April 12th, 2012
实时成像胚胎组织挑战过很长一段时间。在这里,我们提出了一个小鸡脊髓细胞和亚细胞的变化,具有高时空分辨率的长期监测分析。这种技术可以适应其他地区的神经系统和胚胎发育。
该程序的总体目标是长时间以高分辨率对胚胎神经管内的细胞行为进行成像。这是通过首先用驱动所选荧光蛋白表达的构建体横切早期神经管来实现的,以标记单个细胞。下一步是将早期胚胎切片并将它们安装在玻璃底培养皿上。
在培养箱中恢复后,胚胎切片在宽视场显微镜上定期成像。最终,该技术可用于以高空间和时间分辨率研究发育中的神经上皮内长期内的细胞行为。与现有的活组织成像方法相比,该技术的主要优点是它使我们能够以高空间和时间分辨率长时间观察单个细胞的行为。
该方法允许您解决发育神经生物学领域的关键问题,例如有丝分裂纺锤体方向在硫酸盐选择中的作用,或者在质粒电穿孔到神经管之前信号动力学如何调节细胞行为。在解剖显微镜下使用微型毛细管拉拔器制备玻璃针。用细镊子折断针尖。
针头的末端应足够锋利以刺穿神经管,同时又不能太窄以至于阻碍 DNA 溶液的注射。本实验的 X 已在 37 摄氏度下孵育约 36 小时,以放入汉堡汉密尔顿。第 10 阶段。
要开始此过程,请在胚胎的两侧开窗和造卵并将电极相距 5 毫米,将 DNA 注射到神经管中。DNA 用少量快速绿色着色以进行可视化。施加 12 至 17 伏特的电流和 50 毫秒的脉冲长度 3 次,脉冲之间间隔 950 毫秒。
使用低浓度的 DNA 和低电穿孔电压来实现嵌合表达,以便可以跟踪单个细胞。最后,用地窖胶带盖住蛋壳中的窗户,确保其密封。让胚胎恢复 3 到 4 小时或在 37 摄氏度下过夜。
胶原蛋白混合物和切片培养基应在切片胚胎前约一小时准备好。要将 100 微升 0.1% 乙酸溶液的胶原蛋白混合物制备到 300 微升 1 型胶原蛋白中并彻底涡旋,加入 100 微升 5 倍 L 15,培养基并彻底涡旋。同样,溶液应该变成黄色。
接下来,加入 15 至 20 微升 7.5% 碳酸氢钠,并彻底涡旋。溶液应变为略带粉红色。保持在冰上。
这种胶原蛋白混合物每次都应该新鲜制备。要将切片培养基制备到 10 mL 神经基础培养基、B 27 补充剂 glut max 和庆大霉素溶液中,请将培养基放入 37 摄氏度的培养箱中,用 5% 二氧化碳缓冲。将容器的顶部松散,使其与二氧化碳平衡至少一个小时。
要开始此过程,请使用一把小剪刀剪出胚胎。用镊子清洗 L 15 培养基,从鸡蛋中取出胚胎。将胚胎放入组织培养皿中,底部有一层 syl guard。
通过周围的额外胚胎膜将胚胎固定出来,使膜被拉紧。使用微型刀,将胚胎尽可能笔直地切成薄片,穿过感兴趣的区域。对于脊髓切片,应在一到两个体节之间,厚叶片附着在胚胎的外侧组织上,这样它们就不会在切片其他胚胎时丢失。
需要一个定制的微型注射头,用于将脊髓切片转移到玻璃底培养皿中。为此,将 200 微升吸头连接到 P 2 或 P 10 perman 上,并从吸头末端切下约 1 毫米。通过准备之前制备的 1 微升胶原蛋白混合物,用胶原蛋白对尖端内部进行编码。
静置 1 到 2 分钟,然后用 L 15 培养基冲洗。这将防止组织粘附在吸头内侧。现在用微型刀从胚胎上取下一片,然后使用装有 200 微升尖端的 P two 或 P 10 从培养皿中取出切片。
尽量少用介质。涡旋胶原蛋白混合物,将其 5 到 8 微升滴到以盖玻片为底座的多元醇赖氨酸涂层玻璃底皿上,立即将胚胎切片放入胶原蛋白中,并用一对细镊子定位。LIC 的位置应使要成像的一侧与盖玻片齐平。
组织应粘附在盖玻片上的多元醇赖氨酸涂层上。重复此作,直到盖玻片上有几片。通常将 6 到 9 片放在一个盘子上。
当所有切片都就位后,加入 2 到 3 微升 L 15,将胶原蛋白适中到最早的位置,然后盖上培养皿。让胶原蛋白凝固 20 分钟。胶原蛋白凝固后,小心地加入 2 毫升切片培养基,该培养基已在 5% 二氧化碳和 37 摄氏度中平衡至少一小时。
必须注意不要在 37 摄氏度 5% 二氧化碳培养箱中将胶原蛋白从盖玻片处脱落,并在成像前让切片恢复至少三个小时。以高时间和空间分辨率对组织内的细胞行为进行长时间成像具有挑战性。最佳培养条件和白场显微镜的使用相结合对于获得良好结果至关重要。
使用装有气象站环境室的 delta vision core 宽视场显微镜对切片进行成像。腔室始终保持在 37 摄氏度,二氧化碳灌注仪将显微镜载物台保持在 5% 二氧化碳和 95% 空气成像通常使用 40 倍 1.30 NA 油浸镜头进行,并使用核心快照 HQ 两个称为 CCD 相机 Z 切片从 1.5 微米到 45 微米的组织暴露捕获一次。时间应尽可能短,例如 5 到 50 毫秒。
对于每个所述部分,每 7 分钟捕获一次图像。使用 Delta 视觉系统最多可以访问 9 个切片。此处显示的精确点访问函数是转染表达 GFP α 微管蛋白成像的构建体的脊髓祖细胞的示例延时序列,该序列在来自两天大的 HH 第 12 期胚胎的脊髓切片上开始。
在这个早期阶段,神经祖细胞主要经历祖细胞祖细胞模式分裂,在此期间细胞分裂产生两个进一步的循环祖细胞。此图显示了从刚才显示的延时序列中选择的帧。在 2 小时 20 分钟时,细胞分裂,形成垂直于顶端表面的卵裂面,产生两个子细胞。
这两个细胞在 24 小时 23 分钟和 25 小时 54 分钟再次分裂。下一个延时序列是用标记细胞膜的 G-F-P-G-P-I 转染的细胞。该细胞经历分裂,在此期间,基底突一分为二,如白色箭头所示,并由子细胞平等遗传。
从此延时序列中选择的帧显示细胞分裂发生在 0 小时 49 分钟。观看此视频后,您应该对如何准备和成像脊髓切片有一个很好的了解。请记住,如果您不熟悉这项技术,您最初可能会遇到困难,因为有许多技术上具有挑战性的步骤需要结合在一起才能发挥作用。
本研究提出了一种新颖的方法,用于在长时间内以高空间和时间分辨率成像鸡脊髓的细胞和亚细胞变化。该技术适用于神经系统的各个区域和发育中的胚胎。
Understanding dynamic cell behavior in developing tissues is critical for de-risking target validation in neurodevelopmental disorders. This imaging approach enables high-resolution, longitudinal observation of progenitor cell dynamics, supporting mechanistic insights into signaling pathways that govern cell fate decisions. Such predictive confidence aids in prioritizing targets with stronger translational potential early in discovery.
The method fits within the discovery continuum from target hypothesis testing through lead optimization, providing mechanistic readouts that inform go/no-go decisions before significant investment.