Name: 脑片的刺激，利用微流控网络和标准灌注腔 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-10-01T00:00:00.000+00:00
Duration: 27 min 58 s
Description: 学习利用微流控装置对脑片进行时空精确刺激的方法。该模块化设备可与标准电生理设备无缝集成，无需复杂管路和泵系统，实现神经递质的精准局部施加，简化实验流程并提高研究效率。

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本研究由美国国立卫生研究院（NIH）MH-64611项目和NARSAD青年研究者奖资助。作者还感谢Adam Beagley、Mark Dikopf和Ben Smith在技术方面提供的支持。

SU-8 模具制备
主液配制
<ol>
<li>采用两步标准负性光刻胶光刻工艺，在硅片基底上制备 SU-8 模具。</li>
<li>使用剃刀去除硅片上的对准标记，因为这些结构（位于硅片外周）的高度超过实际器件结构的高度。</li>
<li>然后用异丙醇清洗硅片，并用 N2 气流吹干。在硅片四周使用厚度小于最高器件结构的胶带制成支撑柱，以替代对准标记。 注意：如果支撑柱的高度超过最高器件结构的高度，则在 PDMS 模具中无法形成通孔。 </li>
<li>将模具硅片置于室温的加热板上。</li>
</ol>
PDMS 溶液的制备
<ol>
<li>将10份硅弹性体与1份固化剂充分混合，制备4克聚二甲基硅氧烷（PDMS）溶液。 注意：确保两种溶液均匀混合，以获得在整个PDMS模具中一致的物理性能。 </li>
<li>使用真空干燥器去除混合过程中PDMS溶液中产生的气泡。</li>
</ol>
PDMS 涂覆与固化
<ol>
<li>将无气泡的PDMS溶液缓慢滴加到SU-8模具上，确保在滴加过程中不产生气泡。</li>
<li>将一张可书写透明薄膜的一端放在加热板上，然后缓慢地将其覆盖在PDMS溶液上，以均匀地将PDMS铺展到SU-8模具表面。此过程中产生的任何气泡都需用探针清除。 [注意：切勿抬起透明膜，以免产生更多气泡。] </li>
<li>在透明薄膜上方放置一块硼硅酸盐玻璃片，以施加均匀压力。轻轻按压最高圆形结构的顶部表面（位于通道长度的中点，并沿通道宽度居中），使透明膜与圆形结构的SU-8表面之间夹带的PDMS最少或没有。</li>
<li>在硅片-硼硅酸盐玻璃片夹层结构上方再放置三块硼硅酸盐玻璃片，以便在固化前和固化过程中对圆形开口结构的顶面持续施加恒定压力。</li>
<li>随后将加热板温度升至75°C，并在此温度下固化PDMS 1小时。之后将加热板降温至50°C。</li>
<li>移去玻璃片，然后小心揭下透明膜，留下表面覆盖有薄层PDMS的模具。</li>
</ol>
微流控装置的构建
从模具上移除PDMS片
<ol>
<li>将PDMS片材上的灌注室端口与SU-8母模上的端口对齐后，使用剃刀片在PDMS片材上切出灌注室外缘。</li>
<li>然后轻轻从母模上取下PDMS片材，沿通道长度方向缓慢剥离，以防止PDMS撕裂。将PDMS片材放置在透明胶片上，微流控网络面朝上。</li>
<li>接着使用打孔器制备进样口和出样口。</li>
</ol>
PDMS 片与玻璃盖玻片的键合
<ol>
<li>使用3M透明胶带轻轻清洁PDMS片材的键合表面（含有微流控网络的表面）和盖玻片，然后将它们放置在透明薄膜上，最后放入O2等离子体腔室中。</li>
<li>键合表面以165瓦功率的等离子体处理10秒。立即将经等离子体处理的盖玻片表面与经等离子体处理的PDMS片材表面进行键合。 注意：在盖玻片表面施加轻柔压力，以排除键合表面之间可能滞留的气泡。 </li>
<li>静置5分钟，以确保PDMS与玻璃之间形成良好的键合。5分钟后，轻轻移除用于放置PDMS片材进行键合过程的透明薄膜。</li>
<li>将微流控器件放入氧气等离子体系统中，以使通道具有亲水性。等离子体处理条件为165瓦，持续1分钟。</li>
</ol>
微流控装置与灌注腔室的整合
灌流室的制备
<ol>
<li>订购了一个现成的灌注室，并钻出入口和出口端口，以便当微流控装置与灌注室键合时，灌注室和装置上的端口能够对齐。灌注室的底面涂有PDMS，以确保灌注室与微流控装置之间形成紧密密封。</li>
