2026年3月20日
我们描述了一种从Xenopus laevis早期胚胎中分离单个细胞并根据细胞大小进行分选的方法。
我们的研究聚焦于细胞大小如何调控早期胚胎发育中的基因组和硫酸盐相关决策。现有方法忽略了早期非洲爪蟾胚胎中细胞大小的异质性。本方案可实现按细胞大小进行精确的物理分离与分选。
首先,在一个新的、涂有1.5% AGROS凝胶的60毫米培养皿中加入约15毫升CMFM。使用塑料移液管,将10至100个非洲爪蟾(Xenopus laevis)胚胎转移至培养皿中。将培养皿置于体视显微镜下。
用一把镊子小心夹住胚胎表面的卵黄膜,用另一把镊子将其剥离,注意避免损伤胚胎。将去卵黄膜的胚胎在室温下于CMFM中孵育1小时。
每五分钟轻轻摇晃培养皿一次,以促进细胞解离。定期检查,直至显微镜下无成堆的卵裂球可见。在卵裂球解离过程中,将40微米、70微米和100微米的细胞滤网分别浸入盛有CMFM的培养皿中。
按照指定顺序从左到右排列培养皿。在各组之间放置两个额外盛有 CMFM 的培养皿,用于分选过程中滤网的短暂清洗。现在轻轻晃动含有分离的单个卵裂球的培养皿,使其在中央富集。
然后小心地将卵裂球转移至浸没在 CMFM 中的 40 微米滤网中。轻轻晃动滤网数次,使小于 40 微米的卵裂球通过滤网。迅速将滤网移至盛有 CMFM 的培养皿中进行短暂清洗。
然后小心地将滤网中保留的卵裂球转移至70微米滤网中。使用逐渐增大的滤网重复分选步骤,直至卵裂球被收集在100微米滤网中。轻轻旋转每个含有已分选卵裂球的培养皿,使卵裂球富集于中央。
然后,小心地将约四毫升的卵裂球转移至含有0.5毫升15%密度梯度介质的荧光激活细胞分选管顶部,避免混匀。10分钟后,完整的卵裂球将因重力作用沉降至管底,从而与破裂卵裂球释放的卵黄颗粒分离。未分选的对照样本以及按大小分选的单个卵裂球经固定后,在明场显微镜下进行成像观察。
分选后的卵裂球在其各自预期范围内的大小分布较窄,与未分选的对照组卵裂球相比更为均一。小于40微米组的平均直径约为33微米;40至70微米组的平均直径约为55微米,而大于70微米组的平均直径约为91微米。
本方案使研究人员能够研究由细胞大小介导的功能和机制。本方案最重要的注意事项是小心处理解离的细胞,因为它们较为脆弱。完成本方案后,分选的细胞可用于细胞周期分析、单细胞测序以及共聚焦成像。
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本方案展示了一种根据细胞大小从非洲爪蟾早期胚胎中分离和分选单个细胞的方法。该技术克服了现有方法忽略细胞大小异质性的局限,有助于开展发育过程中与细胞大小相关功能的研究。
从非洲爪蟾早期胚胎中精确分离并基于细胞大小进行单细胞分选,可揭示早期发育过程中依赖于细胞大小的调控机制。该技术填补了细胞大小异质性如何影响发育命运决定这一关键认知空白,有助于提高靶点验证的预测可信度,并降低机制研究中的风险。该方法为生成标准化、大小均一的细胞群体提供了可扩展的平台,适用于后续的发现性研究及转化研究工作流程。
该方案可融入从早期假设验证到检测方法开发及转化研究的整个发现流程,能够实现基于细胞大小的机制研究,并为下游分析提供标准化的细胞制备方法。