك isopod gnathiid البحرية باستخدام الفخاخ الخفيفة. Gnathiid isopods هي مجموعة رئيسية من طفيليات الأسماك البحرية التي تتغذى على الدم والسوائل من الأسماك المضيفة ، ومعظمها في الليل. مثل القراد والبعوض على الأرض ، فإنهم يرتبطون مؤقتا فقط بمضيفهم ويقضون معظم حياتهم بحرية في القاع. نظرا لحركتها العالية وارتباطها العابر والليلي في الغالب مع المضيفين ، لا يمكن جمعها بسهولة عن طريق التقاط مضيفين يعيشون بحرية. ومع ذلك ، فإنها تنجذب بسهولة إلى مصادر الضوء تحت الماء ، مما يخلق الفرصة لجمعها في مصائد الضوء. هنا يتم تحديد التصميم والخطوات الفردية التي ينطوي عليها نشر ومعالجة الفخاخ الضوئية المكيفة خصيصا لجمع مراحل العيش الحر من isopods gnathiid. يتم عرض ومناقشة نتائج العينات والتعديلات الممكنة للبروتوكول الأساسي لمجموعة متنوعة من احتياجات أخذ العينات المختلفة.

Introduction

القشريات الطفيلية مهمة في البيئة وتاريخ حياة أسماك الشعاب المرجانية. الكتلة الحيوية والطاقة التي يزيلونها من مضيفيها كبيرة وتؤثر على السلوك وعلم وظائف الأعضاء والبقاء على قيد الحياة1. تمثل قشريات Gnathiid isopod المجموعة الأبرز من طفيليات الأسماك في أنظمة الشعاب الاستوائية وشبه الاستوائية ، حيث أنها وفيرة ومتنوعة 2,3 وهي العنصر الغذائي الأساسي للأسماك الأنظف 4,5. يبلغ حجم Gnathiids بشكل عام 1-3 مم. لديهم تاريخ حياة غير عادي حيث تتغذى مراحل الأحداث الثلاث فقط على الدم وسوائل الجسم من الأسماك 6,7. هم الأكثر نشاطا في الليل 8,9 ، وبينما يبدو أن الرؤية تلعب دورا ما ، فإن العثور على المضيف 10 يعتمد بشكل كبير على الإشارات الشمية للعثور على المضيفين11,12. تتغذى كل مرحلة من مراحل تغذية الأحداث الثلاث على سمكة مضيفة واحدة ، مع فصل كل علف بمرحلة ذوبان. بعد التغذية النهائية ، تتحول يرقات المرحلة الثالثة إلى بالغين لا يتغذون ، والتي تتكاثر ثم تموت. بالنظر إلى أن التغذية لا تتطلب سوى ارتباط قصير مع المضيف ، في حين أن كل فترة تغذية بين تستمر أياما ، فإن الغناثييد تقضي معظم حياتها حرة في العيش في القاع.

تؤثر Gnathiids على المضيفين بطرق متعددة1. بصرف النظر عن دورها كمحركات للتفاعلات بين الأسماك الأنظف والعملاء13،14،15 ، يمكن أن تزيد gnathiids من مستويات الكورتيزول وتقلل الهيماتوكريت في مضيفات الأسماك البالغة 16 وبأعداد كبيرة ، يمكن أن تسبب الموت 17. بالنسبة للأسماك اليافعة ، حتى الغنثيد الواحد يمكن أن يكون قاتلا18،19،20 ، وحتى إذا نجت الأسماك ، فإن قدرتها على التنافس على الفضاء والهروب من الحيوانات المفترسة تتعرض للخطر20،21،22. قد يشكل تجنب الغناثييدات إحدى فوائد الهجرة الليلية في بعض أسماك الشعاب المرجانية23.

بالإضافة إلى الأسماك الأنظف ، يمكن أن تتأثر مجموعات gnathiid بالأسماك آكلة اللحوم الصغيرةالأخرى 24 ، وكذلك الشعاب المرجانية25,26. يبدو أن ارتفاع درجة حرارة المحيطات وما يرتبط به من فقدان الشعاب المرجانية الحية له تأثيرات متعارضة على الغناثييدات27،28،29.

