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取一个带有经细胞外基质蛋白包被的transwell小室的微孔板,以促进细胞黏附。
将人脑微血管内皮细胞(HBMECs)和生长培养基加入插入物及下层隔室中。
孵育,使细胞贴壁并生长成单层。这些细胞表达紧密连接,模拟限制细胞和分子通过的血脑屏障内皮。
移除培养基。将外周血单个核细胞(PBMCs)加入插入式培养小室,并向底层隔室加入培养基。
孵育,使外周血单个核淋巴细胞与内皮细胞相互作用并穿行于其间,此过程称为跨内皮迁移。
冲洗插入物底部,将粘附的迁移细胞收集到下室中。
引入荧光微珠作为细胞定量的参考标准。
将悬液转移至离心管中,离心后弃去上清液,再重悬于荧光染料标记的抗体混合液中以标记淋巴细胞。
迁移的淋巴细胞已准备好通过流式细胞术进行定量分析。
为进行跨膜迁移实验,首先向每个细胞培养小室及一块96孔平底板的每个孔中加入100微升纤连蛋白溶液。在37摄氏度孵育3小时后,将纤连蛋白溶液替换为100微升HBMEC细胞悬液,并向细胞培养小室的下室中加入600微升新鲜ECM-b培养基。
然后,将培养板放回细胞培养箱中孵育三至四天。用添加了B27的RPMI培养基将外周血单个核细胞(PBMC)样品重悬至浓度为5 × 10⁶ 个细胞/毫升。接下来,吸去含有融合的HBMEC单层细胞的适当数量细胞培养小室下室和上室中的培养基,每份供体加入100 µL PBMC至细胞培养小室中,并向24孔板中每孔加入100 µL PBMC作为体外对照。
向细胞培养小室的下层加入 600 微升含 B27 的 RPMI 培养基,向体外对照孔中加入 500 微升,然后将培养板放回细胞培养箱中孵育 6 小时。孵育结束后,用镊子取出细胞培养小室,用 400 微升 PBS 轻轻冲洗底部,注意不要触碰膜。
然后,将20 µL流式计数荧光微球与实验组和体外对照孔中的细胞充分混匀,将1 mL所得PBMC悬液转移至相应的流式细胞术管中。通过离心收集细胞,随后在每份样品中加入100 µL流式细胞术缓冲液配制的荧光染料标记的特异性抗体。4 °C孵育30分钟后,用250 µL新鲜流式细胞术缓冲液洗涤细胞,并将细胞沉淀重悬于适量体积的流式细胞术缓冲液中用于检测分析。