Name: Ein miniaturisiertes Glycan Microarray-Test zur Beurteilung der Avidität und Spezifität von Influenza-A-Virus Hämagglutininarten (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-05-29T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 32 s
Description: Erfahren Sie, wie ein miniaturisiertes Glycan-Microarray die Avidität und Spezifität von Influenza-A-Virus-Hämagglutininen analysiert. Diese Methode ermöglicht die gleichzeitige Bewertung von Rezeptorbindung und Bindungsstärke in einem einzigen Assay.

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Diese Arbeit wurde teilweise durch die Scripps Microarray-Core Facility, und einen Vertrag von den Centers for Disease Control (JCP) unterstützt. RPdV ist ein Empfänger eines Rubicon und VENI Zuschuss von der niederländischen Organisation für wissenschaftliche Forschung (NWO). Das Konsortium für Funktionelle Glycomics (http://www.functionalglycomics.org/) finanziert von NIGMS Zuschuss GM62116 (JCP), die mehrere Glykane in dieser Studie verwendet. Dies ist die Veröffentlichung 29113 von The Scripps Research Institute.

HINWEIS: Alle Schritte werden bei Raumtemperatur durchgeführt, sofern nichts anderes angegeben ist. 1. Array Construction <ol><li> Glycan Vorbereitung und Teller-Setup <ol><li> Bereiten Sie einen Vorrat an Druckpuffer. machen Zuerst wurden 500 ml einer 150 mM Stammlösung von Natriummonohydrogenphosphat. Stellen Sie außerdem 50 ml einer 150 mM Stammlösung von Natriumdihydrogenphosphat Lösung. In einem Kolben mit einem Magnetrührstab und einem pH-Meter, langsam die dibasische Natriumphosphatlösung mit der einbasigen Lösung titriert, bis ein pH von 8,5 erreicht ist. Hinzufügen, Tween-20 0,005%. </li><li> Bereiten Sie die Glykan Proben. Verdünnte PAA konjugierten Glykane (diLacNAc (Galβ1-4GlcNAcβ1-3Galβ1-4GlcNAcβ-PAA), 3SLNLN (Neu5Acα2-3Galβ1-4GlcNAcβ1-3Galβ1-4GlcNAcβ-PAA) und 6SLNLN (Neu5Acα2-6Galβ1-4GlcNAcβ1-3Galβ1-4GlcNAcβ-PAA (1A )) aus step1.1.1 in Druckpuffer verdünnt auf 100 ug / ml werden. Monovalent Glykane,diLacNAc (Galβ1-4GlcNAcβ1-3Galβ1-4GlcNAcβ- (CH 2) 3 NH 2, 3SLNLN (Neu5Acα2-3Galβ1-4GlcNAcβ1-3Galβ1-4GlcNAcβ - (CH 2) 3 NH 2) und 6SLNLN (Neu5Acα2-6Galβ1-4GlcNAcβ1-3Galβ1- 4GlcNAcβ - (CH 2) 3 NH 2)) bis 100 um in Druckpuffer aus Schritt 1.1.1. Schließlich bereiten die Amin-funktionalisierte Farbstoffe, als Gittermarkierungen / Landelichter zu verwenden. Dye Marker Spots werden bei 1 uM gedruckt. HINWEIS: Atto488-NHS Farbstoff wird in unserer Drucke verwendet. Jedoch kann jedes Amin-funktionalisierten Farbstoff, lesbar durch den Objektträger-Scanner ist für diesen Zweck geeignet ist. </li><li> Transfer 10 ul jeder Probe Glycan auf 384-well Mikrotiterplatten für die Druckroboter verwendet. Nicht verwendete Glykane in Druckpufferlösung bei -20 ° C in verschlossenen Röhren. Tansfer 10 ul der Farbstoffmarker auf der Druckplatte. </li></ol></li><li> Drucken HINWEIS: Alle steps, die Sorge zu berühren oder die Folien bewegen müssen mit Handschuhen erfolgen. <ol><li> Legen Sie Arrayers Stifte in den Druckkopf nach der korrekten Konfiguration des Layouts. Für dieses Layout einen Stift verwenden, um alle Proben und Arrays zu drucken. Drucken Sie die Glykane in Blöcken von sechs, das Überspringen einer Funktion (eine Funktion als einzelner Punkt einer bestimmten Verbindung definiert ist), auf jeder Seite, so dass Flecken von derselben Probe nicht genau nebeneinander gedruckt werden. HINWEIS: Der Endbenutzer die Konfiguration entscheiden muss. </li><li> Die Objektträger aus Taschen, offene Felder, und entfernen Sie alle Staubpartikel oder kleine Stücke aus Kunststoff, die durch Einblasen von ultrahochreinem Stickstoffgas auf jeder Folie auf ihren Oberflächen sein könnten. Legen Sie die gewünschte Anzahl der Folien, beschichtete Seite nach oben, auf der Arrayers Bühne. </li><li> Programm die Arrayer, verwenden, um die Parameter von 27 Flecken pro Besuch der Quellenplatte, 3 unter Verwendung von &quot;pre-spots&quot; auf Poly-L-Lysin beschichteten Objektträger, um überschüssige Flüssigkeit an der Spitze der Drucknadeln zu entfernen <ol><li> Schalten Sie MPU (Hauptstromeinheit) und Climate Control Unit. Offene Tiling Analyse-Software auf dem Computer. </li><li> Wählen Sie das Layout auf den Druck. 