نظرا لأهميتها الإيكولوجية الواضحة والتأثير المحتمل للتغير البيئي البشري المنشأ على سكانها ، هناك أسباب مقنعة لإدراجها في الدراسات البيئية للشعاب المرجانية. ومع ذلك ، فإن تاريخ حياتهم الفريد والعدد القليل من الباحثين الذين يدرسونها يخلقون حاجزا أمام تطوير وتنفيذ ونشر طرق أخذ عينات موثوقة وقابلة للتكرار لجمعها للبحث.

منذ فترة طويلة تستخدم الفخاخ الخفيفة لجمع الكائنات البحرية الصغيرة في الليل30,31. إنهم يستفيدون ويستندون من حقيقة أن العديد من الكائنات الحية النشطة ليلا ، بما في ذلك المفصليات ، تنجذب إلى الضوء. تقليديا تم استخدامها لجمع الكائنات الحية العوالق في عمود الماء30. ومع ذلك ، يمكن تطبيق المبادئ الأساسية على جمع الكائنات الحية التي تسبح بحرية والتي تنشط بالقرب من القاع. نقدم هنا طريقة محاصرة ضوئية تم تكييفها لجمع مراحل العيش الحر من isopods gnathiid بالقرب من قاع المحيط في بيئات الشعاب المرجانية النائية مثل الفلبين. للتجميع في المناطق النائية ، توفر هذه المصائد الضوئية (الشكل 1) بعض المزايا مقارنة بالطرق الأخرى التي تم تطويرها لجمع هذه الكائناتالحية 32. إنها محمولة للغاية ومتينة ، ولا تتطلب سوى ثلاثة أجزاء ، والتي يمكن الحصول عليها بسهولة وغير مكلفة. كما أنها تطفو بشكل سلبي ، كما هو الحال عند نشرها ، فهي مليئة بالكامل بمياه البحر. نظرا لأنها تعتمد على الضوء للجذب ، فهي فعالة فقط في الليل لجمع الأنواع النشطة ليلا. كما أنها تجذب أكثر من الأنواع المستهدفة ، مما يتطلب فرز العينات تحت نطاق تشريح للحصول على الكائنات المستهدفة. تم استخدام ثلاث طرق حتى الآن من قبل فريقنا والمتعاونين لجمع gnathiids في أنظمة الشعاب المرجانية في جميع أنحاء العالم32. وتشمل هذه الفخاخ الناشئة ، والفخاخ الحية التي طعم الأسماك ، والفخاخ الخفيفة ، ولكل منها مزايا وقيود.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

تم السماح بجمع العينات من قبل وزارة الزراعة - مكتب مصايد الأسماك والموارد المائية (0154-18 DA-BFAR) وفقا للقوانين واللوائح الفلبينية (RA 9147; FAO 233) ووافقت عليها لجنة أخلاقيات الحيوان بجامعة سيليمان.