<li>将一张可书写的透明片置于室温下的加热板上。</li>
<li>按照此前所述类似方法制备1克PDMS溶液。将无气泡的PDMS溶液缓慢滴加到透明片上，避免产生气泡。</li>
<li>随后将灌注室放置在PDMS溶液上。</li>
<li>在灌注室上方放置一块硼硅酸盐玻璃片，以施加均匀压力，并在灌注室底面形成一层薄而均匀的PDMS涂层。</li>
<li>然后将加热板温度升至75°C，并在此温度下固化PDMS 1小时。</li>
</ol>
微流控装置与灌注室的键合
<ol>
<li>取出平板，轻轻移除透明膜，留下灌注腔室以及底部表面涂有薄层PDMS的结构。使用剃刀片和尖头探针清除通路孔中多余的PDMS。</li>
<li>然后使用3M胶带轻轻清洁微流控装置的PDMS表面以及腔室的PDMS底面，将其放置在透明膜片上，最后放入氧气等离子体腔室中。</li>
<li>表面以165瓦功率的等离子体处理10秒。随后立即将腔室上涂有PDMS的表面与微流控装置的PDMS表面进行键合。 注意：在玻璃表面施加轻柔压力，以排除键合表面间可能夹入的气泡。 </li>
<li>在使用前立即将装置放入氧气等离子体系统中，使通道具有亲水性。等离子体处理条件为165瓦，持续1分钟。</li>
</ol>
利用微流控装置使脑切片暴露于神经化学微环境
<ol>
<li>将标准人工脑脊液（Artificial Cerebral Spinal Fluid, ACSF）注入微流控装置与灌流室组合的亲水性微通道中。</li>
<li>在入口端滴加少量 ACSF 溶液，使溶液通过毛细作用进入通道。使用注射器从出口端去除残留气泡。在出口端滴加一大滴 ACSF 溶液，以实现液体从微流控装置的入口端向出口端的被动泵送。 注意： 应小心去除通道中的所有气泡，以确保液体能够通过被动泵送法顺利流动。 </li>
<li>将（微流控装置）-（灌注室）组合体固定在平面上，并将该平面固定到显微镜适配器中。</li>
<li>将标准的进液管和出液管（抽吸管）连接到灌流室，以对脑片持续灌注标准人工脑脊液（ACSF）。使用95% O2-5% CO2混合气体持续饱和ACSF溶液。2. 注意： 调整吸液管的位置，以维持灌流室浴槽中ACSF液面高度恒定。 </li>
<li>当灌流室充满ACSF溶液后，使用滴管将脑片放入灌流室中。利用探针将脑片定位在微流控装置的圆形孔上方。当脑片处于圆形孔上方的预定位置后，使用脑片固定锚将脑片固定。</li>
<li>现在可以利用流体的被动泵送，通过微流控装置将置于灌注室和微流控网络上方的脑切片暴露于多种神经递质中。</li>
</ol>

<ol><li>Blake, A. J., Pearce, T. M., Rao, N. S., Johnson, S. M., Williams, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multilayer+PDMS+microfluidic+chamber+for+controlling+brain+slice+microenvironment%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">Multilayer PDMS microfluidic chamber for controlling brain slice microenvironment.</a> Lab on a Chip. 7, 842-849 (2007).</li>
<li>Walker, G. M., Beebe, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+passive+pumping+method+for+microfluidic+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+on+a+Chip%22%5BJournal%5D)">A passive pumping method for microfluidic devices.</a> Lab on a Chip. 2, 131-134 (2002).</li>
</ol>

