Abstract
好中球は、ヒト循環中の全白血球の最も豊富な、微生物侵入に対する宿主防御において重要な役割を果たしています。さらに、好中球は、腫瘍細胞の免疫監視において中心的な役割を果たす。彼らは、腫瘍細胞を認識し、細胞接触依存性機構含む過酸化水素を介して、または抗体依存性細胞媒介性細胞傷害（ADCC）を介してのいずれかで腫瘍細胞死を誘導する能力を有します。抗腫瘍活性を有する好中球は、癌患者の腫瘍を有するマウスの末梢血から単離することができます。これらの好中球は、有意な腫瘍細胞傷害活性を示さない健常者またはナイーブマウスの好中球と区別するために、腫瘍同伴好中球（TEN）と呼ばれています。他の白血球と比較して、好中球は、密度勾配にかけたときに可能> 98％純粋な好中球の集団を得ることができる別の浮力を示しています。しかし、加えて、通常高密度の好中球集団（HDN）に、癌患者において、腫瘍を有するマウスにおける、ならびに慢性炎症性条件下で、明確な低密度好中球集団（LDN）は、循環に表示されます。 LDNは、単核画分と共精製すると、正または負の選択戦略を用いて、単核細胞から分離することができます。単離された好中球の純度は、フローサイトメトリーにより決定されると、それらは、 インビトロおよびインビボ機能アッセイにおいて用いることができます。我々は、好中球の抗腫瘍活性を監視するための能力移行すると活性酸素種を生成すること、ならびにそれらの貪食能のex vivoでモニタリングする技術を説明します。我々はさらに、in vivoで追跡するための好中球を標識するための技術を説明し、そしてインビボでの抗転移能力を決定します。すべてのこれらの技術は、抗腫瘍で好中球を取得し、特徴づけるためにどのように理解するために不可欠です機能。
Introduction
好中球は、最初に侵入微生物に対する最初の行の防御として機能する自然免疫細胞として特徴づけられました。今日では、好中球は造血3の調節、外来抗原1,2-に対する適応免疫応答をマウントに関与している多くの広範囲の機能を有することが知られている血管新生4,5創傷治癒します。さらに、好中球は、それらのプロ及び抗腫瘍活性6,7によって腫瘍の増殖および転移の進行に影響を及ぼし得ます。好中球は、多型、セグメント化、核によって特徴付けられる（したがって、多形核（PMN）白血球と呼ばれる）と、少なくとも3顆粒の別個のサブクラスならびに分泌小胞8（ 図1A-C）を含有します。
好中球は、高い貪食能と微生物の除去のための重要な高NADPHオキシダーゼ活性を有しており、時のための重要なケモカインの広い範囲を分泌します炎症8,9の部位に付加的な好中球および他の免疫細胞の牽引。好中球は、Toll様受容体（TLR）を含む表面受容体の多量の発現を特徴とする、C型レクチン受容体（のCLR）は、受容体3（のCD11b / CD18）、および他の接着分子（ 例えば、L-セレクチンを補完しますLFA-1、VLA-4および癌胎児性抗原関連細胞接着分子3（CEACAM3 / CD66b））、ケモカイン受容体（ 例えば、CXCR1、CXCR2、CCR1、CCR2）、化学誘引物質受容体（ 例えば、PAFR、LTB 4 RとのC5aR） 、サイトカイン受容体（ 例えば、G-CSFR、IL-1R、IL-4R、IL-12R、IL-18R、TNFR）、ホルミルペプチド受容体（ 例えば、FPR1-3）、およびFc受容体（ 例えば、CD16（FcγRIIIをヒト好中球はのCD11b、CD15、CD16およびCD66b白血球マーカーを用いて同定されるのに対して）、CD32（のFcγRII）およびCD64（FcγRIで）10。マウスでは、好中球は通常、のCD11b + Ly6G +として同定されています。また、一般的に組織中の好中球の検出のための顆粒タンパク質のミエロペルオキシダーゼ（MPO）と好中球エラスターゼ（NE）のために染色する受け入れられています。
これは、好中球の多様な機能が同じ細胞により、または異なる細胞亜集団によって媒介されるかどうかはまだ不明です。蓄積データは、プロ炎症性刺激と微小環境11,12の影響を受けて可塑性の高度を示す異種好中球集団の存在を示唆しています。 Fridlender ら 13は、2つの主要な亜集団に癌において好中球を著しく分割しているプロ腫瘍特性を有する抗腫瘍特性を有するN1およびN2と呼ばれます。癌において、ならびに慢性炎症において、T細胞応答14を抑制顆粒骨髄由来サプレッサー細胞（G-たMDSC）からなる追加の亜集団が存在します。 G-のMDSCはのCD11b + Ly6Cによって特徴付け未熟骨髄細胞であると考えられていますマウス15で低 Ly6G こんにちは表現型、ヒト16でCD15 + / CD16 低の表現型を有しながら。 G-たMDSC通常よりもサイトカインおよびケモカインのより低いレベルは、好中球を循環させながら、アルギナーゼおよびミエロペルオキシダーゼのより高いレベルを発現します。彼らはあまり食作用および移動であるが、ROS 15,17,18の高いレベルを生成します。本論文では、抗腫瘍特性を有する好中球の単離および特徴付けのためにいくつかの基本的な方法論を説明します。
（45から70までパーセント; 1,800 - 6,000 /μl）を好中球は、ヒトの循環内のすべての白血球の最大の人口を構成しているが、マウスでは、通常の条件下で、彼らは（10むしろ疎である - 15％、300から500 /μL ）。慢性炎症7の状態を示して着実に炎症時に時折癌における好中球数が増加します。好中球は多能骨髄系共通前駆体（CMP）CEから発生します骨髄中のLLS、骨髄芽球の段階を通過する分化プロセス（MB）を介して、前骨髄球（PM）、骨髄球（MC）、後骨髄球（MM）とバンド細胞（BC）8。それらは循環8に放出される前に7日-成熟した、有糸分裂後の好中球は4のための骨髄内に残ることがあります。炎症状態の下で延長することができる12時間、 - 血液中の好中球の売上高は6の平均半減期は、通常、迅速です。非刺激好中球は、ホルボールエステルホルボール12にそれらを暴露することにより、抗腫瘍形成活性、ケモカインIL-8（CXCL2）、CCL2、CCL5およびCXCL5 6,19または人工的にナイーブな好中球を露出することによって取得することができる機能を制限してきました-myristate 13-アセテート（PMA）6。
一緒に好中球の数が少ないと血液の好中球の半減期が短い（〜3から5×10 5）ナイーブ6 1mlの血液から達成- 8週齢のマウス、それを作りましたin vitroでマウスの好中球を循環させる機能を探索することは困難。この困難を克服するために、他のソースが使用されています。例えば、好中球の多くは、（チオグリコレート培地またはザイモサンAの腹腔内注射後に、 例えば ）骨髄20または無菌性炎症の誘導後腹膜から得ることができます。これは、腹腔から得られた好中球は、任意の抗腫瘍形成活性（未発表の観察）を及ぼさないことに留意すべきです。