1. الفخاخ الخفيفة

  1. بناء
    1. بناء مصائد ضوئية من أنابيب البولي فينيل كلوريد (PVC) التجارية المصممة أصلا للسباكة. استخدم قطع PVC بقطر 10-15 سم إلى طول 30-40 سم (الشكل 1).
    2. إلى طرفي الأنابيب ، أضف "أغطية" PVC مع قمع أكريليك شفاف يتم إدخاله في وسط الفتحة والغراء في مكانه بغراء إيبوكسي شفاف (الشكل 1). دعها تجف.
    3. تأكد من أن أحد طرفي الأنبوب به غطاء لولبي أو قابل للإزالة بطريقة أخرى وأن كلا الطرفين محكمان للماء عندما يكون المصيدة "مغلقة" (على سبيل المثال ، مع إضافة حلقة O).
  2. مصدر الضوء
    1. قبل النشر ، قم بتشغيل مصباح / شعلة تحت الماء (انظر جدول المواد) وضعه في الأنبوب ، في مواجهة أحد الممرات الشفافة ، بحيث يضيء الضوء الصادر من الشعلة تحت الماء المنطقة أمام جانب واحد من الأنبوب. إذا لزم الأمر ، يمكن استخدام عصي التوهج الكيميائي بدلا من المشاعل تحت الماء ، على الرغم من أن شدة الضوء فيها أقل.
      ملاحظة: يجذب الضوء مجموعة متنوعة من الكائنات الليلية الصغيرة31 ، بما في ذلك gnathiids ، ويدفعها للسباحة في الأنبوب من خلال القمع الشفاف. بمجرد دخولهم الأنبوب ، لا يمكنهم الهروب بسبب هندسة مصيدة الضوء (فتحة قمع صغيرة) واستمرار وجود مصدر ضوء.
  3. التنسيب
    1. عندما تكون في الماء في موقع النشر ، املأ مصائد الضوء ، مع تشغيل الضوء ، بمياه البحر ، وقم بتأمين كلا الطرفين. للتأكد من أن الشعلة ليست أسفل طرف القمع أو تمنعه ، قم بإمالة "مقدمة" الأنبوب لأعلى للسماح للشعلة بالانزلاق بعيدا عن القمع.
    2. ضع الفخاخ في قاع البحر ، في الرمال أو الأنقاض ، بجانب رؤوس المرجان أو غيرها من الهياكل المعقدة المعروفة بجذب الأسماك. ركز مخروط الضوء "إلى الداخل" ، نحو المناطق التي تتجمع فيها الأسماك.
      ملاحظة: في المياه الضحلة ، يمكن وضع الفخاخ عن طريق الغوص في حبس النفس. النشر الأعمق يتطلب الغوص.
  4. استرداد
    1. مباشرة قبل استرجاع المصيدة ، قم بإغلاق فتحات كل من الممرات (على طرفي الأنبوب) بقطعة من طين النمذجة أو سدادة مطاطية ، مع الحفاظ على جميع مياه البحر والكائنات الحية الموجودة بالداخل.
      ملاحظة: ستبقى الكائنات الحية في المصيدة بمجرد انتهاء صلاحية بطاريات الأضواء وعدم إضاءة الضوء. يوفر هذا المرونة عند استرداد الفخاخ ("وقت النقع"). يتم عرض العوامل التي يجب مراعاتها عند اتخاذ قرار بشأن وقت النقع أدناه (انظر المناقشة).
  5. نقل
    1. بمجرد استرداد الفخاخ من القاع ، احملها إلى قارب أو اسبح إلى الشاطئ.
    2. حافظ على الفخاخ بالقرب من درجة حرارة مياه البحر المحيطة بمجرد إزالتها من المحيط.
    3. انقلها إلى المختبر للمعالجة في أسرع وقت ممكن حيث لن يتم تبادل الغاز أو الماء بمجرد إزالتها من المحيط.

2 المعالجة المخبرية

  1. تخزين وتصفية العينات
    1. بمجرد إزالة الفخاخ الضوئية من المحيط وإعادتها إلى المختبر ، أفرغ محتوياتها في دلاء بمياه البحر العذبة.
    2. أضف تهوية للحفاظ على الكائنات الحية على قيد الحياة حتى التصفية.
    3. قم بتصفية محتويات الدلو عن طريق سكبها عبر قمع مبطن بشبكة عوالق 50-100 ميكرومتر ، ثم أفرغ المحتويات في حاوية سعة 100 مل من مياه البحر العذبة.
    4. استخدم ماصة للسحب من هذه الحاوية الأصغر لوضع حصص العينة في طبق بتري للفحص المجهري. كرر حتى تتم معالجة العينة بأكملها.
  2. تحديد وتربية إيزوبود غناثيد
    1. نظرا لأن عينات المصائد الضوئية تجذب أنواعا متعددة من اللافقاريات الصغيرة ، فقم بفحص العينات بعناية لتحديد وإزالة نظائر الأرجل gnathiid. التكبير 10-20x هو الأفضل لهذه المهمة (الشكل 2).
      ملاحظة: لا يتطلب تحديد الغناثيدات على مستوى الأسرة عينات حية. ومع ذلك ، هناك حاجة إلى gnathiids البالغة ، والتي نادرا ما يتم صيدها في الفخاخ الخفيفة ، لتحديد الأنواع المورفولوجية وتربيتها (انظر المرجع1،3،9 للحصول على منهجية لتربية وتربية gnathiids في الأسر).
    2. في الحالات التي تحتاج فيها الجناثيدس إلى البقاء على قيد الحياة للتربية ، قم بإزالتها برفق باستخدام ماصة ووضعها في حاويات بلاستيكية صغيرة من مياه البحر العذبة.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

لأخذ العينات في وسط الفلبين ، تم استخدام تصميم المصيدة المحدد (الشكل 1). عندما تم نصب 36 مصيدة بين عشية وضحاها (في موقع واحد) ، تم جمع 1 إلى 1343 جناثيدس لكل مصيدة (275 ± 54). وشملت هذه المراحل كلا من الأحداث التي تم تغذيتها وغير المغذية (الشكل 2; الجدول 1 ، 2). توضح هذه النتائج فعالية المصائد الضوئية لجمع إيزوبود gnathiid تحت ظروف الدراسة. يوضح الشكل 3 وضع المصيدة تحت الماء.

