双光子显微镜用于研究小胶质细胞突起在小鼠脑切片中向化合物的趋化性

0 次观看4:28 分钟 • April 28th, 2025

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将小鼠脑切片置于含有人工脑脊液(aCSF)的灌流室中,并放置在双光子显微镜下。

该小鼠经过基因改造,可在小胶质细胞中表达GFP,从而实现对小胶质细胞运动的追踪。

用持片器固定脑片。

使用明场照明,定位目标区域。

切换至荧光照明以观察小胶质细胞。

用移液器吸取待测化合物,将其安装到注射器架上,并缓慢下降至接触脑片。

启动双光子成像模式,将低能量的近红外光聚焦到组织中。

在激光的焦点处,两个光子结合其能量激发GFP,从而发出荧光。

在多个Z平面拍摄图像,以聚焦小胶质细胞突起。

记录基线活动,然后注入化合物并继续记录。

该化合物与小胶质细胞受体结合,激活信号通路,促使小胶质细胞突起向化合物来源方向延伸。

随时间监测注射部位附近荧光强度的增加,以追踪其移动情况。

开始记录前30分钟,将蠕动泵连接至定制的记录室,该记录室具备顶部和底部灌流功能,以优化组织切片的氧合和存活率;用50毫升超纯水清洗整个灌流系统。清洗程序结束后,开始用50毫升玻璃烧杯中持续通碳酰气(carbogen)的aCSF灌流记录室,并使用一次性宽口移液管将首个待成像的切片转移至烧杯中,以去除滤纸。

当切片沉至烧杯底部后,将切片转移至记录室,并将切片固定器置于切片上,以尽量减少灌流液流动引起的切片移动。使用明场照明,在5至10倍放大倍数下定位目标脑区。随后使用25倍物镜配合0.35倍水浸镜头,调整观察视野的位置。

使用荧光照明定位荧光标记的小胶质细胞,并用含有目标化合物(终浓度)的 10 微升 aCSF 回填移液管。将管尖朝下轻轻晃动,以去除尖端内可能存在的气泡,然后将装液后的移液管安装至连接有 5 毫升注射器的移液管架上,注射器活塞置于 5 毫升刻度位置,并将整个装置固定在三维微操纵器上。

将移液管轻轻向下移动至切片,同时控制并调节物镜,直至移液管尖端轻轻接触切片表面。随后调节激光器,并将显微镜切换至多光子模式。确保成像腔室屏蔽所有外部光源,打开非扫描探测器。设置增益,并使用带有颜色编码上限的查找表,以避免图像像素饱和。

然后开始记录,总时长至少为30分钟,在5分钟后用5秒时间缓慢推动注射器活塞,从5毫升位置推至1毫升位置,以将化合物施加到组织切片上。进行图像分析时,首先在ImageJ中对目标文件进行Z轴投影和漂移校正,然后在Icy中打开经校正的文件,并以注射部位为中心绘制一个直径为35微米的圆形感兴趣区域。

重新运行视频并确认感兴趣区域(ROI)位置是否恰当。然后,使用感兴趣区域强度变化插件测量该区域内随时间变化的平均强度,并将结果保存为 .xls 文件。

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最后更新:15 八月 2026