1 Einzel Stift - für den Druck des Array 1 x 1 Druckwerkzeug Wählen Sie Optionen → Pin-Werkzeug verwendet werden soll. Wählen Sie die Registerkarte Ziel → Werkzeug Array Definition → Druck-Muster und fügen Sie die Tonhöhe (Spot-zu-Spot-Abstand), die Anzahl der Zeilen und Spalten, die Proben aufzunehmen gedruckt werden, und das Druckmuster der Proben (für dieses Array ein 8 x 8 Druckmuster wird auf 340 um Platz für insgesamt 7 Proben). </li><li> Wählen Sie Ziel → Folienlayout und programmieren Sie den Block-zu-Block-Abstand zu ermöglichen, Drucken jedes Replikat Arrays in die 48-Well (4 x 12) Dia-Vorlage. Quelle auswählen und fügen Sie die Anzahl von Source-Pickups (1 für jede Probe bei der Verwendung von 1-polig) (für diesen Druck 7 Quelle Pickups verwendet werden, um Platz für 6 Probenvertiefungen und 1 Farbstoff Marker gut). HINWEIS: Der Dialog Quelle sollte GRÜN zu zeigen, dass die Zahlvon Quelle Besuche entspricht die Proben in dem Druckmuster gedruckt werden. </li><li> Ziel → Adapterplatte auswählen und Layout schieben und die Foliennummer einstellen (5 Dias werden mit 1 Vorbehandlungs Folie gleichzeitig für diesen Druck gedruckt). </li><li> Lassen Sie das Fach durch Klicken auf die T1-Taste, um das Fach zu aktivieren und fügen Sie die gewünschte Anzahl von Dias auf dem Tablett, aufmerksam auf die Standorte der Vordetachierung Schieber (BLAU) und &quot;echten&quot; Dias. </li><li> Legen Sie Normalglasträger bei den restlichen Vakuumanschlüsse um das Vakuum zu blockieren und klicken Sie auf OK, um das Vakuum zu aktivieren. Überprüfen Sie, ob alle Objektträger in Position gehalten werden, und klicken Sie auf OK, um das Tablett in die Ausgangsposition zurückzukehren. </li><li> Legen Sie die Druckplatte in den Plattenhalter und sicherzustellen, dass das Gestell richtig an Ort und Stelle festgelegt ist. Klicken Sie auf GO und lassen Sie den Druckvorgang fortzufahren. </li></ol></li><li> Drucken Sie die restlichen 24 Punkte in Replikaten von 6 Punkten pro Array (4 Arrays / Quelle besuchen). </li><li> Legen Sie die 384-Well-Plattenin den Drucker und das Drucken. Pflegen Sie relative Luftfeuchtigkeit, während des Druckens, während des gesamten Druck zwischen 55 und 65%. Der Drucker stoppt nach 5 Folien drucken. HINWEIS: Während der Mikroarray in diesem Test in einem bestimmten 8 x 8 Muster gedruckt wird, werden verschiedene Microarray-Druckroboter Ausrüstung spezifische Programmierung erfordern das gewünschte Layout zu erzielen. Es liegt Benutzer an das Ende des am besten geeigneten Muster ihre Ausrüstungen Spezifikationen &quot;gegeben, um zu bestimmen. </li></ol></li><li> Luftbefeuchtung / Immobilisierende HINWEIS: Sobald die Folien Druck fertig sind, durchlaufen sie eine vorübergehende Stillegung Schritt, auch genannt Befeuchten. Befeuchten nach dem Druck hilft, die Probe Befestigung durch erneutes Benetzen der Flecken und gewährleisten vollständige Blockierung zu homogenisieren. <ol><li> Setzen Sie gleitet in einer 100% Feuchtigkeitskammer unmittelbar nach dem Druck für einen Zeitraum von 30 min. Konstruieren Sie die Kammer durch eine sehr nasse Handtücher flach in den Boden einer großen Glasschale platzieren, platzieren Sie die Folienauf irgendeine Art von Rack, wie ein Reagenzglasgestell, Druckseite nach oben und mit Plastikfolie zu stoppen in der Feuchtigkeit abzudichten. </li><li> Anzahl gleitet mit einem Alkohol / lösungsmittelbeständigen Markierungsstift und an einem Austrocknungs Box. über Nacht trocknen. </li></ol></li><li> Nummerierung, Sperrung und Lagerung <ol><li> Bereiten Sie den Blockierungspuffer - 50 mM Ethanolamin in 50 mM Boratpuffer. Zunächst lösen Borsäure, in ddH 2 O zu einer Endkonzentration von 50 mM in einen Kolben mit einem magnetischen Rührstab enthält. Rühren Sie die Lösung kräftig auf einer Rührplatte, bis alle Feststoff gelöst hat. Unter ständigem Rühren die entsprechende Menge an Ethanolamin aus einer 16,54 M Stammlösung Fügen Sie die gewünschten 50 mM Konzentration zu erreichen. Hinzufügen konzentriertem Natriumhydroxid auf einen endgültigen pH von 9,2 einzustellen. </li><li> Tauchen Sie die bedruckten Folien in der Blockierungspufferlösung für 1 Stunde. </li><li> Nach 1 h Spülen Sie die Folien in ddH 2 O überschüssige Spuren von Blockierungspuffer zu entfernen.Entsorgen Puffer in einem geeigneten Abfallbehälter zu