هذه الطريقة لجمع gnathiid فعالة ومرنة بما فيه الكفاية لمختلف المواقع الميدانية والأسئلة العلمية. فعلى سبيل المثال، استخدم المرجع29 مصائد ضوئية لتحديد آثار الغطاء المرجاني والكتلة الحيوية للأسماك على وفرة الغناثييد (الشكل 4)، واستخدم المرجع33 مصائد مماثلة لتحديد آثار الأعاصير على الأنماط الفردية الجينية (الشكل 5). في حين تم تطوير تقنيات أخرى واستخدامها لجمع gnathiids32 ، فإن هذه التقنية فعالة بشكل خاص (الجدول 3). تتطلب مصائد الظهور ، "الخيام" المصنوعة من شبكة العوالق32 منصات كبيرة للنقل ، ويصعب نشرها ، وتمزيقها بسهولة ، وتتطلب إصلاحا مستمرا. علاوة على ذلك ، نادرا ما يجمعون مراحل الأحداث التي يتم تغذيتها. الفخاخ الطعم مع الأسماك الحية32 (ضروري لأن gnathiids لن تتغذى على الأسماك الميتة) ، تتطلب التقاط وإيواء الأسماك الحية. هذا يجعل استخدامها أكثر صعوبة في الأماكن النائية. علاوة على ذلك ، تعتمد فعاليتها على الإشارات الشمية11,12 ، والتي تتأثر بحجم الأسماك وحجم فتحات المصيدة والتيارات المائية. إنهم يميلون إلى جمع عدد أقل من الغناثيات ، ويصعب استردادهم أكثر من الفخاخ الخفيفة ، ويجمعون مراحل التغذية فقط.

Figure 1
الشكل 1: أنابيب PVC مصيدة الضوء. اليمين: منظر علوي ، مع قمع شفاف ملتصق بالأنبوب بغراء أكريليك ، مرئي. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 2
الشكل 2: إيزوبود غناثيد في طبق بتري بعد التقاطه. لاحظ سائل الجسم الشفاف للأسماك ودم السمك الأحمر البني في أمعاء الجناثيد. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 3
الشكل 3: مصيدة ضوئية معدلة (مقدمة) يتم فيها توجيه الضوء لأسفل. يمكن استخدام هذا التصميم في ظروف البحر الهادئة لأخذ عينات مباشرة من الركيزة أسفل المصيدة. تظهر مصائد الظهور في الخلفية. أعيد طبع هذا الرقم بإذن من المرجع32. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 4
الشكل 4: مخططات مربعة توضح الاختلافات في التوزيع. تظهر مخططات صندوقية اختلافات في توزيع (أ) وفرة الجناثيد في المرحلة الأولى ، (ب) فرط وفرة المرحلة الأولى ، (ج) الوفرة الكلية ، و (د) حجم الدم المستخرج لكل كتلة حيوية للأسماك. يظهر حجم العينة لكل مجموعة فرعية بين قوسين تحت كل متوسط مجموعة فرعية. تعرض الصناديق حواف الربع الأول والثالث ، بينما تظهر الشعيرات الربع الثالث زائد 1.5 ضعف النطاق الربيعي. بالنسبة إلى (C) ، المفصلات هي تقريب لفاصل الثقة 95٪. الاختلافات التي تظهر في (أ) و (ب) و (ج) كبيرة. انظر الملحق S1: الجدول S7 في المرجع29. أعيد طبع هذا الرقم بإذن من المرجع29. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

Figure 5
الشكل 5: شبكات النمط الفرداني التي تمثل التنوع الجيني ل Gnathia marleyi وتوزيعها المكاني قبل وبعد أعاصير 2017. وترد مجموعات البيانات المتعلقة بفترات ما قبل الإعصار وبعده في الفريقين الأول والثاني على التوالي. يشار إلى الأنماط الفردية الموجودة في كل من مجموعات بيانات ما قبل وبعد الإعصار برقم النمط الفرداني. يشار إلى مجموعات هابلوغروب A و B و C بمربعات متقطعة. أعيد طبع هذا الرقم بإذن من المرجع33. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

