Name: 巨囊泡封装微球通过一个水包油乳液的离心制备 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-24T15:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 43 s
Description: 学习利用水包油乳液离心法制备封装微球的DOPC巨囊泡，用于合成生物学中人工细胞模型的构建。该方法可实现34%的封装率，为合成生物学研究提供有效工具。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

我们感谢山口智子绘制了图1中的示意图。本研究得到了日本自然科学研究机构（NINS）冈崎统合生物科学研究所冈崎ORION项目的支持；得到了NINS天体生物学中心项目（编号AB281010）的支持；得到了日本学术振兴会（JSPS）创新领域科学研究中心研究费补助金（“为实现综合功能的生物分子系统的动态有序化”，编号25102008）的支持；得到了JSPS青年科学家研究费补助金（B类）（KK，编号15K17850）的支持；以及得到了JSPS研究活动启动补助金（YN，编号15H06653）的支持。此外，本研究还获得了野口研究所资助项目、花王艺术与科学基金会资助项目以及久保田水与环境基金会资助项目的支持。

1. 通过水/油法准备GVs&#160;乳液离心法
<ol>
	<li>在氯仿中配制1,2-二油酰基-sn-甘油-3-磷酰胆碱（DOPC，25 mM）的储备液和德克萨斯红1,2-二十六酰基-sn-甘油-3-磷酰乙醇胺三乙基铵盐（Texas Red DHPE，0.20 mM）的储备液，并将储备液于-20 °C保存。</li>
	<li>配制油相溶液。
	<ol>
		<li>将DOPC储备液（51.0 µl）与Texas Red DHPE储备液（19.2 µl）混合，置于5&#160;ml玻璃小瓶内壁，在流动氮气下蒸发，形成脂质膜。</li>
		<li>将脂质膜在减压条件下孵育过夜，然后向小瓶中加入1.0 ml液体石蜡（0.86–0.89 g/cm3）。用铝箔包裹小瓶，在80 °C静置孵育过夜。DOPC和Texas Red DHPE的最终浓度分别为1.3 mM和3.8 × 10−3 mM，DOPC与Texas Red DHPE的摩尔比为100:0.3。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>配制内水相分散液。
	<ol>
		<li>在1.5&#160;ml带盖微量离心管中，混合237.5 µl的1.0 µm非荧光微球分散液（2.5 vol%）与12.5 µl的1.0 µm荧光微球分散液（2.5 vol%）；该比例对应非荧光微球与荧光微球的体积比为95:5。</li>
		<li>加入64 mg蔗糖，随后加入125 µl Tris缓冲液（TBS，1 M）和875 µl去离子水。微球的最终体积分数为0.5 vol%，Tris-HCl（pH 7.5）和蔗糖的最终浓度分别为0.1 M和0.15 M。</li>
		<li>将微量离心管涡旋振荡30秒，随后超声处理10分钟。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>配制外水相溶液。
	<ol>
		<li>按照与内水相相同的步骤配制10 ml Tris缓冲液（0.1 M Tris-HCl [pH 7.5]，0.15 M葡萄糖），取1 ml该溶液置于1.5&#160;ml带盖微量离心管中。涡旋振荡30秒，随后超声处理10分钟。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>配制含微球的水/油乳液。
	<ol>
		<li>在1.5&#160;ml微量离心管中，将1 ml油相溶液（含DOPC和Texas Red DHPE的液体石蜡）与300 µl内水相溶液混合。</li>
		<li>使用机械匀浆器（带有高速旋转刀片的搅拌器）在室温下以10,000 rpm处理2分钟，使两相在微量离心管中乳化。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>沉淀GVs。
	<ol>
		<li>在1.5&#160;ml带盖微量离心管中，将300 µl水/油乳液轻轻铺加在4 °C的1 ml外水相溶液上层。将微量离心管在4 °C冷却10分钟。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>收集GVs。
	<ol>
		<li>冷却后立即以18,000 × g离心30分钟。用图钉刺穿微量离心管底部，收集一滴沉淀的GVs至无菌的1.5 ml微量离心管中。</li>
		<li>若获得的GVs量过多导致观察困难，可用外水相溶液将沉淀的GV液滴稀释10–100倍（体积比）。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
2. GVs 的显微镜观察
<ol>
	<li>制备显微镜样本。
	<ol>
		<li>放置一个粘附式孵育室 原位 聚合酶链式反应和杂交（反应室尺寸为9 mm × 9 mm × 0.3 mm厚）在显微镜盖玻片上进行。</li>
		<li>使用微量移液器，将25 µl稀释后的沉淀GVs滴加到样品区域，立即在孵育腔室上方放置另一块盖玻片（厚度约为0.15 mm）。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>记录GVs的微分干涉相差显微镜图像。
	<ol>
		<li>使用显微镜（10X、20X 和 40X）记录囊泡的显微图像&#160;配备12V100WHAL-L卤素灯的物镜）</li>
	</ol>
	</li>
	<li>进行荧光显微镜观察。
	<ol>
		<li>将 U-FBNA 和 U-FMCHE 荧光镜组单元插入显微镜中。为这些单元安装 470–495&#160;纳米和565-585&#160;nm 激发滤光片，以及透射 510-550 的发射滤光片&#160;纳米米和600-690&#160;nm 光，分别。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

