Name: Lebensfähigkeit Bioprinted Cellular Konstrukte unter Verwendung einer Drei Dispenser kartesischen Drucker (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-09-22T16:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 5 s
Description: Erfahren Sie die 3D-Bioprinting-Methode zur Erzeugung lebensfähiger zellbeladener Konstrukte mit komplexer Geometrie. Diese Technik ermöglicht präzise Zellplatzierung für Anwendungen im Tissue Engineering.

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Diese Arbeit wurde durch Unterstützung der Regierung unter Grant No EPS-0903795 von der National Science Foundation, NIH NIDCR R01-DE019355 (MJY PI), und Grant 8P20 GM103444 (YM PI) ausgezeichnet unterstützt.

1. Herstellung von gelatinehaltigen Substrat für dreidimensionale Bioprinting von Alginat Hydrogele <ol><li> Bereiten Sie das Calcium / Gelatine-Substrat nach der von Pataky et al 11 beschrieben, um reduzierten Lebensfähigkeit mit einem hohen Gehalt assoziiert zu vermeiden Calcium / Gelatine-Substrat-Methode. Das Calcium / Gelatinesubstratverfahren ist unten aufgeführt. <ol><li> Kombinieren Calciumchlorid-Dihydrat (1,5 Gew%), Natriumchlorid (0,9 Gew%) und Schweinegelatine (2 Gew%) in destilliertem Wasser und kochen für 2 Minuten, um eine 100 mM Gelatinelösung zu erstellen. </li></ol></li><li> Gießen Sie 5 ml der Gelatine / Calcium-Lösung in 100 mm-Standardpetrischalen, schwenken Sie die Lösung um, um eine gleichmäßige Beschichtung auf der Oberfläche, und auf einer ebenen Fläche im Kühlschrank gelieren O / N (lassen gelieren mindestens 8 h vor der Verwendung). </li><li> Um die Deckkraft der Substratoberfläche zu erhöhen, fügen Titandioxid (0,3 Gew%) zu der Gelatine / CaCl 2 -Lösung. Rühre 10 Minuten. Autoclave die Gelatine / TiO &amp; sub2; -Lösung auf den Flüssigkeitskreislauf 30 min, um es zu sterilisieren. <ol><li> 3 ml der Gelatine / TiO 2 Lösung auf die Oberfläche der zuvor hergestellten Gelatineplatten. Das Gemisch wird gerührt, um sicherzustellen, dass es gleichmäßig über die Oberfläche verteilt wird. Gestatten, in 4ºC Kühlschrank O-Gel / N (erlauben, mindestens 8 Stunden vor der Verwendung Gel). Die Untergründe müssen innerhalb von 3 Tagen verwendet werden. </li></ol></li></ol> 2. Alginate Oxidation <ol><li> Oxidieren das Natriumalginat bioink folgenden das Verfahren zum teilweise oxidierten Alginat Bouhadir et al 30 unten beschrieben. <ol><li> Um eine 5% oxidierte Alginat-Lösung zu machen, lösen sich 1 g Natriumalginat in 100 ml destilliertem Wasser. Hinzufügen einer wässrigen Lösung von Natriumperiodat (0,25 M, 0,25 mmol), das Oxidationsmittel, um eine 5% Oxidationslösung herzustellen. Rühre 19 Stunden bei Raumtemperatur. In 40 ml Ethylenglykol zu der Lösung nach 24 Stunden, um die rea beendenction. </li><li> Aufzulösen 2,5 g Natriumchlorid in der Lösung. Fügen Sie eine überschüssige Menge an Ethylalkohol (Verhältnis 2: 1), um die oxidierten Alginate auszufällen. Zentrifugieren Sie die Lösung bei 1000 · g, um die Niederschläge zu sammeln und wieder auflösen in destilliertem Wasser. Wiederholen Sie den Ethanol waschen. </li><li> Gefrierzutrocknen die oxidierte Alginat-Pellets und bei -20 ° C bis zur Verwendung. </li></ol></li><li> Bestimmen den Grad der Oxidation durch Messen des Prozentsatzes Natriumperiodat, bevor sie vom Ethylenglycol beendet verbraucht. <ol><li> Vorbereitung einer Kaliumiodid-Lösung (20% w / v, pH 7,0, Natriumphosphat-Puffer) und einem thyodene Lösung (10% w / v, pH 7,0 Natriumphosphatpuffer). Vermischt die beiden Lösungen mit dem oxidierten Alginats bei RT. </li><li> Allmählich ab der reagierten Alginat und Natriumperiodat-Lösung zu der Mischung aus Kaliumiodid und theodyne Lösungen. Die Extinktion des Gemisches spektrophotometrisch bei 426 nm. Wenn es erreicht hat, einmaximale, notieren Sie die verwendeten Volumen von Alginat und Natriumperiodat-Lösung als V 1. </li><li> Die Reaktion <img alt="Gleichung 1" fo:content-width="0.8in" src="/files/ftp_upload/53156/53156eq1.jpg" width="120" /> . Die Menge an nicht umgesetztem Natriumperiodat <img alt="Gleichung 1.5" fo:content-width="1.2in" src="/files/ftp_upload/53156/53156eq1.5.jpg" width="150" /></li><li> Subtrahieren der Menge an nicht umgesetztem Natriumperiodat von der ursprünglichen Konzentration, die Menge an Natriumperiodat verbraucht bestimmen. Verwendung der vorherigen Formel, bestimmen die endgültigen Oxidationsgrad des Alginats. </li></ol></li></ol> 3. Alginate Peptidkonjugation <ol><li> Konjugat-Liganden mit einem freiliegenden Arginin-Glycin-Aspartat Sequenz (Peptid) in die zuvor hergestellte oxidierte Alginat durch Befolgen des RGD-Alginat Konjugationsmethode von Rowley et al 31 nachfolgend beschrieben, um die Zellhaftung und die Verbreitung zu fördern. </li><li> Verwenden wässrigen carbodiimide Chemie mit G 4 RGDSPto Konjugat 31. </li><li> Man löst 1 g 5% oxidierte Alginat in einer 0,1 M 2- (N-Morpholino) ethansulfonsäure (MES) -Puffer, pH = 4. 1-Ethyl (dimethylaminopropyl) carbodiimid (EDC, 0,54 mmol) und N-Hydroxysuccinimid ( NHS, 0,27 mmol) in 2: 1-Verhältnis zu bilden Amidzwischenprodukt. </li><li> Hinzufügen 0,28 mmol Peptids Koppeln mit dem Rückgrat des Alginatpolymer über den Anschluß Amin. Es wird bei RT O / N. </li><li> Stoppen der Kupplungsreaktion durch Zusatz von 2,5 g Natriumchlorid zu der Lösung. Fügen Sie eine überschüssige Menge an Ethylalkohol (Verhältnis 2: 1), um die oxidierten Alginate auszufällen. Zentrifugieren der Mischung bei 4.000 xg für 5 min, um die Niederschläge zu sammeln. Aspirieren, die Medien in der Zellkultur Haube und Wiederauflösung des Niederschlags in destilliertem Wasser. Wiederholen Sie den Ethanol waschen. </li><li> Gefrierzutrocknen der Niederschläge, bis es vollständig getrocknet ist (wird als eine weiße pulvrige Substanz erscheinen) und speichert in der -20 ° C Kühlschrank für späterbenutzen. </li></ol> 4. humanem Fettgewebe Stromazellen (hADSC ist) Zellkultur <ol><li> Kultur humanem Fettgewebe Stromazellen (hADSC ist) in 75 cm behandelten Zellkulturflaschen (T75-Flaschen), mit 15 ml low glucose DMEM mit 10% fötalem Rinderserum und 1% Penicillin-Streptomycin, 1% Glutamin und 1% Antimycin bedeckt. Ändern Sie den Medien, in der Zellkultur Kapuze, alle zwei Tage, bis sie Konfluenz (80-90%) erreicht zu haben. </li><li> Sobald konfluent, übertragen Sie die T75-Kolben zu der Zellkultur Kapuze und Aussetzung der hADSC die Verwendung des Trypsin Enzymverdau Methode. <ol><li> In der Haube, saugen die gesamte Zellkulturmedien aus der Zellen. Spülen mit 5 ml Dulbecco-phosphatgepufferter Kochsalzlösung mit Calcium und Magnesium (DPBS ++). Saugen Sie das DPBS ++ Aus der Zellen. </li><li> Während in der Haube, stellen eine Lösung von Trypsin und DPBS ++ durch Mischen von 1 ml Trypsin und 4 ml DPBS ++. Jeder Kolben erfordert 5 ml der SolutIonen, so stellen Sie das entsprechende Volumen für die Anzahl der konfluenten Kolben. 