عدد غناثيد مصائد الضوء (ن) العدد الإجمالي دني متوسط الحد الأدنى (لكل مصيدة) الحد الأقصى (لكل ملائمة) خطأ قياسي (+-)
مجموع 34 9336 275 191 1 1343 54
عاش 34 6605 206 114 4 1226 46
ميت 34 2667 86 42 1 659 24

الجدول 1: إحصاءات موجزة عن أعداد الغنثيد من 36 مصيدة ضوئية تم نشرها عن طريق الغوص أثناء التقاط الأنفاس خلال الليل في الشعاب المرجانية في بانتايان ، الفلبين ، من يوليو إلى سبتمبر 2017. تشير القيمة العددية في العمود Live إلى gnathiids من مصيدة الضوء التي كانت حية وقت العد ، ويشير العمود الميت إلى gnathiids التي كانت ميتة ، والعمود الإجمالي هو مجموع عدد gnathiid الميت والحي.

عدد غناثيد N العدد الإجمالي دني
مجموع 10 434 43

الجدول 2: إحصائيات موجزة لأعداد gnathiid من الفخاخ الضوئية المنتشرة لمدة 3 ساعات في الشعاب المرجانية في بانتايان ، مقاطعة نيغروس الشرقية ، الفلبين ، من يوليو إلى أغسطس 2022.

نوع المصيدة متوسط العدد 95٪ CI
أوطأ أعلى
ظهور غير طعم 0.31 0.04 0.81
ظهور طعم السمك 0.42 0.19 0.69
ترايبود طعم السمك 0.92 0.46 1.46
شبكة مفتوحة السمك الطعم 1.5 0.35 3.54
مصيدة العوالق المضاءة 5.69 2.69 9.58

الجدول 3: تمت مقارنة أداء تصاميم الفخاخ المختلفة، بما في ذلك الفخاخ الخفيفة، في منطقة البحر الكاريبي. تم تقييم تقديرات متوسط العدد لكل عينة وفترات ثقة 95٪ لكل تصميم مصيدة في مقارنة المصائد المتعددة. تم اشتقاق التقديرات من 10000 تكرار تمهيد مع استبدال من 26 عينة لكل نوع من أنواع المصيدة. تم تكييف هذا الجدول بإذن من المرجع32.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

المصائد الضوئية التقليدية ، مثل تلك المستخدمة لجمع أسماك اليرقات ، كبيرة ومعلقة في عمود الماء34. في المقابل ، فإن الفخاخ الضوئية الموصوفة هنا صغيرة ومنتشرة في قاع البحر. يمكن نقل هذه الفخاخ بسهولة ونشرها بسرعة. يمكن وضعها عن طريق الغوص (الحر) في المواقع الضحلة (كما في هذه الدراسة) أو على الغوص في مواقع أعمق ، وجذب كل من التغذية وغير المغذية
مراحل الأحداث.

تم استخدام أشكال مختلفة من مصائد الضوء القاعية الموصوفة هنا لدراسة gnathiids لمجموعة متنوعة من الأغراض من قبل فريقنا والمتعاونين معنا ، ويمكن إجراء تعديلات في التصميم أو البروتوكول ، اعتمادا على الغرض المحدد (الشكل 3). هذه موصوفة أدناه.

تتطلب بعض الدراسات غناثيدس حية. وتشمل هذه الدراسات تحديد مصدر (أنواع الأسماك) من وجبات الدم35،36 ، أو الدراسات التي تتطلب التربية. كانت مصائد الضوء في هذه الدراسة بطول 30 سم ، وقطرها 10.16 سم ، وبالتالي حجم ~ 1.3 لتر. عندما تصبح مزدحمة بشكل مفرط بالكائنات الحية ، يمكن أن يتجاوز الطلب على الأكسجين داخل الأنبوب توصيل الأكسجين عبر المنافذ ، مما يتسبب في موت الكائنات الحية وتفاقم المشكلة. لتجنب ذلك ، يمكن نشر المصيدة لفترات أقصر أو تعديلها عن طريق زيادة حجمها (PVC بقطر أكبر) أو إضافة ثقوب إضافية مغطاة بشبكة العوالق9،29،32. لاحظ أنه في حين يمكن استخدام PVC ذات القطر الأكبر لزيادة الحجم ، يتم ذلك على حساب قابلية نقل أقل ، مما يؤدي إلى نقل عدد أقل من الفخاخ إلى الموقع الميداني. ويثير هذا الأمر قلقا خاصا عندما ينطوي النقل على السباحة السطحية الممتدة و/أو استخدام قوارب صغيرة ذات مساحة تخزين محدودة.