<ol><li>Luisi, P. L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLuisi%2C+PL+%22The+emergence+of+life%3A+from+chemical+origins+to+synthetic+biology%22">The emergence of life: from chemical origins to synthetic biology</a>. , Cambridge University Press. (2006).</li>
<li>Luisi, P. L., Stano, P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLuisi%2C+PL+%22The+minimal+cell%3A+the+biophysics+of+cell+compartment+and+the+origin+of+cell%22">The minimal cell: the biophysics of cell compartment and the origin of cell</a>. , Springer. (2011).</li>
<li>Rasmussen, S., et al. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aRasmussen%2C+S+%22Protocells%3A+Bridging+nonliving+and+living+matter%22">Protocells: Bridging nonliving and living matter</a>. , The MIT Press. (2008).</li>
<li>Luisi, P. L., Walde, P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLuisi%2C+PL+%22Giant+vesicles%3A+perspectives+in+supramolecular+chemistry%22">Giant vesicles: perspectives in supramolecular chemistry</a>. , Wiley-Interscience. (2000).</li>
<li>Kita, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Replication+of+genetic+information+with+self-encoded+replicase+in+liposomes%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Bio+Chem%22%5BJournal%5D)">Replication of genetic information with self-encoded replicase in liposomes.</a> Chem Bio Chem. 9 (15), 2403-2410 (2008).</li>
<li>Nomura, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+expression+within+cell-sized+lipid+vesicles%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Bio+Chem%22%5BJournal%5D)">Gene expression within cell-sized lipid vesicles.</a> Chem Bio Chem. 4 (11), 1172-1175 (2003).</li>
<li>Oberholzer, T., Albrizio, M., Luisi, P. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polymerase+chain+reaction+in+liposome%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">Polymerase chain reaction in liposome.</a> Chem Biol. 2 (10), 677-682 (1995).</li>
<li>Shohda, K., et al. <a target="_blank" href="http://pubs.rsc.org/en/content/articlelanding/2011/sm/c0sm01463j#!divAbstract">Compartment size dependence of performance of polymerase chain reaction inside giant vesicle.</a> Soft Matter. 7 (8), 3750-3753 (2011).</li>
<li>Kurihara, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-reproduction+of+supramolecular+giant+vesicles+combined+with+the+amplification+of+encapsulated+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Chem%22%5BJournal%5D)">Self-reproduction of supramolecular giant vesicles combined with the amplification of encapsulated DNA.</a> Nat Chem. 3 (10), 775-781 (2011).</li>
<li>Kurihara, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+recursive+vesicle-based+model+protocell+with+a+primitive+model+cell+cycle%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Comm%22%5BJournal%5D)">A recursive vesicle-based model protocell with a primitive model cell cycle.</a> Nat Comm. 6, 8352(2015).</li>
<li>Walde, P., Cosentino, K., Engel, H., Stano, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Giant+vesicles%3A+preparations+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Bio+Chem%22%5BJournal%5D)">Giant vesicles: preparations and applications.</a> Chem Bio Chem. 11 (7), 848-865 (2010).</li>
<li>Reeves, J. P., Dowben, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+and+properties+of+thin-walled+phospholipid+Vesicles%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Formation and properties of thin-walled phospholipid Vesicles.</a> J Cell Physiol. 73 (1), 49-60 (1969).</li>
<li>Needham, D., Evans, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+and+mechanical+properties+of+giant+lipid+%28DMPC%29+vesicle+bilayers+from+20+%C2%B0C+below+to+10+%C2%B0C+above+the+liquid+crystal-crystalline+phase+transition+at+24+%C2%B0C%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Structure and mechanical properties of giant lipid (DMPC) vesicle bilayers from 20 °C below to 10 °C above the liquid crystal-crystalline phase transition at 24 °C.</a> Biochemistry. 27 (21), 8261-8269 (1988).</li>
<li>Oku, N., MacDonald, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+effects+of+alkali+metal+chlorides+on+formation+of+giant+liposomes+by+freezing+and+thawing+and+by+dialysis%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Differential effects of alkali metal chlorides on formation of giant liposomes by freezing and thawing and by dialysis.</a> Biochemistry. 22 (4), 855-863 (1983).</li>
<li>Angelova, M. I., Dimitrov, D. S. <a target="_blank" href="http://pubs.rsc.org/en/Content/ArticleLanding/1986/DC/dc9868100303#!divAbstract">Liposome electroformation.</a> Far Disc Chem Soc. 81, 303-311 (1986).</li>
<li>Dimitrov, D. S., Angelova, M. I. <a target="_blank" href="http://link.springer.com/chapter/10.1007%2F3-798-50724-4_62">Lipid swelling and liposome formation on solid surfaces in external electric fields.</a> New Trends Coll Sci. 73, 48-56 (1987).</li>
<li>Funakoshi, K., Suzuki, H., Takeuchi, S. <a target="_blank" href="http://pubs.acs.org/doi/abs/10.1021/ja074029f">Formation of giant lipid vesicle like compartments from a planar lipid membrane by a pulsed jet flow.</a> J Am Chem Soc. 129 (42), 12608-12609 (2007).</li>
<li>Stachowiak, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unilamellar+vesicle+formation+and+encapsulation+by+microfluidic+jetting%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Unilamellar vesicle formation and encapsulation by microfluidic jetting.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 105 (12), 4697-4702 (2008).</li>
<li>Ellis, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macromolecular+crowding%3A+obvious+but+underappreciated%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Biochem+Sci%22%5BJournal%5D)">Macromolecular crowding: obvious but underappreciated.</a> Trends Biochem Sci. 26 (10), 597-604 (2001).</li>
<li>Ellis, R. J., Minton, A. P. <a target="_blank" href="http://www.nature.com/nature/journal/v425/n6953/full/425027a.html">Cell biology: join the crowd.</a> Nature. 425 (6953), 27-28 (2003).</li>
<li>Pautot, S., Frisken, B. J., Weitz, D. A. <a target="_blank" href="http://pubs.acs.org/doi/abs/10.1021/la026100v">Production of unilamellar vesicles using an inverted emulsion.</a> Langmuir. 19 (7), 2870-2879 (2003).</li>
<li>Pautot, S., Frisken, B. J., Weitz, D. A. <a target="_blank" href="http://www.pnas.org/content/100/19/10718.abstract">Engineering asymmetric vesicles.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 100 (19), 10718-10721 (2003).</li>
<li>Nishimura, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Population+analysis+of+structural+properties+of+giant+liposomes+by+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Population analysis of structural properties of giant liposomes by flow cytometry.</a> Langmuir. 25 (18), 10439-10443 (2009).</li>
<li>Chiba, M., Miyazaki, M., Ishiwata, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+analysis+of+the+lamellarity+of+giant+liposomes+prepared+by+the+inverted+emulsion+method%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Quantitative analysis of the lamellarity of giant liposomes prepared by the inverted emulsion method.</a> Biophys J. 107 (2), 346-354 (2014).</li>