Granot ら 6 20れるよう、マウス4T1乳癌細胞株を用いて同所接種したBALB / cマウスは、腫瘍進行6（ 図2A）で悪化好中球増加症を発症することが観察- 40万人の血液好中球は容易に1ミリリットルの血液から単離することができます3から4週間後、腫瘍接種。これらの好中球は、抗腫瘍活性を獲得し、それに応じてCOIされていますナイーブ好中球6（ 図2B）と区別するために定義される腫瘍連行好中球（TEN）、。高密度の好中球（HDN、 図1（a））は非常に抗腫瘍形成であるが、癌との関連で発生した低密度の好中球（LDN、 図1B）は 21ではありません。また、腫瘍を有するマウスの骨髄および脾臓から高密度の好中球は、抗腫瘍活性（未発表データ）を有しています。これは、好中球の量が増加すると、腫瘍の進行に脾臓を徐々に拡大（脾腫）となることに留意すべきです。
これは、10にも自発的な（MMTV-PyMTおよびMMTV-Wnt1の乳腺腫瘍とのK-ras駆動肺腫瘍）の両方を含む癌の他のモデルで生成され、AT-3（MMTV-PyMT）とE0771の乳癌（注入されることに留意すべきです細胞、LLCルイス肺癌細胞およびB16-F10黒色腫細胞）。しかしながら、これらのTUMでの好中球動員の、程度3週間後に1ミリリットルの血液中の10×10 6好中球-またはモデルが5に達し、4T1-接種されたマウスのよりもはるかに少ないです。
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Protocol
動物：5-7週齢のBALB / cマウスは、ハーラン（イスラエル）から購入します。動物に関わるすべての実験は、ヘブライ大学の施設内動物管理使用委員会（IACUC）によって承認されました。ヒトサンプル：がん患者と健康なボランティアからの血液の採取はハダーサ医療センター治験審査委員会（IRB）により承認されました。
乳がんマウスモデルを用いたin vivoでの抗腫瘍特性を有する好中球の1誘導。
注：すべての手順は、層流（LAF）バイオセーフティキャビネット内で無菌溶液を使用して実行する必要があります。
- シード5×10 10％の熱不活性化ウシ胎児血清（FBS）を補充した4.5グラム/ LのD-グルコースを含有するダルベッコ改変イーグル培地（DMEM）10ml中の100mm組織培養プレート中で5 4T1細胞を、2mMのD-グルタミン、1mMピルビン酸ナトリウム、100 U / mlのペニシリンGおよび100μg/ mlのストレプトマイシン硫酸塩。目をインキュベート3〜4日、5％CO 2を含む加湿インキュベーター中、37℃でのE細胞。実験の日に、100％コンフルエント - 細胞が50であることを確認してください。
- 、組織培養プレートから腫瘍細胞を剥離培地を吸引5mlのPBSで細胞を洗浄するために、PBSを吸引し、2.5グラム/ Lトリプシン溶液3mlを加えます。 37ºCでトリプシンで3分 - セル2をインキュベートします。
- すべてのセルが分離されるまで上下トリプシンおよびピペットを中和するために10ミリリットル血清含有培地を追加します。 15ミリリットルコニカル遠心チューブに細胞懸濁液を転送します。
- RTで5分間、200×gで細胞を遠心。細胞ペレットの上に200μlの培地を残して培地を吸引除去します。残留量で細胞を再懸濁し、10mlのPBSを追加。均一な細胞懸濁液を取得し、血球計数器で細胞をカウントする10μLを取り出すことが3回 - 管2を反転します。生細胞と死細胞を区別するためにトリパンブルーを使用してください。 室温で200×gで5分間、細胞懸濁液を遠心します。 PBSを吸引除去し、2×10 6細胞/ mlの最終濃度でPBS中に細胞を再懸濁。単一細胞懸濁液には凝集していないことを確認してください。
- 同所30GのX 8mmの針を0.3ミリリットル注射器を使用して、雌のBALB / cマウスの左鼠径部乳腺脂肪パッドに50μlのPBS中1×10 6 4T1細胞またはルシフェラーゼを発現する4T1細胞を注入します。
- 100％酸素中 - （5％3）注射の前に、イソフルランの遅い流速を受け取る誘導チャンバ内でマウスを麻酔。
- 無菌手術用パッドの上にマウスを置き、ヘッドが正しくイソフルランノーズコーンの内側に配置されていることを確認してください。足をつまんで、適切な麻酔を確認してください。麻酔下ながら乾燥を防ぐために、目に獣医軟膏を使用してください。注射部位の周りの毛を剃る、70％EtOHで消毒します。
- 小さな水平切開を行うために手術器具の滅菌セットを使用（5ミリメートル）程度鼠径部および腹部の乳首の間imately半分、脂肪パッドを露出させ、50μlの1×10 6 4T1細胞を注入します。 1週間後に除去されるべきである9ミリメートルクリップで切開を閉じます。ルシフェラーゼ発現細胞の注射は、生物発光イメージングによる腫瘍サイズおよび転移のモニタリングを可能にします。
注：この最小侵襲法は、任意の手術後の治療を必要とせず、注射したマウスは、2以内に回復 - 3分。 - 彼らは意識を取り戻すまでマウスを監視し、彼らは他のマウスの会社に入社する前に、完全な意識を取り戻すことを確認してください。
- 3の後- 4週間、原発腫瘍2 cm 3の体積に達したとき、遅いCO 2流によってマウスを屠殺し、すぐに最後の息の後、25Gのx 5/8 "針を用いて心臓穿刺により血液を得ますヘパリンで前処理した1mlツベルクリン注射器に接続されています。挿入時に上向き針の口を保ちますゆっくりと徐々に心臓に向かって振動板を介して水平位置で注射器、および過剰な圧力（ 図3）を回避血を引きます。
2.好中球の分離
- 担癌マウスの血液からの細胞傷害性の好中球の単離。
- 6ミリリットルの最終容量まで、0.5％（w / v）のウシ血清アルブミン（BSA）を含むPBSで（プロトコル1.11を参照）担癌マウスから引き出された1ミリリットルの血液を希釈します。
- 新たに調製された不連続ショ糖勾配に希釈した血液の分画：
- 15ミリリットルの円錐形のポリプロピレン遠心管の底に滅菌濾過したスクロース1.119グラム/ミリリットルの3ミリリットルを追加します。
- ゆっくりと慎重に、1.119グラム/ mlの層の上に滅菌濾過したスクロース1.077グラム/ミリリットルのレイヤ3ミリリットル。その後、1.077グラム/ mlの層（ 図4A）の上にゆっくりと慎重に希釈された血液（プロトコル2.1.1）の6ミリリットルを追加します。それが傾斜管を保持することを推奨され、管の下壁に向かってピペットの口を保持しながら、遅いが、連続流によって異なる成分をdding、乱流が形成されないようにします。
- ブレーキなしの室温で30分間、700×gで、ショ糖勾配に希釈された血液を含むチューブを遠心します。