بدلا من ذلك ، أو بالإضافة إلى ذلك ، يمكن نشر المصيدة لمدة أقصر. الميزة الرئيسية لهذا التصميم هي أنه في حين أن المصيدة لن تجمع الكائنات الحية إلا في الليل (عندما يكون الضوء فعالا) ، يمكن ضبطها في أي وقت واسترجاعها في أي وقت. لجمع أكبر عدد ممكن من الغناثيدس ، وضعنا الفخاخ قبل غروب الشمس واسترجعناها بعد وقت قصير من شروق الشمس في اليوم التالي. ومع ذلك ، لزيادة عدد gnathiids الحية ، فإننا نقصر النشر على 3-4 ساعات من الظلام. يقلل الوقت المحدد القصير أيضا من كمية "الصيد العرضي" التي يجب فرزها لاستخراج الغناثييدات.

تقع الفخاخ الموصوفة هنا أفقيا ، مع توجيه شعاع الضوء في اتجاه واحد. وبالتالي ، تمتد إشارة التحفيز بقدر ما يسطع الضوء ، وعادة ما تجتاز أنواعا متعددة من الركائز ، وينبعث بعض الضوء من القمع الخلفي أيضا. من أجل تركيز أخذ العينات على ركيزة معينة على مسافة قصيرة من المصيدة ، يمكن تعديل المصيدة للجلوس عموديا ، مع توجيه الضوء لأسفل (الشكل 3). يتم تحقيق ذلك عن طريق إضافة "أرجل" لتشكيل حامل ثلاثي القوائم29,32. ومع ذلك ، فإن هذا النوع من مصيدة الضوء مفيد فقط في المواقف الحالية المنخفضة.

الشعلة التي استخدمناها (انظر جدول المواد) تأخذ أربع (4) بطاريات AAA. نحن نستخدم بطاريات قابلة لإعادة الشحن لتقليل التكلفة والنفايات. يبلغ وقت الاحتراق لهذه الأضواء حوالي 12 ساعة ، مما يسمح لها بالعمل طوال الليل. ومع ذلك ، فإن البديل المناسب هو "العصي المتوهجة". هذه مفيدة بشكل خاص عند وضعها في المياه العميقة ، مثل الشعاب المرجانية المتوسطة.

في حين أن الفخاخ الضوئية الموصوفة هنا تجتذب مجموعة واسعة من اللافقاريات الصغيرة المتنقلة ، فإن تكوين هذا الصيد العرضي متغير للغاية. ومع ذلك ، عندما يتم وضعها في موطن يتضمن الأنقاض والأسماك ، يتم صيد gnathiids باستمرار. وعلى الرغم من أن هذه الدراسة الإيضاحية ركزت على مواقع في الفلبين، فقد استخدمت أيضا بنجاح مصائد ذات تصميم مماثل لإجراء دراسات في مواقع في منطقة البحر الكاريبي والحاجز المرجاني العظيم.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

يعلن المؤلفون عدم وجود إفصاحات لتقديمها.

Acknowledgments

تم توفير التمويل من قبل مؤسسة العلوم الوطنية الأمريكية (NSF OCE 2023420 و DEB 2231250 ، P. Sikkel PI). نشكر بلدية مدينة دوماجويتي ، نيغروس أورينتال ، الفلبين ، على الإذن بإجراء هذه الدراسة. كما نشكر العديد من المتطوعين على مساعدتهم الميدانية والموظفين وزملائنا في معهد جامعة سيليمان للعلوم البيئية والبحرية على دعمهم.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Buckets, small sample containers hardware store
Funnels Supplier No. 2209-03 Funnels: AMERICAN SCIENTIFIC LLC SE - 75 mm (3”)  https://us.vwr.com/store/product/8884369/plastic-funnels
Main body of light traps (made from commercially available PVC sanitarty pipes) (SKU 145640)  Alasco Sanitary uPVC Pipes Series 1000 107mm/4'  https://alascopvcpipes.com/product/alasco-standard-sanitary-upvc-pipe-series-1000/.  This brand can be found in the Philippines. Other simular brands can also be used
Modeling clay  Can be found in art suppliy and childreans toy stores To seal the funnel after retreival
Plankton mesh (50-100 µm) any reputable brand and source https://www.adkinstruments.in/products/plankton-nets-in-various-mesh-size-1633936883
Screw on lids for the light trap Alasco  Sanitary  Clean-Out  4" https://alascopvcpipes.com/product/alasco-standard-sanitary-upvc-clean-out/. This brand can be found in the Philippines. Other simular brands can also be used
Scuba/snorkel equipment any reputable brand and source
Stereo-microscopes Scientific suppliers
Underwater touches Princeton Tec Ecoflare or Fantasea Nanospotter 6023