<li>Cabré, E. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacterial+division+proteins+FtsZ+and+ZipA+induce+vesicle+shrinkage+and+cell+membrane+invagination%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Bacterial division proteins FtsZ and ZipA induce vesicle shrinkage and cell membrane invagination.</a> J Biol Chem. 288, 26625-26634 (2013).</li>
<li>Osawa, M., Erickson, H. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liposome+division+by+a+simple+bacterial+division+machinery%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Liposome division by a simple bacterial division machinery.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 110 (27), 11000-11004 (2013).</li>
<li>Hayashi, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reversible+morphological+control+of+tubulin-encapsulating+giant+liposomes+by+hydrostatic+pressure%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Reversible morphological control of tubulin-encapsulating giant liposomes by hydrostatic pressure.</a> Langmuir. 32 (15), 3794-3802 (2016).</li>
<li>Terasawa, H., Nishimura, K., Suzuki, H., Matsuura, T., Yomo, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coupling+of+the+fusion+and+budding+of+giant+phospholipid+vesicles+containing+macromolecules%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Coupling of the fusion and budding of giant phospholipid vesicles containing macromolecules.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 109 (16), 5942-5947 (2012).</li>
<li>Natsume, Y., Toyota, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Asymmetrical+polyhedral+configuration+of+giant+vesicles+induced+by+orderly+array+of+encapsulated+colloidal+particles%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+ONE%22%5BJournal%5D)">Asymmetrical polyhedral configuration of giant vesicles induced by orderly array of encapsulated colloidal particles.</a> PLOS ONE. 11 (1), e0146683(2016).</li>
<li>Natsume, Y., Toyota, T. <a target="_blank" href="https://www.researchgate.net/publication/303780392_Appearance_of_Crystalline_Pattern_for_Colloidal_Particles_Encapsulated_in_Giant_Vesicles_-Direct_Cross-sectional_Observation_of_Ordered_and_Disordered_Phases-">Appearance of crystalline pattern for colloidal particles encapsulated in giant vesicles: direct cross-sectional observation of ordered and disordered phases.</a> Trans Mater Res Soc Jpn. 41 (2), 147-149 (2016).</li>
<li>Noireaux, V., Libchaber, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+vesicle+bioreactor+as+a+step+toward+an+artificial+cell+assembly%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">A vesicle bioreactor as a step toward an artificial cell assembly.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 101 (51), 17669-17674 (2004).</li>
<li>Fujii, S., Matsuura, T., Sunami, T., Kazuta, Y., Yomo, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+evolution+of+%CE%B1-hemolysin+using+a+liposome+display%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">In vitro evolution of α-hemolysin using a liposome display.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 110 (42), 16796-16801 (2013).</li>
<li>Whittenton, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+asymmetric+liposomal+nanoparticles+for+encapsulation+of+polynucleotides%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Evaluation of asymmetric liposomal nanoparticles for encapsulation of polynucleotides.</a> Langmuir. 24 (16), 8533-8540 (2008).</li>
<li>Natsume, Y., Toyota, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Giant+vesicles+containing+microspheres+with+high+volume+fraction+prepared+by+water-in-oil+emulsion+centrifugation%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Lett%22%5BJournal%5D)">Giant vesicles containing microspheres with high volume fraction prepared by water-in-oil emulsion centrifugation.</a> Chem Lett. 42 (3), 295-297 (2013).</li>
<li>Pontani, L. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reconstitution+of+an+actin+cortex+inside+a+liposome%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys+J%22%5BJournal%5D)">Reconstitution of an actin cortex inside a liposome.</a> Biophys J. 96 (1), 192-198 (2009).</li>
<li>Nishimura, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-free+protein+synthesis+inside+giant+unilamellar+vesicles+analyzed+by+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Cell-free protein synthesis inside giant unilamellar vesicles analyzed by flow cytometry.</a> Langmuir. 28 (22), 8426-8432 (2012).</li>
<li>Fujii, S., Matsuura, T., Sunami, T., Nishikawa, T., Kazuta, Y., Yomo, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Liposome+display+for+in+vitro+selection+and+evolution+of+membrane+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoco%22%5BJournal%5D)">Liposome display for in vitro selection and evolution of membrane proteins.</a> Nat Protoco. 9 (7), 1578-1591 (2014).</li>
<li>Hamada, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Construction+of+asymmetric+cell-sized+lipid+vesicles+from+lipid-coated+water-in-oil+microdroplets%5BTitle%5D)+AND+%22J+Phys+Chem+B%22%5BJournal%5D)">Construction of asymmetric cell-sized lipid vesicles from lipid-coated water-in-oil microdroplets.</a> J Phys Chem B. 112 (47), 14678-14681 (2008).</li>
<li>Levine, R. M., Pearce, T. R., Adil, M., Kokkoli, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+and+characterization+of+liposome-encapsulated+plasmid+DNA+for+gene+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Preparation and characterization of liposome-encapsulated plasmid DNA for gene delivery.</a> Langmuir. 29 (29), 9208-9215 (2013).</li>
<li>Saito, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Time-resolved+tracking+of+a+minimum+gene+expression+system+reconstituted+in+giant+liposomes%5BTitle%5D)+AND+%22ChemBioChem%22%5BJournal%5D)">Time-resolved tracking of a minimum gene expression system reconstituted in giant liposomes.</a> ChemBioChem. 10 (10), 1640-1643 (2009).</li>
<li>Yanagisawa, M., Iwamoto, M., Kato, A., Yoshikawa, K., Oiki, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oriented+reconstitution+of+a+membrane+protein+in+a+giant+unilamellar+vesicle%3A+experimental+verification+with+the+potassium+channel+KcsA%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Chem+Soc%22%5BJournal%5D)">Oriented reconstitution of a membrane protein in a giant unilamellar vesicle: experimental verification with the potassium channel KcsA.</a> J Am Chem Soc. 133 (30), 11774-11779 (2011).</li>
<li>Saito, A. C., Ogura, T., Fujiwara, K., Murata, S., Nomura, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Introducing+micrometer-sized+artificial+objects+into+live+cells%3A+a+method+for+cell-giant+unilamellar+vesicle+electrofusion%5BTitle%5D)+AND+%22PLOS+ONE%22%5BJournal%5D)">Introducing micrometer-sized artificial objects into live cells: a method for cell-giant unilamellar vesicle electrofusion.</a> PLOS ONE. 9 (9), e106853(2014).</li>
<li>Murata, S., Konagaya, A., Kobayashi, S., Saito, H., Hagiya, M. <a target="_blank" href="http://link.springer.com/article/10.1007/s00354-012-0121-z">Molecular robotics: a new paradigm for artifacts.</a> New Gener Comput. 31 (1), 27-45 (2013).</li>
<li>Hagiya, M., Konagaya, A., Kobayashi, S., Saito, H., Murata, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+robots+with+sensors+and+intelligence%5BTitle%5D)+AND+%22Acc+Chem+Res%22%5BJournal%5D)">Molecular robots with sensors and intelligence.</a> Acc Chem Res. 47 (6), 1681-1690 (2014).</li>
</ol>