blockieren. </li><li> Die Objektträger in Glasfärbung Halter und trocken schleudern. Trocken Arrays von ihnen in einer Zentrifuge mit Schwingplattenhalter, mit einer Geschwindigkeit von 10 g für 5 min setzt. </li><li> Sobald die Objektträger trocken sind, können sie sofort oder gelagert inkubiert werden. Lagerbedingungen sind 20 ° C in einem verschlossenen Plastikbeutel. </li></ol></li></ol> 2. Analysieren von Glycan-Bindungsproteine <ol><li> Bereiten einer befeuchteten Kammer, in der die Arrays hybridisiert werden sollen, passen. Eine einfache Kammer besteht aus einem Pyrexschale, mit angefeuchteten Papiertüchern auf dem Boden geschichtet und einem Gestell, auf dem die Schlitten ruhen wird. </li><li> Verwenden biotinylierten Lectinen SNA (Sambuca nigra agglutinin) und ECA (Erythrina cristagalli Agglutinin) bei 10 &amp; mgr; g / ml + 2 &amp; mgr; g / ml Streptavidin-555 - Farbstoff, in Sondierungspuffer (PBS + 0,01% Tween-20). Für HA (A / Vietnam / 1203-1204 H5N1 und A / KY / 07 H1N1, in diesem Beispiel), die Verwendungeine Ausgangskonzentration von 20 ug / ml vor-komplexierte, wie zuvor beschrieben 34. Kurz gesagt, eine HA machen: Mouse-α-Strep: Ziege-α-Maus-Alexa647 Mischung Puffer (PBS + 3% BSA + 0,01% Tween-20) bei einer 4 in Blockierungs: 2: 1-Molverhältnis. HINWEIS: Das Array wird mit Lektinen sondiert , um festzustellen , daß Glycane immobilisiert und nachweisbar (Abbildung 1B). </li><li> Übertragen Sie die Glykan-Bindungsprotein-Antikörper-Mischlösung von 20 &amp; mgr; l zu einer 384-Well-Platte und Inkubation auf Eis für 30 min. verdünnte seriell Lektin und HA Proben 1: 1, in den entsprechenden Puffer, 8-mal, um 10 &amp; mgr; l Probe mit 10 ul Puffer gemischt wird. </li><li> Pipette 8 &amp; mgr; l der Probe auf den Mikrovertiefungsoberfläche und inkubiere in dem abgedichteten Befeuchtung (100% RH) Kammer für 90 min. </li><li> Waschen Sie die Folien einzeln nacheinander an den Rändern halten und sie viermal in einem Gemisch aus PBS und 0,05% Tween, dann viermal in PBS und schließlich viermal in entionisiertem H 2 O getaucht Mitdas gleiche Trocknungsprotokoll in dem Blockierungsschritt beschrieben, drehen sich die Anordnungen in einer Zentrifuge für 5 Minuten bei 10 x g trocknen. </li></ol> 3. Scannen und Datenanalysen HINWEIS: Die Glycan-Mikroarrays können bei unterschiedlichen Einstellungen gescannt werden, je nach Angaben des Herstellers Microarray-Scanner. Durch Variation der Laserleistung und Auflösung, kann das Gerät ein Bild zu erzeugen , mit so vielen Signalen wie möglich innerhalb seines Dynamikbereichs (Abbildung 1C). <ol><li> Verwenden Sie einen fluoreszierenden Dia-Scanner und scannen die Arrays unmittelbar nach der Inkubation mit den Glycan Bindungsproteine. Achten Sie darauf, die Rutsche, um sicherzustellen, richtig in das Scan-Gerät eingesetzt wird. <ol><li> Öffnen Sie Scan-Software. Klicken Sie auf Start, das Programm zu öffnen. Eine Verbindung mit Scanner: Scanner → Verbinden oder grüne Taste in der Scanner-Navigationsfeld-Menü. </li><li> Öffnen Sie Autoloader Tür des Scanners. Die Objektträger in Schlitze in Autoloader in einer bestimmten Reihenfolge. Schließen Autoloader Tür. Click &quot;lesen loader&quot; im Tools-Navigationsfeld automatische Erkennung Dias in den Scanner. </li><li> Stellen Sie Scan - Parameter: Scanner → Scan - Parameter entsprechend dem Experiment (zB 635 Laserleistung hoch, Erfassungsverstärkung 50%). Scannen von Dias: Scanner → Scan. Wählen Sie den Pfad durch das Erstellen eines Ordners die Scan-Bilder und Namen einzelnen Scans zu speichern. Tun Sie dies vor dem eigentlichen Scannen. Wiederholen Sie für jede einzelne Folie. Klicken Sie auf OK, um das Scannen zu starten. </li></ol></li><li> Verwenden Sie die Scanner-Software das Gerät einzurichten und zu scannen, um die Dias. Stellen Sie Scanner scannen iterativ bei niedrigen Laserleistung (5 mW) mit zunehmender Gain-Einstellungen von 25%, 50% und 75%. HINWEIS: Die Einstellungen können getestet und optimiert werden, aber bedenken Sie, dass jeder Scan möglicherweise die Fluoreszenz Ausgabe der Farbstoffe aufgrund Photobleaching senken kann. <ol><li> Offene Datenerfassung und Analyse-Software wie MAPIX Software. Klicken Sie auf Start, das Programm zu öffnen. Öffnen Sie Scan-Bild: Datei → Öffnen imAlter. Öffnen Sie