Name: 对水样的自动固相萃取小污染物的免疫学分析的简单方法 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-01-01T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 26 s
Description: 学习使用自动化固相萃取技术从水样中预浓缩有机污染物的方法。该技术成本低、操作简便，可提高免疫检测效率，适用于环境水质监测研究。

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本工作由欧洲联盟第七个框架计划 FP7/2007-2013 在资助协议编号 265721 下资助。作者感谢 RIKILT 食品安全研究所（NL）在本项目中提供的支持。

注意：以下方案描述了使用C18固相萃取柱对100 ml水样进行固相萃取，并以50%（v/v）甲醇洗脱的操作流程。富集后的样品需稀释至甲醇终浓度为10%（v/v），再用于酶联免疫吸附测定（ELISA）试剂盒分析。
1. 准备试剂
<ol>
	<li>准备水样
	<ol>
		<li>在进行其他任何步骤之前，使用孔径为 0.2 µm 的滤膜对每份 100 ml 水样进行过滤。</li>
		<li>通过将适量的标准溶液稀释至一定体积的水中，使样品中目标物质达到所需浓度。例如，将 3.3 µl 浓度为 300 µg/L 的 E2 标准溶液稀释至 100 ml 水中，制备含 100 ng/L E2 的水样；再将该溶液稀释 10 倍，得到含 10 ng/L E2 的加标样品；进一步将后者再稀释 10 倍，获得 100 ml 含 1 ng/L E2 的样品。</li>
		<li>将过滤后的样品（未修饰或加标）置于带有 GL45 螺纹的玻璃瓶中。样品应在同一天内使用。取少量样品用于 ELISA 分析，以测定初始浓度。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>在密封管中将甲醇与去离子水按体积比 50% 稀释，配制 300 µl 洗脱液。</li>
</ol>
2. SPE 柱的制备
<ol>
	<li>通过先加入1,600 µl甲醇，再加入400 µl去离子水至40 mg反相固相萃取吸附剂中，制备20 mg/ml的十八烷基硅胶吸附剂悬浮液。盖紧瓶盖后，用涡旋振荡器振荡混匀。</li>
	<li>在柱中安装底部膜
	<ol>
		<li>选取一片孔径为11 µm的尼龙膜，将其放置在双层防尘纸巾上。使用直径为3 mm的打孔器，在膜上切下两个小片。</li>
		<li>用平头镊子夹取其中一片小膜，并将其放置在柱的一端。</li>
		<li>将平底接头与管路连接并拧紧。此时膜已固定到位，可安全加入吸附剂。在柱体上画一个箭头，指向放置膜的一端。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>制备填充吸附剂柱
	<ol>
		<li>将柱固定在支架上，使箭头朝向下方。柱体应尽可能保持垂直。</li>
		<li>使用鲁尔锁接头，将一个空的10 ml一次性注射器连接到柱的管路末端。</li>
		<li>准备一支带有20–200 µl吸头的微量移液器，并将体积设定为100 µl。该移液器吸头规格适用于待制备的吸附剂柱尺寸；若使用更大的移液器吸头（如1 ml移液器所用吸头），操作将更加困难。</li>
		<li>用涡旋振荡器充分振荡吸附剂悬浮液，迅速吸取100 µl并加至柱中心位置。在注入的同时，用另一只手操作注射器，轻柔地将全部移液后的溶液通过膜吸出。此时注射器内收集的溶液应无颗粒，且可在柱内观察到颗粒层的形成。</li>
		<li>在每次移液前均需重新振荡原液悬浮液以确保颗粒均匀分散，重复此过程再进行两次。最终柱内含有6 mg吸附剂。</li>
		<li>当300 µl悬浮液全部上样并通过注射器抽吸干燥后，保持注射器连接状态，用另一只手使用镊子将第二片尼龙膜放置在柱顶部。</li>