5 ml Trypsin / DPBS ++ zu jedem Kolben und steckte sie in den Inkubator für 2 min. </li><li> Nach 2 min, entfernen Sie die Flaschen und leicht auf die Seiten von ihnen, um die Zellen von den Böden lockern. Schauen Sie sich jeden Kolben unter einem Mikroskop, um sicherzustellen, die Zellen suspendiert sind. Setzen Sie die Kolben zurück in die Zellkultur Kapuze und 3 ml der entsprechenden Zellkulturmedien zu jedem Kolben. Damit endet die Trypsin-Reaktion. </li><li> Übertragen Sie die zellhaltige Medien aus jedem Kolben und in einem 50 ml konischen setzen. Zentrifugieren bei 1.000 xg für 5 min. Die Zellen sollten als kleine weiße Pellet in der Unterseite des konischen angezeigt. Transfer zurück zum Zellkultur Kapuze und saugen Sie den Medien. Resuspendieren der Zellen in 2 ml von Zellkulturmedien. </li><li> Zähle die Zellen unter Verwendung eines Hämozytometers unter dem Mikroskop. Sobald die Zellen gezählt worden sind, in der Kultur Haube, aliquoten die Menge der Medien, die ~ 1,3 million-Zellen und in ein konisches 15 ml. Zentrifuge mit 15 ml konischen den Zellen erneut für 5 min bei 1.000 x g. </li><li> In der Kultur Haube, reseed die restlichen Zellen in mehreren T-75-Kolben, Hinzufügen einer Konzentration von ~ 350.000 Zellen in jeden Kolben. 15 ml DMEM-Medium und zum Brutschrank bis zur Konfluenz wieder. </li><li> Sobald die Zentrifuge Zyklus abgeschlossen ist, geben die 15-ml-Erlen zu der Zellkultur. Saugt den Medien von dem Zellpellet, und Resuspendieren der Zellen in wässrigen Natriumalginatlösung mit einer Konzentration von 1,3 Millionen Zellen pro Milliliter bioink, terteriating der Lösung oft so eine homogene Verteilung der Zellen über die bioink. Laden Sie die zellbeladenen Lösung in einem sterilen Drucker-kompatible 3-ml-Spritze und schrauben Sie die sterile 22 G Spitze aus Kunststoff. </li></ol></li></ol> 5. Bioprinter Setup- <ol><li> Einschalten des bioprinter, wobei jeder der Spender-Computer und dem recirculating Wasserbad. <ol><li> Manuelles Setzen des Umlaufwasserbadtemperatur bis zur Gelierung Mechanismus. </li><li> Druckparameter für jeden Spender auf der korrelierenden Spender Computer manuell einstellen. Stellen Sie den Abgabevolumen auf 230 nl, die Anzahl der Rückschritte auf 0, und die Abgabegeschwindigkeit um 10 ul -sec. </li></ol></li><li> Öffnen Sie die Design-Software und das Programm für die Anzeige der USB-Kamera-Anzeige auf dem Computer. <ol><li> Mit der Software manuell eingeben die Koordinaten für eine 5 x 5 Punkt-Array mit 2,4 mm Abstand zwischen den Tropfen. </li><li> Stellen Sie die Druckparameter zu sein: Abstand zwischen Kopfende und Substratoberfläche = 0,1 mm; Höhen Spritze zwischen Abscheidungen angehoben = 20 mm; die Zeitdauer pro Abscheidungs ​​= 1 Sek. </li><li> Speichern Sie das Programm und senden Sie es an den Roboter. </li></ol></li><li> Legen Sie die Gelatine / TiO 2 -haltigen Petrischale auf der 4 ° C Druckstufe. Schließen und verriegeln Sie die Kammertür. </li><li> Verwenden Sie den PLC INItialize die ultravioletten Lichtquellen und Sterilisieren der Kammer 90 sec. </li><li> Nach der Sterilisation abgeschlossen ist, öffnen Sie die Kammer und laden Sie die Spritze mit hADSC in Alginat in Gun suspendiert 1. Schließen und verriegeln Sie die Kammertür. </li><li> Verwenden Sie die SPS auf dem Lüftersystem drehen, warten Sie 30 Sekunden für das Gleichgewicht Innendruck. </li><li> Auf dem Computer, starten Sie das Programm die geometrischen Weg und Druckparameter enthält. </li><li> Während des gesamten Druckprozess, beobachten Sie die USB-Kamera-Anzeige auf dem Computer, um eine genaue und gleichmäßige Druck bestätigen. </li><li> Wenn der Druckvorgang beendet ist, ermöglichen die Konstrukte, um für 40 Minuten gelieren. </li></ol> 6. Zellrentabilitätsbewertung <ol><li> Decken Sie die Konstrukte, die nicht gehen, um sofort nach dem Drucken in DMEM und Speicher in den Inkubator abgebildet werden bis zum Zeitpunkt der Bildgebung. </li><li> Um die Überlebensfähigkeit der Konstrukte zu quantifizieren, färben sie unter Verwendung eines Fluoreszenz-basierten Lebensfähigkeit / Zytotoxizitätstest einnd Bild mit Hilfe der konfokalen Mikroskopie. <ol><li> Im Anschluss an die Set Anweisungen, bereiten eine Färbelösung, enthaltend Calcein AM und Ethidiumhomodimer-1. Zu 10 ml Farblösung zu machen, fügen Sie 20 ul der Ethidiumhomodimer-1 und 5 ul der Calcein AM zu 10 ml sterilem, Gewebekultur-grade Dulbeccos phosphatgepufferter Salzlösung (+ Magnesium + Calcium; DPBS ++). </li><li> Eintauchen bioprinted Konstrukte im Färbelösung für 15 Minuten im Dunkeln. </li><li> Bild die gefärbten Konstrukte mit einem konfokalen Mikroskop-System an den Tagen 0 und 8. Nehmen Sie mehrere Bilder der einzelnen bioprinted Konstrukt unter Verwendung von Z-Stapel-Parameter der 30 optischen Scheiben über einen 300 &amp; mgr; m Tiefe, und die Zellen manuell zu zählen. Wenn Zellen, gelb oder grün erscheinen, zählen sie als lebendig, und wenn rot, zählen sie wie tot. </li></ol></li><li> Berechnen die Lebensfähigkeit der Zellen in Prozent als die Anzahl der lebenden Zellen, geteilt durch die Gesamtzahl der Zellen in dem Konstrukt; Die Lebensfähigkeit der Zellen = Anzahl derlebenden Zellen (grün + gelb) / Gesamtzahl der Zellen (grün + gelb + rot) x 100%. </li><li> Berechnung der Menge der Zellproliferation für jede Probe als die Zellzahl von Tag 8 geteilt durch die Anzahl von Zellen am Tag 0; Cell Proliferation = Live Zellzahl an Tag 8 / Live-Zellzahl an Tag 0 x 100%. </li></ol> 7. RGD-Peptid Konjugation Analysis <ol><li> Um den Erfolg der RGD-Peptid-Konjugation auf dem Alginat analysieren, die RGD-konjugiertes Alginat und nichtkonjugierten Alginat. Um dies zu Bild die gedruckten Konstrukte der Arbeit (4 &#39;, 6-Diamidino-2-phenylindol, Dihydrochloride) (DAPI) und Phalloidin Flecken. <ol><li> Nehmen Sie die phalloidins Arbeitslösung durch Verdünnen von 5 ul der methanolischen Stammlösung mit 200 ul DPBS ++. Lagerung bei -20 ° C bis zur Verwendung. </li><li> Machen Sie eine 300 &amp; mgr; M Stammlösung des DAPI-Färbung nach der Gleichung: (0,10509 g / L) / (350,3 g / mol) = 3 × 10 -4 M = 0,0003 M = 0,300 mm = 300 &amp; mgr; M. Machen the DAPI Arbeitslösung durch Verdünnen der Stammlösung 1: 100 in DPBS ++ bis 3 &amp; mgr; M Lösung zu erhalten. Lagerung bei -20 ° C bis zur Verwendung. </li></ol></li><li> Vollständig bedeckt die Probe in 4% Paraformaldehyd. Inkubieren für 1 h bei RT. Dreimal mit DPBS ++ waschen, man die Lösung für 5 min bei jedem Wasch sitzen. Übertragen Sie die Gel-Probe aus dem Brunnen auf einen Objektträger aus Glas, Spiegeln das Gel über in den Prozess. Tauchen des Gels in 0,1% Triton X-100 (0,1 g / 100 ml) in DPBS ++ für 10 min. Dreimal mit DPBS ++ waschen, so dass 5 Minuten für jeden Wasch. </li><li> Färben die gedruckte Konstrukte mit Phalloidin von in der Arbeitslösung eingetaucht werden. Mit Folie abdecken und Inkubation für 4 Stunden. Entfernen Sie die Phalloidin-Färbung und dreimal mit DPBS ++. Die erste Wäsche sollte schnell sein, letztere Wäschen sollte für jede 5 Minuten sitzen. </li><li> Färben die gedruckte Konstrukte mit DAPI von in der DAPI-Arbeitslösung eingetaucht werden. Mit Folie abdecken und inkubieren Sie bei Raumtemperatur 30 min. Washdreimal mit DPBS ++, so dass jeder zu waschen, um für 5 Minuten sitzen. Beobachten Sie und Bild der Proben auf einem konfokalen Mikroskop-System. </li></ol>