GAL-Datei: Analysieren → Öffnen Raster und wählen Sie den entsprechenden GAL-Datei. </li><li> Geben Sie Blöcke Modus: Bild → Blöcke Modus, um das Raster zu bewegen. Verwenden Sie die Gittermarkierungen das Gitter an der entsprechenden Stelle auf der Folie einzustellen. Passen Sie einzelne Blöcke als notwendig, um die gedruckte Array entsprechen. </li><li> Geben Sie Flecken-Modus: Bild → Spots Modus Lage und Größe der einzelnen Spots innerhalb des Blocks einzustellen. Sobald alle Blöcke und Spots eingestellt und an Ort und Stelle, messen Signalintensitäten durch Analysieren → Photometrische Berechnungen. Speichern Sie die Ausgabedatei. </li></ol></li><li> Sobald die Dias Scannen fertig sind, werden die Bilder für die Bindung von Signalen mit dem Bildbearbeitungsprogramm installiert ist (- G 1D) analysiert. Für die Bildanalyse, legen Sie eine GAL (Array-Liste) Datei über das TIFF-Bild gescannt. HINWEIS: Die GAL-Datei enthält sowohl das Punktlayoutmuster und Identitäten jedes Spots Lage. GAL-Dateien für Arrays sind created durch die Druckersoftware ein Tab-separierte Textdatei, die die Identität der Proben enthält und ihre Position in der 384-Well-Source-Platte. </li><li> Verwenden Sie die Raster-Marker / Landelichter auf den Mikroarrays gedruckt, um richtig die GAL Gitter platzieren. Einzelnen Spots müssen einzeln bewegt werden, sondern ein gut gedruckten Arrays werden im Allgemeinen Blöcke innerhalb des Gitters ermöglichen, mit Leichtigkeit zu platzieren. Nach Gitter Platzierung, sammeln Spotintensitäten von der Software und als Tab-getrennte Textdatei (.txt) gespeichert. <ol><li> Mit Tabellenkalkulationsprogramm, öffnen Sie die Ausgabedatei vom Scanner. Öffnen Sie das entsprechende Makro-Datei aus dem Ordner. Klicken Sie auf Ansicht → Makro → RunMacro. HINWEIS: Die Pre-geschrieben, um die rohen Ausgangsdaten kopiert, entfernen Sie unnötige Zeilen und Spalten sortieren Sie die Daten, die von Probe, berechnen die durchschnittliche mittlere Signal minus Hintergrundwerte und zeichnen Sie die resultierenden Werte in zu einem Tabellenkalkulations-Arbeitsblatt die Graphen für die jeweils der sechs samples auf dem Array getestet. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen

IAV Rezeptorspezifität Die Beurteilung ist ein wichtiger Schritt in Pandemie-Potenzial von Vogelviren zu analysieren. Sialinsäure-Erkennung durch das Virus auf mehrere biologische Eigenschaften verbunden, wie beispielsweise die Bindung an und die Freisetzung aus der Zelle. Deren Kenntnis Aminosäure Mutationen sind notwendig für die Vogelviren zu erreichen α2-6 Bindung und überqueren die Speziesbarriere Pandemievorsorge ermöglicht. Verschiedene Assays werden verwendet Rezeptorspezifität zu bestimmen; aber alle haben ihre...

Wilde Wasservögel sind das natürliche Reservoir für IAV, aber IAV ist in der Lage die Artengrenze zu Geflügel und Säugetieren, zu überqueren, einschließlich Menschen. Avian iAVS erkennen α2-3 verknüpften Sialinsäuren (aviäre-Typ-Rezeptoren), während menschliche Viren α2-6 verknüpften Sialinsäuren (human-Typ-Rezeptoren) binden. In der Lage sein, effizient zu replizieren , und zwischen Menschen ein avian IAV zu binden muss human-Typ - Rezeptoren 1 übertragen. IAVS basieren auf Serologie unterteilt, die die Antigenität ihrer Hämagglutinin (HA) und Neuraminidase (NA) Hüllglycoproteine ​​charakterisiert. HA bindet an Sialinsäuren, während NA der Rezeptor zerstörende Enzym am anderen Ende des viralen Lebenszyklus und spaltet Sialinsäure 2 ist. Alle menschlichen infizierenden Viren, einschließlich H1N1, H2N2 und H3N2, haben einen aviären Ursprungs 3. In den letzten zwei Jahrzehnten mehrere avian für die menschliche Crossovers aufgetreten sind, mit H5N1, H7N7 und H7N9 die bekanntesten sind; however, haben andere Subtypen Menschen mehr sporadisch infiziert (H6N1, H7N1, H7N2, H9N2, H10N7, H10N8) 4. Glücklicherweise scheint es , dass keine dieser Viren vollständig konnten bis zu α2-6-verknüpfte Sialinsäure - Rezeptoren 5-8 human-Typ anzupassen. Die Anpassung von Vogel- oder anderen zoonotischen Viren-Replikation und Übertragung in menschlichen Wirten aufnehmen eine verheerende Wirkung auf die menschliche Gesundheit haben könnten. Daher sollten Sie vor Wissen, wie diese Viren Mensch-Typ-Rezeptoren zu binden, werden weiterentwickelt