作者欢迎将所展示的微流控技术应用于生物学不同领域的合作研究。

现有的宏观或微观脑片灌注腔室在提供空间分辨率以向脑片施加神经递质方面存在局限性。本文展示的微流控装置技术利用简单的生物MEMS技术克服了这一限制。由于该微流控装置 fabrication 过程简单，并且易于与现有的电生理系统集成，预计该技术将得到广泛应用。一些此前无法开展的有趣实验，现在可借助当前的微流控装置实现。脑片的不同微环境可在不同时间尺度下暴露于不同的神经递质中。当前的原型装置仅包含四个平行通道以及相邻排列的圆形开口。然而，通过采用不同的设计，可轻松改变该装置的布局，例如采用不同形状或尺寸的开口，或将微通道设计为蜿蜒结构，从而将开口定位在脑片的不同微环境中。

<table><tbody><tr><td>RC-26GPL</td><td>工具</td><td>Warner Instruments</td><td>W2-64-0236</td><td>低剖面大浴槽 RC-26GLP 记录室</td></tr><tr><td>SHD-26GH/10</td><td>工具</td><td>Warner Instruments</td><td>W2-64-0253</td><td>用于 RC-26G 的不锈钢切片固定装置，螺纹间距 1.0 mm</td></tr><tr><td>PDMS (聚二甲基硅氧烷)</td><td>试剂</td><td>Dow Corning</td><td>Sylgard 184</td><td>硅橡胶弹性体套件</td></tr><tr><td>Plasma Preen-II 862</td><td>工具</td><td>Plasmatic Systems, Inc.</td><td></td><td>微波等离子体系统</td></tr><tr><td>Model P-1</td><td>工具</td><td>Warner Instruments</td><td>W2-64-0277</td><td>20 系列普通平台，Model P-1</td></tr><tr><td>SA-NIK</td><td>工具</td><td>Warner Instruments</td><td>W2-64-0291</td><td>尼康 Diaphot/TE200/TE2000 适配器，SA-NIK</td></tr><tr><td>含氧并加热的 ACSF（人工脑脊液）</td><td>试剂</td><td></td><td></td><td>确切成分根据应用而异</td></tr></tbody></table>

使用微流控网络与标准灌流室刺激脑切片

Brain Slice Stimulation Using a Microfluidic Network and Standard Perfusion Chamber

我们已展示了可轻松与现有电生理装置集成的双层微流控器件的制备方法。该双层微流控器件采用两步标准负性光刻胶光刻工艺制备1。第一层包含在两端设有进样口和出样口的微通道。第二层包含位于微通道长度方向中点、并与通道宽度中心对齐的微尺度圆形孔。采用被动泵送方法将液体从进样口泵送至出样口2。该微流控器件可与市售灌流室集成，从而实现与电生理系统的无缝连接。从进样口引入的液体流经微通道向出样口移动，同时通过位于微通道顶部的圆形开口进入灌流室的浴液中。因此，置于灌流室浴液中且位于微流控器件上方的脑片底面可暴露于不同的神经递质环境中。由于微流控器件本身具有微米级厚度，且所用材料（玻璃盖玻片和聚二甲基硅氧烷（PDMS））具有良好的透光性，因此可对脑片进行显微成像。该微流控器件能够对引入脑片微环境的化学刺激物进行空间和时间上的精确调控。