		<li>拧紧第二个带管接头，并移除注射器。固相萃取柱现已准备就绪，可供使用。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. 系统准备
<ol>
	<li>使用鲁尔锁紧接头将固相萃取柱固定在装置上，箭头方向必须与装置上所示方向一致。</li>
	<li>将装有样品的瓶子通过提供的GL45安全盖旋紧连接至装置。</li>
	<li>在“洗脱液”储液池中加入200 µl洗脱液。</li>
	<li>在“稀释液”储液池中加入800 µl去离子水。</li>
	<li>在废液出口处放置一个容器，用于收集萃取过程中产生的废液。容器规格不限，但体积必须足够大，以适应样品体积。</li>
	<li>在传感器出口处放置一个最小容量为1.5 ml的小瓶。若最大体积仅为1 ml则过小，因为在收集富集洗脱液和稀释缓冲液时该出口处会产生气泡。</li>
	<li>手动逆时针旋转压力调节阀至无法继续转动，确认其处于关闭位置。</li>
</ol>
4. 使用原型进行固相萃取
<ol>
	<li>按下背面的按钮以启动原型机。</li>
	<li>准备用户界面并选择程序
	<ol>
		<li>打开用户界面。从列表中选择设备所连接计算机的通信端口，然后点击“下一步”按钮。</li>
		<li>输入数值 580 用于 pset 和 30 用于 dpset泵在运行时将自动调节，以维持加压系统和储液罐的压力在580 ± 30 mbar。</li>
		<li>选择自动模式。</li>
		<li>在自动模式区域，于“配置文件路径”框中加载程序文件。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>调节压力调节器
	<ol>
		<li>启动泵。</li>
		<li>手动调节压力调节器，直至读取的数值达到所需值 妊娠 低于但接近 320 mbar。</li>
		<li>停止泵。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>开始固相萃取（SPE）程序
	<ol>
		<li>在自动模式角落点击“开始”。泵将自动启动，随后提取、洗脱和稀释步骤将依次自动进行。整个100 ml样品的处理过程耗时50分钟。</li>
		<li>验证 preg 的数值。在提取步骤中，其值必须处于 320 - 350 mbar 范围内，以确保最佳流速。</li>
		<li>盖紧小瓶，避光保存于4-5 °C，直至分析。应在接下来的30小时内完成分析，以防止待测物降解。</li>
		<li>处理后的水应妥善处置。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>清洗系统 
	注意：每次提取步骤后，需对系统进行清洗，以防止交叉污染。
	<ol>
		<li>在GL 45玻璃瓶中配制10 ml体积分数为70%的甲醇溶液。</li>
		<li>拔下固相萃取柱，并使用接头堵住管路。</li>
		<li>在自动模式下，选择“cleaning”文件，并使用相同的压力设置启动。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
5. 使用 ELISA 检测雌二醇浓度
<ol>
	<li>根据所用ELISA试剂盒提供的说明书，配制相应浓度的校准样品。准备一组与样品基质相同的校准样品，另准备一组含10% v/v甲醇的校准样品。</li>
	<li>按照试剂盒生产商的说明，将所需量的样品加入微孔板的孔中。使用未经修饰的校准样品、经过滤但未经过固相萃取（SPE）处理的加标水样，以及含10% v/v甲醇的富集样品。每个样品使用三个孔，以减少检测过程中的误差。</li>
	<li>按照试剂盒说明书中的指示，依次加入反应试剂，控制孵育时间，并进行洗涤及后续的酶促反应。</li>
	<li>使用酶标仪按照试剂盒生产商的说明读取各孔的光信号，并收集数据。</li>
	<li>利用酶标仪配套软件拟合校准曲线，测定与原始样品基质相同的样品以及含10% v/v甲醇的富集样品中E2的浓度。</li>
</ol>