werden weltweite Überwachung von Schwellen Influenza-Viren helfen. Bestimmung der Rezeptor bevorzugt wurde aufgeklärt erste Erythrozyten verschiedener Arten verwendet und bleibt ein beliebtes Test unter Grippe Forscher 12.09. Die Demonstration, die Vogelviren α2-3 Sialinsäure und menschlichen Viren erkennen α2-6 Sialinsäure verknüpft wurde auf einem Test basierte ursprünglich enzymatisch konstruiert unter Verwendung von Hämagglutination von Erythrozyten jeder der li enthaltennkages 13,14. Obwohl die Auslese Hämagglutination, ein Standardtest für virologists ist, werden die zugrundeliegenden Glykanstrukturen nicht definiert, sondern nur die terminaler Verknüpfung. Zusätzlich kann die beschränkte Verfügbarkeit der Sialyltransferasen, verwendet , um die Zellen erneut sialylieren, haben die Verwendung dieses Assays 15-18 begrenzt. Anschließend andere Verfahren zur Bestimmung der Rezeptorbindungspräferenzen wurden unter Verwendung von sialylierten Glycanstrukturen auf poly-acrylamid (PAA) oder Poly-Glutamat (PGA) Strukturen in plattenbasierten Assays 19,20 verknüpft eingeführt. Verschiedene Varianten sind möglich , entweder die Glykane oder Viren auf Mikrotiterplatten in der Beschichtung, von denen jede ergibt eine robuste, zuverlässige und sehr empfindlichen ELISA-Typ - Assay 21-23. Alternativ können Biotin-gebundene Glykane können PAA / PGA ersetzen und kann auf 2,24 Streptavidin-beschichteten Platten konjugiert werden. Obwohl einige spezifische Seren erforderlich sein können, ELISAs sind Standard und mehrere an PAA verknüpften Glykanen leicht sind commercially und nicht im Handel erhältlich (Konsortium für Funktionelle Glycomics (http://www.functionalglycomics.org)). Glycan Microarray - Technologien haben als ein unschätzbares Werkzeug entstanden Rezeptorspezifität zu bestimmen, wie mehrere verschiedene Glykane gesichtet werden, und auf eine breite Palette von unterschiedlichen Strukturen Bindung kann 25-29 in einem einzigen Assay beurteilt werden. Die Bindung von IAV auf diese Strukturen ein besseres Verständnis der Glycan - Strukturen , die IAV bevorzugt 30-33 erkennt. Glycan-Mikroarrays erfordern geringe Mengen an Probenvolumen einen Bindungstest durchzuführen und verwendet nur winzige Mengen von Glycan pro Spot (2 nl). Allerdings sind in der Regel diese Arrays nur zu bewerten Spezifität von Glykane Rezeptoren verwendet. Analyse mehrerer Viren oder Hämagglutinin-Proteine, an mehreren Konzentrationsbereiche können aufgrund der Anzahl der Folien erforderlich prohibitiv sein. Darüber hinaus bis heute wurde keine relative Avidität Test unter Verwendung von Glycan ar entwickeltray-Techniken. Um den geringen Probenbedarf von Glycan-Mikroarray-Techniken und der Empfindlichkeit der PAA-Glycane in ELISA-basierten Assays lieferte kombinieren, haben wir versucht, eine Multi-Well-Glycan Array zu entwickeln, die für die Hochdurchsatzanalyse mit ähnlichen oder besseren Auflösung erlauben würde, im Vergleich zum herkömmlichen ELISA-basierenden Assay. Gleichzeitig wollten wir verbraucht, um die Menge von Biologika und Reporter Chemikalien zu minimieren. Das endgültige Ergebnis ist ein miniaturisiertes Avidität Assay, speziell entwickelt für die Überwachung der IAV Spezifität und ist gleichermaßen anwendbar andere Glykan Bindungsproteine ​​zu beurteilen. Mit einem Glasobjektträger getrennt in 48 Mikrovertiefungen durch eine Teflon-Maske, 6 verschiedene Glykane in 6 Wiederholungen gesichtet pro Vertiefung. Die Microarray-Plattform bietet die gleichen Trends in der Rezeptor im Makro-ELISA-Format mit mehreren Vorteilen gesehen Bindung. Dazu gehören (I) Druck der Verbindung in 6 Wiederholungen, minimale Probe mit, im Vergleich zu der Beschichtung von mehreren Reihen ina Platte, unter Verwendung von 100 &amp; mgr; l pro Vertiefung; (II) mehrere verschiedene Verbindungen analysiert gleichzeitig in einem einzigen gut, einschließlich der Kontrollen; (III) eine massive Verminderung der Inkubationsvolumen und; (IV) ein größerer Dynamikbereich ein Fluoreszenzsignal verwendet wird. Eine einzelne Folie kann berechnet werden zu 18-fach 96-Well-Platten äquivalent. Mit dem folgenden Protokoll, jedes Labor der Lage, die Herstellung und Analyse von spotted Microarrays Lage sein sollten, diese miniaturisierten ELISA-Format herzustellen.

