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将小鼠脑切片置于含有人工脑脊液(aCSF)的灌流室中,并放置在双光子显微镜下。
该小鼠经过基因改造,可在小胶质细胞中表达GFP,从而实现对小胶质细胞运动的追踪。
用持片器固定脑片。
使用明场照明,定位目标区域。
切换至荧光照明以观察小胶质细胞。
用移液器吸取待测化合物,将其安装到注射器架上,并缓慢下降至接触脑片。
启动双光子成像模式,将低能量的近红外光聚焦到组织中。
在激光的焦点处,两个光子结合其能量激发GFP,从而发出荧光。
在多个Z平面拍摄图像,以聚焦小胶质细胞突起。
记录基线活动,然后注入化合物并继续记录。
该化合物与小胶质细胞受体结合,激活信号通路,促使小胶质细胞突起向化合物来源方向延伸。
随时间监测注射部位附近荧光强度的增加,以追踪其移动情况。
开始记录前30分钟,将蠕动泵连接至定制的记录室,该记录室具备顶部和底部灌流功能,以优化组织切片的氧合和存活率;用50毫升超纯水清洗整个灌流系统。清洗程序结束后,开始用50毫升玻璃烧杯中持续通碳酰气(carbogen)的aCSF灌流记录室,并使用一次性宽口移液管将首个待成像的切片转移至烧杯中,以去除滤纸。
当切片沉至烧杯底部后,将切片转移至记录室,并将切片固定器置于切片上,以尽量减少灌流液流动引起的切片移动。使用明场照明,在5至10倍放大倍数下定位目标脑区。随后使用25倍物镜配合0.35倍水浸镜头,调整观察视野的位置。
使用荧光照明定位荧光标记的小胶质细胞,并用含有目标化合物(终浓度)的 10 微升 aCSF 回填移液管。将管尖朝下轻轻晃动,以去除尖端内可能存在的气泡,然后将装液后的移液管安装至连接有 5 毫升注射器的移液管架上,注射器活塞置于 5 毫升刻度位置,并将整个装置固定在三维微操纵器上。
将移液管轻轻向下移动至切片,同时控制并调节物镜,直至移液管尖端轻轻接触切片表面。随后调节激光器,并将显微镜切换至多光子模式。确保成像腔室屏蔽所有外部光源,打开非扫描探测器。设置增益,并使用带有颜色编码上限的查找表,以避免图像像素饱和。
然后开始记录,总时长至少为30分钟,在5分钟后用5秒时间缓慢推动注射器活塞,从5毫升位置推至1毫升位置,以将化合物施加到组织切片上。进行图像分析时,首先在ImageJ中对目标文件进行Z轴投影和漂移校正,然后在Icy中打开经校正的文件,并以注射部位为中心绘制一个直径为35微米的圆形感兴趣区域。
重新运行视频并确认感兴趣区域(ROI)位置是否恰当。然后,使用感兴趣区域强度变化插件测量该区域内随时间变化的平均强度,并将结果保存为 .xls 文件。