作者声明不存在任何竞争性经济利益。

内层水相分散介质与外层水相溶液的比重必须仔细选择。为了使水包油（w/o）乳液在离心过程中沉淀进入外层水相溶液，内层水相分散介质的比重必须大于外层水相溶液的比重。我们曾尝试使用不含糖类的内层和外层溶液来制备巨型囊泡（GVs），但在这些条件下未能获得GVs，因为内层水相溶液的质量不足以克服两相之间的界面阻力。如果两种溶液之间存在较大的渗透压差，沉淀进入外层水相溶液的GVs可能会发生收缩或破裂。因此，GVs内部与外部的渗透压必须相等。为实现这一点，我们在内层水相分散体系中使用蔗糖作为溶质，在外层水相溶液中使用葡萄糖作为溶质，且两种糖的浓度相同。盐22和糖23,35,38均已被用于此类目的，但通常更倾向于使用糖，因为其毒性较低且溶解度高于盐。然而，如果加入过多的糖，GVs可能接触到盖玻片底部并发生塌陷。有多种策略可避免这一问题。一种策略是减小内层与外层水相溶液之间的比重差异，使GVs在较温和的条件下沉淀；具体而言，可将沉淀后的GV分散液上清液置换为与内层水相溶液相同的溶液，以降低因浮力作用导致GV黏附于盖玻片而破裂的可能性。另一种策略是预先在两张盖玻片表面涂覆一层薄脂膜29。
正确制备和孵育乳液至关重要。我们使用液体石蜡来配制油相溶液。矿物油26,31、十二烷21,33和角鲨烷33,39也常被用作溶剂油。由于这些材料在比重、黏度和表面张力方面存在差异，即使采用相同的离心条件，形成的囊泡数量也会有所不同33。为了获得具有目标特性的囊泡，必须优化内水相和外水相溶液的比重与黏度，以及离心加速度。在配制油相时，必须在高温和干燥环境（如恒温培养箱或脱水器）中进行孵育。在本研究中，我们将液体石蜡加热至80 °C，以充分溶解脂质分子。此外，乳液应现用现配，并立即进行离心处理，因为乳液在刚制备后不稳定，水包油（w/o）液滴容易相互融合。乳液可通过超声、涡旋振荡或轻敲的方式大量制备。然而，使用均质器可快速制备大量乳液，并更易于在高黏度油中实现乳化。将乳液轻柔且迅速地铺加到外水相溶液上，随后在4 °C下冷却，这一点也十分重要。为缩短乳化与离心之间的时间间隔，可在乳液铺加前将油相-外水相系统预先冷却，之后立即对整个系统进行离心。若观察到白色浑浊出现的速度比正常情况更快或更慢，必须彻底冲洗机械均质器，以去除残留的清洁洗涤剂。此外，在乳化前，油溶液、内水相溶液和乳化剂均需恢复至室温。
适当的离心加速度也非常重要。通过在18,000 × g 条件下离心，我们能够制备出内部包封单一物质且浓度较高的GVs。当需要包封多种物质时，最好降低离心加速度。例如，一种包封了七种化合物的肌动蛋白组装系统，可在低于350 × g 的离心条件下实现35。在不宜使用离心的情况下，可通过调节糖浓度或在自身质量作用下使乳液沉淀来获得GVs38,40,41。
本文报道的方法存在两个主要局限性。其一是油分子（本实验中为石蜡）可能溶解于GV膜中，这一点已被Weitz研究组指出21。当需要将膜蛋白插入GV膜时，必须考虑共存油分子对蛋白的影响。另一个局限性是体积分数的变异。在本研究中，我们估算GV内微球的体积分数范围为4–30 vol%；该体积分数与制备GV时所用内水相溶液的体积分数并不相同。尽管我们能够以足够高、可用于显微镜观察的体积分数将微球包封于GV中，但该方法不适用于制备具有均匀体积分数分布的GV。已有文献报道，微球体积分数的分布在离心过程中会发生变化34。
水包油（w/o）乳液离心法常用于制备包封有物质的巨型囊泡（GVs）。然而，关于包封微米级材料的GVs的制备，相关报道较少34,42。最近，已有研究构建出包含包封DNA装置或分子装置的分子机器人43,44。对于此类应用，具有区室结构的GVs是首选；因此，诸如我们所介绍的这类可用于包封磁性微球以及具有不同表面功能化的微球的技术，预计将具有重要应用价值44。

建构性或合成生物学方法为探索生命与非生命物质之间的界限提供了一条引人入胜的途径。由于细胞是目前我们所理解的生命所需的最小单位，许多研究人员尝试利用简单且已被充分理解的化学物质构建人工细胞，以便研究此类人工细胞内部发生的现象，其最终目标是阐明生命的起源，并探究活细胞的基本功能1,2,3。特别是由两亲性分子构成的球形微区室——囊泡4，因其能够包封蛋白质5,6和DNA7,8,9,10等生物分子，常被用作生物膜的模型。
囊泡可根据其大小分为小型（定义为直径&#60;100 nm）、大型（直径&#60;1 µm）和巨型（直径&#62;1 µm）。巨型囊泡（GVs）因在尺寸、形态和结构上与活细胞相似而被广泛研究。由于GVs的尺寸较大，其膜的形态变化可在光学显微镜下实时直接观察。
已有多种制备GVs的方法被报道11，包括水合法12,13，冻融法14，电形成法15,16，以及微流控装置方法17,18然而，利用这些方法将蛋白质及其他大分子以高浓度包封到GVs中十分困难。特别是，要将生物材料包封至足够量（20–30 体积%）以模拟细胞内拥挤的环境，极具挑战性19,20为快速形成GVs，Weitz及其同事建立了一种水包油（w/o）乳液离心法。21,22该方法具有五个重要特征。第一，采用此方法制备的脂质体（GVs）具有较低的层状结构23,24，它们的膜非常薄，因此容易发生形变。已有研究探讨了FtsZ（一种细菌细胞分裂蛋白）、微管蛋白及其他大分子诱导的GV膜形变25,26,27,28，我们观察到微球封装诱导的GV膜出现类多面体形变29,30其次，膜蛋白可通过此方法插入囊泡膜中，尽管存在一定的难度。31例如，Yomo 研究组利用该方法研究了 体外 膜蛋白α-溶血素的合成及其成孔活性32第三，可以制备不对称的脂质体，其内层和外层脂质成分不同。22例如，Whittenton 等 在内层含有阳离子脂质以包封带负电荷的多核苷酸、在外层含有中性脂质以降低毒性和非特异性细胞摄取的不对称性GVs33第四，GVs 内部物质的浓度和体积分数可能相对较高28,34第五，可包载多种类型的材料35例如，Nishimura 等 包封的 体外 将转录-翻译系统导入GVs，并利用该系统在GVs内表达绿色荧光蛋白（GFP）36这五个特点使得无乳化离心法成为制备模拟细胞的巨型囊泡（GVs）不可或缺的方法。
在之前的研究中，通过离心生成的巨型囊泡（GV）通常使用带有长16 G不锈钢针头的注射器收集，针头内含部分终末水溶液22。对于经验不足的技术人员而言，该收集方法容易导致GV被部分油相污染。在本研究中，我们采用了由Yomo课题组开发的水包油（w/o）乳液离心法23,37，其中沉淀的GV通过离心管底部预先开设的小孔收集。我们制备了包封1.0 µm微球的GV，其尺寸与细胞内细胞器相近。使用微球可使我们通过计算其体积分数来估算其浓度。建立一种能够实现内含物高密度封装的GV制备方法，是构建人工细胞的重要步骤。为验证本方案对多种内含物的适用性，我们还证明绿色荧光蛋白（GFP）和一种小分子水溶性荧光染料（荧光素，uranine）均可被有效包封于GV中。

<table><tbody><tr><td>&lt;strong&gt;试剂：&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1,2-二油酰基-&lt;em&gt;sn&lt;/em&gt;-甘油-3-磷脂酰胆碱（DOPC）</td><td>Avanti Polar Lipids</td><td>850375C</td><td>囊泡膜分子</td></tr><tr><td>德克萨斯红 1,2-二十六酰基-&lt;em&gt;sn&lt;/em&gt;-甘油-3-磷脂酰乙醇胺，三乙基铵盐（Texas Red DHPE）</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>T1395MP</td><td></td></tr><tr><td>1 M Tris-HCl（pH 7.5）</td><td>Nippon Gene Co.</td><td>318-90225</td><td>缓冲液</td></tr><tr><td>D(+)-葡萄糖</td><td>Wako Pure Chemical Industries</td><td>049-31165</td><td>用于外部水溶液</td></tr><tr><td>蔗糖</td><td>Wako Pure Chemical Industries</td><td>196-00015</td><td>用于内部水溶液</td></tr><tr><td>Polybead 羧基微球 1.0 &amp;micro;m</td><td>Polysciences</td><td>08226-15</td><td>非荧光性，2R = 1.0 &amp;micro;m</td></tr><tr><td>Fluoresbrite YG 羧基微球 1.0 &amp;micro;m</td><td>Polysciences</td><td>15702-10</td><td>荧光性，2R = 1.0 &amp;micro;m</td></tr><tr><td>Fluoresbrite YG 羧基微球 0.10 &amp;micro;m</td><td>Polysciences</td><td>16662-10</td><td>荧光性，2R = 0.10 &amp;micro;m</td></tr><tr><td>荧光素钠盐（荧光黄）</td><td>Sigma Aldrich Japan</td><td>F6377-100G</td><td></td></tr><tr><td>GFP 标准品（重组）</td><td>Vector Laboratories</td><td>MB-0752</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;名称&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;公司&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;目录编号&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;备注&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;设备：&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Centrifuge 5427R</td><td>Eppendorf&amp;nbsp;</td><td>5409000233</td><td>离心机转子：FA-45-48-11</td></tr><tr><td>Physcotron</td><td>Microtec Co.</td><td>NS-310EIII</td><td>便携式微型匀浆器</td></tr><tr><td>发生器轴</td><td>Microtec Co.</td><td>NS-4</td><td>匀浆器附件</td></tr><tr><td>用于&lt;em&gt;原位&lt;/em&gt;PCR 和杂交的 Frame-Seal 孵育室</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>SLF0201</td><td>杂交室体积：25 &amp;micro;L&lt;br/&gt; 室尺寸：9 &amp;times; 9 &amp;times; 0.3 mm</td></tr><tr><td>用于&lt;em&gt;原位&lt;/em&gt;PCR 和杂交的 Frame-Seal 孵育室</td><td>Bio-Rad Laboratories</td><td>SLF0601</td><td>杂交室体积：65 &amp;micro;L&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&lt;br/&gt; 室尺寸：15 &amp;times; 15 &amp;times; 0.3 mm</td></tr><tr><td>Microman E</td><td>Gilson</td><td>FD10006</td><td>用于粘稠液体的移液器。我们使用该仪器测量液体石蜡。</td></tr><tr><td>倒置显微镜</td><td>Olympus Co.</td><td>IX73</td><td></td></tr><tr><td>镜组单元</td><td>Olympus Co.</td><td>U-FBNA</td><td>激发滤光片：470 - 495 nm&lt;br/&gt; 发射滤光片：510 - 550 nm</td></tr><tr><td>镜组单元</td><td>Olympus Co.</td><td>U-FMCHE</td><td>激发滤光片：565 - 585 nm&lt;br/&gt; 发射滤光片：600 - 690 nm</td></tr></tbody></table>

通过油包水乳液离心法制备包封微球的巨型囊泡

Preparation of Giant Vesicles Encapsulating Microspheres by Centrifugation of a Water-in-oil Emulsion

构建生物学与合成生物学在创造人工生命方面的研究，涉及自下而上地组装生物性或非生物性材料。这类方法在探索生命与非生命物质边界的研究中受到广泛关注，并在过去二十年中被用于构建人工细胞。其中，巨型囊泡（Giant Vesicles, GVs）常被用作人工细胞膜。本文描述了一种制备封装高密度微球的GVs的方法，作为含有高度浓缩生物大分子的细胞模型。GVs通过一种简单的油包水乳液离心法制备。具体而言，使用均质器将含有待封装物质的水溶液与溶解有磷脂的油相进行乳化，随后将所得乳液小心地铺在另一水溶液的表面。将该分层体系进行离心，从而生成GVs。该高效方法可用于封装从小分子到微球等多种物质。

w/o 乳液离心法在图1中通过照片和示意图进行了说明。图1中的示意图表明，该方法成功最关键的决定因素是内水相溶液的比重必须大于外水相溶液的比重，以便GVs在离心过程中能够沉淀。此外，为了在w/o界面形成脂质单层，乳液铺加到外水相溶液后，体系需冷却10分钟。由于GVs是通过乳液液滴跨w/o界面转移而形成的，因此内水相和外水相中的渗透压必须相同。作为对照实验，我们还采用图1所示方法及步骤1.3制备了不含微球的GVs，唯一不同的是内水相溶液中未添加微球。
离心后收集沉淀的GVs如图2所示。除了微量管最底部的半透明相外，我们在外层水相中还观察到一层白色、浑浊的中间相（图2a）。该中间相富含微球和油的聚集体，而底部相则含有GVs。因此，在用图钉刺穿微量管底部（图2b）后，我们仅收集第一滴液体（图2c），其中含有大量GVs。需注意收集的液滴不得超过两滴；若收集更多液滴，可能混入微球和脂质的聚集体，从而导致GVs密度降低。所获得的囊泡分散液通常含有位于GVs外部的包封物质，因为GVs在离心过程中常发生破裂。为了仅获得完整的GVs，应根据包封物质的大小选择合适的分选方法，例如透析、凝胶过滤或荧光激活细胞分选。如有必要，可根据沉淀GVs后续应用的目的，用外层水溶液对其进行稀释。在某些情况下，中间相延伸至管底，表明所形成的任何囊泡均被油相束缚在一起。
我们获得了不含微球的GVs的微分干涉显微图像和荧光显微图像（图3a，3b）以及含微球的GVs的相应图像（图3c-3f）。与先前报道一致23,37，本实验方案所形成的GVs具有较低的层状结构。实验中使用了与Texas Red DHPE偶联的脂质，该脂质可发出红色荧光，从而通过观察薄层膜的形成直接确认囊泡的生成。在获得的160个GVs中，55个包裹了微球，105个为空囊泡，包裹率为34%。
我们测定了体积分数（φ微球在GVs中的体积百分比（vol %）通过以下方法测定。由于每个GV含有数十至数百个微球，在光学显微镜下计数所有微球具有挑战性。因此，我们将非荧光 1.0 µm 微球与少量荧光微球混合，于荧光显微镜下人工计数。总数（N) 通过将数量（n通过手动计数的荧光微球数乘以20（基于非荧光与荧光微球原始体积比95:5 [v/v]）所得的值 φ 随后被估算为 Nv100/V，其中 v 是微球的体积 V 是单个GV的体积。请注意，估算 N 从 n 导致计数误差，这些误差在计算时必须予以考虑 φ. 该值的 φ 根据……估算 N，直接计算为20n，而这反过来导致了概率 φ 准确地表示真实值 &lt;50%。事实上， N 在20左右有一定波动n，因此我们需要将其视为20(n ±i），其中 i 是错误在 n我们估算了 i 以便概率 n ±i 基于泊松分布，可能超过50%。我们估算了 i，这反过来使我们能够计算20(n ± i）以及数值 φ 包括直径为10和的GVs的计数误差 15 µm (表1）。根据该方法，GV 中微球的体积分数如图所示 图3c 估计为11 ± 3 体积百分比（vol %）。计算所得体积分数的精确度为10-30%。
我们的结果表明，已成功将 1 μm 微球以高体积分数包封于 GVs 中。我们还使用相同的外部水溶液和相同方案，将其他材料包封进 100 mol % DOPC GVs 中（图 4）。具体而言，含有 0.1 µm 微球的 GVs 是通过以下方法制备的：采用含 0.1 M Tris-HCl（pH 7.5）、0.15 M 蔗糖和 0.5 vol % 荧光微球的 Tris 缓冲溶液，并参照含有 1.0-µm 微球的 GVs 所述方案进行操作（图 4a）。根据上述方案，还制备了含有 GFP 的 DOPC GVs（0.1 M Tris-HCl [pH 7.5]、0.15 M 蔗糖和 100 µg/mL GFP；图 4b）以及含有荧光素钠的 GVs（0.1 M Tris-HCl [pH 7.5]、0.15 M 蔗糖和 30 µM 荧光素钠；图 4c）。
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>n</td>
			<td>N</td>
			<td>φ (10-µm 直径)</td>
			<td>φ (15-µm 直径)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3</td>
			<td>60 ± 20</td>
			<td>6.0 ± 2.0</td>
			<td>1.8 ± 0.6</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4</td>
			<td>80 ± 20</td>
			<td>8.0 ± 2.0</td>
			<td>2.4 ± 0.6</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5</td>
			<td>100 ± 20</td>
			<td>10 ± 2</td>
			<td>3.0 ± 0.6</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6</td>
			<td>120 ± 30</td>
			<td>12 ± 4</td>
			<td>3.6 ± 1.2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10</td>
			<td>200 ± 32</td>
			<td>20 ± 3</td>
			<td>5.9 ± 0.9</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20</td>
			<td>400 ± 45</td>
			<td>40 ± 5</td>
			<td>12 ± 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>30</td>
			<td>600 ± 55</td>
			<td>-</td>
			<td>18 ± 2</td>
		</tr>
		<tr>
			<td colspan="4">a 误差按文中所述方法确定；n = 手动计数的微球数量；N = 包埋微球总数。</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
表1：微球的数量与体积分数（φ，vol%）a。a 误差计算方法见正文描述；n = 人工计数的微球数量；N = 包埋微球总数。
<img alt="显示囊泡分散体形成的油水乳液过程示意图，包含离心步骤。" src="/files/ftp_upload/55282/55282fig1.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="图1"> 
图1：W/O乳液离心法的流程图与原理示意图。（a）含有DOPC和Texas Red DHPE（100:0.3 摩尔比）的液体石蜡油溶液。（b）内水相分散液，含有蔗糖和微球的Tris-HCl缓冲液。（c）外水相溶液，含有葡萄糖的Tris-HCl缓冲液。（d）1 ml油溶液与300 µl内水相分散液的混合物。（e）使用匀浆器乳化（10,000 rpm，2分钟）。（f）形成的W/O乳液。（g）将300 µl乳液覆盖在1 ml外水相溶液上。（h）离心后沉淀的GVs。（i）W/O乳液离心法原理的示意图。黑色箭头表示离心加速度的方向。<a href="https://cloudfront.jove.com/files/ftp_upload/55282/55282fig1large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>
<img alt="蛋白质沉淀过程；微量离心管；实验方法；样品处理。" src="/files/ftp_upload/55282/55282fig2.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="图2"> 
图2： 微量管穿刺。 (a离心后沉淀的GVs（如图所示） 图1h）。红色椭圆表示沉淀的GV分散液滴。b) 用图钉刺穿微量离心管。将图钉刺入微量离心管底部附近，从孔中收集液滴，获得含有气体囊泡（GVs）的沉淀。c沉淀的GVs（由黄色箭头指示）分散液用外水相溶液稀释后的液滴。 <a href="https://cloudfront.jove.com/files/ftp_upload/55282/55282fig2.jpg" target="_blank">请点击此处以查看此图的放大版本。</a>
<img alt="细胞成像：细胞状态的显微图像、荧光标记；细胞形态学分析。" src="/files/ftp_upload/55282/55282fig3.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="图3"> 
图3： GVs 的显微镜图像。 (a) 无微球的GV相差干涉显微镜图像。GV的直径约为 10 µm比例尺 = 10 µm. (b) 无微球的GV荧光显微镜图像。红色荧光由Texas Red DHPE发出。c) 含微球的GV的微分干涉差显微镜图像。d荧光显微镜图像 1.0 µm GV 内的微球（YG 羧基微球）。计数的荧光微球数量（n）为6。我们估算了误差（i = 2）基于泊松分布. 然后我们估算了内层微球的总数（N = 20 (n ±i）为 120 ± 40。据计算，GV 包含 1.0 µm 微球的体积分数（φ = Nv100/V约为 11 ± 3 vol%，其中 v 是微球的体积，以及 V 是GVs的体积。e) GV膜的荧光显微镜图像。红色荧光由Texas Red DHPE发出。f) 图中各面板图像的合并结果 d 和 e. <a href="https://cloudfront.jove.com/files/ftp_upload/55282/55282fig3large.jpg" target="_blank">请点击此处查看此图的放大版本。</a>
<img alt="细胞显微图像；荧光分析；实验结果；细胞结构比较。" src="/files/ftp_upload/55282/55282fig4.jpg" data-altupdatedat="1788250015000" data-alt="图 4"> 
图 4： 包封不同材料的GVs的微分干涉差显微镜与荧光显微镜图像。 包含（a）0.1 µm 微球、（b）GFP 和（c）荧光素的GVs的微分干涉差显微镜（上图）和荧光显微镜（下图）图像。比例尺 = 10 µm。<a href="https://cloudfront.jove.com/files/ftp_upload/55282/55282fig4large.jpg" target="_blank">请点击此处查看该图的放大版本。</a>