- 慎重に任意の乱流を発生させることなく遠心分離機からチューブを取り外します。赤血球の大部分は、チューブの底にあります。低密度白血球がで発見されながら、高密度の好中球（HDN）は、1.119グラム/ mlおよび（3ミリリットルマークの周りに）1.077グラム/ mlの層の間の界面での白に赤リングとして見出されます1.077グラム/ mlの層およびBSA含有PBS（6ミリリットルマークの周りに、 図4B参照 ）との間の界面に白い輪。
- 低密度細胞層5mm上に到達するまで、PBS + 0.5％BSAを吸引除去します。ゆっくりとセルの周囲に渦巻くを通じて1ミリリットルチップ内に遅い吸引によって低密度細胞をピペット。0.5％BSAを含むPBSを30mlに細胞を移します。
- 高密度セル帯域5mm上に到達するまで同じ勾配管上層を吸引除去します。主に高密度の好中球である高密度の細胞を、アウトピペット、および0.5％BSAを含むPBSを30mlに細胞を移します。
- RTで10分間400×gで細胞を遠心。
- 30秒、36 mlの滅菌HPLC等級の水で細胞を再懸濁することによって、上清と溶解赤血球を吸引します。等張性は、5倍の9ミリリットルを添加することによって復元されるべきであるPBSは、2.5％（w / v）のBSAを添加し、濃縮しました。
- RTで10分間400×gで細胞を遠心。
- 上清を吸引除去し、PBS-BSAで細胞を懸濁します。血球計数器で好中球の数をカウントし、生細胞と死細胞を区別するためにトリパンブルーを使用しています。
- RTで10分間400×gで細胞を遠心し、最終細胞密度に所望インキュベーション培地中の好中球を再懸濁。使用すぐに好中球。
- その後、別の遠心分離後、最終的な細胞密度まで培養培地中の好中球を再懸濁します。すぐに好中球を使用してください。
- 癌患者からの循環好中球の単離。
- 生理食塩水中の3％デキストランT500等体積のヘパリン化（20 U / ml）のヒト血液を10mlを混合し、室温で30分間インキュベートします。このインキュベーションの間、赤血球が沈降します。
- 10ミリリットルのスクロース1.077グラム/ mlの50mlコニカルポリプロピレンチューブを準備し、ゆっくりと1.077グラム/ mlのスクロース層（ 図4C）の上に白血球が豊富な上清をレイヤー。
- ブレーキなしの室温で30分間、400×gで遠心分離します。高密度の好中球（HDN）は、ペレットに表示されます。低密度の好中球（LDN）1.077グラム/ mlのスクロース層と血漿（ 図4D）の間の界面での単球およびリンパ球と共精製します。
- 10ミリリットル0で好中球を再懸濁します。30秒間、2％NaClを汚染赤血球を溶解し、1.6％のNaClの10ミリリットルを追加することにより、等張性を回復し、一回反転させます。
- 遠心分離機5室温で160×gで分、そして20ミリリットルハンクス平衡塩溶液で3回洗浄します。各洗浄後に遠心分離し、上清を吸引除去します。
- 好中球をカウントし、mlまたは所望に応じて2×10 6好中球/で、2％FBSを補充したRPMI-1640で細胞を再懸濁します。
磁気ビーズを用いて血液好中球の3充実
- 正の選択
- プロトコル1.8で説明したようにヘパリン化シリンジを用いて、マウスからの血液1ミリリットルを取ります。
- 室温で5分間、400×gで15ミリリットルコニカルチューブに血液を遠心分離します。
- 上清を吸引またはさらなる研究のために血漿を保持します。
- 溶解8ミリリットルHPLCグレードの水の中に細胞を再懸濁することにより、赤血球。 30秒後、5×conceを2mlを添加することによって、等張性を回復ntrated PBS、2.5％BSAを含みます。細胞を数えます。
- 室温で5分間、400×gで遠心分離します。
- 10 8個の細胞あたり、0.5％BSAおよび2mM EDTAを含有する200μlのPBS中に細胞ペレットを再懸濁します。
- ビオチン化抗Ly6G抗体50μlのを追加します。よく混ぜ、冷蔵庫（ない氷上）で10分間インキュベートします。
- 0.5％のBSAおよび2mM EDTAを含有する冷PBS 150μlを添加します。
- 渦抗ビオチン被覆磁性マイクロビーズ原液。細胞懸濁液に100μlのを転送します。よく混ぜ、冷蔵庫（ない氷上）で15分間インキュベートします。
- 0.5％BSAおよび2mM EDTA、および室温で10分間、400×gで遠心分離を含む10 mlのPBSを添加することにより細胞を洗浄します。
- 0.5％のBSAおよび2mM EDTAを含有する500μlの冷PBSで吸引完全に上清を、再懸濁。
- 磁気スタンドに取り付けられているマグネットホルダに磁気分離カラムを挿入し、500μlの0を含む冷PBSでそれをすすいでください。5％BSAおよび2mM EDTA。
- カラム上に細胞懸濁液を適用します。フロースルーは、非標識LyG6陰性細胞が含まれています。
- 500μlのPBS、0.5％BSAおよび2mM EDTAを含有するカラムを洗浄。追加の非標識細胞は、フロースルーになります。
- 0.5％のBSAおよび2mM EDTAを含有する別の500μlのPBSでの洗浄工程を繰り返します。
- 磁石から列を削除し、15 mlのコレクションチューブの上に置きます。 0.5％のBSAおよび2mM EDTAを含有する1mlのPBSを追加し、しっかりと列にプランジャーを押すことにより、磁気標識された細胞を洗い流します。フロースルーはLy6G +好中球が含まれています。
- 陰性選択
- 手順3.1.5に3.1.1による血液の白血球を準備します。
- 再懸 濁5ミリリットルのポリスチレン丸底チューブに、0.5％BSAおよび2mM EDTAを含有する1mlのPBS中に1×10 8細胞。
- 50μlの正常ラット血清を追加します。
- 好中球の濃縮cの50μLを追加（非好中球白血球に特異的なビオチン化抗体を含む）ocktailは、十分に混合し、冷蔵庫で15分間インキュベートします。
- 4 mlのPBSを添加することは、10分間、0.5％BSAおよび2mM EDTA、および400×gで遠心分離を含むことにより、細胞を洗浄。
- 上清を捨て、0.5％のBSAおよび2mM EDTAを含有する1mlのPBSで細胞を再懸濁します。
- ビオチンおよびデキストランに対して向けられた四量体抗体複合体の50μlを添加します。よく混ぜ、冷蔵庫で10分間インキュベートします。
- 細胞懸濁液150μLを加える前に、デキストラン被覆磁性ビーズを含むよくボルテックスチューブ。よく混ぜ、冷蔵庫で10分間インキュベートします。
- 0.5％BSAおよび2mM EDTAを含むPBSを添加することにより2.5ミリリットルの総体積に細胞懸濁液をもたらします。均質な細胞懸濁液を得るために、穏やかに混合します。
- 磁石に（キャップなし）チューブを挿入し、3分間放置。
- 連続1チューブと磁石を反転動作流体中の未結合の細胞が新しいチューブに移されるようにします。直立位置に戻り、その後、3秒 - 2に反転磁石とチューブを残します。結合していない好中球が転送流体になりながら、磁気標識不要な細胞は、元のチューブの壁に結合したままになります。
好中球の細胞学的染色4.