<ol><li>Chang, H. S., Choo, K. H., Choi, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+methods+of+identification%2C+analysis+and+removal+of+endocrine+disrupting+compounds+%28EDCs%29+in+water%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Hazard.+Matter%22%5BJournal%5D)">The methods of identification, analysis and removal of endocrine disrupting compounds (EDCs) in water.</a> J. Hazard. Matter. 172, 1-12 (2009).</li>
<li>Azzouz, A., Souhail, B., Ballesteros, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continuous+solid-phase+extraction+and+gas+chromatography-mass+spectrometry+determination+of+pharmaceuticals+and+hormones+in+water+samples%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chromatogr.+A%22%5BJournal%5D)">Continuous solid-phase extraction and gas chromatography-mass spectrometry determination of pharmaceuticals and hormones in water samples.</a> J. Chromatogr. A. 1217, 2956-2963 (2010).</li>
<li>Tomsikova, H., Aufartova, J., Solich, P., Novakova, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+sensitivity+analysis+of+female-steroid+hormones+in+environ-mental+samples%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">High sensitivity analysis of female-steroid hormones in environ-mental samples.</a> Trends Anal. Chem. 34, 35-58 (2012).</li>
<li>Ciofi, L., Fibbi, D., Chiuminatto, U., Coppini, E., Checchini, L., Del Bubba, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fully+automated+on-line+solid+phase+extraction+coupled+to+high-performance+liquid+chromatography-tandem+mass+spectrometric+analysis+at+sub-ng%2FL+levels+of+selected+estrogens+in+surface+water+and+wastewater%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chromatogr.+A%22%5BJournal%5D)">Fully automated on-line solid phase extraction coupled to high-performance liquid chromatography-tandem mass spectrometric analysis at sub-ng/L levels of selected estrogens in surface water and wastewater.</a> J. Chromatogr. A. 1283, 53-61 (2013).</li>
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<li>Huang, C. H., Sedlak, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+estrogenic+hormones+in+municipal+waste+water+effluent+and+surface+water+using+enzyme-linked+immunosorbent+assay+and+gas+chromatography%2Ftandem+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Toxicol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Analysis of estrogenic hormones in municipal waste water effluent and surface water using enzyme-linked immunosorbent assay and gas chromatography/tandem mass spectrometry.</a> Environ. Toxicol. Chem. 20, 133-139 (2001).</li>
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<li>Pu, C., Wu, Y. F., Yang, H., Deng, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trace+analysis+of+contraceptive+drug+levonorgestrel+in+waste+water+samples+by+a+newly+developed+indirect+competitive+enzyme-linked+immunosorbent+assay+%28ELISA%29+coupled+with+solid+phase+extraction%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chim.+Acta%22%5BJournal%5D)">Trace analysis of contraceptive drug levonorgestrel in waste water samples by a newly developed indirect competitive enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) coupled with solid phase extraction.</a> Anal. Chim. Acta. 628, 73-79 (2008).</li>
<li>Van Emon, J. M., Gerlach, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+status+report+on+field-portable+immunoassay%5BTitle%5D)+AND+%22Environ.+Sci.+Technol%22%5BJournal%5D)">A status report on field-portable immunoassay.</a> Environ. Sci. Technol. 29 (7), 312A-317A (1995).</li>
<li>Farré, M., Brix, R., Barcelò, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Screening+water+for+pollutants+using+biological+techniques+under+European+Union+funding+during+the+last+10+years%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Screening water for pollutants using biological techniques under European Union funding during the last 10 years.</a> Trends Anal. Chem. 24 (6), 532-545 (2005).</li>
<li>Schneider, C., Schöler, H. F., Schneider, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+enzyme-linked+immunosorbent+assay+for+ethinylestradiol+using+a+long-chain+biotinylated+EE2+derivative%5BTitle%5D)+AND+%22Steroids%22%5BJournal%5D)">A novel enzyme-linked immunosorbent assay for ethinylestradiol using a long-chain biotinylated EE2 derivative.</a> Steroids. 69, 245-253 (2004).</li>
<li>Heub, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+and+portable+solid+phase+extraction+platform+for+immuno-detection+of+17%CE%B2-estradiol+in+water%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chrom.+A%22%5BJournal%5D)">Automated and portable solid phase extraction platform for immuno-detection of 17β-estradiol in water.</a> J. Chrom. A. 1381, 22-28 (2015).</li>
<li>Petrovic, M., Eljarrat, E., Lopez de Alda, M. J., Barcelo, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endocrine+disrupting+compounds+and+other+merging+contaminants+in+the+environment%3A+a+new+survey+on+new+monitoring+strategies+and+occurrence+data%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Bioanal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Endocrine disrupting compounds and other merging contaminants in the environment: a new survey on new monitoring strategies and occurrence data.</a> Anal. Bioanal. Chem. 378, 549-562 (2004).</li>
<li>Richardson, S. D., Ternes, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Water+analysis%3A+Emerging+contaminants+and+current+issues%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Water analysis: Emerging contaminants and current issues.</a> Anal. Chem. 86, 2813-2848 (2014).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

