2015年6月17日
RNA 原位 杂交(ISH)能够实现对细胞和组织中RNA的可视化。本文展示了如何将RNAscope ISH与免疫组织化学或组织学染色相结合,成功检测小鼠和人脑切片中定位于轴突的mRNA。
以下实验的总体目标是检测成年脑组织样本中意外定位的 mRNA。该目标通过预处理实现:首先将样本煮沸并进行蛋白酶消化,以暴露 mRNA 分子;第二步进行杂交,随后进行扩增和检测,从而实现目标 mRNA 的可视化。
接下来,使用抗体或染料对轴突进行染色,以验证目的 mRNA 是否定位于轴突中。结果显示,通过不同的抗原修复方法和计数器,结合基于显微镜分析的染色方法,在脑组织样本中检测到 TF four mRNA 的存在。该方法有助于回答神经科学领域的一些问题,例如哪些 mRNA 在无外显子的情况下仍可定位于轴突并进行翻译。
尽管该方法可为细胞内蛋白质合成提供研究线索,但也可应用于其他存在 mRNA 定位的系统,例如树突以及非神经元细胞和组织。根据书面实验方案中的说明固定脑切片后,准备一个含有 60 毫升抗原修复液的 Copin 瓶,并将载玻片浸入该溶液中。接下来,用一个一升的烧杯装入蒸馏水并放入微波炉中,以缓冲热量。
进行抗原修复时,将装有切片和修复液的共平面染色缸放入微波炉中。用高火煮沸切片5分钟。在溶液停止沸腾后立即再次用高火加热切片额外5分钟。
将载玻片在室温下冷却。冷却后,将载玻片浸入盛有 PBS 的培养皿中进行洗涤,随后再重复洗涤两次。洗涤完成后,将载玻片置于平坦表面上,并在两到三个脑切片上作为对照加入两到三滴或 100 µL DAP B.探针。为评估背景染色,在实验组切片上加入两到三滴靶向探针。为检测目标 RNA,此处使用靶向小鼠 a TF four RNA 第 20 至 1381 位核苷酸的探针。使用镊子将封片膜覆盖在载玻片上,以防止探针蒸发。
然后将载玻片放入杂交炉内的湿盒中,在40摄氏度下孵育两小时。孵育结束后,在室温下用一倍洗涤缓冲液将载玻片在培养皿中洗涤两分钟。接着,向每张脑切片加入两到三滴扩增试剂a MP one fl。
然后用新鲜的封口膜覆盖,放入载片盒中,在杂交炉中于 40 摄氏度孵育 15 分钟。按照之前的方法洗涤载片后,向每张脑切片加入两到三滴扩增试剂 A MP four fl,并用 perfil 覆盖。将载片放入载片盒中,在杂交炉中于 40 摄氏度孵育 15 分钟。
在室温下,用一倍洗涤缓冲液将载玻片洗涤两次,每次两分钟。同前,最后一次洗涤后,向每张切片加入100至200微升封闭液(含3毫克/毫升BSA、100毫摩尔/升甘氨酸和0.25% Triton X-100的PBS溶液),用封片液覆盖每张载玻片,于室温孵育30分钟。孵育结束后,向载玻片加入100至200微升用封闭液稀释的一抗抗体。此处使用抗胆碱乙酰转移酶抗体,加样后用封片液覆盖,于4摄氏度孵育两天。
确保脑切片不会干燥,必要时在孵育24小时后重新加入抗CHATT抗体溶液。在1倍XPBS中将切片洗涤三次,每次五分钟。室温下,向切片加入100至200微升相应的Alexa荧光标记二抗。
用封片剂覆盖,室温避光孵育一小时。孵育结束后,将切片在1×PBS中洗涤三次,每次五分钟,方法同前,然后用蒸馏水洗涤一次。用含DPI的封片剂封片,随后在荧光显微镜下观察脑切片。
根据方案书面部分的说明,制备好甲醛固定石蜡包埋的人脑样本后,将切片浸入预热的预处理液二中,煮沸15分钟,进行热诱导抗原修复。用蒸馏水冲洗3至5次,再用新鲜的100%乙醇冲洗3至5次后,室温下干燥5分钟,以进行蛋白酶诱导抗原修复。在切片上滴加4滴预处理液三,覆盖封口膜,置于杂交炉中40摄氏度孵育30分钟。随后用蒸馏水冲洗3至5次。