- 50μlのPBS中に1×10 5好中球を再懸濁し、このようなサイトスピンのような薄層細胞調製アダプタに細胞懸濁液を移します。 5分間、150×gで、アダプターを遠心。アダプタからの前標識されたスライドガラスを分離します。
- 2分間70％エタノールでガラススライドを浸漬することにより細胞を固定。アダプタからの調製物は（ステップ4.1参照）染色の前に室温で乾燥することができます。蒸留水で6回 - スライド5を浸し。
- マイヤーのヘマトキシリン液に2分 - 1を染色します。水道水で1分間洗浄します。エオシンY溶液に10秒を染色 。水道水で洗ってください。エタノール濃度（70％、96％及び100％）の増加でスライドをリンスすることにより脱水。ガラスがまもなく空気乾燥スライドしてみましょうと、光学顕微鏡下でスライドを検査します。
注：エオシンはピンクで、非特異的タンパク質を染色するのに対し、ヘマトキシリンは、深い青紫色やシミ核酸を有しています。好中球の細胞質顆粒は「中立的であることを愛する」名の由来である酸性または塩基性染料で染色されたままです。明るい赤、ヘマトキシリンおよびエオシンとeosinophilc顆粒球と好塩基性顆粒球の染色ダークブルーのに対し、好中球は、（ 図1Aを参照してください）中立ピンク色に見えます。 5ローブ「セグメント化された好中球'（ 図1Aおよび1C） -成熟好中球を、2を持つ大規模な一般的である多形核、ことを特徴とします。未成熟好中球は、1つのローブに湾曲またはリング状核（ 図1B）によって特徴付けられます。
- FACS緩衝液100μl（PBS、0.5％のBSA、2mMのEDTA及び0.02％のNaN 3を含有する）中で1×10 6個の細胞を再懸濁します。全血サンプルについては、溶血は（ステップ3.1.5へ3.1.1）を染色する前に必要です。 5分間のFcRブロッキング試薬を10μl加えます。
- 、ヒト好中球のマウスの好中球またはCD11bおよびCD66bへのLy-6Gに特異的に蛍光標識抗体0.5μgのを追加し、よく混合し、室温で15分間インキュベートします。
- PBS、0.5％BSAおよび2mM EDTAを含有する500μlの体積を調整し、フローサイトメトリーによって染色を分析します。
生体内で 6フォロー好中球ゲート
- 好中球の生体内 BrdU標識で
- 腹腔内腫瘍を有するマウスに滅菌PBS中10 mg / mlのブロモデオキシウリジン（BrdUの）溶液100μlを注入します。
- 血液好中球を48時間後噴射Aを分離議定書2.1 ccording。のBrdUフローキットを用いて染色するのBrdU標識された好中球。
- 好中球のCFSE標識
- 予め温めておいたPBS 1ml中10 7好中球を再懸濁します。
- 10μMの最終濃度になるように懸濁し、好中球への5 mMのCFSEストック溶液2μlを添加します。よく混合し、37℃で15分間インキュベートします。 1ミリリットルDMSO中5mMのCFSEが2.8 mgのCFSE（カルボキシフルオレセインジアセテート、スクシンイミジルエステル - ） - 5-（及び6）を溶解することにより調製されます。 -20℃の暗所で無菌200μlのチューブとストア内の10μlのアリコートに分割します。
- 10％FBSを含むRPMI-1640の等量を添加することによって、過剰CFSEを中和します。 37℃で10分間インキュベートします。室温で10分間、400×gでの好中球を遠心。 10％FBSを含むRPMI-1640 10mlに二度の好中球を洗ってください。
- PBSの適切な量で10分間再懸濁し、400×gで遠心分離します。好中球（ 例えば、1×10 7
7. インビトロルシフェラーゼアッセイは、単離された好中球の抗腫瘍活性を監視します。
- プロトコル1.1〜1.5で4T1細胞について記載したように、ルシフェラーゼ標識腫瘍細胞を培養するが、2％FBSを補充した最適化された低血清培地中のトリプシン解離細胞を懸濁します。 1mlあたり5×10 4細胞に細胞密度を調整します。
- 100μl中の種子5000ルシフェラーゼ標識腫瘍細胞を白色96平底組織培養ウェルプレートの各ウェルに、0.5％FBSを含む低血清培地を最適化します。
- 腫瘍細胞を播種後の4時間は、50μlの1×10 5好中球が最適化された0.5％FBSを含む血清培地を低減し、O / Nインキュベート追加します。 2×10 6細胞/ mlの濃度で好中球の細胞懸濁液を調製します。対照ウェルは、好中球なしに50μlの培地を取得する必要があります。行います各実験設定の複数の反復。
- 次の朝、静かに上清を吸引し、200μlのPBSで各ウェルを洗浄します。 PBSを吸引し、受動的溶解緩衝液50μlを添加します。簡単に（例えば、AT-3細胞）細胞を剥離するために、PBSで洗っていないとすぐに成長培地を吸引した後、細胞培養溶解バッファーを加えます。
- アルミホイルでプレートを覆い、室温で20分間、150 rpmでオービタルシェーカー上でインキュベートします。
- 発光プレートリーダーでプレートを置きます。よくワイズ50μlのルシフェラーゼアッセイ溶液を注入して、ウェル当たり10秒間化学発光を読み取ります。
- 次式により％の腫瘍溶解を計算する：％腫瘍溶解が=（1- [好中球の試料の発光] / [培地中のサンプルの発光]）×100％。
注：プロトコル8.1で説明したように、転移性播種に好中球の寄与を評価するために、好中球が消耗されています。効果的なDEPL用etion後7日目の腫瘍移植から始まる好中球枯渇抗体を投与します。
乳癌マウスモデルにおける好中球の8抗転移活性。
- 好中球のインビボ枯渇 。
- たてマウスあたり100μlの最終容量で、生理食塩水でラット抗Ly6G抗体（好中球枯渇抗体）のまたはラットアイソタイプコントロール抗体（IgGの2aと 、Κ）の12.5μgの準備をします。
- 後3日目の腫瘍生着に起動すると、毎日12.5μgのラット抗Ly6G抗体（100μl）を腹腔内投与量を注入します。と対照マウスを注入または12.5μgの（100μl）を、ラットのアイソタイプコントロール抗体（IgGの2aと 、Κ）。
- 4T1腫瘍が成長する際に、好中球の生産速度が劇的に増加するように14日目に開始し、1日2回の抗体を投与します。
- 外側尾静脈をニッキングすることにより - （3滴2）一日おきに、血液サンプルを得ます。アンチに血液を集めますチューブ（ヘパリン、クエン酸塩またはEDTA）を含む-coagulant。
- 議定書5に記載されているように、フローサイトメトリーを用いて好中球の枯渇を確認します。
- 腫瘍中和試験（改変されたウィンアッセイ）
- 腫瘍を有するマウスからの好中球を分離します。 （マウスあたり）50μlの生理食塩水に1×10 6個の腫瘍細胞と3×10 6好中球を混ぜます。
- 8週齢ナイーブBALB / cマウス - 6の脇腹に皮下細胞を注入します。腫瘍の大きさの正確な測定を可能にするために、腫瘍移植の前に逃げ面を剃ります。 5日後の生着に開始し、毎日腫瘍の大きさを測定します。
- 好中球の養子移入
- 尾静脈に200μlのPBSで2×10 4のルシフェラーゼを発現する腫瘍細胞を注入します。
- 好中球の移動は、腫瘍細胞注射後4時間に実行されるべきです。したがって、その中で計画され、約2時間前に、腫瘍を有するマウス（プロトコル2.1）からHDNの精製を開始生体内伝達。 2.5×10 7細胞/ mlの最終濃度でPBS中の好中球を再懸濁します。
- 腫瘍細胞を導入した後の4時間は、5分間の加熱ランプの下でマウスを置きます。制止にマウスを置き、尾静脈を介して、5×10 6 HDN（200μl）を注入します。対照マウスにはビヒクル（PBS）を注射します。
- 生体内撮像システムまたは免疫組織化学によって生物発光を用いて種々の時点で肺転移の形成を監視します。
- 肺転移性播種アッセイ
- 同所プロトコル1で説明したように、左鼠径部乳腺脂肪パッドに1×10 6親4T1細胞- 0.5を注入します。
- 10日目に、5×10 5細胞/ mlの最終濃度でPBS中のGFP発現4T1細胞を再懸濁。 5分間の加熱ランプの下でマウスを置きます。
- 制止にマウスを置き、4Tに静脈内1×10 5 GFP発現4T1細胞（200μl）を注入します1腫瘍を有するマウスまたは未処理マウス。
- 翌日、マウスを安楽死させると、残りのRBCを除去するために、20ミリリットルのPBSで肺を灌流。
- 免疫組織化学により、GFP陽性細胞の分析のために肺を切除。
注：プロトコル8.1で説明したように、転移性播種に好中球の寄与を評価するために、好中球が消耗されています。効果的な枯渇のための7日後に腫瘍移植から始まる好中球枯渇抗体を投与します。
腫瘍を有するマウスからの好中球によるT細胞増殖の抑制9。
- 10mlのPBSで安楽死させ、ナイーブBALB / cマウスと場所から脾臓を取り出します。
- RPMI-1640で満たされたペトリ皿にフィットである40μmのセルストレーナーに脾臓を置きます。細胞はペトリ皿にストレーナーを通してシリンジのプランジャ端部を使用して、脾臓をマッシュアップ。 5ミリリットルRPMIで細胞ストレーナーを洗浄します。ストレーナーを捨てます。