提出了一种用于水样制备并结合免疫分析的新方法。该仪器能够以自动化且用户友好的方式完成固相萃取。
在将水样注入系统之前进行过滤至关重要。溶液中若残留任何颗粒物，均可能导致流体网络堵塞并阻碍固相萃取（SPE）柱的正常运行。另一个关键步骤是SPE柱的制备。柱内填料颗粒的数量对于实现最佳性能至关重要。在配制吸附剂颗粒悬浮液时需格外小心，以避免颗粒发生团聚。为此，应先将溶剂部分加入干燥的吸附剂中，然后再加入去离子水部分。随后，在装柱过程中，使用移液器吸取100 µl悬浮液时，必须充分混匀悬浮液。SPE步骤结束后，对系统进行彻底清洗十分关键：一方面可防止处理不同样品时发生交叉污染，另一方面可在仪器闲置时避免生物污染的风险。
如引言中所述，免疫检测方法在环境中小分子污染物分析中的应用正在不断扩展。这些方法的检测限可达低 ng/L 水平7, 11，且具有高度特异性的优势。此类方法通常与化学分析方法联用，主要是质谱相关技术14, 15。后者对有机溶剂的使用限制较少，并可借助自动固相萃取（SPE）系统实...

样品制备是任何分析过程中的关键步骤。特别是为了获得精确的结果并达到较低的检测限，消除基质效应、减少干扰以及富集待测物是必要的。内分泌干扰物（EDCs）尤其值得关注，因为即使在环境中浓度极低，它们也会对生物体产生作用。天然激素17β-雌二醇已被列入欧盟水污染监测清单，并可能被加入《欧洲水框架指令》所规定的优先控制物质清单中。固相萃取（SPE）常用于水中微量污染物的分析，可结合化学1-5（色谱、质谱）和免疫学6-9检测方法使用。近年来，免疫学方法在环境监测领域受到关注，因为免疫分析具有多种检测形式，对目标待测物具有高度特异性，并且能够达到较低的检测限6, 7, 10, 11。目前市面上已有多种酶联免疫吸附测定（ELISA）试剂盒，可在多孔板上同时分析多个样品。该方法包括一系列连续的反应步骤，整个过程可能耗时数小时。最终反应产物可通过光学手段检测，依据标准曲线确定目标分子的浓度。
传统的固相萃取（SPE）步骤包括吸附剂预处理、样品提取、洗涤、洗脱以及通过蒸发洗脱液进行浓缩。用于稀释该提取物的溶剂需根据检测方法进行选择。对于免疫学方法，有机溶剂的含量会显著影响方法的灵敏度。12
除了回收率和富集性能外，该方法还需具备操作简便和成本低廉的特点。自动化操作有助于减少人为误差。在我们之前的研究13中，我们介绍了用于自动固相萃取（SPE）的原型装置，并将该方法应用于海水中天然激素17β-雌二醇的分析。通过本视频，我们旨在突出本方法相较于传统离线和在线SPE在技术上的优势，以及其与免疫反应检测技术特别良好的兼容性。我们详细描述了用于水中17β-雌二醇检测的实验方案。固相萃取采用十八烷基键合硅胶（C18）作为吸附剂，洗脱则使用稀释的甲醇进行。

<table><tbody><tr><td>孔径 0.2 &amp;mu;m 的滤膜</td><td>Merck Millipore</td><td>GNWP04700</td><td>用于样品过滤</td></tr><tr><td>孔径 11 &amp;mu;m 的尼龙膜</td><td>Merck Millipore</td><td>NY1104700</td><td>用于固相萃取柱</td></tr><tr><td>一次性活检打孔器 5 mm</td><td>Medical Budget</td><td>39302439</td><td></td></tr><tr><td>Nucleodur C18 ec&amp;nbsp;</td><td>Macherey Nagel</td><td>713550.01</td><td>颗粒直径 50 &amp;mu;m</td></tr><tr><td>合成海水</td><td>Sigma Aldrich</td><td>SSWS500-500ML</td><td></td></tr><tr><td>甲醇</td><td>VWR</td><td></td><td></td></tr><tr><td>17β-雌二醇标准品</td><td>Enzo Life Science</td><td></td><td>300 ng/ml</td></tr><tr><td>17β-雌二醇 ELISA 试剂盒</td><td>Enzo Life Science</td><td>ADI-900-008</td><td>96 孔，检测范围 30 - 3,000 ng/L</td></tr></tbody></table>

一种用于水样中小分子污染物免疫学分析的自动化固相萃取简易方法

A Simple Method for Automated Solid Phase Extraction of Water Samples for Immunological Analysis of Small Pollutants

提出了一种用于环境水样固相萃取（SPE）的新方法。所开发的原型装置成本低、操作简便，能够实现快速、自动化且简单的固相萃取。富集后的溶液有机溶剂含量低，适用于免疫分析。文中描述了从100 ml水样中萃取和富集天然激素17β-雌二醇的方法。采用十八烷基键合硅胶吸附剂进行反相固相萃取，以200 µl体积分数为50%的甲醇进行洗脱。通过加入去离子水稀释洗脱液，以降低甲醇含量。固相萃取柱经手动制备后，整个流程可在1小时内自动完成。实验结束后，采用商用酶联免疫吸附测定法（ELISA）测定雌二醇浓度。该方法实现了100倍的富集倍数，洗脱液中甲醇体积分数仅为10%。在添加浓度为1 ng/L的去离子水和合成海水样品中，目标分子的回收率均达到完全。