<table><tbody><tr><td>NEXTERION&reg; Slide H MPX-48&nbsp;</td><td>Schott</td><td>1091525</td><td>Mikrotiterplatten</td></tr><tr><td>ProScanArray Plus</td><td>PerkinElmer</td><td></td><td>hat den konfokalen Microarray-Scanner</td></tr><tr><td>Innoscan 1100AL eingestellt. Scanner/Mapix Software</td><td>Innopsys-konfokaler</td> <td>Microarray-Scanner</td><td></td></tr> <tr><td>MicroGrid II&nbsp;</td><td></td><td>Digilab-microaray Drucker</td><td></td></tr> <tr><td>SNA</td><td>Vector Labs</td><td>B-1305&nbsp;</td><td>Pflanzliches Lektin</td></tr><tr><td>ECA</td><td>Vector Labs</td><td>B-1145&nbsp;</td><td>Pflanzliches Lektin</td></tr><tr><td>Anti-Streptokokken-Antikörper</td><td>IBA</td><td>2-1509-001&nbsp;</td><td>Anitbody für HA-Bindung</td></tr><tr><td>Anti-Maus Alexa-647</td><td>Life</td><td>A-21235</td><td>Anitbody für HA-Bindung</td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>Sigma</td><td>P2287&nbsp;</td><td>Reinigungsmittelmittel</td></tr><tr><td>zweibasisches Natriumphosphat</td><td>Sigma</td><td>255793</td><td>Druckpufferkomponente</td></tr><tr><td>monobasisches Natriumphosphat</td><td>Sigma</td><td>229903&nbsp;</td><td>Komponente für Druckpuffer</td></tr><tr><td>Poly-L-Lysin-Lösung</td><td>Sigma</td><td>P8920&nbsp;</td><td>Vor-Spotting-Slide-Komponente</td></tr><tr><td>Natriumhydroxid</td><td>Sigma</td><td>221465</td><td>Vor-Spotting-Objektträgerkomponente</td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>Sigma</td><td>493546</td><td>Pre-Spotting-Objektträgerkomponente</td></tr><tr><td>Phosphatgepufferte Kochsalzlösung</td><td>Corning</td><td>46-013-CM</td><td>Inkubations-/Waschpuffer</td></tr><tr><td>SMP4B-Pins</td><td>Telechem</td><td>SMP4B-Druckstift</td><td></td></tr><tr><td>Komprimierter Stickstoff (Grade5)</td><td>Praxair</td><td>UN1066</td><td>allgemeines Staub-/Trocknungswerkzeug</td></tr><tr><td>Borsäure</td><td>Sigma</td><td>B6768-500G</td><td>Objektträgerblocker-Reagenz</td></tr><tr><td>Ethanolamin</td><td>Sigma</td><td>E9508-500ML</td><td>Objektträger-Blockierungsreagenz</td></tr><tr><td>Atto 488</td><td>AttoTec</td><td>AD 488-91</td><td>Gridmarker auf Array</td></tr><tr><td>PAA-LNLN</td><td>Konsortium für funktionelle Glykomik</td><td>PA368</td><td>Fleckenglykane</td></tr><tr><td>PAA-3SLNLN</td><td>Konsortium für Funktionelle Glykomik</td><td>PA362</td><td>Gefleckte Glykane</td></tr><tr><td>PAA-6SLNLN</td><td>Konsortium für Funktionelle Glykomik</td><td>PA343</td><td>Fleckenglykane</td></tr><tr><td>LNLN</td><td>Konsortium für Funktionelle Glykomik</td><td>Te98</td><td>Gefleckte Glykane</td></tr><tr><td>3SLNLN</td><td>Konsortium für Funktionelle Glykomik</td><td>Te175</td><td>Gefleckte Glykane</td></tr><tr><td>6SLNLN</td><td>Konsortium für Funktionelle Glykomik</td><td>Te176</td><td>Gefleckte Glykane</td></tr><tr><td>384-Well-Mikrotiterplatte</td><td>Matrix TechCorp</td><td>4361</td><td>Druckplatte</td></tr><tr><td>VWR Labormarker</td><td>VWR</td><td>52877-150</td><td>Objektträgernummerierung</td></tr><tr><td>Wheaton Objektträgerfärbeschale</td><td>Sigma</td><td>Z103969-1EA</td><td>Blockieren und Trocknen</td></tr></tbody></table>

ein miniaturisiertes glycan microarray-test zur beurteilung der avidität und spezifität von influenza-a-virus hämagglutininarten

A Miniaturized Glycan Microarray Assay for Assessing Avidity and Specificity of Influenza A Virus Hemagglutinins

Influenza A-Virus (IAV) Hämagglutinine erkennen Sialinsäuren auf der Zelloberfläche als funktionelle Rezeptoren Eintritt in die Zellen zu gewinnen. Wilde Wasservögel sind das natürliche Reservoir für IAV, aber IAV können die Speziesbarriere zu Geflügel, Schweinen, Pferden und Menschen überqueren. Avian Viren erkennen zu einem vorletzten Galactose durch eine α2-3 Verknüpfung (aviäre-Typ-Rezeptoren) angebracht Sialinsäure während menschlichen Viren bevorzugt Sialinsäure mit einer α2-6 Verknüpfung (Mensch-Typ-Rezeptoren) erkennen. Zur Überwachung, ob Vogelviren für die menschliche Art der Anpassung sind Rezeptoren, können verschiedene Methoden verwendet werden. Glycan-Mikroarrays mit diversen Bibliotheken synthetischer Sialosiden werden zunehmend eingesetzt Rezeptorspezifität zu bewerten. Jedoch ist diese Technik zum Messen avidities nicht verwendet. Messung der Avidität wird durch Auswertung der Bindung von seriell verdünnt Hämagglutinin oder Virus Glykane adsorbiert zu herkömmlichen Polypropylen 96-Well-Platten typischerweise erreicht. In diesem Assay Glykane mit α2-3 oder α2-6 sind Sialinsäuren an Streptavidin Platten an Biotin und adsorbierte gekoppelt sind oder gekoppelt Polyacrylamid (PAA), die direkt an die Kunststoff adsorbieren. Wir haben diesen Test deutlich miniaturisiert durch direktes Drucken von PAA-linked Sialosiden und ihre nicht PAA gebundenen Pendants auf Mikro gut Objektträger aus Glas. Dieses Set-up, mit 48-Arrays auf einer einzelnen Folie, ermöglicht die gleichzeitige Assays von 6 Glycan Proteine ​​bei 8 Verdünnungen, abfrage 6 verschiedene Glykane, darunter zwei nicht sialylierten Kontrollen verbindlich. Dies ist äquivalent zu 18-fach 96-Well-Platten in der herkömmlichen Platten-Assay. Das Glycan Array-Format zur Verringerung der Kosten Verbindungen und biologische Präparate und steigert somit die Effizienz deutlich.