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</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Der primäre Fokus des Tissue Engineering ist es, die Lücke zwischen Organmangel und Transplantation Bedürfnisse durch die Entwicklung von biologischen Ersatzstoffe zur Wiederherstellung, Erhaltung oder Verbesserung der nativen Gewebe functio brücken. Dies hat zur direkten Herstellung von Gerüsten mit einem komplexen, anatomisch korrekte Außengeometrie und eine genaue Kontrolle über den internen geometr geführt. Dreidimensionale Bioprinting ist eine Methode zur Erzeugung von dreidimensionalen Konstrukte in verschiedenen ...

Tissue Engineering nutzt die Prinzipien der Biologie und Technik in der Entwicklung von Funktionsersatz zu erhalten, wiederherzustellen oder zu verbessern nativem Gewebe und. Die Fähigkeit zur Erzeugung von dreidimensionalen biomimetischen Konstrukte auf Anforderung würde wissenschaftliche und technologische Fortschritte in der Gewebetechnik sowie in zellbasierten Sensoren Arzneimittel / Toxizitäts, Gewebe- oder Tumormodellen, und andere zu erleichtern. Die dreidimensionale Organisation des Tissue-Engineering Konstrukten ist ein wesentlicher Bestandteil des Herstellungsverfahrens, da es eng die hoch organisierten Wechselwirkung von Zellen und extrazellulärer Matrix in nativem Gewebe nachahmen. Biologisch abbaubar und formgebenden dreidimensionalen Gerüsten sind entscheidende Faktoren bei der Erzeugung von neuen Gewebekonstrukte, da die Zellen wandern, um eine zweidimensionale Schicht von Zellen zu bilden, aber die Fähigkeit fehlt, in bevorzugten dreidimensionalen wachsen. Das Gerüst dient als Grundlage für die vorübergehende Zellund die Zellenproliferation, also muss es aus Materialien mit steuerbarer Porosität und biologische Abbaubarkeit und eine ausreichende mechanische integrit konstruiert werden. Die Trägermaterialien sollten nicht zytotoxisch sein, oder erstellen Sie einen negativen Antwort vom Host. Hydrogele wurden häufig in Tissue Engineering-Techniken verwendet werden, und aufgrund ihrer Hydrophilie ermöglichen Hydrogele Flüssigkeits- und Gasaustausch im ganzen Structur. Durch die Kombination verschiedener Hydrogele, sind die Eigenschaften des synthetisierten Hydrogels modifizierbaren um verschiedene Anwendungsanforderungen zu erfüllen. Die herkömmliche Tissue-Engineering-Ansatz beinhaltet die Schaffung von azellulären poröse Opfergerüste, die mit Zellen post-fabricatio ausgesät werden. Viele Techniken verwendet worden, wie beispielsweise Faserbindung, Lösungsmittelgießen und Schmelzformen, doch erwies sich minimal erfolgreich für das Tissue Engineering-Anwendungen zu sein. Faserbindungsverfahren ermöglichen Fasern in bestimmten Formen ausgerichtet werden, aber sie sind nur in der Lage, pro sindGabe sehr dünnen Gerüst. Lösungsmittel-Gießverfahren hergestellte hochporöse Konstrukte jedoch die größte hergestellte Membran war nur 3 mm thic. Daher schaffen dreidimensionale Konstrukte nicht möglich ist die Verwendung dieser Techniken. Schmelzformungstechniken bewährt bei der Herstellung von dreidimensionalen Gerüsten, aber solch hohe Temperaturen erforderlich, dass biologische Materialien nicht in den Fertigungsprozess integriert werden. Gerüste ausgesät nach der Herstellung sind in ihrer Fähigkeit, die Anforderungen des Tissue Engineering zu treffen, um dreidimensionalen Gerüsten mit vordefinierten oder steuerbare Mikrostrukturen und produzieren begrenzt. Ein weiteres wichtiges Thema mit soliden Gerüst Aussaat Technologien ist der Mangel an Durchblutung und schlechte mechanische. Bioprinting seitdem auf drei Dimensionen durch die Verwendung von nicht-toxischen, biologisch abbaubaren, thermoreversible Gele, die Nachteile des herkömmlichen überwunden erweitert. Ein paar von den festen Freiform-Herstellungs techniques derzeit verwendet werden, sind die lasergestützte Bioprinting und Inkjet-Druck. Lasergestütztes Bioprinting Techniken verwenden eine gepulste Laserquelle, einer Zielplatte, und einem Empfangssubstrat zu erzeugen dreidimensional. Jedoch ist diese Technik aufgrund der geringen Durchsatz, geringe Lebensfähigkeit der Zellen beschränkt und kann nur begrenzte erzeugen Anordnungen gefertigten Strukturen, da nur photovernetzbaren Prepolymere verwendet werden können, um ein vernetztes Hydrogel zu bilden. Tintenstrahldruck wurde als berührungslose Methode, die digitalen Bilddaten auf einem Substrat durch Abscheidung wieder Picoliter Tinte entwickelt. Jedoch Tintenstrahldruck nicht ein hochauflösendes Konstrukt zu erzeugen, konstruiert Erfahrung rasche Denaturierung des Proteins, und viele der Zellen während der Abscheidung lysiert. Derzeit neue Additive Manufacturing Bioprinting Methoden entwickelt worden. In diesen Systemen Zellen, Proteinen, Wachstumsfaktoren und biomimetische Hydrogele werden typischerweise in Matrix mater integriertenrialien während des Herstellungsprozesses und mit computergesteuerten Aktoren an dreidimensionalen Gerüst-basierte Zellbeladene Konstrukte, die die Mikroarchitektur des nativen genau imitieren erzeugen gleichzeitig abgeschieden. Die zellbeladenen Hydrogele bilden die bioink, die heterogen sein kann, die aus mehreren Zelltypen oder homogen. Additiv Fertigungssysteme Ablagerung bioink Tropfen für Tropfen oder Schicht-für-Schicht durch Einmalspritzen und Spitzen auf einem computergesteuerten Bühne bewegen kann, in der x, y und z-Richtungen. Durch Computer-Software, kann die Architektur der gedruckten Gerüste leicht manipuliert werden je nach Anforderung der Anwendung. Im Gegensatz zu herkömmlichen Techniken kann dreidimensionalen medizinischen Technologien (Magnetresonanztomographie, Computertomographie) in den Designs integriert werden, Erzeugen der patientenspezifischen Konstrukt. Diese Verfahren die Möglichkeit der Herstellung vaskularisierten Ersatz erlauben auch, weil Konstrukte werden mit einer höheren l hergestelltocal Zelldichte, wodurch Zell-Zell-Interaktionen und die Verbesserung der Wahrscheinlichkeit nach der Implantation Surviva. Der Palmetto Printer ist ein speziell angefertigten dreidimensionalen Multi-Spendersystem, das programmierbare Roboter-Fertigungsverfahren verwendet, um dreidimensionale heterogene Gewebekonstrukte (Abbildung 1) zu erzeugen. Sie ermöglicht die Verwendung einer Vielzahl von Materialien in einer einzigartigen Kombination an heterogene Strukturen herzustellen. Die Initialisierung des bioprinter ist einer der wichtigsten Schritte bei der Bioprinting weil es Ihnen erlaubt, eine Vielzahl von Parametern, um die Bedruckbarkeit der bioprinted Konstrukte zu optimieren. Die bioprinter umfasst einen Chargenprozess mit Inbetriebnahme, Betrieb und Abfahren Sequenzen durch eine speicherprogrammierbare Steuerung (SPS), die der Nutzer durch eine interaktive Touchscreen-Bedienfeld arbeitet (Abbildung 1, A) gesteuert. Um eine Verunreinigung von Bio verhindernlogische Materialien der bioprinter ist in einem positiv-Druck von Poly (methylmethacrylat) eingeschlossen (PMMA) Kammer mit einer Hocheffizienzpartikelrückhaltevermögen (HEPA) -filtered Luftzirkulationssystem (1, B, C). Das Innere des Druckers unter Verwendung der integrierten UV-Lichtquellen (1, D) zu sterilisieren. Die zentrale Komponente des bioprinter ist eine voll programmierbare Positionierung Roboter, der reproduzierbar platzieren können eine Spenderspitze mit einer Genauigkeit von 10 Mikrometern (Abbildung 1, E). Es gibt drei Abgabevorrichtungen, die in der Lage, Volumen so klein wie 230 nl Rotationsschraube (1, F) hinterlegen. Sie sind unabhängig programmierbare Verwendung separater Computer, Druckparameter regeln für jede Abgabevorrichtung (1, G). Drehschneckeabgabe nutzt die Drehbewegung eines Motors angetriebene Schnecke nach unten einer Spritze aus der Spritzenspitze bewegen bioink. Diese Spender werden auf eine pneumatische montiertly gesteuerten Bearbeitungskopf (2A, B), so dass der Roboter Zufuhr auf die Z-Achsen-Roboterarm unter Programmsteuerung (1, H) montiert zu schalten. Die XYZ-Roboter empfängt Druckanweisungen von einem Computer-Design-Software (Abbildung 1, I). Jedes Programm enthält Abgabestellen, Kalibrierungsroutinen und Spender wechselnden Protokolle. Das Design der generierten Konstrukte besteht im Wesentlichen aus den XYZ-Koordinaten, wo jedes Spenders wird Material zu hinterlegen. Die bioprinter zwei optische Lichtsensoren (2C), die bestimmen, die XYZ-Koordinaten des Spritzenspitzenende. Diese Sensoren senden Koordinateninformationen an den Roboter, die diese verwendet, um Positionen der Spender Spitzenenden zu berechnen. Es wird eine zusätzliche Verschiebung Laser (2D), das eine 633 nm-Diode roten Laserstrahl der Punktgröße Projekte 30 x 100 Mikrometer, um Abstand mit einem Accura messency von 0,1 Mikrometern. Wenn der Strahl hoch konzentriert sich der Roboter bestimmt den Z-Abstand der Druckfläche. Diese Messung und die optische Lichtsensoren Messung des Spitzenendes in Z, erlaubt die Berechnung von genauen z-Koordinaten verwendet, um die Spenderspitze in Bezug auf die Druckoberfläche zu platzieren. Die Dispenser-Spitzen seitlich und vertikal zu bewegen durch die orientierte X-Achsen-optischen Lichtsensor, um die Y- und Z-Zentren zu finden, und sich seitlich durch einen Y-Achsen-Sensor, um die Mitte der X-Achse zu finden. Ax + by + cz = d zu bestimmen, wo die Oberfläche relativ zu der Position der Ausgabespitzenende ist: die Druckoberfläche wird unter Verwendung der Formel für eine flache Ebene im XYZ-Raum abgebildet. Der Drucker Stufe (1, J) enthält eine Proben-Petrischale bis zu 80 mm im Durchmesser und verwendet einen rezirkulierenden Wasserbades, um die Solltemperatur (1, K) zu erhalten. Bühnentemperatur kann in einem Bereich von -20 eingestellt werden und bleibt im Stall. Es gibt eine USB-Kamera montiertauf den Roboter Z-Arm, um eine vergrößerte Ansicht der Abgabespitze während des Druckprozesses (1, L) zu liefern. Es gibt eine zweite Kamera auf der Oberseite des Kammerinneren, die eine vollständige Ansicht des bioprinter während des Druckprozesses (Abbildung 1, L) bietet montiert. Ein Computer-Aided-Design-Zeichensoftware bestimmt die Ablagerungsmuster und erlaubt es dem Benutzer, inkremental beabstandeten Tröpfchen und komplexen Strukturen (Figur 3) zu erzeugen. Dreidimensionale Wege können manuell in den Drucker-kompatible Design-Software codiert oder von einem separaten Computer-Aided Design Zeichensoftware (Abbildung 4, Tabelle 1) importiert werden. Der Drucker entwickelte Software Variationen von Druckparametern, wie beispielsweise der Niederschlagsverfahren (Einzeltröpfchenabscheidung oder kontinuierlichen Weg deposition), dreidimensionale Geometrie der Signalwege, Abscheidungsrate, der Abstand zwischen der Spitze der Spritze Ende und substRate Druckoberfläche, die Höhe der Zeit, eine individuelle Tropfen, und die Höhe zu hinterlegen und zu beschleunigen, die Spritze zwischen Abscheidung der Tropfen gehoben. Jedes Programm enthält XYZ Abgabestellen, Spitzenkalibrierungsroutinen und Spender wechselnden Protokolle, um eine sterile Umgebung während des Druckvorgangs zu schaffen, ohne Bedienereingriff. Die speicherprogrammierbare Steuerung (SPS) des Roboters empfängt Anweisungen von dem Computer mit der Design-Software und die Zeitsteuerung von Ereignissen von der externen Controller (beispielsweise die Abgabevorrichtungen). Um dies zu tun, verwendet die Steuerung eine Schleifenmechanismus, um die Abgabevorrichtungen zu steuern , Roboter-Positionierungseinrichtung und Umweltfaktoren. Dreidimensionale Direktschreib Bioprinting Verwendung eines Rotationsschnecken, flüssige Abgabesystem ermöglicht, den Prozess der Abscheidung Zellen effizienter zu sein, genau und einfacher als bisherige Verfahren. Diese Studie zeigt, die angefertigten bioprinter der Lage ist, cell beladene Hydrogel-Konstrukte mit hoher Zelllebensfähigkeit.

<table><tbody><tr><td>Roboter zum Positionieren (JR2000 XYZ)</td><td>Janome&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spender: SDAV Linear Drive SmartDispenser</td><td>Fishman Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Optische Lichtsensoren:&nbsp;</td><td>Keyensce</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Verschiebungslaser: OD Mini</td><td>SICK</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Umlaufwasserbad: Polystat</td><td>Cole-Parmer</td><td>EW-12122-02</td><td></td></tr><tr><td>USB-Kameras: Dino-Lite Premier 5MP</td><td>AnMo Electrionics/YSC Technologies</td><td>AD7013MT</td><td></td></tr><tr><td>Drucker-kompatible Computerdesign-Software: JR-C Points</td><td>Janome</td><td></td><td>Wird mit dem Kauf des Janome-Roboters geliefert</td></tr><tr><td>Computergestützte Konstruktionszeichnungssoftware: Visual PathBuilder</td><td>RatioServ</td><td></td><td>Kann heruntergeladen werden unter: www.ratioserv.com/index.php/downloads</td></tr><tr><td>Drucker 3 cc Spritzen:&nbsp;</td><td>Fishman Corporation</td><td>122051</td><td></td></tr><tr><td>22 G Spenderspitzen</td><td>Fishman Corporation</td><td>Z520122&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Calciumchlorid-Dihydrat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>10035-04-8</td><td></td></tr><tr><td>Natriumchlorid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7647-14-5</td><td></td></tr><tr><td>Schweinegelatine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>9000-70-8</td><td></td></tr><tr><td>Titandioxid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>13462-67-7</td><td></td></tr><tr><td>Protanal LF 20/40 Alginat (Natriumalginat)</td><td>FMC BioPolymer</td><td>9005-38-3</td><td></td></tr><tr><td>Salzsäure</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7647-01-0</td><td></td></tr><tr><td>Ethylenglykol</td><td>Mallinckrodt Baker, Inc</td><td>9300-01</td><td></td></tr><tr><td>Natriumperiodat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7790-28-5</td><td></td></tr><tr><td>hADSC</td><td>Lonza</td><td>PT-5006</td><td>Bis zur Verwendung in Fläschchen in flüssigem Stickstoff lagern.</td></tr><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle's Medium</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>11965-092</td><td>Warm in 37°; C Wasser vor Gebrauch.</td></tr><tr><td>Trypsin/EDTA</td><td>Lonza</td><td>CC-5012</td><td>Warm in 37°; C Wasser vor Gebrauch.</td></tr><tr><td>Calcein AM</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>C3100MP</td><td>Lagern im Dunkeln bei -80 &°; C bis zum Gebrauch.</td></tr><tr><td>Lebensfähigkeits-Assay-Kit für lebende/tote Säugetiere</td><td>Invitrogen Life Technologies</td><td>L-3224</td><td>Im Dunkeln lagern bei -80 ° C C bis zum Gebrauch.</td></tr><tr><td>MES-Hydrat</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M2933</td><td></td></tr><tr><td>N-Hydroxysuccinimid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>130672</td><td></td></tr><tr><td>1-Ethyl-(dimethylaminopropyl)carbodiimid (EDC)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E1769&nbsp;</td><td>ca. 10 g</td></tr><tr><td>Dulbecco's Phosphatgepufferte Kochsalzlösung, +Calcium, +Magnesium</td><td>Life Technologies</td><td>14040133</td><td>Warm in 37 & Grad; C Wasser vor Gebrauch.</td></tr><tr><td>Dulbeccos phosphatgepufferte Kochsalzlösung, -Calcium, -Magnesium</td><td>Life Technologies</td><td>14190144</td><td>warm in 37 μg; C Wasser vor Gebrauch.</td></tr><tr><td>RGD Peptides</td><td>International Peptides</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 546 Phalloidin Stain</td><td>Invitrogen Life Technologies</td><td>A22283</td><td>Store at -20 &deg; C bis zum Gebrauch</td></tr><tr><td>(4', 6-Diamidino-2-phenylindole, Dihydrochlorid) (DAPI) Stain</td><td>Life Technologies</td><td>R37606</td><td>Bei -20 &deg; lagern; C bis zur Verwendung</td></tr></tbody></table>

lebensfähigkeit bioprinted cellular konstrukte unter verwendung einer drei dispenser kartesischen drucker

Viability of Bioprinted Cellular Constructs Using a Three Dispenser Cartesian Printer

Tissue Engineering hat seinen Fokus auf die Konstruktion von Ersatz für nicht-funktionelles oder beschädigtes Gewebe konzentriert. Die Nutzung des dreidimensionalen Bioprintings im Tissue Engineering hat neue Methoden für den Druck von Zellen und Matrizen zur Herstellung biomimetischer Gewebekonstrukte hervorgebracht. Das für das dreidimensionale Bioprinting entwickelte Solid Freeform Fabrication (SFF)-Verfahren verwendet einen additiven Fertigungsansatz, bei dem Tröpfchen von Zellen und Hydrogelen Schicht für Schicht abgeschieden werden. Die Herstellung von Bioprinting hängt von der spezifischen Platzierung biologischer Materialien in dreidimensionalen Architekturen ab, und die gedruckten Konstrukte sollten die komplexe Organisation von Zellen und extrazellulären Matrizen in nativem Gewebe genau nachahmen. Dieser Artikel beleuchtet die Verwendung des Palmetto-Druckers, eines kartesischen Biodruckers, sowie den Prozess der Herstellung räumlich organisierter, lebensfähiger Konstrukte bei gleichzeitiger Kontrolle von Umweltfaktoren. Diese Methodik nutzt computergestütztes Design und computergestützte Fertigung, um diese spezifischen und komplexen Geometrien herzustellen. Schließlich ermöglicht dieser Ansatz die reproduzierbare Herstellung von gefertigten Konstrukten, die durch steuerbare Druckparameter optimiert sind.

Die Ergebnisse zeigen, das in der Lage ist bioprinter Abscheiden zellbeladene Hydrogele in spezifische dreidimensionale Positionen genau und konsistent mit Computer-Aided-Software ist. Diese Software bestimmt die Platzierung jedes Tröpfchens und steuern viele der Parameter für die Abgabe (Figur 3,4). Die Wiederholbarkeit des bioprinter angemessen abzuscheiden Biomaterialien ist grundlegend für den Erfolg in Tissue Engineering-Anwendungen. Lebensfähigkeit der Zellen, eine der...

Ein kartesischer Biodrucker wurde entworfen und hergestellt, um die Abscheidung mehrerer Materialien in präzisen, reproduzierbaren Geometrien zu ermöglichen und gleichzeitig die Kontrolle von Umweltfaktoren zu ermöglichen. Unter Verwendung des dreidimensionalen Biodruckers können komplexe und lebensfähige Konstrukte gedruckt und leicht reproduziert werden.