我们演示了一种简单微流控装置的制备方法，该装置可与标准的电生理实验系统集成，以精确控制的方式将脑切片的微尺度表面暴露于不同的神经递质中。

我们已展示了可轻松整合到现有电生理实验装置中的双层微流控器件的制备方法。

我们今天要向您展示的项目主要目标是能够对脑部刺激进行空间和时间上的精确控制。另一个关键点是，通过对现有复杂的电生理装置进行简单的改造，我们便能将这种微流控设备推广到目前实际使用脑片刺激技术的各个实验室中。大家好，我是来自伊利诺伊大学芝加哥分校生物工程系埃丁顿实验室的 Java Chek Mohammad。今天，我将向您展示如何应用一种简单的微加工微流控装置来刺激脑片。我们今天要演示的脑片装置具有多种用途，其主要优点在于模块化设计，可直接适配现有的电生理实验装置，无需额外修改。此外，该装置避免了管路和泵的使用，从而简化了微流控系统的复杂性。由于我们采用的是被动泵送方法，因此不需要任何管路或泵。第三点是，它仅是一层薄薄的PDMS膜，置于盖玻片与标准灌流室之间，而该灌流室常用于标准的电生理实验装置中。我今天将演示的实验流程始于一个C八母模，该母模是通过标准的SV八光刻工艺制备而成的。今天我们所使用的模具是一个双层模具，其中一层包含微通道的结构设计，另一层则设计有通孔开口（via openings），位于这些通道的上方，使得流经通道的溶液能够通过这些通孔流出。我们首先在硅晶圆上制作出该模具，然后将硅胶或聚二甲基硅氧烷（PDMS）浇注在该装置表面，将晶圆上的结构复制到PDMS中，从而形成相应的模具结构。因此，我们将把PDMS浇注到该装置的表面。然后，我们将取固化后并与盖玻片键合的PDMS膜，从而获得我们的微流控装置。接着，我们将通过在灌流 chamber 底部涂布一层薄薄的PDMS，来改造一个标准的灌流 chamber。完成这种改造后的灌注腔室后，我们将取之前制备的微流控装置，并将其键合到灌注腔室上。微流控装置的制备过程中有两个关键步骤：其一是，在倒入PDMS之前，应关闭加热板，以防止PDMS倒入晶圆时立即开始聚合。另一个关键点是，我们用于硅片四个角落的垫片，其高度应小于硅片上最高的结构，以确保在对 PDMS 进行固化处理时能够获得 VR 开口。这里是我们所在的软壁模块化洁净室，此为采用标准的交流八号光刻工艺制备的母模。这是一个两级结构的模具，第一级包含具有四个入口和一个出口的通道设计。在四个通道的中间区域，有位于通道上方的通孔或凸起。这些是在制造过程中形成的对准标记。现在我将向您展示如何将其去除并进行PDMS固化。由于边缘液滴效应，晶圆外围区域的厚度大于纸张中心实际器件区域的厚度。因此，我们将使用反向刀片去除这些对准标记，然后为了放置配重块，我们将使用高度为140微米的垫片，并将其置于晶圆的四个角落。因此，您需要确保剃刀片不要靠近实际的器件。现在我将使用气吹清除这些SVA颗粒，晶圆现已准备好进行PDMS模具的制备。但在进行此操作之前，我们需要放置这些高度为140微米的间隔片。我将把四条胶带贴在晶圆的四个角上。然后我会确保胶带已正确粘附在晶圆表面。胶带高度为140微米的原因是，带有微通道和VS的双层模具高度为150微米。在PDMS固化过程中，当我们将重物放置于PDMS顶部时，需确保PDMS片材最终平整。因此，我们在四个角落使用高度相同的四个间隔垫片。接下来，我将演示如何对PDMS进行编码并固化以制备器件。但在进行之前，让我先向您展示我们是如何制备PDMS溶液的。首先，我们取10份基底材料和1份固化剂，充分混合。由于混合过程会产生大量气泡，为了去除这些气泡，我们将PDMS放入真空干燥器中。将PDMS置于真空干燥器中10分钟后，其中的气泡便完全消失了。现在，聚二甲基硅氧烷（PDMS）已准备好用于固化。接下来，我将向您展示如何将PDMS涂布在硅片上并进行固化，以获得PDMS膜。因此，我将把PDMS涂在硅片上，然后使用这张透明薄膜覆盖PDMS。这将帮助我们去除装置支撑物，将装置与透明膜分离，然后在透明膜上方放置重物。使用重物的目的是获得均匀厚度的PDMS。