Drucken, Scannen und Datenanalysen Um eine ordnungsgemäße Druck, ist es wichtig, die richtige Ausrichtung des gefleckten Gitter innerhalb der Teflonmaske zu haben, die jedes Array auf dem Schlitten abgrenzt. Während des Druckvorgangs aufgrund der Natur der Teflonbeschichtung, spots kann nicht mit dem bloßen Auge auf den MPX Folien gesehen werden. Augenmerk wird dann auf die Erscheinung der vorge Flecken auf den poly-L-Lysin be...

Unter Verwendung einer gedruckten Glykan-Microarray-Strategie wurde ein konventioneller 96-Well-Plattenassay für die Analyse der Hämagglutinin-Avidität und Spezifität des Influenza-A-Virus für Sialinsäure-haltige Rezeptoren miniaturisiert.

Ein miniaturisiertes Glycan Microarray-Test zur Beurteilung der Avidität und Spezifität von Influenza-A-Virus Hämagglutininarten

Influenza A virus (IAV) hemagglutinins recognize sialic acids on the cell surface as functional receptors to gain entry into cells. Wild waterfowl are the ...

Das übergeordnete Ziel dieses miniaturisierten Glykan-Arrays besteht darin, die Spezifität und Affinität von Hämagglutininen des Influenza-A-Virus zu analysieren. Dieser Test kann helfen, zentrale Fragen zur Rezeptorbindung und Affinität des Influenza-A-Virus zu beantworten. Der Hauptvorteil dieser Methode liegt darin, dass wir innerhalb eines einzigen Assays sowohl die Spezifität als auch die relative Bindungsaffinität untersuchen können, was normalerweise in typischen Glykan-Arrays und plattenbasierten Assays nicht erreicht wird.Dieses Protokoll beginnt mit der Vorbereitung der Glykanproben. Die Basislösung für die Glykane ist ein gepufferter Vorratsansatz zum Bedrucken, der nach der Herstellung langsam auf einen pH-Wert von 8,5 titriert und anschließend mit einem Tensid versetzt werden sollte. Verdünnen Sie die PAA-konjugierten Glykane mit dem hergestellten Druckpuffer auf 100 Mikrogramm pro Milliliter.Anschließend verdünnen Sie die monovalenten Glykane ebenfalls im Druckpuffer auf 100 Mikromolar. Stellen Sie abschließend Arbeitslösungen der aminfunktionalisierten Farbstoffe bei einer Konzentration von einem Mikromolar her. Geben Sie nun je zehn Mikroliter jeder Glykanprobe in eine Vertiefung einer 384-Loch-Mikrotiterplatte.Dies reicht für den Druck von fünf Objektträgern. Übertragen Sie außerdem zehn Mikroliter des Farbstoffmarkers in ein Well der Druckplatte. Bereiten Sie den Array-Druck vor, indem Sie zunächst die Arrayer-Nadeln und den Druckkopf gemäß dem Layout positionieren.In diesem Fall kann ein Pin alle Proben auftragen. Die Glykan-Arrays werden in Blöcken zu sechs gedruckt, die auf allen Seiten von einer leeren Stelle umgeben sind. Tragen Sie Handschuhe, um die Objektträger zu handhaben.Entpacken Sie sie und blasen Sie mit ultrareinem Stickstoffgas jeglichen Schmutz von den Oberflächen ab. Danach platzieren Sie die Objektträger mit der beschichteten Seite nach oben auf der Arrayer-Plattform. Anschließend programmieren Sie den Arrayer.In diesem Fall programmiert man 27 Stellen pro Besuch auf der Quellplatte. Drei Vorstifte, die im Nicht-Array-Bereich eines mit Poly-L-Lysin beschichteten Objektträgers platziert werden, dienen dazu, überschüssige Flüssigkeit an der Nadelspitze zu entfernen. Die anderen 24 Stellen pro Nadelaufsetzen werden verwendet, um sechs Stellen in vier replikativen Arrays abzulegen.Einzelheiten sind im Textprotokoll angegeben. Laden Sie nun die Mehrfach-Well-Platten in den Drucker ein und beginnen Sie mit dem Drucken der Arrays. Achten Sie während des Druckens darauf, dass die Luftfeuchtigkeit zwischen 55 und 65 % bleibt. Beachten Sie das Erscheinungsbild der Vorabtropfen auf den mit Poly-L-Lysin beschichteten Objektträgern.Nach dem Drucken jede Probe visuell überprüfen. Auf korrekte Ausrichtung der Flecken innerhalb der Teflonränder, was entscheidend ist, sowie auf die korrekte Anzahl der aufgetragenen Merkmale prüfen. Um die Anheftung der Punkte zu homogenisieren, die frisch bedruckten Objektträger unmittelbar nach der Herstellung mit der bedruckten Seite nach oben in eine Feuchtekammer mit 100 % Luftfeuchtigkeit stellen.Verwenden Sie feuchte Papiertücher, um einen Behälter und einen provisorischen Halter zu polstern. Wickeln Sie die Kammer in Plastikfolie ein, um die Feuchtigkeit einzuschließen. Nach einer halben Stunde nehmen Sie die Objektträger heraus.Dann nummerieren