Lebensfähigkeit Bioprinted Cellular Konstrukte unter Verwendung einer Drei Dispenser kartesischen Drucker

Tissue engineering has centralized its focus on the construction of replacements for non-functional or damaged tissue. The utilization of ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, lebensfähige, zellbeladene Konstrukte mit komplexer Geometrie unter Verwendung eines 3D-Bioprinters herzustellen. Dies wird erreicht, indem zunächst humane stromale Zellen aus dem Fettgewebe aus der Kultur isoliert werden. Anschließend werden die Zellen mit frisch hergestellter oxidierten, RGD-konjugierter Alginate-Biotinte gemischt.Im letzten Schritt werden die Zellen der Biomaterialien mittels Bioprinting extrudiert. Abschließend wird die Vitalität, Proliferation und Migration der biogedruckten Zellen mittels konfokaler Mikroskopie analysiert. Der Hauptvorteil dieses Verfahrens gegenüber bestehenden Verfahren, wie der Gerüstbildung und Zellbesiedelung, liegt darin, dass mit unserem Verfahren die Zellen und Zellaggregate direkt exakt dort platziert werden können, wo sie benötigt werden, um das Gewebe zu bilden.Heute wird Sarah Grace Dennis, eine Doktorandin aus meinem Labor, die Prozedur demonstrieren. Beginnen Sie damit, 350.000 humane Stromazellen aus Fettgewebe in 15 Milliliter niedrigem Glukose-TMEM in einem behandelten T-75-Fläschchen zu säen, um sie in einem Zellkulturschrank zu vermehren. Wenn die Kultur eine Konfluenz von 80 % erreicht hat, entfernen Sie das Medium und waschen die Zellen mit fünf Milliliter DPBS ohne Calcium und Magnesium. Anschießend inkubieren Sie die Zellen für zwei Minuten bei 37 Grad Celsius in fünf Millilitern Trypsin und DPBS; wenn sich die Zellen gelöst haben, beenden Sie die enzymatische Reaktion mit drei Millilitern Zellkulturmedium und überführen die Zellen in ein 50-Milliliter-Konischgefäß. Danach zentrifugieren Sie die Zellen und resuspendieren das Pellet in zwei Milliliter Zellkulturmedium. Anschließend zählen Sie die Zellen, übertragen ein 1,3 × 10⁶-Zell-Aliquot in ein 15-Milliliter-Konischgefäß und zentrifugieren die Zellen erneut.Suspendieren Sie das Pellet in einem Milliliter frisch hergestelltem Bio-Ink, wobei darauf zu achten ist, die Zellen gleichmäßig in der wässrigen Alginate-Lösung zu verteilen. Danach die Zellen in eine sterile, druckerkompatible 3-Milliliter-Spritze geben und eine sterile Kunststoffspitze mit 22 Gauge anschrauben. Schalten Sie nun den Bioprinter, die jeweiligen Dispenser-Computer und das zirkulierende Wasserbad ein.Stellen Sie die Badtemperatur manuell auf vier Grad Celsius ein, um den Aktionsmechanismus und die Druckparameter für jeden Dispenser auf dem zugehörigen Dispenser-Computer einzurichten. Stellen Sie das Ausgabevolumen auf 230 Nanoliter, die Anzahl der Rückwärtsschritte auf null und die Abgaberate auf 10 Mikroliter pro Sekunde ein. Öffnen Sie anschließend die Designsoftware und das Programm zur Anzeige der USB-Kamera auf dem Computer.Als Nächstes geben Sie manuell die Koordinaten für ein fünf mal fünf Punkteraster mit einem Abstand von 2,4 Millimetern zwischen den Tropfen ein. Speichern Sie das Programm und übertragen Sie es an den Roboter. Anschließend platzieren Sie eine mit Gelatine und Titandioxid gefüllte Petrischale auf der Druckplattform bei vier Grad Celsius und schließen sowie verriegeln Sie die Kammertür.Mit der speicherprogrammierbaren Steuerung wurden die ultravioletten Lichtquellen initialisiert, um die Kammer zu sterilisieren. Nach 90 Sekunden öffnen Sie die Kammer, laden die Spritze mit der Suspension menschlicher stromaler Fettgewebszellen in Pistole eins ein, schließen und verriegeln die Kammertür und schalten mithilfe der speicherprogrammierbaren Steuerung das Lüftungssystem ein. Warten Sie 30 Sekunden, bis sich der Innendruck ausgeglichen hat, und führen Sie dann das Programm mit dem geometrischen Pfad und den Druckparametern während des gesamten Druckvorgangs aus.Beobachten Sie die Anzeige der USB-Kamera auf dem Computer, um einen genauen und gleichmäßigen Druck zu bestätigen. Um die Lebensfähigkeit der biogedruckten Konstrukte zu quantifizieren, tauchen Sie diese in frisch zubereitete Farblösung ein. Anschließend stellen Sie die Konstrukte 15 Minuten im Dunkeln in den Kühlschrank, damit die Färbung einsetzen kann.Danach mithilfe eines konfokalen Mikroskops die gefärbten Konstrukte abbilden: Wenn die Zellen gelb oder grün erscheinen, sind sie lebendig; erscheinen sie rot, sind die Zellen tot. Wie diese Ergebnisse zeigen, ermöglicht das Bioprinting die genaue und konsistente Ablagerung von Zellen und Hydrogelen an spezifischen dreidimensionalen Positionen mithilfe einer computergesteuerten Software. Die Computersoftware bestimmt die Position jedes Tröpfchens und steuert viele der Parameter für die Dosierung.Eine der Voraussetzungen für eine erfolgreiche Bioprinting-Technik ist, dass die Zellen hier lebensfähig bleiben. Zellen, die wie gerade gezeigt in alginathaltiger Bio-Tinte gedruckt wurden, wurden eine Stunde sowie acht Tage nach dem Druck analysiert, wobei 98 % der Zellen am Tag null grün erschienen und lebensfähig waren, und am achten Tag noch 95 %. Wie die rote Färbung zeigt, wurden zu beiden Zeitpunkten nur wenige tote Zellen beobachtet, was die Eignung der alternativen Tinte für das Bioprinting bestätigt.Weiterhin verbessert die mit RGD konjugierte Algin-Tinte die Anheftung der Zellen an die gedruckten Konstrukte, was zu einer verbesserten Zellausbreitung und -proliferation führt, wie an drei separaten Stellen des Hydrogels am Tag null und am Tag acht quantifiziert wurde. Hier wurde die Qualität der RGD-Peptid-Konjugation auf der Ginnet-Bio-Tinte mit der alleinigen Verwendung von Ginnet-Bio-Tinte am Tag acht verglichen. Die in der mit RGD konjugierten, gefärbten Ginnet-Probe beobachtete Zellausbreitung deutete auf eine erfolgreiche Einbindung des Peptids in die Ginnet hin, ein Phänomen, das in den nicht konjugierten Bioprint-Proben nach der Entwicklung deutlich fehlte.Diese Technik ebnete den Forschern auf dem Gebiet des Gewebegewebes den Weg, um die additive Fertigung als Mittel zur Herstellung lebender konstruierter Gewebe zu erforschen.

viability-bioprinted-cellular-constructs-using-three-dispenser

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Forschung

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Bioengineering

Biotechnik

Die in diesem Beitrag beschriebenen Methoden zeigen, wie ein Handels Tintenstrahldrucker in eine Bioprinter mit gleichzeitiger UV-Polymerisation zu konvertieren. Der Drucker ist in der Lage, 3D-Konstruktion von Gewebestruktur mit Zellen und Biomaterialien. Die Studie zeigte hier konstruierte eine 3D neocartilage.

Menschliches Knorpelgewebe Herstellung unter Verwendung von dreidimensionalen Inkjet-Drucktechnologie

Wir beschreiben eine Reihe von Protokollen , die zusammen stellen eine gewebe nachahmt Hydrogel bioink mit dem funktionelle und tragfähige 3-D Gewebekonstrukte zur Verwendung in in vitro - Screening - Anwendungen bioprinted werden kann.

Bioprinting cellularized Konstruiert unter Verwendung eines gewebespezifischen Hydrogel Bioink

Dieses Protokoll beschreibt eine Bioprinting-Methodik, die ein automatisiertes robotergestütztes Abscheidesystem verwendet, das geätzte topographische Leitfäden mit der präzisen Abscheidung einer Zelle mit Hydrogel-Biotinte verbindet. Die gedruckten Zellen werden direkt auf die geätzten Merkmale aufgebracht und sind in der Lage, diese zu erfassen und sich daran zu orientieren.

Automatische Robotic Dosiertechnik für Oberflächen Ausrichtungs- und Bioprinting von Zellen

Dieses Protokoll beschreibt das 3D-Bioprinting von Herzgewebe ohne den Einsatz von Biomaterialien. 3D-Bioprints-Herz-Patches zeigen mechanische Integration von Komponenten-Sphäroiden und sind vielversprechend bei der Herz-Gewebe-Regeneration und als 3D-Modelle von Herzerkrankungen.

Schaffung von Herzgewebe, die mechanische Integration von Sphäroiden mit 3D-Bioprinting ermöglicht

Wir bieten ein generalisiertes Protokoll basiert auf einer mikrofluidische Bioprinting Strategie für engineering-ein Microfibrous Kreislauf Bett, wo eine sekundäre Zelle Art weiter in den interstitiellen Raum dieser Microfibrous Struktur, vaskularisierte Gewebe und Organellen zu generieren ausgesät werden konnte.

Mikrofluidische Bioprinting für Engineering durchblutet, Gewebe und Organellen

Knorpel und Haut Analoga wurden Bioprinted mit einem Nanocellulose-Alginat-basierten Bioink. Die Bioinks wurden vor dem Druck über einen einzigen Schritt passive Mischeinheit cellularized. Die Konstrukte wurden demonstriert werden gleichmäßig cellularized, haben hohe Rentabilität und günstige Marker der Differenzierung aufweisen.

Bioprinting von Knorpel und Haut-Gewebe-Analoga nutzen eine neuartige Passive Einheit Mischtechnik für Bioink Precellularization

Wir entwickelten eine heterogene Brust-Krebs-Modell, bestehend aus verewigt Tumor und Fibroblasten-Zellen eingebettet in ein Bioprintable Alginat/Gelatine Bioink. Das Modell der in Vivo Tumor Mikroumgebung rekapituliert und erleichtert die Bildung von mehrzelligen Tumor Sphäroide, Einblick in die Mechanismen fahren Tumorgenese nachgeben.

Bioprintable Alginat/Gelatine Hydrogel 3D In-vitro- Modellsysteme induzieren Sphäroid Zellbildung

Konstruierte Klappen erfordern ein integriertes funktionelles Gefäßnetzwerk. In diesem Protokoll stellen wir eine Methode zur Herstellung einer 3D-gedruckten Gewebeklappe vor, die ein hierarchisches Gefäßnetzwerk und seine direkten mikrochirurgischen Anastomosen an der Oberschenkelarterie der Ratte enthält.

Herstellung von technischen Gefäßklappen mit 3D-Drucktechnologien

Die Scherverarbeitung während der Hydrogelbildung führt zur Herstellung von Mikrogelsuspensionen, die scherdünn sind, sich aber nach Beseitigung der Scherkräfte schnell restrukturieren. Solche Materialien wurden als Stützmatrix für das Bioprinting komplexer, zellbeladener Strukturen verwendet. Hier werden Verfahren zur Herstellung des Stützbettes und kompatibler Biotinten beschrieben.

Agarose-Flüssiggele, die durch Scherverarbeitung während der Gelierung für suspendierten 3D-Biodruck gebildet werden

In dieser Studie wird ein neuartiges κ-Carrageen-Submikrogel-Suspensionsbad vorgestellt, das bemerkenswerte reversible Jamming-Unjamming-Übergangseigenschaften aufweist. Diese Attribute tragen zur Konstruktion biomimetischer Gewebe und Organe im eingebetteten 3D-Bioprinting bei. Das erfolgreiche Drucken von herz-/ösophagusähnlichem Gewebe mit hoher Auflösung und Zellwachstum demonstriert hochwertige Bioprinting- und Tissue-Engineering-Anwendungen.

Eingebettetes Bioprinting von gewebeähnlichen Strukturen mit κ-Carrageen-Submikrogel-Medium

Lösliche Basalmembranextrakte sind die am weitesten verbreiteten biologischen Matrices in der Krebsforschung, aber ihr komplexes rheologisches Verhalten erschwert ihr Bioprinting mit kommerziell erhältlichen Bioprinting-Systemen. In dieser Arbeit wird eine maßgeschneiderte Bioprinting-Strategie vorgestellt, um reine Matrixkonstrukte mit guter Formtreue sowohl in Einzel- als auch in mehreren Schichten herzustellen.

Design und Validierung eines volumetrischen Extrusions-Bioprinters für das Bioprinting von löslichem Basalmembranextrakt für die translationale Forschung

Erfahren Sie die 3D-Bioprinting-Methode zur Erzeugung lebensfähiger zellbeladener Konstrukte mit komplexer Geometrie. Diese Technik ermöglicht präzise Zellplatzierung für Anwendungen im Tissue Engineering.

Lebensfähigkeit Bioprinted Cellular Konstrukte unter Verwendung einer Drei Dispenser kartesischen Drucker

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