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Sikkel, P. C., Welicky, R. L. The ecological significance of parasitic crustaceans. Parasitic Crustacea. 17 (17), Springer. Cham. 421-477 (2019).
  2. Svavarsson, J., Bruce, N. L. New gnathiid isopod crustaceans (Cymothoida) from Heron Island and Wistari Reef, southern Great Barrier Reef. Zootaxa. 4609 (1), 4609 (2019).
  3. Shodipo, M. O., Sikkel, P. C., Smit, N. J., Hadfield, K. A. First record and molecular characterisation of two Gnathia species (Crustacea, Isopoda, Gnathiidae) from Philippine coral reefs, including a summary of all Central-Indo Pacific Gnathia species. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 14, 355-367 (2021).
  4. Losey, G. S. Jr Cleaning symbiosis in Puerto Rico with comparison to the tropical Pacific. 4 (4), 960-970 (1974).
  5. Grutter, A. S., et al. Parasite infestation increases on coral reefs without cleaner fish. Coral Reefs. 37, 15-24 (2018).
  6. Smit, N. J., Davies, A. J. The curious life-style of the parasitic stages of gnathiid isopods. Advances in Parasitology. 58. , 289-391 (2004).
  7. Tanaka, K. Life history of gnathiid isopods-current knowledge and future directions. Plankton and Benthos Research. 2 (1), 1-11 (2007).
  8. Sikkel, P. C., Schaumburg, C. S., Mathenia, J. K. Diel infestation dynamics of gnathiid isopod larvae parasitic on Caribbean reef fish. Coral Reefs. 25, 683-689 (2006).
  9. Santos, T. R. N., Sikkel, P. C. Habitat associations of fish-parasitic gnathiid isopods in a shallow reef system in the central Philippines. Marine Biodiversity. 4, 83-96 (2019).
  10. Nagel, L. The role of vision in host-finding behaviour of the ectoparasite Gnathia falcipenis (Crustacea). Isopoda). Marine and Freshwater Behaviour and Physiology. 42 (1), 31-42 (2009).
  11. Sikkel, P. C., Sears, W. T., Weldon, B., Tuttle, B. C. An experimental field test of host-finding mechanisms in a Caribbean gnathiid isopod. Marine Biology. 158, 1075-1083 (2011).
  12. Vondriska, C., Dixson, D. L., Packard, A. J., Sikkel, P. C. Differentially susceptible host fishes exhibit similar chemo-attractiveness to a common coral reef ectoparasite. Symbiosis. 81 (3), 247-253 (2020).
  13. Grutter, A. S. Parasite infection rather than tactile stimulation is the proximate cause of cleaning behaviour in reef fish. Proceedings of the Royal Society of London. Series B: Biological Sciences. 268 (1474), 1361-1365 (2001).
  14. Sikkel, P. C., Cheney, K. L., Côté, I. M. In situ evidence for ectoparasites as a proximate cause of cleaning interactions in reef fish. Animal Behaviour. 68 (2), 241-247 (2004).
  15. Sikkel, P. C., Herzlieb, S. E., Kramer, D. L. Compensatory cleaner-seeking behavior following spawning in female yellowtail damselfish. Marine Ecology Progress Series. , 1-11 (2005).
  16. Triki, Z., Grutter, A. S., Bshary, R., Ros, A. F. Effects of short-term exposure to ectoparasites on fish cortisol and hematocrit levels. Marine Biology. 163, 1-6 (2016).
  17. Hayes, P. M., Smit, N. J., Grutter, A. S., Davies, A. J. Unexpected response of a captive blackeye thicklip, Hemigymnus melapterus (Bloch), from Lizard Island, Australia, exposed to juvenile isopods Gnathia aureamaculosa Ferreira & Smit. Journal of Fish Diseases. 34 (7), 563-566 (2011).
  18. Grutter, A. S., Pickering, J. L., McCallum, H., McCormick, M. I. Impact of micropredatory gnathiid isopods on young coral reef fishes. Coral Reefs. 27 (3), 655-661 (2008).
  19. Artim, J. M., Sellers, J. C., Sikkel, P. C. Micropredation by gnathiid isopods on settlement-stage reef fish in the eastern Caribbean Sea. Bulletin of Marine Science. 91 (4), 479-487 (2015).