包含高度密集的微米级组分的巨大囊泡是有效的细胞模型。水包油乳液离心法是一种制备包封材料的巨大囊泡的简单而强大的工具。

建构生物学与合成生物学在创造人工生命方面的途径涉及自下而上地组装生物或非生物组分……

本水包油乳液离心法的总体目标是简便地制备单层巨囊泡。该方法有助于回答合成生物学领域的一些关键问题，例如基于巨囊泡构建人工细胞。开始该实验前，需在氯仿中配制25毫摩尔的DOPC储备液和0.2毫摩尔的Texas Red DHPE储备液。接下来，在5毫升玻璃小瓶的内表面形成一层脂质膜，方法是在流动的氮气下蒸发DOPC和Texas Red DHPE储备溶液的混合物。将脂质膜在减压条件下孵育过夜后，向小瓶中加入1毫升液体石蜡。用铝箔包裹小瓶，并将混合物在80摄氏度下孵育过夜。在一支1.5毫升带盖微量离心管中，加入237.5微升1微米非荧光微球和12.5微升1微米荧光微球。然后向该微量离心管中加入64毫克蔗糖、125微升1摩尔Tris缓冲液和875微升去离子水。涡旋混匀30秒，随后超声处理10分钟。配制10毫升Tris缓冲溶液后，取1毫升置于一个1.5毫升带盖微量离心管中。将溶液涡旋振荡并超声处理后，在1.5毫升微量离心管中加入1毫升油相溶液与300微升内水相溶液。使用机械匀浆器在室温下以10,000 rpm转速处理2分钟，使微量离心管中的两相组分乳化。 接下来，在4°C条件下，将300微升水包油乳液轻轻铺加到1.5毫升带盖微量离心管中1毫升外层水溶液的上表面。乳化后立即于4°C预冷10分钟，随后以18,000 × g离心30分钟。离心结束后，用图钉刺穿微量离心管底部，收集一滴沉淀的巨型囊泡（GVs），转移至已灭菌的1.5毫升微量离心管中。将一个用于NC双聚合酶链式反应和杂交的粘性孵育室置于显微镜盖玻片上。使用微量移液器，将25 µL稀释后的沉淀GVs滴加到样品区域，并立即在孵育室上方放置一个厚度为0.15 mm的盖玻片。记录囊泡的显微图像后，首先将UFBNA和UFMCHE荧光镜组插入显微镜，然后进行荧光显微镜观察。然后为设备安装用于分析的激发滤光片和发射滤光片。油包水法成功的关键在于，内层水相溶液的比重必须大于外层水相溶液的比重，以确保气体囊泡（GVs）在离心过程中发生沉淀。对不含微球和含微球的气体囊泡（GVs）进行微分干涉相差显微镜和荧光显微镜观察，结果证实形成了低层状结构的气体囊泡（GVs）。在获得的160个GV中，55个包裹了微球，105个为空，包封率为34%。GV中微球的体积分数估计约为11±3%（体积百分比），计算体积分数的精度为10%至30%。使用相同的外部水溶液和相同方案，将其他材料包封入100摩尔% DOPC GV中也取得成功，差分干涉显微镜和荧光显微镜结果已证实这一点。通过该方法，可进一步开展流式细胞术等其他实验，以回答更多科学问题，例如解析模拟细胞的特性。观看本视频后，您应能充分掌握如何制备包封有目标物质的巨型囊泡。

preparation-giant-vesicles-encapsulating-microspheres-centrifugation

Research

科研

JoVE Journal

Biochemistry

生物化学

巨囊泡封装微球通过一个水包油乳液的离心制备

结合单分散液滴生成与细胞及颗粒的惯性有序排列，我们描述了一种在千赫兹速率下单个液滴内封装特定数量细胞或颗粒的方法。对于单颗粒和双颗粒液滴，该方法的封装效率是无序封装的两倍以上。...

高通量单细胞与多细胞微封装

本方案描述了一种用于制备亚微米尺寸且高度均一的脂质体囊泡的挤出方法。该方法采用压力可控的系统，并通过控制氮气流速来制备脂质体。本文将介绍脂质体制备1,2、脂质体挤出及粒径表征方法。...

用于制备纳米级脂质囊泡的恒压控制挤出法

本文介绍了两种将膜蛋白快速重组到融合性蛋白脂质体中的超快方案，以及将此类蛋白脂质体与目标脂双层融合、从而在无去垢剂条件下将这些膜蛋白递送至融合后脂双层的方法。结合使用这两种方法，可实现复杂多组分膜系统的快速且易于控制的组装。...

使用融合性互补电荷蛋白脂质体实现膜蛋白在脂双层中的无去垢剂超快重构。

我们介绍一种利用局部钙离子梯度对囊泡进行非接触式微操作的技术。通过在巨型脂质囊泡附近微注射钙离子溶液，可重塑脂质膜，从而形成膜管状突起。...

响应局部钙离子梯度的巨型囊泡膜重塑

本研究描述了采用薄膜法进行经典水合以制备纳米脂质体，并随后对纳米颗粒进行表征。一种分子量为47...

用于包载生物活性亲水性球状蛋白质的纳米脂质体的制备与表征

本实验方案的目的是通过微管吸吮法可靠地测量巨囊泡的膜力学性质。...

通过电形成法制备巨型单层杂化囊泡及利用微管吸吮法测量其力学性质

本文介绍了一种快速制备包封细胞骨架蛋白的巨型单层囊泡的简单方法。该方法适用于在受限环境中从头重建细胞骨架结构以及研究细胞骨架与膜之间的相互作用。...

快速将重建的细胞骨架封装到巨大单层囊泡内

在本文中，我们展示了将F-肌动蛋白细胞骨架包封进巨大单层脂质囊泡（也称为脂质体）的实验技术，以及在脂质体膜内小叶形成模拟细胞皮层的F-肌动蛋白层的方法。...

体外 在巨大单层囊泡内重建肌动蛋白细胞骨架

我们介绍一种用于重建膜蛋白并将酶及其他水溶性组分包裹于亚微米及微米级脂质囊泡中的实验方案。...

构建纳米和微米级囊泡中非平衡代谢网络

本初学者指南介绍了一种通过液滴转移法制备巨大单层囊泡（GUVs）的通用实验方案，讨论了其中的关键步骤，并提供了相关见解，以帮助针对不同应用（包括合成生物学和微机器人技术）进行可能的调整。...

使用液滴转移法制备巨型单层囊泡的可靠方法

本文介绍了一种在相分离的巨大囊泡内简单的一锅法重建细胞骨架网络的方法。该方法具有普适性，可推广应用于多种生物大分子的包封或限域。...

体外在相分离的巨大单层囊泡（GUVs）内重建细胞骨架网络

学习利用水包油乳液离心法制备封装微球的DOPC巨囊泡，用于合成生物学中人工细胞模型的构建。该方法可实现34%的封装率，为合成生物学研究提供有效工具。

通过油包水乳液离心法制备包封微球的巨型囊泡

探索更多视频