0 次观看 • 3:37 分钟 • July 8th, 2025
从已将胸苷核苷类似物 IdU 整合到 DNA 中的癌细胞开始。当这些细胞遇到复制应激时,其 DNA 合成会停止,暴露出单链 DNA 区域中的 IdU。
固定细胞并加入去垢剂分子,以增加细胞膜的通透性。
加入 BSA 以阻断非靶标抗体结合位点。
加入与IdU标记的单链DNA结合的抗IdU抗体。
加入针对抗IdU抗体的绿色荧光标记二抗。去除未结合的抗体。
将盖玻片置于载玻片上,载玻片上含有带荧光染料的封片剂——该染料可对细胞核进行染色。
在荧光显微镜下观察蓝色的细胞核。
绿色荧光焦点代表抗体与单链 DNA 的结合。
通过计数焦点数量来量化复制应激水平。
在置于24孔板孔内的聚-L-赖氨酸盖玻片上加入1毫升细胞悬液,并在标准条件下于培养基中培养细胞。经过一个群体倍增后,吸去孔板中的原有培养基,并用10 µM的IdU对细胞进行脉冲处理,持续两个后续的群体倍增期。
收获细胞时,将培养基替换为预冷的含0.5% PBSTx的溶液,冰上孵育5分钟。固定细胞时,吸去PBSTx,室温下用3%多聚甲醛孵育细胞15分钟。用PBS洗涤3至4次后,将固定后的细胞于4摄氏度保存,以备后续使用。
固定后,在冰上用0.5% PBSTx处理细胞5分钟,确保完全覆盖盖玻片。随后在室温下用1毫升0.2% PBST洗涤细胞3至4次,吸除PBST,并用PBS配制的5% BSA在室温下封闭样本30分钟。
进行免疫染色时,准备一个加湿的孵育盒:在平底塑料盒内放入一张湿润的纸巾。用 Parafilm 封住 24 孔板的盖子,并将其放入加湿孵育盒中,然后将盖玻片平铺在板盖上。在盖玻片上方加入 60 微升稀释后的抗 BrdU 小鼠一抗。
或者,为减少抗体干燥并减少用量,可在Parafilm上滴加一滴稀释后的抗体,然后将盖玻片倒置覆盖在液滴上。随后在37摄氏度孵育1小时。孵育结束后,吸除一抗。
将盖玻片放回24孔板中,用0.2% PBST洗涤4次。按照之前的方法,在盖玻片上加入稀释的二抗,室温避光孵育1小时。标记载玻片,并用含DAPI的封片剂将盖玻片封固在载玻片上。如果封片剂需要固化或硬化,则将载玻片置于室温避光处保存24小时。
本文详细介绍了一种利用碘脱氧尿苷(IdU)掺入和免疫荧光技术定量检测癌细胞中复制应激的方法。该过程包括固定和通透细胞,随后进行抗体染色和荧光显微镜观察,以可视化并计数DNA焦点。
利用免疫荧光法量化癌细胞中的复制应激,可直接、可重复地反映DNA合成的中断情况,有助于在肿瘤学研发管线中进行早期靶点验证和机制层面的风险评估。该方法能够精确测量细胞对复制抑制剂的反应,为关键发现阶段的预测提供可靠依据。其标准化的输出结果有助于不同项目间对DNA损伤应答靶点的比较,以及研发组合的优先级筛选。
这种基于免疫荧光的定量方法可融入从发现到临床前的研究连续过程,支持DNA复制应激调节剂的靶点验证和先导化合物筛选。
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最后更新:29 八月 2026