另一个关键问题是形成通孔开口。因此，凡是有 vs 的地方，我们都不希望有 PDMS，而配重将帮助我们实现这一点。正如您在此处所见，加热板已关闭，原因是避免 PDMS 立即固化，因此我们让其保持关闭状态。然后，在将 PDMS 转移至晶圆之前，您需要确保晶圆表面平整。现在我们可以浇注之前准备好的聚二甲基硅氧烷（PDMS）。务必确保将PDMS滴加在靠近晶圆的位置，以免产生气泡。此处最关键的步骤是将透明盖片放置在PDMS上方的方式。您需要确保在放置薄片时不会产生气泡。现在我将放置一块玻璃片，让多余的PDMS排出。我将再放置三块玻璃片，并确保这些玻璃片在此特定模具上不会移动。对于这些特定结构，我们发现放置四个玻璃片可形成通孔（via）。这样可使多余的聚二甲基硅氧烷（PDMS）从透明膜与晶圆之间的间隙中排出。我们等待一到两分钟，然后即可开启加热板。针对不同的母版和不同的设计，可能需要增加或减少玻璃片的数量，以获得理想的通孔开口。现在加热板已准备就绪，我将温度设置为75摄氏度。当温度达到75摄氏度后，即可将计时器设定为一小时，使PDMS固化。现在我们已让PDMS固化一小时，可以关闭加热板，使其冷却至50摄氏度。这样操作的目的是防止SEA发生开裂。如果我们将它从75摄氏度立即降至室温，现在可以关闭加热板，等待其温度降至50摄氏度。当加热板温度降至50摄氏度后，我们可以从透明膜上取下重物。现在可以将晶圆从加热板上取出，即可进行切割。现在PDMS片已准备好从a C eight模具上取下，我们需要移除铝箔。然后需要取下透明胶片。这里是我们标准的灌流 chamber。我们对其进行了改造，以便能够进行对齐，包括微流控装置的孔洞、入口和出口端口。因此，这分别是PDMS膜上的四个入口端口和一个出口端口。这些应与灌注室上的四个入口和一个出口相匹配。现在我将滑动灌注室，然后将其与PDMS膜上的孔对齐。对齐后，即可进行切割。现在可以将腔室取出，并使用探针操作。确保PDMS膜的所有边缘均可被顺利取下。完成此步骤后，可使用冷冻设备将PDMS膜移除；在从装置顶部取下PDMS时，务必缓慢移动，以免撕裂PDMS膜。现在，我将把带有微腔的PDMS膜放置在由SC八通道模具形成的顶部，并确保其平整。我们这样做的原因是，在打孔制作进样口和出样口时，与盖玻片将要键合的一侧PDMS表面不会变得粗糙。因此，我们需要确保空腔位于上方。现在可以制作进样口和出样口，以便更清楚地观察孔洞。我们放置一个黑色背景。现在我将制作进样口和出样口，并确保端口处没有残留的PDMS。因此，我们需要清除所有PDMS。接下来，我们将把PDMS膜转移至另一张透明薄膜上。因此，我们可以对板材和盖玻片进行等离子处理，并将它们放置好，使腔体仍然朝上。当此表面和盖玻片均经过等离子处理后，便可将这两个表面贴合在一起，形成微流控网络，并去除PDMS板材之间的气泡。可使用透明胶带增加透光性。这样可确保PDMS片平整，使键合效果更好。然后再次使用透明胶带粘贴PDMS膜的上表面，以去除任何灰尘。现在我们可以放置将与PDMS膜键合的盖玻片。现在，这两块PDMS和玻璃已准备好进行等离子处理。我们将使用这种经微波改造的等离子系统对PDMS和盖玻片进行等离子处理，可以看到该玻璃腔室允许我们在微波内产生等离子体。接下来，让我将样品放入腔室内，并在腔内创建真空环境。现在我可以通入氧气。现在等离子体系统已准备就绪，我将为此特定系统使用10%的功率和10秒的时间，以帮助观察等离子体。在等离子体处理过程中，我们将功率调至100%，并关闭了灯光。现在，等离子体处理后，您可以看到等离子体。您需要将牛滑片和PDMS的两个表面立即键合，否则PDMS表面会因等离子体处理而失去亲水性。放置牛滑片后，务必确保整个表面完全键合，且无任何气泡。如果有气泡，可以将其去除。现在将其静置五分钟，使其充分结合。此处展示的是经过改良的灌流室，我们已使用聚二甲基硅氧烷（PDMS）对灌流室的基底进行了改造。这一步骤之前已完成。