- 10分間400×gでの50mlコニカルチューブに再懸濁した細胞を移し、遠心分離機。
- 上清を捨てて、20秒間純水36ミリリットルに細胞を懸濁することにより赤血球を溶解し、PBSの4ミリリットルを追加することによって、等張性に調整する別の方法として、X 10を集中し、赤血球の5ミリリットルに細胞を懸濁することにより赤血球を溶解バッファー（ACK）を溶解し、室温で5分間インキュベートします。 RPMI-1640培地10mlを加えることによってACKを中和します。室温で10分間、400×gで遠心分離します。 5ミリリットルのPBSで細胞を再懸濁し、細胞をカウントします。
- 4×10 7細胞/ 15mlチューブ2 mlの最終濃度になるようにPBSで脾細胞を再懸濁します。 PBS中2.5μMのCFSE溶液2mlを加えます。すぐにチューブを反転し、光から保護時々混合し（各2分）、37℃で10分間インキュベートします。
- 予め温めておいたFBS（100％）を4mlを添加することにより、過剰CFSEをクエンチし、室温で1分間インキュベートします。 10、400×gで3 mlのPBSと遠心を追加分。
- 30ミリリットルのPBSで細胞を洗浄し、10分間、400×gで遠心します。
- 40μmのセルストレーナーを通して細胞を濾過し、再びPBSで洗浄します。
- 2×10 7細胞/ mlの最終濃度まで、10％FBSを補充したRPMI-1640培地中で細胞を再懸濁します。
- シード2×10 6 /ウェル（200μl）を24ウェル組織培養プレートで。
- 10％FBSを含む500μlのRPMI-1640中で精製したアルメニアハムスター抗マウスCD3ε抗体1μgのを追加することによって、細胞を刺激します。
- CFSE標識脾臓細胞を10％FBSを300μlのRPMI-1640中で2×10 6 HDNやLDNを追加し、37℃で3日間インキュベートします。好中球のないウェルを300μlの培地を取得する必要があります。各ウェル中の総体積を1mlにする必要があります。
- 細胞を収集し、フローサイトメトリーのためにそれらを準備します。 100μlのFACS緩衝液（プロトコル5）で細胞を再懸濁し、FcRはブロッキング試薬の10μlを添加します。 RTで5分間インキュベートします。
- 追加1＆＃956; APC結合抗CD8α抗体のL、室温で15分間インキュベートします。
- フローサイトメトリーによるCD8 + T細胞上のCFSE蛍光強度（ 図5）を決定します。 CFSE強度は、各細胞分裂時に半分になります。したがって、細胞分裂の数をCFSE染色の強度によって決定することができます。
10.好中球遊走アッセイ
- 最適化された7ミリリットルのシード5×10 5 4T1細胞を、25cm 2の組織培養フラスコに、0.5％FBSを補充した無血清培地を減少させ、37℃で24時間インキュベートします。
- 5ミクロンの孔径を有する移行板の下部チャンバーに上清800μlのを転送します。
- 再懸 濁し、0.5％FBSを補充した最適縮小血清培地400μlの2×10 5好中球。上部チャンバーに細胞懸濁液を適用し、37℃で2時間インキュベートします。
- インキュベーションの終了時に、上部チャンバを除去し、下部チャンバーに移動した好中球の数をカウントします。
活性酸素種の11モニタリング好中球の製造（ROS）。
- フェノールレッドを含まないハンクス平衡塩溶液中1.1×10 6好中球/ mlのを準備します。白色96平底ウェルプレートの各ウェルに2×10 5好中球を含むプレートを180μl。
- 発光プレートリーダーでプレートを置きます。 50μMの最終濃度を得るために各ウェルにPBS中500μMのルミノール溶液20μlを追加します。 10秒間隔で5分間の時間経過に1秒のための基礎化学発光をお読みください。
- （10μMの濃度で10nm以上100nm以下のfMLPの濃度で、例えば、PMA）刺激薬を追加します。フェノールレッドを含まないハンクス平衡塩溶液中の各薬剤の10倍濃縮液を調製し、各ウェルに22μlを添加します。井戸を制御するには、22μlの車両を追加します。
- Measuプレートリーダーで化学発光再。短い（5分毎に10秒）と長い時間経過（1時間毎分）の両方を行います。
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Representative Results
最近の研究では、好中球6のための抗転移作用を同定しました。腫瘍を有するマウスからの好中球は、細胞傷害性表現型を獲得し、腫瘍細胞の6を殺す能力を有します。これは、有意な抗腫瘍効果6を有していないナイーブマウスからの好中球とは対照的です。プロトコルセクションに記載された技術のいくつかは、in vitroおよびin vivo 6 において抗腫瘍好中球機能を研究するために使用されています。
腫瘍細胞傷害性好中球は、腫瘍を有するマウス6から得ることができます。この目的を達成するために、マウスを、同所左鼠径部乳房脂肪パッド（プロトコル1）に4T1細胞を注射しました。 2 cm 3の（ 図3 - -腫瘍は左下腹部に明らかである）後21日目の腫瘍接種により、原発腫瘍は1のサイズに達しました。この時、マウスを安楽死させ、1mlの血液を（マウス当たり）描かれました心臓穿刺（ 図3）こともできます。並行して、ナイーブ、非腫瘍担持マウスから血液を採取しました。 HDNは、その後、好中球の高純度（> 98％）の集団を生成する密度勾配上（プロトコル2.1および図4）により精製しました。好中球の生存率は、トリパンブルー染色（2.1プロトコル）によって決定しました。好中球は、その後、2×10 6の好中球/ mlで、0.5％FBSを含有する最適化された低血清培地に再懸濁しました。
好中球の細胞毒性の程度を試験するために、我々は、96平底白色で4T1標的細胞を（5,000細胞/ウェル100μl中）ルシフェラーゼを発現する（2×10 6好中球/ mlストック溶液から50μl）を10 5好中球を追加しました型ウェルプレート（プロトコル7）。 （O / Nインキュベーション後、細胞をPBSで洗浄し、受動細胞溶解緩衝液中に溶解し、各試料中のルシフェラーゼ活性は、好中球の細胞毒性の程度を評価するために試験しました
LDN及びHDNにおける免疫抑制特性を試験するために、我々は、T細胞増殖アッセイ（プロトコール9）を用いました。我々は、評価しましたCD8 +未処理の脾細胞およびLDNの存在下またはHDN（ 図5A-D）の存在下で培養したαCD3単独で培養された抗体、細胞で処理された脾臓細胞中の細胞数。抑制LDNの劇的な阻害効果（BおよびCにおける右上のパネルを比較）とHDNの阻害効果の欠如抗CD3刺激後、CD8 + CFSE +細胞の劇的な増加を（AとBで右上のパネルを比較）（注） （パネルD）。また、増殖のための指標として、CFSE保持の程度を評価しました。 図5Eに、オレンジ色の曲線は、未処理のCD8 +細胞を提示し、αCD3抗体で処理された青色の曲線CD8 +細胞は、赤い曲線CD8 + LDNの存在と緑の曲線にαCD3で刺激された細胞は、αで刺激したCD8 +細胞を表し、; HDNの存在下で、CD3。 αCD3処理した細胞の左シフト（青の曲線）とαCD3はCD8 +細胞の増殖を示すHDN（緑の曲線）で培養した細胞を、処理してください。
図1の好中球の形態。薄層細胞調製以下のヘマトキシリンおよびエオシン（H＆E）で染色した光高密度（A）の顕微鏡画像と低密度の好中球（B）、（C）透過型電子顕微鏡（TEM）画像高密度の好中球の。バーは1000nmのを表しています。 この図の拡大版を表示するには、こちらをクリックしてください。
図2.血液好中球数は、腫瘍pで増加しますrogressionと好中球は、細胞傷害性表現型を獲得します。 （A）を1mlあたりの循環好中球数は、BALB / cマウスにおける腫瘍細胞接種後の様々な日目にFACSによって計数しました。数 循環のCD11b + Ly6G +好中球は、連続的に4T1腫瘍の進行とともに増加する。（B）4T1乳癌細胞のいずれかナイーブマウスからの高密度の好中球（腫瘍なし）または4T1腫瘍担持マウス（腫瘍ベアリング）マウス、またはインキュベーションと共培養しました（続き）好中球の非存在下での培地中で20時間、37℃で。腫瘍を有するマウスのためではなく、腫瘍のないマウスからの好中球は、4T1腫瘍細胞に対して顕著な細胞毒性を示します。エラーバーは、スチューデントのt検定を使用して、**はp <0.01を±SEMを表す。 この図の拡大版を表示するには、こちらをクリックしてください。
心臓穿刺を介して、マウスの血液3.コレクション図 。マウスが遅いCO 2流下で導入室で安楽死させました。マウスは、その端末息を取った直後に、それは、その背中に敷設され、1mlのヘパリン化シリンジは、心臓に達するまで胸骨の基部に挿入されています。ゆっくりと血液を吸引するために、プランジャーを引っ張る。 この図の拡大版を表示するには、こちらをクリックしてください。