通过将移液的吸附剂转移至玻璃小瓶中干燥并称重，评估吸附剂填充的重复性，结果如图1所示。对100 ml样品进行了进样时间重复性的测试，如图2所示。初始样品及加标预浓缩样品中的浓度采用商用17β-雌二醇ELISA试剂盒测定，结果如图3所示。
本方案需要用户参与制备吸附剂相（图1）。吸附剂颗粒被夹在两层膜之间以提供机械稳定性，并在将悬浮液移液至色谱柱时通过注射器施加压力使其紧密填充。所得色谱柱中含有优化量的6 mg选定吸附剂，误差仅为6%。此步骤同时也起到吸附剂活化的作用，因为悬浮液是在适当的溶剂条件下制备的。
在完成固相萃取柱的制备并将其安装到系统上，以及将溶液加载至相应的储液槽后，富集前处理过程完全自...

介绍了一种利用自动化微型系统从水样中提取和预浓缩雌二醇的方案。

提出了一种用于环境水样固相萃取（SPE）的新方法。所开发的原型装置成本低廉、操作简便，且……

本样品制备方法的总体目标是以用户友好、成本低廉且自动化的方式，对水样中的小分子有机污染物进行预浓缩。在采用免疫检测方法（如微孔板免疫分析或生物传感器）研究水样污染时，该方法可替代标准固相萃取（SPE）流程。该技术的主要优势在于固相萃取过程实现了自动化，且与传统方法相比，仪器的体积更小、成本更低。此外，富集过程的性能在溶剂含量低和预浓缩效率方面均满足免疫分析的要求。首先，使用孔径为0.2微米的滤器过滤100毫米水样。将过滤后的样品置于带有GL 45螺纹的玻璃瓶中。在离心管中，将甲醇用去离子水稀释至总体积的50%，配制300微升洗脱液。接着，在玻璃小瓶中加入40毫克反相固相萃取吸附剂，再加入1,600微升甲醇和400微升去离子水，配制成20毫克/毫升的十八烷基硅胶吸附剂悬浮液。盖紧瓶盖后，用涡旋混合器振荡混匀。将孔径为11微米的尼龙膜置于双层防尘纸巾上。用直径3毫米的打孔器在膜上切下两个小圆片。然后用平头滤膜镊子夹取其中一个小圆膜，并将其放置于柱子的一侧。随后，将平底接头与管子拧紧并固定。然后，在层析柱柱体上画一个箭头，指向放置膜的一端。此时，将层析柱固定在支架上，使箭头朝向下方。使用下端锁扣接头将一个空的10毫升一次性注射器连接到柱管末端。用涡旋混合器震荡悬浮的吸附剂，并迅速吸取100微升至柱子的中心位置。在注入时，用另一只手轻轻使用注射器通过膜吸取已移液的溶液。SPE 柱的制备非常重要。在将颗粒悬浮液注入柱中时，必须确保使用注射器通过膜充分抽吸溶液。否则，颗粒将无法紧密填充。在所有移液步骤之间，通过振荡原液悬浮液，重复上述过程两次，以确保颗粒在溶液中均匀悬浮。当整个悬浮液通过注射器抽吸完成上样并干燥后，保持注射器位置不变，用另一只手使用镊子将第二张尼龙膜放置在上方。然后，拧紧带有管路的第二个连接头，并弃去注射器。此时，使用固相萃取装置下方的锁紧接头将柱子拧紧。将装有样品的瓶子通过拧上提供的 GL 45 安全盖与装置连接。在洗脱液储液槽中加入 200 微升洗脱液。然后，在稀释储液罐中加入 800 微升去离子水。通过逆时针旋转压力调节器直至无法继续转动，确认其处于关闭位置。启动原型机后，输入 pset 值为 580，delta pset 值为 30。调节压力调节器时，先启动泵。然后手动旋转压力调节器，直至压力读数 preg 低于但接近 320 毫巴。停止泵后，在自动模式角落按下“开始”以启动固相萃取（SPE）程序。SPE 步骤完成后，盖紧样品小瓶，避光保存于 4 至 5 摄氏度，直至进行 ELISA 分析。为清洗系统，取一个带有 GL 45 螺口的玻璃瓶，配制 10 毫升体积分数为 70% 的甲醇溶液。拔下 SPE 柱，用接头堵住管路。在自动模式下，选择清洗文件，并使用先前设定的 pset、delta pset 和 preg 压力参数启动运行。通过将移液的吸附剂转移至玻璃小瓶中干燥并称重，评估吸附剂填充的重复性。对 100 毫升样品进行了进样时间重复性的测试。使用商品化的17β-雌二醇ELISA试剂盒测定初始样品和预浓缩加标样品的浓度。从标准曲线可以明显看出，富集样品中的甲醇比例对免疫测定的灵敏度无影响。去离子水和人工海水中的回收率分别为128±22%和107±6%。一旦掌握，若操作得当，固相萃取柱的制备可在五分钟内完成。整个固相萃取过程可在一小时之内完成。该技术建立后，为环境科学领域的研究人员探索用于监测小分子有机污染物的免疫检测方法奠定了基础。观看本视频后，您应充分了解如何使用我们这款经济高效的自动化仪器，通过免疫分析法对污染物进行水样前处理。请务必注意，操作有机污染物和溶剂时可能存在危险，因此在执行该流程时，应始终采取适当防护措施，例如佩戴合适的手套和护目镜。