我们将一张透明膜放在已关闭的加热板上，然后倒入之前以类似方法制备的P-D-M-S-P-D-M-S。然后将灌注室置于PDMS上，并如图所示放置一个配重，随后在75摄氏度下固化30分钟。现在，在等待PDMS与盖玻片键合的过程中，我将演示如何继续准备该腔室。因此，我们可以进行腔室与微流控装置的键合操作。因此，我们需要将不需要位置上的多余PDMS去除。先移除透明膜，然后去除PDMS，接着需要将入口和出口端口处的PDMS清除。现在，该腔室已准备好与我们先前制备的微流控装置进行键合。现在我们已经等待了五分钟，微流控装置已准备好从透明膜上分离，但您需要确保以缓慢的速度移除透明膜，以防止PDMS与盖玻片发生分离。现在灌注室已准备就绪，我们需要对灌注室的底面进行等离子处理，即之前粘附PDMS的表面，同时对微流控装置的顶面（带有PDMS的一面）进行等离子处理。现在，我们将把这两个部件都放入等离子体腔室中，在10%功率下进行10秒的等离子体处理。目前两个表面均已接受等离子体处理，可以进行键合。在键合之前，您需要确保腔室上的进样口和出样口与微流控装置对齐。由于我们所要对齐的特征尺寸足够大，因此不需要任何特殊设备，仅凭肉眼即可完成。对齐并将其放置在腔室上方后，确保所有表面均充分接触，然后静置五分钟。等待五分钟后，键合效果已足以满足实验要求。现在微流控装置已与腔室键合，接下来我们将使通道表面的通道内壁具有亲水性。这样，当我们实际通入CFS溶液或其他任何神经递质时，溶液能够更顺畅地流过通道。为此，我将把整个装置放入等离子体中，以10%功率处理一分钟，从而使通道内部表面完全亲水化。然后我会用水将其注满，再将其拿到电生理实验装置处，以便进行实际的实验。好的，现在我们已准备好前往电生理实验装置，并将此设备与脑片一起使用。大家好，我叫 uo。我正在与伊利诺伊大学厄巴纳-香槟分校生物工程系的Dr. Arrington和Dr. Fall合作。现在，我将要使用带来的微型自由装置，并将其放置在此平台之上。在装置的一侧，我们可以看到灌注管路。在另一侧，我们可以看到吸液管路。该装置将灌注脑脊液溶液，溶液经95%氧气和5%二氧化碳混合气体饱和。现在微型V装置已准备就绪，我将取脑组织切片，并将其放置在微型V装置上。现在，我将把脑切片放置在圆形开口的上方，然后使用固定锚来固定脑切片。脑切片固定好后，我将使用神经递质对其进行刺激。此处共有四个进液口，我将通过这四个进液口的被动泵送方式，将神经递质注入，直至液体从出口流出。现在，Fall 博士将介绍这个设备。它对我们来说为何如此重要？大家好，我是 Chris Fall，我们从事脑生理学研究。我们需要使用脑切片的原因是为了能够接入微电极并使用成像技术。迄今为止，我们唯一能够改变这些脑切片神经递质环境的方法是改变流经整个切片的灌流液，或使用非常细小的微移液管直接向局部喷射神经递质。因此，我们非常高兴能与Eddington研究组合作。这项新技术将使我们能够作用于大脑的广大区域，并局部改变神经递质环境。同时，我们现在可以利用电极和成像技术进行监测，或许最终还能在同一装置中集成多电极记录设备。好的，这里您看到的是微流控装置中的一片小鼠脑切片。你甚至可以凭肉眼观察到，大脑由许多不同的区域组成。这些区域具有不同的功能。在活体动物中，大脑的不同区域会具有不同的神经调节物质和神经递质水平。我们希望在进行电生理和成像记录的同时，能够在脑片记录室中模拟这一过程。因此，能够以不同的神经递质、不同的浓度以及不同的时间进程来靶向这些不同脑区，具有重要意义。虽然我们无法直接观察神经递质，但可以在此展示一个示例：荧光染料被泵入脑片的不同区域。在此视频中，您可以看到荧光染料流经装置的通道，并从已制备的孔隙中流出的可视化过程。即使是在这一早期原型中，您也能观察到流动的空间分辨率非常精确。当我们观看视频时，您将看到染料流入通道，然后从孔洞中流出，随后我们将冲洗掉该染料，从而让您了解流动的时间分辨率。感谢您今天的参与。我认为我们已经能够展示微流控技术以及微型机械如何与传统生理学技术相结合，以帮助我们理解大脑的工作机制。谢谢。