  20. Sellers, J. C., Holstein, D. M., Botha, T. L., Sikkel, P. C. Lethal and sublethal impacts of a micropredator on post-settlement Caribbean reef fishes. Oecologia. 189, 293-305 (2019).
  21. Allan, B. J., et al. Parasite infection directly impacts escape response and stress levels in fish. Journal of Experimental Biology. 223 (16), (2020).
  22. Spitzer, C. A., Anderson, T. W., Sikkel, P. C. Habitat associations and impacts on a juvenile fish host by a temperate gnathiid isopod. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 17, 65-73 (2022).
  23. Sikkel, P. C., et al. Nocturnal migration reduces exposure to micropredation in a coral reef fish. Bulletin of Marine Science. 93 (2), 475-489 (2017).
  24. Artim, J. M., Hook, A., Grippo, R. S., Sikkel, P. C. Predation on parasitic gnathiid isopods on coral reefs: a comparison of Caribbean cleaning gobies with non-cleaning microcarnivores. Coral Reefs. 36, 1213-1223 (2017).
  25. Artim, J. M., Sikkel, P. C. Live coral repels a common reef fish ectoparasite. Coral Reefs. 32, 487-494 (2013).
  26. Paula, J. R., et al. The role of corals on the abundance of a fish ectoparasite in the Great Barrier Reef. Coral Reefs. 40, 535-542 (2021).
  27. Sikkel, P. C., et al. Changes in abundance of fish-parasitic gnathiid isopods associated with warm-water bleaching events on the northern Great Barrier Reef. Coral Reefs. 38 (4), 721-730 (2019).
  28. Shodipo, M. O., Duong, B., Graba-Landry, A., Grutter, A. S., Sikkel, P. C. Effect of acute seawater temperature increase on the survival of a fish ectoparasite. In Oceans. 1 (4), (2020).
  29. Artim, J. M., Nicholson, M. D., Hendrick, G. C., Brandt, M., Smith, T. B., Sikkel, P. C. Abundance of a cryptic generalist parasite reflects degradation of an ecosystem. Ecosphere. 11 (10), (2020).
  30. Richardson, A. J., et al. Using continuous plankton recorder data. Progress in Oceanography. 68 (1), 27-74 (2006).
  31. McLeod, L. E., Costello, M. J. Light traps for sampling marine biodiversity. Helgoland Marine Research. 71 (1), 1-8 (2017).
  32. Artim, J. M., Sikkel, P. C. Comparison of sampling methodologies and estimation of population parameters for a temporary fish ectoparasite. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 5 (2), 145-157 (2016).
  33. Pagán, J. A., Veríssimo, A., Sikkel, P. C., Xavier, R. Hurricane-induced disturbance increases genetic diversity and population admixture of the direct-brooding isopod, Gnathia marleyi. Scientific reports. 10 (1), (2020).
  34. Doherty, P. J. Light-traps: selective but useful devices for quantifying the distributions and abundances of larval fishes. Bulletin of Marine Science. 41, 423-431 (1987).
  35. Jones, C. M., Nagel, L., Hughes, G. L., Cribb, T. H., Grutter, A. S. Host specificity of two species of Gnathia (Isopoda) determined by DNA sequencing blood meals. International Journal for Parasitology. 37 (8-9), 927-935 (2007).
  36. Hendrick, G. C., Dolan, M. C., McKay, T., Sikkel, P. C. Host DNA integrity within blood meals of hematophagous larval gnathiid isopods (Crustacea). Isopoda, Gnathiidae). Parasites & Vectors. 12 (1), 1-9 (2019).

Tags

هذا الشهر في JoVE ، العدد 199 ،
جمع طفيليات أسماك Gnathiid Isopod البحرية مع الفخاخ الخفيفة
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Shodipo, M. O., Lauguico, R. Y.,… More

Shodipo, M. O., Lauguico, R. Y., Stiefel, K. M., Sikkel, P. C. Collecting Marine Gnathiid Isopod Fish Parasites with Light Traps. J. Vis. Exp. (199), e65059, doi:10.3791/65059 (2023).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter