Name: Vorteilhafte Reduzierte Droplet-Oberflächen-Wechselwirkung, um den Transport Bioanalyten in Digitale Mikrofluidik Optimieren (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-10T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 57 s
Description: Erfahren Sie die Herstellung von Field-Dewetting-Geräten zur optimierten Bioanalyt-Transport in digitaler Mikrofluidik. Diese Methode ermöglicht additivfreien Tropfentransport mittels elektrischer Felder für biotechnologische Anwendungen.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wir danken dem Lindbäck Stiftung für die finanzielle Unterstützung und Dr. Alexander Sidorenko und Elza Chu für fruchtbare Diskussionen und technische Unterstützung, und Professor Robert Smith für die Unterstützung bei der C. elegans-Assays.

Hinweis: In der unten beschriebenen Verfahren, muss Laboratoriumsrichtlinien befolgt werden. Von besonderer Bedeutung ist die Sicherheit beim Umgang mit Hochspannung (&gt; 500 V) und den Umgang mit Chemikalien. 1. Beschichtung aus einem leitfähigen Substrat mit Kerzenruß <ol><li> Cut Kupfermetall in Rechtecke (75 x 43 mm, 0,5 mm dick). Reinigen Sie jede Kupfersubstrat durch Eintauchen in Kupferätzmittel für etwa 30 sec, waschen mit Leitungswasser für ca. 20 sec, und trocken mit Papier. HINWEIS: Bei Verwendung von Methode 1 unten, ändern Sie die Abmessungen 75 x 25 mm in die Maschine passen. </li><li> Sweep eine beleuchtete Paraffinkerze unter dem Kupfersubstrat für 30-45 sec, um eine annähernd gleichmäßige Rußbeschichtung (ca. 40 &amp; mgr; m dick) zu erhalten. Halten Sie das Substrat bei ~ 1 cm in der Flamme. Die fragile Rußoberfläche nicht berühren. </li></ol> 2. Schutz der Rußschicht mit Coating HINWEIS: Die Rußschicht ist sehr zerbrechlichUnd müssen zum Schutz aufgetragen werden. Zwei einfache Alternativen (Methoden 1 und 2 unten) werden hier vorgeschlagen, aber robuster Protokolle sind derzeit in der Entwicklung. <ol><li> Methode 1 <ol><li> Laden Sie die Probe in den Metallverdampfer oder Sputter-System. Im Anschluss an die Betriebsverfahren des Systems, Kammer evakuieren, und starten Sie kontrollierte Abscheidung von Gold auf der Rußschicht (150-200 nm). Lassen Sie das Gerät abkühlen auf Raumtemperatur. </li><li> Tauchbeschichtung der metallisierten Substrat in einem 1-Dodecanthiol Lösung (1% v / v in 95% igem Ethanol, ACS / USP-Qualität), für 10 min in einer chemischen Haube. Dann halten Sie das Gerät in einem Winkel von fast 60 °, vorsichtig waschen Sie die Oberfläche mit mehreren Tröpfchen von nur Ethanol. Lassen Sie die Geräte trocken, über Nacht. </li></ol></li><li> Methode 2 <ol><li> In einer chemischen Haube, unmittelbar nach der Beschichtung des Substrats mit Ruß und, während das Substrat noch warm vom Kerzenflamme, abzuscheiden einige Tröpfchen des fluorierten Flüssigkeit auf eine Seite desSubstrat und Kippen des Substrats in einem Winkel nahe 90 °. Zahlen Sie mehr Tröpfchen, und lassen Sie sie über die gesamte Ruß Oberfläche rollen. HINWEIS: Wenn das Tröpfchen auf einen Punkt fällt, wird Ruß weg von diesem Bereich ausgewaschen werden. Ließ die Tröpfchen des fluorierten flüssigen Ausbreitung so viel wie möglich. </li><li> Bake Substrats auf einer heißen Platte (160 ° C für 15 min) in einer chemischen Haube. </li><li> Lassen Sie das Substrat sitzen über Nacht bei Raumtemperatur vor der Verwendung. Bewahren Sie unbestimmte Zeit. </li></ol></li></ol> 3. Herstellung von Deckelektroden (von Abdelgawad et al angepasst. 12) <ol><li> Zeichnen mit Grafikdesign-Software, die Elektroden. Jede Elektrode ist 2 mm lang, 0,3 mm breit und der Abstand zwischen den Elektroden beträgt 0,3 mm. Der Spalt zwischen den Kontakten (in den Verbinder einrasten, siehe unten) ist 2,3 mm (Bild 1). </li><li> Trim ein flexibles Kupferlaminat (35 &amp; mgr; m dick) in den Monarch-Format (3,87 x 7,5 Zoll). Verwenden Sie andere Größen if mit dem Drucker kompatibel. Laden Sie das Laminat in die manuelle Zuführung eines Farbdruckers. </li><li> Achten Sie darauf, &quot;reichen schwarzen&quot; oder &quot;Registrierung black&quot; zu verwenden, wenn Sie auf der Kupferblech (siehe Abdelgawad et al. 12 für Details), um eine dichtere Schicht von schwarzer Tinte auf dem Kupfersubstrat zu ermöglichen, den Schutz der gedruckten Muster beim Ätzen . Lassen Sie das bedruckte Substrat vollständig trocknen, über Nacht. </li><li> Innerhalb einer chemischen Abzugshaube, erwärmen (40 ° C) ein Becherglas mit 50 ml Kupferätzmittel. Tauchen Sie die gedruckte Laminat im Becher, und schütteln Sie sie vorsichtig in die Lösung für ca. 10 min. Ätzzeit hängt von der Kupfer Ätzlösung. Alle paar Minuten, überprüfen Sie die Korrosion und sehen, ob das Muster intakt ist. </li><li> Das Laminat vorsichtig mit Wasser waschen, und die Beschichtung zu entfernen mit Aceton und Ethanol in der chemischen Kapuze. Einmal waschen und vorsichtig trocken das Laminat mit einem Papiertuch. </li><li> Vorsichtig legen die Laminat mit Elektroden an einen glass Schieber (75 x 25 mm, ca. 1 mm Dicke), mit doppelseitigem Klebeband. Vermeiden Sie Lufteinschlüsse. </li><li> Bringen Sie einen Film aus Perfluoralkoxy PFA um mit Klebeband den Elektroden. Dies dient dazu, um versehentlichen Kontakt der Elektroden mit dem Tröpfchen, verhindern die oberen Elektroden Schäden durch Kurzschluss. </li></ol> 4. Die elektronische Schnittstelle (Circuit in Figur 2) <ol><li> Löten Sie die Relais und die Kondensatoren C zu einer universellen Platine. </li><li> Montieren Sie den Rest der 10 Relaistreiber auf einem Steckbrett für elektronische Schaltungen. </li><li> Drahteingang jedes Relais Fahrers auf einem Kanal in der Steuerplatine. </li><li> Vorsichtig lassen Sie die oberen Elektroden in einen Verbinder (Abbildung 3). Draht-Ausgang jedes Relais Fahrers zu einer oberen Elektrode, wie in der Figur gezeigt. Beachten Sie, dass es eine geerdete Steckerkontakt zwischen einem Paar von Drähten aus Relais, um elektrische Störungen zu minimieren. HINWEIS: Der Stecker sitzt auf einem einstellbaren Plattform zu kontrollieren ter Abstand (0,1 bis 0,5 mm) zwischen oben und unten (Ruß-beschichtet) Substrat. </li><li> Ein Programm verwenden, um die Zeitmessung für die Hochspannung (HV) Anwendung (etwa 0,8 s) bis 4-Elektroden zur gleichen Zeit zu steuern, Schaltelektrode 1 in der Bewegungsrichtung (dh für 0,8 sec betätigen, 1234, dann 2345 3456, etc. ., 0,8 s für jede Gruppe, und dann nach hinten, so dass Tröpfchen bewegt sich in die entgegengesetzte Richtung als auch). </li></ol> 5. Droplet Visualisierung und Handhabung <ol><li> Um Tröpfchenbewegung aufzeichnen, verwenden Sie das Visualisierungssystem, das aus einem 24X zusammensetzt - 96X Vergrößerung Montage kombiniert mit einer CCD-Kamera. Schließen Sie den Videorecorder an die Kamera mit S-Video. </li><li> Pipettieren Sie 4 ul Tröpfchen enthält C. elegans in Medien auf den Boden des Ruß-beschichteten Substrat. </li><li> Bringen Sie die oberen Elektroden auf ~ 0,3 mm über der Tröpfchen. Das Tröpfchen sollte nahe der Mitte, direkt unterhalb des fünften Elektrode, die Bedienung zu erleichtern werden. </li><li> Schalten Sie die elektronische Schnittstelle und Hochspannung (500 V RMS), und stellen Sie die obere Elektrode Abstand zur Tröpfchen bis es beginnt sich zu bewegen. Lassen Sie sich nicht die oberen Elektroden berühren Sie die Tropfen. </li><li> Sammeln von Daten durch Aufzeichnen der Anzahl der erfolgreichen Tröpfchentransfers auf dem Gerät als Reaktion auf elektrische Impulse. Ein erfolgreiches Experiment wird von mindestens 700 Tröpfchentransfers gekennzeichnet, dh ein Transfer nach jedem elektrischen Impuls. </li><li> Sammeln Daten kontinuierlich, bis die Tröpfchen nicht mehr als Antwort zu bewegen, um 5 bis 10 Pulsen. HINWEIS: Wenn die Oberfläche beginnt, sich zu verschlechtern, könnte Bewegung, indem die oberen Elektroden näher an der Tröpfchen wiederhergestellt werden. </li></ol>

<ol><li>Fair, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digital+microfluidics%3A+is+a+true+lab-on-a-chip+possible%5BTitle%5D)+AND+%22Microfluid+Nanofluid%22%5BJournal%5D)">Digital microfluidics: is a true lab-on-a-chip possible.</a> Microfluid Nanofluid. 3 (3), 245-281 (2007).</li>
<li>Gupta, S., Alargova, R. G., Kilpatrick, P. K., Velev, O. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On-Chip+Dielectrophoretic+Coassembly+of+Live+Cells+and+Particles+into+Responsive+Biomaterials%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">On-Chip Dielectrophoretic Coassembly of Live Cells and Particles into Responsive Biomaterials.</a> Langmuir. 26 (5), 3441-3452 (2009).</li>
<li>Shih, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dried+blood+spot+analysis+by+digital+microfluidics+coupled+to+nanoelectrospray+ionization+mass+spectrometry%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Chem%22%5BJournal%5D)">Dried blood spot analysis by digital microfluidics coupled to nanoelectrospray ionization mass spectrometry.</a> Anal Chem. 84 (8), 3731-3738 (2012).</li>
<li>Gorbatsova, J., Borissova, M., Kaljurand, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrowetting-on-dielectric+actuation+of+droplets+with+capillary+electrophoretic+zones+for+off-line+mass+spectrometric+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Chromatogr%22%5BJournal%5D)">Electrowetting-on-dielectric actuation of droplets with capillary electrophoretic zones for off-line mass spectrometric analysis.</a> J Chromatogr. 1234 (0), 9-15 (2012).</li>
<li>Qin, J., Wheeler, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maze+exploration+and+learning+in+C.+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Maze exploration and learning in C. elegans.</a> Lab Chip. 7 (2), 186-192 (2007).</li>
<li>Koc, Y., de Mello, A. J., McHale, G., Newton, M. I., Roach, P., Shirtcliffe, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nano-scale+superhydrophobicity%3A+suppression+of+protein+adsorption+and+promotion+of+flow-induced+detachment%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Nano-scale superhydrophobicity: suppression of protein adsorption and promotion of flow-induced detachment.</a> Lab Chip. 8 (4), 582-586 (2008).</li>
<li>Perry, G., Thomy, V., Das, M. R., Coffinier, Y., Boukherroub, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibiting+protein+biofouling+using+graphene+oxide+in+droplet-based+microfluidic+microsystems%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Inhibiting protein biofouling using graphene oxide in droplet-based microfluidic microsystems.</a> Lab Chip. 12 (9), 1601-1604 (2012).</li>
<li>Kumari, N., Garimella, S. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrowetting-Induced+Dewetting+Transitions+on+Superhydrophobic+Surfaces%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Electrowetting-Induced Dewetting Transitions on Superhydrophobic Surfaces.</a> Langmuir. 27 (17), 10342-10346 (2011).</li>
<li>Freire, S. L. S., Tanner, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Additive-Free+Digital+Microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Additive-Free Digital Microfluidics.</a> Langmuir. 29 (28), 9024-9030 (2013).</li>
<li>Deng, X., Mammen, L., Butt, H. -J., Vollmer, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Candle+Soot+as+a+Template+for+a+Transparent+Robust+Superamphiphobic+Coating%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Candle Soot as a Template for a Transparent Robust Superamphiphobic Coating.</a> Science. 335, 67-70 (2011).</li>
<li>Kang, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+Electrostatic+Fields+Change+Contact+Angle+in+Electrowetting%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">How Electrostatic Fields Change Contact Angle in Electrowetting.</a> Langmuir. 18 (26), 10318-10322 (2002).</li>
<li>Abdelgawad, M., Watson, M. W. L., Young, E. W. K., Mudrik, J. M., Ungrin, M. D., Wheeler, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Soft+lithography%3A+masters+on+demand%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Soft lithography: masters on demand.</a> Lab Chip. 8 (8), 1379-1385 (2008).</li>
<li>Barbulovic-Nad, I., Yang, H., Park, P. S., Wheeler, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digital+microfluidics+for+cell-based+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Digital microfluidics for cell-based assays.</a> Lab Chip. 8 (4), 519-526 (2008).</li>
<li>Brenner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genetics+of+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">The genetics of Caenorhabditis elegans.</a> Genetics. 77 (1), 71-94 (1974).</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen haben.

Der wichtigste Schritt des Protokolls ist der Schutz der Rußschicht, direkt mit dem Erfolg beim Bewegen Tröpfchen verbunden. Metallisieren der Russschicht (Methode 1 oben) können nahezu 100% der Herstellungs Erfolg. Jedoch ist die maximale Betriebsdauer 10 min; möglicherweise werden Tröpfchen Fraktionen Benetzen der Ruß durch Löcher in der Metallschicht. Beschichten der Rußschicht mit dem fluorierten Flüssigkeit ist die einfachste und schnellste Alternative und erfordert minimalen Ressourcen, aber nur 40-50% der hergest...

Die Miniaturisierung von Vorrichtungen, die mit Flüssigkeiten arbeiten, ist von größter Bedeutung für die Entwicklung des &quot;lab-on-a-chip&quot; Plattformen. In dieser Richtung haben sich in den letzten zwei Jahrzehnten einen bedeutenden Fortschritt auf dem Gebiet der Mikrofluidik erlebt, mit einer Vielzahl von Anwendungen. 1-5 Kontrast mit dem Transport von Flüssigkeit in geschlossenen Kanälen (Kanal Mikrofluidik), DMF manipuliert Tröpfchen auf Arrays von Elektroden. Einer der attraktivsten Vorzüge dieser Technik ist das Fehlen von beweglichen Teilen, um Flüssigkeiten zu transportieren, und die Bewegung wird sofort durch Ausschalten von elektrischen Signalen angehalten. Jedoch ist Tröpfchenbewegung abhängig Tröpfchen Inhalt sicher eine unerwünschte Eigenschaft für ein universelles &quot;lab-on-a-chip&quot; Plattform. Tröpfchen, die Proteine ​​und andere Analyten bleibe Gerät Flächen, zu unbeweglich. Wohl hat sich diese für die Ausweitung der DMF-Anwendungen war die große Einschränkung; 6-8Alternativen zu den unerwünschten Oberflächenverschmutzung zu minimieren beinhalten die Zugabe von zusätzlichen chemischen Spezies an das Tröpfchen oder seiner Umgebung, die möglicherweise Tröpfchengehalt beeinträchtigen könnten. Früher entwickelte unsere Gruppe eine Vorrichtung, um den Transport von Zellen und Proteinen in DMF zu ermöglichen, ohne zusätzliche Additive (Field-DW-Geräte). 9. Dies wurde durch Kombinieren einer Oberfläche, bezogen auf Kerze Ruß, 10 mit einer Vorrichtung, die Tröpfchengeometrie begünstigt erreicht Walz und führt zu einer nach oben gerichteten Kraft auf das Tröpfchen, weiter verringert Tröpfchenoberflächenwechselwirkung. In diesem Ansatz wird Tröpfchenbewegung mit Oberflächenbenetzung verbunden ist. 11 Ziel des nachfolgend beschriebenen detaillierten Verfahrens ist es, eine Vorrichtung DMF transportieren kann Tröpfchen enthaltende Proteine, Zellen und ganzen Organismen zu erzeugen, ohne zusätzliche Additive. The Field-DW-Geräte ebnen den Weg für völlig gesteuerten Plattformen weitgehend unabhängig arbeiten von Tröpfchen Chemikerry. Auch hier haben wir vorliegenden Simulationen zeigen, dass trotz der hohen Spannung zum Betrieb der Vorrichtung erforderlich ist, der Spannungsabfall über dem Tröpfchen ist ein kleiner Bruchteil der angelegten Spannung, was vernachlässigbare Auswirkungen auf Bioanalyten innerhalb des Tropfens. In der Tat, Vorversuche mit Caenorhabditis elegans (C. elegans), eine Nematode für eine Vielzahl von Studien in der Biologie verwendet, zeigen, dass Würmer schwimmen ungestört Spannungen angelegt werden.

<table><tbody><tr><td>Paraffinkerze</td><td></td><td></td><td>Jede Paraffinkerze</td></tr><tr><td>Sputtersystem</td><td>Denton Vacuum, Moorestown, NJ</td><td></td><td>Sputterbeschichter Desk V HP mit einem Au-Target.</td></tr><tr><td>1-Dodecanthiol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>471364</td><td></td></tr><tr><td>Teflon</td><td>Dupont</td><td>AF-1600</td><td></td></tr><tr><td>Fluorinert FC-40</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F9755</td><td>Fluorierte Flüssigkeit: Bereiten Sie das Teflon-AF-Harz in Fluorinert FC-40, 1:100 (w/w) vor, um die hydrophobe Beschichtung zu erzeugen.</td></tr><tr><td>Grafikdesign-Software -Adobe Illustrator</td><td>Adobe Systems</td><td></td><td>Andere Softwares können ebenfalls verwendet werden.</td></tr><tr><td>Kupferlaminat</td><td>Dupont</td><td>LF9110</td><td></td></tr><tr><td>Laser Printer</td><td>Xerox</td><td>Phaser 6360 oder ähnlich</td><td>Prüfen Sie die Kompatibilität mit "Rich Black" oder "Registration Black" (siehe Text).</td></tr><tr><td>Kupfer Ätzmittel</td><td></td><td>CE-100</td><td></td></tr><tr><td>Perfluoralkoxy (PFA) Folie</td><td>McMaster-Carr</td><td>84955K22</td><td></td></tr><tr><td>Breadboard</td><td>Allied Electronics</td><td>70012450 oder ähnlich</td><td>Groß genug, um den Zusammenbau von 10 Treibern zu ermöglichen.</td></tr><tr><td>Universalplatine</td><td>Allied Electronics</td><td>70219535 oder ähnlich</td><td></td></tr><tr><td>Steckverbinder</td><td>Allied Electronics</td><td>5145154-8 oder ähnlich</td><td></td></tr><tr><td>Steuerplatine und Steuerungsprogramm (LabView-Software)</td><td>National Instruments</td><td>NI-6229 oder ähnlich</td><td></td></tr><tr><td>Hochspannungsverstärker</td><td>Trek</td><td>PZD700</td><td></td></tr><tr><td>Kondensatoren C und C1, 100 nF, 60 V</td><td>Allied&nbsp;</td><td></td><td></td>8817183</tr><tr><td>Transistor T, NPN</td><td>Alliiert&nbsp;</td><td></td><td></td>9350289</tr><tr><td>Diode D, 1N4007</td><td>Alliiert&nbsp;</td><td></td><td></td>2660007</tr><tr><td>Relais&nbsp;</td><td>Alliierte&nbsp;</td><td></td><td></td>8862527</tr><tr><td>Visualisierungssystem</td><td>Edmund Optics</td><td>VZM 200i oder ähnlich</td><td>Systemvergrößerung 24X &#8211; 96X. Es wird mit einer Hitachi KP-D20B 1/2 in CCD-Farbkamera kombiniert.</td></tr><tr><td>Recorder</td><td>Sony</td><td>GV-D1000 NTSC oder ähnlich</td><td>Es ist über ein S-Videokabel mit der Kamera verbunden.</td></tr><tr><td>Simulationen</td><td>COMSOL Multiphysics</td><td>V. 4.4</td><td></td></tr></tbody></table>

vorteilhafte reduzierte droplet-oberflächen-wechselwirkung, um den transport bioanalyten in digitale mikrofluidik optimieren

Taking Advantage of Reduced Droplet-surface Interaction to Optimize Transport of Bioanalytes in Digital Microfluidics

Digitale Mikrofluidik (DMF), eine Technik zur Manipulation von Tröpfchen, ist eine vielversprechende Alternative für die Entwicklung von "Lab-on-a-Chip"-Plattformen. Oft beruht die Tröpfchenbewegung auf der Benetzung einer Oberfläche, die direkt mit der Anwendung eines elektrischen Feldes verbunden ist. Oberflächenwechselwirkungen machen die Bewegung jedoch vom Tröpfchengehalt abhängig, was die Anwendungsbreite der Technik einschränkt.
Einige Alternativen wurden vorgestellt, um diese Abhängigkeit zu minimieren. Sie sind jedoch auf die Zugabe zusätzlicher chemischer Spezies zum Tröpfchen oder seiner Umgebung angewiesen, die möglicherweise mit Tröpfcheneinheiten interagieren könnten. Um diese Herausforderung anzugehen, hat unsere Gruppe kürzlich Field-DW-Geräte entwickelt, die den Transport von Zellen und Proteinen in DMF ohne zusätzliche Zusatzstoffe ermöglichen.
Hier wird das Protokoll für die Herstellung und den Betrieb des Geräts bereitgestellt, einschließlich der elektronischen Schnittstelle für die Bewegungssteuerung. Wir setzen auch die Studien mit den Geräten fort und zeigen, dass auch mehrzellige, relativ große Modellorganismen transportiert werden können, wohl unbeeinflusst von den elektrischen Feldern, die für den Betrieb der Geräte erforderlich sind.

Zuvor haben wir Feld DW Vorrichtungen verwendet, um die Bewegung von Proteinen in DMF zu ermöglichen. Insbesondere könnte Tröpfchen mit Rinderserumalbumin (BSA) in einer Konzentration 2.000 mal höher als zuvor berichtet auch von anderen Autoren (ohne Zusätze) bewegt werden. Dies war aufgrund der reduzierten Wechselwirkung zwischen Tropfen und Oberfläche; Figur 4 zeigt ein Tröpfchen enthaltenden fluoreszenzmarkierten BSA (siehe 9 für weitere Informationen zu den Experimenten Freire et al.)...

Das Protokoll für die Herstellung und den Betrieb von Feldentnetzungsgeräten (Field-DW) wird beschrieben, sowie die vorläufigen Studien über die Auswirkungen elektrischer Felder auf den Tröpfchengehalt.

Vorteilhafte Reduzierte Droplet-Oberflächen-Wechselwirkung, um den Transport Bioanalyten in Digitale Mikrofluidik Optimieren

Digital microfluidics (DMF), a technique for manipulation of droplets, is a promising alternative for the development of &#8220;lab-on-a-chip&#8221; ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens ist es, eine Feldentnetzungsvorrichtung herzustellen, die in der Lage ist, Tröpfchen mit Bioanalyten ohne Zusatzstoffe zu transportieren. Dies wird erreicht, indem zunächst ein leitfähiges Substrat mit Kerzenruß beschichtet wird. Das Substrat dient als untere Elektrode des Geräts.Der zweite Schritt besteht darin, die Rußschicht durch das Auftragen von flüssigen Fluorpolymeren zu schützen. Stellen Sie als Nächstes die oberen Elektroden des Geräts her. Verbinden Sie dann die obere und untere Elektrode mit der Elektronik des Experiments.Der letzte Schritt besteht darin, eine Probe zwischen die Elektroden zu legen, um das Gerät zu testen. Letztendlich zeigen die Ergebnisse, dass Feldentnetzungsgeräte einen kontinuierlichen Tröpfchentransfer als Reaktion auf jeden elektrischen Impuls für mindestens 700 Impulse unterstützen können. Der Hauptvorteil dieser Technik gegenüber bestehenden Methoden wie der Elektrobenetzung besteht darin, dass das elektrische Feld nicht zur Benetzung führt und keine zusätzlichen Additive für den Tröpfchentransport erforderlich sind.Die Implikation dieser Technik erstreckt sich auf die Entwicklung eines vollautomatischen Labors auf einer Chip-Plattform, das unabhängig von der Tröpfchenchemie funktioniert. Die Verfahren werden von Michael Kowski und Selena demonstriert, die Forscher aus meinem Labor betreiben. Der erste Schritt besteht darin, das leitfähige Substrat für die Masseelektrode vorzubereiten. Zu diesem Zweck wurde ein Kupferblech in Rechtecke geschnitten.Die Rechtecke sind 75 Millimeter mal 43 Millimeter groß und 0,5 Millimeter dick. Fertig, Ein Behälter mit Kupferätzen, um die Substrate zu reinigen. Dieses Video folgt dem Protokoll und verwendet nur ein Substrat.Tauchen Sie das Substrat für ca. 30 Sekunden in die Ätzung. Nach dem Eintauchen das Substrat zurückgewinnen und durch Laufen waschen. Gießen Sie Wasser darüber, trocknen Sie es mit Papier ab und legen Sie es vor dem Fortfahren horizontal auf eine Stütze, die den Zugang zu seiner nach unten gerichteten Oberfläche ermöglicht.Für dieses Video wird ein montierter offener Ring verwendet. Halten Sie eine Mischung aus flüssigem Fluorpolymer und einer Pipette für die Anwendung bereit. Besorgen Sie sich eine Paraffinkerze, um den Ruß bereitzustellen, der aufgetragen wird.Zünden Sie sie an und fahren Sie fort, indem Sie die Kerze unter das Kupfersubstrat streichen. Halten Sie die Oberseite der Flamme etwa einen Zentimeter unter der Unterseite des Substrats. Schwenken Sie die Kerze 30 bis 45 Sekunden lang weiter.Achten Sie darauf, die Rußoberfläche nicht zu berühren. Nachdem Sie das Substrat mit Ruß bestzogen haben, entfernen und löschen Sie die Kerze sofort. Fasse das Substrat mit einer Pinzette an und drehe es, um die rußbedeckte Seite freizulegen.Während es noch warm ist, mit einer Pipette Tröpfchen des flüssigen Fluorpolymers an den Rändern abscheiden, um die Störung der Rußschicht zu lokalisieren. Sobald die Tropfen aufgetragen wurden, kippen Sie den Untergrund so, dass er fast senkrecht steht. Geben Sie dann weitere Tröpfchen ab und lassen Sie sie über die gesamte Rußoberfläche rollen und verteilen Sie sie.So viel wie möglich. Fahren Sie fort, indem Sie das Substrat auf eine heiße Platte bringen, die bei 160 Grad Celsius gehalten wird. Legen Sie das Substrat ebenfalls mit der Rußseite nach oben auf eine heiße Platte, um es 15 Minuten lang zu backen.Nehmen Sie nach 15 Minuten das Substrat von der Heizplatte und lassen Sie es über Nacht bei Raumtemperatur ruhen, bevor Sie es als untere Elektrode verwenden. Das Substrat kann unbegrenzt gelagert werden, wenn die Masseelektrode einsatzbereit ist. Der nächste Schritt ist die Vorbereitung der oberen Elektroden.In diesem Video werden Elektroden verwendet, die nach einem Protokoll aus der Literatur hergestellt wurden. Das Elektrodendesign wurde auf ein dünnes Kupferlaminat gedruckt, geätzt und gereinigt, um an diesen Punkt zu gelangen. Jede der 10 Elektroden ist zwei Millimeter breit und 0,3 Millimeter breit.Die Elektroden werden auf einem Glasobjektträger montiert, der 75 Millimeter mal 25 Millimeter groß und etwa einen Millimeter dick ist. Bringen Sie doppelseitiges Klebeband an einem Ende des Objektträgers an und vermeiden Sie Lufteinschlüsse. Befestigen Sie dann das Laminat vorsichtig an der Folie, so dass die Elektroden nahe am Rand liegen.Schneiden Sie als nächstes ein Stück pro Fluor al coy Folie etwa in der Breite der Folie ab. Legen Sie die Folie über die Elektroden, um versehentliche Kurzschlüsse zu vermeiden. Befestigen Sie es mit Klebeband.Die Elektroden können nun mit der elektronischen Schnittstelle verwendet werden. Nehmen Sie sowohl die obere als auch die untere Elektrode mit in den Versuchsaufbau, um die Feldbenetzungsvorrichtung zu vervollständigen. Im Versuchsaufbau wird die untere Elektrode elektrisch geerdet.Darüber sind die oberen Elektroden über einen höhenverstellbaren Stecker mit Relais verbunden. Steuern Sie das Mikrofluidik-Gerät mit einem Computerprogramm, das ein Tröpfchen zwischen benachbarten Elektroden bewegt. In diesem Experiment wird die Bewegung von Tröpfchen in der Mikrofluidik visualisiert.Verwenden Sie eine Vergrößerungseinheit von 24 bis 96 in Kombination mit einer CCD-Kamera. Schließen Sie mit S Video einen Videorecorder an die Kamera an. Entnehmen Sie an dieser Stelle eine Probe für das Experiment, in diesem Fall C elegance und eine mittlere Pipette von vier Mikrolitern Tröpfchen.Platzieren Sie das Tröpfchen so auf der rußbeschichteten unteren Elektrode, dass es sich in der Mitte der oberen Elektroden befindet. Stellen Sie dann die Position der oberen Elektroden so ein, dass sie sich etwa 0,3 Millimeter über dem Tröpfchen befinden. Wenn die elektronische Schnittstelle und die Hochspannung eingeschaltet sind, stellen Sie die Höhe der oberen Elektrode ein, bis sich der Tropfen zu bewegen beginnt.Lassen Sie die Elektrode nicht mit dem Tröpfchen in Berührung kommen. Sobald die Tröpfchenbewegung stabil ist, beginnen Sie mit der Aufnahme mit der Kamera, bis sich das Tröpfchen als Reaktion auf fünf bis 10 Impulse nicht mehr bewegt. Dieses Video zeigt die erfolgreiche Übertragung von C elgan in Medium zwischen den Elektroden eines Feldduetierungsgeräts.Frühere Arbeiten mit fluoreszenzmarkiertem Rinderserumalbumin oder BSA helfen dabei, die Wechselwirkung zwischen Proben und dem Substrat links zu demonstrieren. Der BSA sitzt auf einer rußbeschichteten Oberfläche, im Gegensatz dazu rechts auf einer Oberfläche, die nur mit einer fluorierten Flüssigkeit verwendet wird. Die BSA-Probe zeigt eine starke Oberflächenwechselwirkung.Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie man die Hochzeitsgeräte herstellt und fühlt. Vergessen Sie nicht, die Sicherheitsrichtlinien des Labors zu befolgen.

taking-advantage-reduced-droplet-surface-interaction-to-optimize

Research

Forschung

JoVE Journal

Engineering

Ingenieurwesen

Digitale Mikrofluidik ist eine Technik, durch die Manipulation von diskreten Tröpfchen (~ nL - mL) charakterisiert auf eine Reihe von Elektroden, die durch die Anwendung von elektrischen Feldern. Es ist für die Durchführung schnelle, sequentielle, miniaturisierte automatische biochemische Assays gut geeignet. Hier berichten wir über eine Plattform, die die Automatisierung von mehreren Proteom Verarbeitungsschritte.

Digitale Mikrofluidik für die automatisierte Verarbeitung Proteomic

Droplet-based mikrofluidischen Plattformen sind vielversprechende Kandidaten für einen hohen Durchsatz Experimente, da sie in der Lage, Picoliter, Selbst-compartmentalized Schiffe kostengünstig erzeugen bei kHz Preise sind. Durch die Integration mit schnellen, empfindlichen und hoch aufgelöste Fluoreszenz-spektroskopischen Methoden kann die große Mengen von Informationen in diesen Systemen erzeugt effizient extrahiert werden können, genutzt und verwertet werden.

Fluoreszenz-Nachweisverfahren für Mikrofluidik-Tropfen-Plattformen

Wir haben eine automatisierte Zellkultur und Verhör Plattform für Mikro-Skala-Zell-Stimulation Experimente entwickelt. Die Plattform bietet eine einfache, vielseitige und präzise Kontrolle in den Anbau und die Förderung kleiner Populationen von Zellen und Gewinnen Lysate für molekulare Analysen. Die Plattform wird auch auf Studien, die kostbaren Zellen und / oder Reagenzien geeignet.

Eine vielseitige automatisierte Plattform für Mikro-Skala Handy Stimulation Experimente

Wir präsentieren eine diskrete Tröpfchen Probeneinführungssystem für induktiv gekoppelte Plasma-Massenspektrometrie (ICP-MS). Es basiert auf einem günstigen und Einweg-Mikrofluidik-Chip, hochmonodispersen Tröpfchen von 90 bis 7000 Hz erzeugt in einem Größenbereich von 40 bis 60 &amp; mgr; m bei Frequenzen basiert.

Eines mikrofluidischen Chips für ICPMS Probenaufgabe

Wir beschreiben einen digitalen Endpunkt-Assay zur Quantifizierung von Nukleinsäuren mit einer vereinfachten (analogen) Auslesung. Wir messen die Massenfluoreszenz von tröpfchenbasierten digitalen Assays mit einem Standard-qPCR-Gerät anstelle von speziellen Instrumenten und bestätigen unsere Ergebnisse durch Mikroskopie.

Einfache Massen Auslesen des digitalen Nukleinsäure Quantifizierung Assays

Eine mikrofluidischen Biosensor-Plattform wurde entworfen und hergestellt mit kostengünstigen trocken Photoresist Filmtechnik für die rasche und sensible Quantifizierung der verschiedenen Analyten. Diese Einweg-System ermöglicht das elektrochemische Auslesen der Enzym-linked-Assays auf den Chip immobilisiert mittels der Stop-Flow-Technik.

Trockenen Film Photoresist-basierte elektrochemische mikrofluidischen Biosensor Plattform: Gerät Fertigung, On-Chip-Test Vorbereitung und Systembetrieb

Dieser Artikel stellt ein Protokoll für die Aussaat knappe Bevölkerung der Zellen mittels Pipettenspitzen Tröpfchen mikrofluidischen Geräten um höhere Effizienz der Kapselung von Zellen in Tröpfchen zu bieten.

Eine Pipettenspitze basierte Methode für das Seeding Zellen Tröpfchen mikrofluidischen Plattformen

Elektrowetting-basierte digitale Mikrofluidic ist eine Technik, die eine spannungsgetriebene Änderung des scheinbaren Kontaktwinkels eines Mikroliter-Volumentröpfchens nutzt, um seine Manipulation zu erleichtern. Die Kombination mit funktionalisierten Magnetperlen ermöglicht die Integration mehrerer Laboreinheiten zur Probenvorbereitung und Identifizierung von Krankheitserregern mittels Enzym-linked Immunosorbent Assay (ELISA).

Elektrowetting-basierte Digital Microfluidics Plattform für automatisierte enzymgebundene Immunsorbent Assay

Wir beschreiben ein Schulungspaket, mit dem Benutzer mehrere Experimente durchführen und praktische Erfahrungen mit digitaler Mikrofluidik sammeln können.

Ein vielseitiges Kit basierend auf digitaler Mikrofluidics Droplet-Betätigung für die wissenschaftliche Bildung

Wasser-in-Öl-Tröpfchen-Assays sind nützlich für die analytische Chemie, die Enzymevolution und die Einzelzellanalyse, erfordern jedoch typischerweise Mikrofluidik, um die Tröpfchen zu bilden. Hier beschreiben wir die Partikel-Template-Emulgierung, einen mikrofluidikfreien Ansatz zur Durchführung von Tröpfchenassays.

Partikel-Template-Emulgierung ermöglicht mikrofluidsäurefreie Tröpfchen-Assays

Die Herstellung einer auf Polydimethylsiloxan (PDMS) basierenden Doppelschichtbaurichtung zur Herstellung von kombinatorischen Bibliotheken in Wasser-in-Öl-Emulsionen (Plugs) wird hier vorgestellt. Die notwendige Hard- und Software, die zur Automatisierung der Steckerproduktion erforderlich ist, wird im Protokoll detailliert beschrieben, und die Herstellung einer quantitativen Bibliothek von Leuchtstoffsteckern wird ebenfalls demonstriert.

Zweischichtiges mikrofluidisches Gerät für die kombinatorische Steckerproduktion

Erfahren Sie die Herstellung von Field-Dewetting-Geräten zur optimierten Bioanalyt-Transport in digitaler Mikrofluidik. Diese Methode ermöglicht additivfreien Tropfentransport mittels elektrischer Felder für biotechnologische Anwendungen.

Vorteilhafte Reduzierte Droplet-Oberflächen-Wechselwirkung, um den Transport Bioanalyten in Digitale Mikrofluidik Optimieren

Weitere Videos entdecken