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Research

科研

JoVE Journal

Biology

生物学

脑片的刺激，利用微流控网络和标准灌注腔

微流控技术可与标准的电生理学技术相结合，从而实现新的实验模式。具体而言，……的动机在于……...

将微流控技术应用于电生理学

本文介绍了一种将激光扫描光刺激与全细胞记录相结合的方法，用于在特定抑制性神经元群体中表达绿色荧光蛋白（GFP）的转基因小鼠。该技术可实现对特定皮层抑制性神经元局部突触环路的广泛定位和定量分析。...

通过激光扫描光刺激绘制抑制性神经元环路

本视频介绍了一种同时对含有神经元特异性荧光蛋白的转基因脑片进行成像和记录电活动的方法。该方法包括将脑片置于灌流室中，并用充氧的人工脑脊液维持；使用光源激发荧光标记的细胞；并通过多通道探针和膜片钳技术记录电信号。...

脑切片中神经元细胞的同步光学与电生理监测

我们建立了一种脑切片模型，可用于研究兴奋性毒性介导的脑损伤所涉及的分子机制。 该技术可获得具有活性的成熟脑组织，在部分保留神经元回路、细胞间相互作用及突触后区室的同时，减少了实验所需的动物数量。...

脑微切片的兴奋性毒性刺激作为一种方法 体外 卒中模型

在急性脑切片中对突触连接的神经元进行膜片钳记录和同时的细胞内生物胞素填充，可实现其结构与功能特性的相关联分析。本方案的目的是描述从神经元微环路进行电生理记录及其后续形态学分析的关键技术步骤。...

利用成对膜片钳记录技术对急性脑切片中神经元微环路的电生理学与形态学特征进行表征

本方案描述了在小体积循环缓冲液中稳定氧浓度的方法，以及在浸没式急性海马脑片中记录活动依赖性突触可塑性的技术要点。...

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使用微电极阵列记录和调控啮齿类动物脑片中的癫痫样活动

小胶质细胞是大脑中的常驻免疫细胞，能够迅速响应其环境变化并发生形态学改变。本方案描述了如何利用双光子显微镜研究小鼠急性脑切片中小胶质细胞突起向血清素或三磷酸腺苷（ATP）的趋化反应。...

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离体脑片可用于研究挥发性麻醉剂对传入刺激诱发反应的影响。利用光遗传学技术可独立激活丘脑皮层和皮层间传入纤维，作用于非初级新皮层，并通过异氟烷调节突触和神经网络反应。...

脑片中传入通路的光遗传学激活及挥发性麻醉剂对反应的调节

本方案描述了从小鼠中制备表现出自发尖波涟漪活动的水平海马-内嗅皮层（HEC）切片的方法。切片在简化的界面式孵育室中孵育，并在浸没条件下用快速流动的人工脑脊液进行记录，以促进组织供氧及网络水平自发活动的出现。...

急性小鼠脑切片以研究海马区自发性网络活动

本文概述了一种使用互补金属氧化物半导体高密度微电极阵列系统（CMOS-HD-MEAs）的实验方案 记录类似癫痫发作的活动 离体...

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