0 次观看 • 4:16 分钟 • July 8th, 2025
取一个固定在显微镜载物台上的微流控装置,该装置包含用于添加试剂的入口、相互连接的流体通道以及用于排出液体的出口。
主通道内含有一个中央交错的限流结构,其中困住了聚集的铁微粒。
将通道用封闭液孵育,以防止非特异性抗体结合。
加入洗涤缓冲液,去除多余的封闭液。
以设定的流速引入免疫复合物悬浮液。该免疫复合物由磁性纳米颗粒组成,其表面包被有与一抗结合的抗原,而一抗进一步与辣根过氧化物酶标记的二抗结合。
施加外部磁场,使聚集的微粒磁化,从而形成磁性捕获阱以捕获免疫复合物。
加入一种荧光原性底物,该底物被过氧化物酶转化为荧光产物,并流经捕获装置。
使用显微镜比较捕获前后荧光的变化,以确认免疫复合物的捕获。
使用注射器将蒸馏水注入通道中。将装置浸入超声波清洗仪中处理10分钟。随后排空装置通道内的水,并用注射器注入5% BSA溶液。
将直径为7.5微米的铁微粒悬浮于5% BSA中。将芯片和微粒悬浮液与封闭液在室温下孵育至少1小时。随后,通过侧通道出口软管,用注射器针头将微粒注入芯片中。
将芯片垂直放置,然后分两步每次旋转90度,使微颗粒靶向并聚集在5微米的限制区域。用热封法密封丙烯酸装置的所有软管。剪切进样软管,仅保留几毫米。
用洗脱缓冲液填充分配针,并将其插入切割后的软管中。让溶液滴出,然后将针头连接到装置上。从侧通道切断出口软管,再将其连接至注射泵。接着,对主通道的出口软管重复相同操作,然后将芯片固定到磁铁上。
进行免疫检测时,以每小时50微升的流速持续冲洗洗涤缓冲液10分钟。使用微量移液器从分配针中移除残留的洗涤缓冲液,并加入50微升纳米颗粒悬浮液。以每小时100微升的流速推动纳米颗粒悬浮液流动7分钟。随后,将流速调整为每小时50微升,继续流动15分钟。
更换分配针,并以相同流速持续通入洗涤缓冲液10分钟。使用微量移液器移除分配针中残留的洗涤缓冲液,加入100微升荧光底物。调整底物输入、荧光检测和洗涤步骤的流速及时间参数。
以每小时 50 微升的流速激活荧光底物的进样流,持续 6 分钟。在底物流动停止前 15 秒,开启显微镜的荧光通道。在底物流动停止前 10 秒,使用显微镜相机软件开始图像采集,曝光时间为 1,000 毫秒。
在底物清洗停止后,立即点击所需流速参数的开始按钮。以每秒一帧的速度进行成像,持续6分钟。在选定的测量流速停止后,立即点击清洗流速的开始按钮。
本文介绍了一种用于利用磁性纳米颗粒捕获免疫复合物的微流控装置。该方法通过一系列流体操作和荧光检测,以确认这些复合物的成功捕获。
该微流控免疫分析平台利用磁性纳米颗粒实现对免疫复合物的精确捕获和检测,通过提供生物分子相互作用的定量、可重复的读数,支持早期靶点验证。磁性捕获与荧光检测相结合,提高了分析的特异性并降低了背景噪声,从而增强了先导化合物筛选流程中的预测可靠性。该平台的模块化设计可适应不同发现阶段的需求,有助于从假设验证到临床前评估的转化研究连续性。
该方法适用于从早期靶点结合检测到先导化合物优化的整个发现流程,其中定量结合数据可为化合物的优先排序及后续机制研究提供依据。
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最后更新:29 八月 2026