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对水样的自动固相萃取小污染物的免疫学分析的简单方法

本方案描述了使用切向流中空纤维超滤样品浓缩系统和热解离步骤，作为采用美国环保署方法1623检测水中隐孢子虫（Cryptosporidium）和贾第虫（Giardia）物种的替代方法。...

一种改良的美国环保署方法1623，采用切向流中空纤维超滤与热解离步骤检测水源性Cryptosporidium和Giardia spp.

在本视频中，我们演示了使用固相微萃取探针从已获取的供体肾脏中提取代谢物的方法。所提取的代谢物可用于进行代谢组学和脂质组学分析，以评估器官移植的质量。...

固相微萃取采样：一种用于移植物组织样本提取的探针式技术

本文描述了一种用于纯化下一代测序DNA片段的自动化凝胶大小选择方法。Ranger技术可完全自动化整个琼脂糖凝胶上样、电泳分析及目标DNA片段回收过程，从而实现高通量、高质量的下一代测序文库制备。...

利用自动化凝胶片段筛选提高环境水样制备的下一代测序文库质量

本文介绍了用于痕量金属分析的偶极辅助固相萃取微芯片的制备方案。...

用于水样中痕量金属分析的偶极辅助固相萃取微芯片的制备

本文介绍了一种针对五种不同被动采样装置的表征与应用的实验方案。...

用于水中农药监测的被动采样器的表征与应用

在水生环境中进行痕量金属研究时，正确采集和处理水样需要特别注意使用“洁净技术”。本文介绍了一种采样、样品处理及分析的实验方案，旨在获得可靠的环境监测数据和高灵敏度的分析结果，以支持详细的痕量金属研究。...

河流与河口水体中痕量金属研究的洁净采样与分析

我们介绍一种名为VacuSIP的简单、非侵入性且可靠的水体定点取样方法，可实现洁净而精确的水样采集。该系统已开发并用于同步采集底栖悬浮物滤食生物吸入和呼出的水样 原位，...

VacuSIP：一种改进的InEx方法 原位 活性悬浮物滤食者处理的颗粒态与溶解态化合物的测定

介绍了一种利用单个样品对生物组织中的脂质、代谢物和蛋白质进行综合提取的实验方案。...

一种用于从单个样品中全面分析代谢物、脂质和蛋白质的简单分级提取方法

本文介绍了一种通过质谱法对水中氟化物进行顺序靶向定量和非靶向分析的实验方案。该方法可提供已知氟代化学物质的定量水平，并对相关样品中的未知化学物质进行鉴定，同时对其丰度进行半定量估算。...

采用靶向与非靶向筛查相结合的高分辨质谱工作流程鉴定全氟和多氟化合物

本方案介绍了一种完全自动化的流程，用于从水体和富含脂质的鱼类组织中提取土臭素和2-甲基异茨醇。该方法可在这些化合物达到气味阈值之前实现早期检测。文中提供了来自水产养殖环境的代表性数据。...

利用高容量吸附萃取探针和气相色谱-质谱法对水和鱼类中的土臭素与2-甲基异茨醇进行提取与检测

学习使用自动化固相萃取技术从水样中预浓缩有机污染物的方法。该技术成本低、操作简便，可提高免疫检测效率，适用于环境水质监测研究。

一种用于水样中小分子污染物免疫学分析的自动化固相萃取简易方法

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