与之前相同,在对照脑片上加入四滴DAP B探针组以评估背景染色,并在实验切片上加入四滴靶向探针组。将一对覆有薄膜的载玻片放入染色盒中,在杂交炉中于40摄氏度孵育两小时。按照书面实验方案中的步骤显色目标mRNA的DAB信号后,在明场显微镜下检查信号的存在情况。
在脑组织样本中确定参考区域,用于在整个复染过程中监测 puncta 的存在情况。进行复染时,首先将载玻片放入预热至 60 摄氏度的 Luxol 快蓝溶液中,在 60 摄氏度下孵育 30 分钟。
孵育结束后,用蒸馏水将载玻片冲洗数次,然后将载玻片浸入0.05%碳酸锂溶液中数次以开始分化。接着,将载玻片在新鲜的75%乙醇中浸入两次,并用蒸馏水冲洗。在明场显微镜下检查脑切片。
请注意,灰质和白质应开始可区分,RNA颗粒仍可见为深蓝黑色的点状结构。验证轴突开始呈现为浅蓝色纤维后,重复卢萨尔蓝染色步骤,以10至20分钟为间隔孵育卢萨尔蓝,仔细监测复染情况及RNA颗粒的存在,直至达到最佳染色效果。将冲洗后的切片放入结晶紫溶液中,孵育10分钟,孵育结束后进行后续操作。
用蒸馏水冲洗载玻片。将载玻片在70%乙醇中浸洗5至10次,然后在通风橱中用100%乙醇快速更换三次进行脱水。用二甲苯孵育两次以透明脑切片。
用替代透明剂分别处理两分钟和第三次处理五分钟。在室温下,将脑切片置于二甲苯基永久封片剂中封片,并在明场显微镜下进行分析。鱼类实验采用蛋白酶诱导抗原修复,随后通过抗体检测红色显示的胆碱乙酰转移酶。
当进行蛋白酶处理时,该抗体未能识别出chat。图中显示了使用相同显微镜设置和图像调整条件下,非靶标探针与靶向ATF四的探针所获得的结果示例。绿色的ATF四阳性颗粒显示出轴突定位不明确,以问号标示。
蓝色区域为使用热诱导抗原修复法进行染色后呈阳性的细胞核。免疫荧光染色再次显示为红色,表明染色成功。TF4 阳性颗粒定位于轴突,呈橙色,标记为“ok”。随后,轴突使用 Luxol 进行复染。
快速蓝和神经元SOTA用嵴紫亚优卢萨尔进行复染。如果温度降低,可能导致快速蓝染色。此处样品在40摄氏度下用卢萨尔快速蓝染色四小时。
TF 四阳性颗粒伴有不明确的意外定位,以问号标示。若在短暂孵育后未检查复染的强度,则可能出现次优染色,如此处所示。此处展示了与 ish 结合使用的最佳 LFB 染色示例,包括使用非靶向探针或 TF 四靶向探针的情况。
图像采集已自动调整至最佳信噪比。轴突定位的转录因子四个颗粒标记为正常。掌握后即可。
该技术可在染色后的一至三天内完成,具体时间取决于所选择的复染方法。该技术为神经科学家探索 mRNA 的翻译及其精确定位提供了途径。
查看完整文字稿并访问数千部科学视频
本研究展示了利用RNA原位杂交(ISH)结合免疫组织化学技术,在小鼠和人脑组织的轴突中可视化mRNA的方法。该方法可用于检测定位的mRNA,从而揭示其在神经科学中的作用。
理解轴突中亚细胞水平的mRNA定位可为神经元功能提供机制性见解,并支持在神经退行性疾病模型中进行靶点验证。该技术能够直接可视化复杂组织中丰度较低的转录本,减少对人工培养系统的依赖。通过确认与轴突导向、修复及神经退行过程相关的空间基因表达模式,该方法可提高临床前靶点去风险评估的预测可靠性。
该方法适用于从靶点假设验证到临床前验证的整个发现过程,尤其适用于涉及轴突生物学的神经科学靶点研究。