全血から4の好中球の精製図。 （A）1.077の3ミリリットルグラム/ mlのスクロース、慎重不連続勾配を形成するために3ミリリットル1.119グラム/ mlのスクロースの上に階層化されています。 6ミリリットルの最終容量にPBS-BSA（0.5％）で希釈した全体のマウスの血液は、1.07の上に、その後の層状であります7グラム/ mlのスクロース（B）なしのブレークで700×gで30分間スピンの後、3つの異なる画分を観察することができます。 R -ペレット中の赤血球、G -高密度の好中球を含む顆粒球画分、M -単核細胞と低密度の好中球を含む単核画分（C）新たに描画されたヒト血液は（デキストラン500の等量と混合します3％）と室温で30分間インキュベートしました。白血球（軟膜）を含むトップ画分を10ミリリットル1.077の上部グラム/ mlのスクロースに積層され（D）なしのブレークで400×gで30分間スピンに続いて、2つの異なる画分を観察することができます。 R + G -赤血球および高密度の好中球を含むペレット、M - 。単核細胞および低密度の好中球を含む単核球画分、この図の拡大版を表示するには、こちらをクリックしてください。 
図T細胞増殖の5抑制をフローサイトメトリーは、不在（B）またはLDNの存在（C）にαCD3抗体による刺激後、刺激の非存在下（A）中で培養CFSE標識CD8 +細胞の数を示す解析します。パネルAからCD8 +細胞におけるCFSE強度のかHDN（D）（E）ヒストグラムプレゼンテーション- 。D この図の拡大版を表示するには、こちらをクリックしてください。
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Discussion
好中球は、すべての白血球の最も豊富であり、感染症や炎症の場合には最初の対応です。そのようなものとして、それらは、外部の合図に非常に敏感であり、容易に活性化されます。また、好中球は非常に短い半減期および迅速なターンオーバーを持っています。一緒に、これらの特性は、ユニークな実験的な戦略が必要とされるように、好中球での作業のいくつかの困難を、上げます。例えば、いくつかの好中球の精製戦略は、独自の長所と短所とのそれぞれは、存在します。
好中球での作業における重要なステップは、全血からの精製です。好中球は、効率的に密度勾配または抗体ベースの戦略（正または負の選択）のいずれかを用いて精製することができます。選択の私たちの方法は、最小限の非特異的活性化と高度に精製された好中球の高い数を得られるので、密度勾配を使用することです。しかし、我々は最近の研究21に示すように、ウィット時間腫瘍進行好中球、単核、低密度画分に高い数値に蓄積します。これらの条件下での密度勾配の使用は、全体の循環好中球のレパートリー、及び高他の単核細胞（リンパ球および単球）で汚染された低密度の好中球の割合を表していない高純度、高密度の好中球画分を提供します。このような状況下での最適な方法は、抗体ベースの精製、好ましくは負の選択です。好中球を精製するための抗体の使用は、高度に純粋な、好中球が得られ、よりよい全体の循環好中球のレパートリーを表します。しかし、我々は、好中球は、抗体の非特異的活性化の増加の可能性と共にインキュベートするより長いことに気づきました。したがって、我々は、最適な結果を得るために、抗体ベースの好中球の精製が可能な限り迅速に行われるべきであることを示唆しています。抗体ベースの好中球の精製はまた、PU選択される方法であります組織または腫瘍からの好中球をrifying。
関係なく、選択された精製手順の、純度、生存率および機能的完全性を厳密に評価されなければなりません。好中球の純度は、好中球の表面マーカーと反応する抗体を用いたフローサイトメトリーにより測定することができます。 -表現型マウスでは、のLy-6GはのLy-6G + F4 / 80 ローのCD11b +のLy-6Cことを特徴とする、好中球に特異的です。ヒト好中球は、のLy-6Gに類似したマーカーを発現しないと、多くの場合のCD11b、CD15、CD16、およびCD66bの発現によって特徴づけられます。好中球は、Fc受容体を有するので、これらは、免疫染色の前にブロックする必要があります。好中球は、より高いSSCを有することにより、他の白血球細胞と区別することができます。生存率は、精製プロセス（トリパンブルー、プロトコル2.1）の終了時に決定されるべきであり、98％よりも一貫して大きくする必要があります。機能的整合性がプリによって決定されるべきですナイーブマウスからの好中球のfication。これらの好中球が活性化され、腫瘍細胞（プロトコル7）との共培養の設定で腫瘍連行好中球に対する非細胞傷害性制御を提供していません。
ナイーブ6 1mlの血液から達成- （5×10 5〜3） -一緒に好中球の数が少ないと血液の好中球の短い半減期8週齢のマウス、それが困難でマウスの血液好中球機能を探索してきましたインビトロ 。好中球数は、炎症の状態で着実に増加し、時には、癌は、慢性炎症7の状態を表します。一部の研究者は、骨髄20として、好中球のための代替エネルギー源を見つけることを試みました。 3％チオグリコレート培地の溶液または1 mg / mlのザイモサン1mlを1mlの生理食塩水中の溶液の腹腔内注射後24時間 - マウスの好中球の数が多い4内に得ることができます。しかし、これらの誘発好中球は及ぼさありませんNY抗腫瘍形成活性（未発表の観察）。
Granot ら 6は 20ように、マウス4T1乳癌と同所接種BALB / cマウス（ 図2A）時間に悪化させる好中球増加を開発することを観察した- 。4週間- 40万人の血液好中球は簡単に1ミリリットルの血液3から単離することができます腫瘍接種後。これらの好中球は、抗腫瘍活性を獲得し、それに応じてナイーブ好中球（ 図2B）と区別するために、腫瘍連行好中球（TEN）と呼ばれています。高密度の好中球（HDN）は非常に抗腫瘍形成であるが、癌との関連で発生した低密度の好中球（LDN）が21ではありません。腫瘍を有するマウスの骨髄および脾臓から高密度の好中球は、抗腫瘍活性（未発表データ）を有しています。それは内で、腫瘍の進行に脾臓を徐々に拡大（脾腫）となることに留意すべきです好中球の量をしわ。
それらの養子移入後の好中球の運命を追跡するために、これらは、標識される必要があります。好中球は、2日の分離前に、腫瘍を有するか、ナイーブマウスにブロモデオキシウリジン（BrdUの）を注入することによって、in vivoで標識することができます。 BrdUを、細胞増殖に新たに合成されたDNAに組み込まれるDNA前駆チミジンの類似体です。好中球の場合には、BrdUを成熟した有糸分裂後の好中球に分化する際にBrdU染色を保持増殖前駆細胞に組み込まれます。取り込まれたBrdUは、抗BrdU特異的な蛍光抗体を用いて染色することができます。のBrdU +細胞は、フローサイトメトリーによって分析することができます。別のアプローチは、5-カルボキシフルオレセイン、N-スクシンイミジルエステル（CFSE）のような細胞トラッカー色素で分離された好中球を標識することです。 CFSEは、生存可能な細胞膜を通過することができるエステル化合物です。これは、アミノ反応性スクシンイミドを有します細胞および細胞表面でのタンパク質および他のアミノ基へのフルオレセインの共有結合をもたらすイル基。 CFSE標識細胞を、488 nmのアルゴンレーザーを用いたフローサイトメトリーによって分析することができます。 2標識技術はBrdU標識は、CFSEはすべて好中球を染色するのに対し、標識されるであろうすべての循環好中球前駆細胞の増殖、およびないに依存することが異なります。 CFSEの検出は、しかし、BrdU標識は、好中球の変換を成熟する未熟を追跡する良い手段であり、BrdU染色よりも簡単です。
また、好中球の抗腫瘍及び抗転移作用を決定するためにいくつかの方法を記載しています。これらは、好中球の枯渇、好中球養子移入、腫瘍中和試験およびアッセイを播種肺転移が含まれます。これらのアッセイの各々は、抗腫瘍の好中球機能の特定の局面を達成します。例えば、Granot ら 6は、DEPの際にことを観察しました好中球のletionは、4T1腫瘍を有するマウスにおける肺転移の数は、好中球の抗転移役割の示唆、増加されます。好中球の養子移入すると、腫瘍細胞を4時間精製HDNの注入前に静脈内に注入されます。肺および肝転移を形成する腫瘍細胞の能力は、インビボ光学イメージングシステムを用いて経時的研究に続いています。 HDNを受けたマウスは、対照マウス6をしたよりも少ない転移巣を示しました。腫瘍中和試験では、腫瘍細胞はHDNの存在は、腫瘍増殖を減少させる21、またはHDNなしで皮下に注射します。転移性播種アッセイでは、GFPで標識された腫瘍細胞を、コントロールまたは好中球枯渇前転移性の腫瘍を有するマウスに静脈内注射され、肺にシードするGFP標識細胞の能力が決定されます。前転移性腫瘍を有するマウスの肺腫瘍を防ぎ、高い好中球浸潤により特徴付けられます特定の臓器6の細胞播種。これは、コントロールの腫瘍を有するマウスと比較して、好中球枯渇マウスにおいてより転移病巣に変換されます。
プロトコルは、癌の文脈において好中球機能を研究する上でフォーカスを記載し、 インビトロおよびインビボの両方で癌関連の好中球の特性を評価するための戦略を提供します。しかし、好中球の精製戦略ならびに記載した実験手順のいくつかは、好中球が重要な役割（ すなわち、炎症および感染症）を再生実験の設定の広い範囲で好中球機能を研究するために使用することができます。
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Acknowledgments
ZGはイスラエル科学財団（助成金番号11分の41）のI-COREプログラムからの助成金によってサポートされ、Abisch·フレンケル財団、Rosetrees信託、イスラエル癌研究財団（ICRF - 研究キャリア開発賞）とCONCERNファンデーション。 ZGFはイスラエル癌研究財団（ICRF - 研究キャリア開発賞）からの助成金によってサポートされ、保健のイスラエル省イスラエル肺協会のチーフサイエンティスト。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| CELL LINES | |||
| Mouse 4T1 breast carcinoma cells | ADCC | CRL-2539 | Growth medium: DMEM + 10 % heat-inactivated FBS |
| PLASTIC WARES AND EQUIPMENTS | |||
| 24-well Tissue Culture Plate | Falcon | 353047 | Sterile |
| 100 mm Tissue Culture Plate | Corning | 430167 | Sterile |
| 25 cm2 Tissue Culture Flask | Nunc | 156340 | Sterile |
| 90 mm Bacterial Grade Culture Dish | Miniplast, Ein Shemer, Israel | 20090-01-017 | Sterile |
| 15 ml Sterile Conical Centrifuge Tube | Miniplast, Ein Shemer, Israel | 835015-40-111 | Sterile |
| 50 ml Sterile Conical Centrifuge Tube | Miniplast, Ein Shemer, Israel | 835050-21-111 | Sterile |
| Falcon 12 x 75 mm Round-Bottom Polystyrene Tube | Becton Dickinson | 352058 | Sterile |
| Millicell 24 Migration Plate with a pore size of 5μm | Merck Millipore | PSMT010R1 | Sterile |
| White 96-Flat-Bottom Well Plate | Costar | 3917 | Sterile |
| Cell Strainer (40 mm) | BD Falcon | 352340 | Sterile |
| 20G x 1.5" Needle | BD Microlance 3 | 301300 | Sterile |
| 23G x 1" Needle | BD Microlance 4 | 300800 | Sterile |
| 25G x 5/8" Needle | BD Microlance 5 | 300600 | Sterile |
| 0.3 ml Syringe with a 30G x 8mm Needle | BD Micro-Fine Plus Demi | 320829 | Sterile |
| 9 mm Clips | BD, AutoClip | 427631 | Sterile |
| EasySep Magnet | STEMCELL Technologies | 18000 | |
| MACS LS Separation Column | Miltenyi Biotech | 130-042-201 | Sterile |
| MidiMACS Separator Magnet | Miltenyi Biotech | 130-042-302 | |
| MACS MultiStand | Miltenyi Biotech | 130-042-303 | |
| Microscope Glass Slide | Menzel-Gläser Superfrost Plus Thermo | J1800AMNZ | |
| Orbital Shaker | Sky line, ELMI | S-3.02.10L | |
| Plate Reader | TECAN | InfiniteF200Pro | |
| POWDER | |||
| Bovine serum albumin (BSA), fraction V | Sigma | A7906 | |
| Bromodeoxyuridine (BrdU) | BD Pharmingen | 550891 | Sterile |
| CFSE (5-(and 6-)-Carboxyfluorescein diacetate, succinimidyl ester) | Molecular Probes | C1157 | |
| Dextran T500 | Sigma | 31392 | |
| Heparin sodium salt from porcine intestinal mucosa | Sigma | H3149 | |
| Sodium azide (NaN3) | Sigma | S8032 | Highly toxic, handle with care |
| Thioglycollate powder | Difco | 225650 | |
| Zymosan A | Sigma | Z4250 | |
| MEDIA AND SUPPLEMENTS | |||
| Dulbecco's modified Eagle medium (DMEM) | Sigma | D5796 | Sterile |
| Opti-MEM® I reduced serum medium | Life Technologies | 31985062 | Sterile |
| Roswell Park Memorial Institute (RPMI)-1640 medium | Sigma | R8758 | Sterile |
| Foetal bovine serum (FBS), heat-inactivated | Sigma | F9665 | Sterile |
| L-Glutamine | Biological Industries, Beth HaEmek, Israel | 03-020-1A | Sterile |
| Sodium pyruvate | Biological Industries, Beth HaEmek, Israel | 03-042-1B | Sterile |
| Penicillin Streptomycin x 1000 solution | Biological Industries, Beth HaEmek, Israel | 03-031-5 | Sterile |
| Phosphate buffered saline (PBS) without Mg2+ and Ca2+ | Biological Industries, Beth HaEmek, Israel | 02-023-1 | Sterile |
| PBS x 10 without Ca2+ and Mg2+ | Biological Industries, Beth HaEmek, Israel | 02-023-5A | Sterile |
| HPLC grade water | J.T. Baker | 4218-03 | Autoclave |
| SOLUTIONS | |||
| ACK – Ammonium-Chloride-Potassium | Life Technologies | A10492-01 | |
| Bromodeoxyuridine (BrdU) solution (10 mg/ml) in PBS | Dissolve 10 mg of BrdU in 1 ml PBS and sterile filter. | ||
| CFSE, 5 mM in DMSO | Dissolve 2.8 mg of CFSE in 1 ml DMSO. Divide into 10 ml aliquots in sterile 200 ml tubes and store in the dark at -20oC. | ||
| Eosin Y solution | Sigma | HT110-2-32 | |
| Hanks' balanced salt solution | Biological Industries, Beth HaEmek, Israel | 02-016-1A | Sterile |
| Heparin, 20 mg/ml in PBS | Dissolve 100 mg Heparin in 5 ml sterile PBS, and sterile filter through a 0.2 mm filter. | ||
| Histopaque-1119 | Sigma | 11191 | Sterile filter through a 0.2 mm filter. |
| Histopaque-1077 | Sigma | 10771 | Sterile filter through a 0.2 mm filter. |
| Luciferase cell culture lysis buffer x5 | Promega | E153A | Dilute 1:5 in sterile water just before use. |
| Luciferase assay solution | Promega | E1501 | Contains luciferase assay substrate powder (E151A) and luciferase assay buffer (E152A) |
| Mayer's Hematoxylin solution | Sigma | MHS-32 | |
| PBS + 0.5% BSA | Dissolve 2.5 g BSA in 500 ml PBS, and sterile filter through a 0.2 mm filter. | ||
| PBS + 1% BSA | Dissolve 1g BSA in 100 ml PBS, and sterile filter through a 0.2 mm filter. | ||
| 5x PBS with 2.5% BSA | Dissolve 12.5g BSA in a mixture of 250 ml sterile HPLC-grade water and 250 ml PBSx10, and sterile filter through a 0.2 mm filter. | ||
| PBS containing 0.5% BSA and 2 mM EDTA | Dissolve 250 mg BSA in 50 ml sterile PBS and add 200 ml of 0.5M EDTA pH 8.0, sterile filter through a 0.2 mm filter. | ||
| FACS buffer (PBS containing 0.5% BSA, 2 mM EDTA and 0.02% NaN3) | Dissolve 250 mg BSA in 50 ml sterile PBS and add 200 ml of 0.5M EDTA pH 8.0 and 500 ml of 2% NaN3, sterile filter through a 0.2 mm filter. | ||
| Saline (0.9% NaCl) | Dissolve 9 g NaCl in 1,000 ml ddw, autoclave | ||
| 0.2% NaCl solution | Dissolve 2 g NaCl in 1,000 ml ddw, autoclave | ||
| 1.6% NaCl solution | Dissolve 16 g NaCl in 1,000 ml ddw, autoclave | ||
| 2 % Sodium azide | Dissolve 1g sodium azide in 50 ml sterile ddw, keep at 4oC. Highly toxic. | ||
| 3% Thioglycollate solution | Dissolve 3 g of thioglycollate powder in 100 ml ddw. Boil until solution becomes yellow and autoclave. | ||
| Trypan blue solution (0.4%) | Sigma | T8154 | Dilute 1:10 in PBS to get a 0.04% solution. |
| Trypsin solution B | Biological Industries, Beth HaEmek, Israel | 03-046-1 | Sterile |
| 1 mg/ml Zymosan A | Resuspend 1 mg Zymosan A in 1 ml sterile PBS in an Eppendorf tube. Vortex vigorously and incubate the tube at 37 oC for 30 min. Do not autoclave. Prepare the solution freshly before use. | ||
| KITS | |||
| EasySep PE selection kit | STEMCELL Technologies | 18557 | |
| EasySep PE selection cocktail | STEMCELL Technologies | 18151 | |
| the EasySep magnetic nanoparticles | STEMCELL Technologies | 18150 | |
| Anti-Ly6G mouse MicroBead Kit | Miltenyi Biotec | 130-092-332 | |
| EasySep Mouse Neutrophil Enrichment Kit | STEMCELL Technologies | 19762 | |
| EasySep Human Neutrophil Enrichment Kit | STEMCELL Technologies | 19257 | |
| FITC BrdU flow kit | BD Pharmingen | 559619 | |
| MACS Neutrophil isolation kit | Miltenyi Biotec | 130-097-658 | |
| Phagocytosis Assay Kit | Cayman Chemical Company | 500290 | |
| ANTIBODIES | |||
| FcR blocking antibody | Biolegend | 101302 | |
| Purified rat anti-Ly6G antibody | BD Pharmingen | 551459 | Clone 1A8 |
| PE-conjugated rat anti-mouse Ly6G antibody | Biolegend | 127608 | Clone 1A8 |
| FITC-conjugated rat anti-mouse Ly6G | BD Pharmingen | 551460 | Clone 1A8 |
| PerCP-Cy5.5 rat anti-mouse Ly6G | TONBO Biosciences | 65-1276 | Clone 1A8 |
| violetFluor 450-conjugated rat anti-mouse Ly6G | TONBO Biosciences | 75-1276 | Clone 1A8 |
| FITC-conjugated rat anti-mouse CD11b | BD Pharmingen | 553310 | Clone M1/70 |
| FITC-conjugated rat anti-mouse Ly-6G and Ly-6C (GR-1) | BD Pharmingen | 553127 | Clone RB6-8C5 |
| PE-conjugated rat anti-mouse CD45 | BD Pharmingen | 553081 | Clone 30-F11 |
| FITC-conjugated rat anti-mouse F4/80 | Abcam | ab60343 | Clone BM8 |
| FITC-conjugated mouse anti-human CD66b | Biolegend | 305103 | Clone G10F5 |
| Purified rat isotype control antibody (IgG2a, k) | BD Pharmingen | 553927 | Clone R35-95 |
| LEAF purified Armenian hamster anti-mouse CD3e antibody | BioLegend | 100314 | Clone 145-2C11 |
References
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