Sie die Objektträger mit einem lösungsmittelresistenten Markierstift und lagern Sie sie über Nacht in einer Trockenbox. Am nächsten Tag bereiten Sie einen frischen Vorrat an Blockierpuffer unter starkem Rühren vor. Stellen Sie den pH-Wert auf 9,2 ein, indem Sie konzentrierte Natronlauge verwenden.Anschließend die Objektträger eine Stunde lang im Puffer inkubieren. Um die Blockierung zu entfernen, die Objektträger mit doppelt destilliertem Wasser abspülen. Danach die Objektträger in Glasfärbungshalter überführen und die Halter in einen schwenkbaren Plattenhalter einsetzen, um die Objektträger fünf Minuten lang bei 10 G trockenzuschleudern.Nach dem Trocknen die Objektträger gegebenenfalls bei minus 20 Grad Celsius in verschlossenen Plastikbeuteln aufbewahren. Zur Vorbereitung eine weitere Feuchtekammer wie zuvor herstellen. Zur Detektion der immobilisierten Glykane SNA- und ECA-Biotin-Lektine in Probing-Puffer auf 10 Mikrogramm pro Milliliter verdünnen und jeweils zwei Mikrogramm pro Milliliter Streptavidin 555 zu jeder Verdünnung hinzufügen.Um mit den Hämagglutininen zu färben, stellen Sie eine Lösung von 20 Mikrogramm pro Milliliter präkomplexiertem Antikörper in Blockpuffer in einem molaren Verhältnis von vier zu zwei zu eins her, wie im Textprotokoll beschrieben. Geben Sie 20 Mikroliter der hergestellten Lösungen in die Vertiefungen einer 384-Loch-Platte. Verdünnen Sie anschließend die Lektine und Hämagglutinine im Verhältnis eins zu eins seriell in den jeweils geeigneten Puffern. Stellen Sie acht Verdünnungen her, indem Sie jede Vertiefung mit 10 Mikrolitern Probe und 10 Mikrolitern Puffer füllen. Inkubieren Sie die Platte nun 30 Minuten auf Eis. Geben Sie anschließend jeweils acht Mikroliter jeder Verdünnung in eine der 48 Mikrovertiefungen auf einem bedruckten Objektträger.Als Nächstes inkubieren Sie den vorbereiteten Objektträger 90 Minuten lang in der Feuchtekammer. Nach 90 Minuten waschen Sie den Objektträger, indem Sie ihn am Rand halten; tauchen Sie ihn viermal in PBS-T, dann viermal in PBS und schließlich viermal in entionisiertes Wasser. Anschließend trocknen Sie den Objektträger erneut im Schleudertrockner.Nach dem Spindryen sofort den Objektträger scannen. Achten Sie darauf, den Objektträger korrekt ausgerichtet vorsichtig in den Scanner einzulegen. Scannen Sie die Objektträger iterativ mit einer niedrigen Laserleistung von fünf Milliwatt und erhöhen Sie schrittweise die Verstärkung von 25 auf 75 %. Berücksichtigen Sie bei der Optimierung der Scan-Einstellungen, dass die Fluorophore durch wiederholte Scans ausbleichen.Analysieren Sie das gespeicherte Bild mithilfe der zugehörigen Software auf Bindungssignale. Eine Array-Liste mit dem Spotting-Muster kann geladen werden. Legen Sie diese auf den Scan, um die Platzierung der Gittermarkierungen zu erleichtern.Verwenden Sie anschließend die Software, um die Fleckintensitäten zu analysieren, und speichern Sie die Ergebnisse als tabulatorgetrennte Textdatei, um sie in eine Tabellenkalkulation oder ein anderes statistisches Programm zu importieren. Analysieren Sie die Daten, indem Sie die mittlere Signalintensität minus den Hintergrund berechnen. Bilden Sie den Durchschnitt aus vier der sechs replizierten Flecken für jede Probe, wobei das höchste und das niedrigste Signal ausgeschlossen werden.Erstellen Sie anschließend ein Liniendiagramm des durchschnittlichen mittleren Signals abzüglich des Hintergrunds in Abhängigkeit von den acht Protein-konzentrationen. Glätten Sie die resultierende Linie mithilfe einer nichtlinearen Regression. Mit dem PAA-Array wurde die Rezeptorbindungs-spezifität von Hämagglutininen des Influenza-A-Virus untersucht.Das Array enthielt in denselben Mikrowellen nicht-sialylierte Kontrollen. Pflanzen-Lektine mit bekannten Spezifitäten für die aufgedruckten Verbindungen wurden als positive Kontrollen verwendet. Das ECA-Lektin band an terminalen Galactose-Beta-1-4-verbundenen N-Acetylglucosamin und band nicht an dieselbe Verbindung, wenn die terminale Galactose mit Sialinsäure abgeschlossen war.Zum Nachweis von alpha-2,6-gebundenen Sialinsäuren wurde das SNA-Lektin verwendet. Wie erwartet band SNA ausschließlich alpha-2,6-gebundene Sialinsäuren, jedoch mit bemerkenswerten Unterschieden in der Affinität für PAA-gebundene im Vergleich zu nicht-PAA-gebundenen Farbstoff-lacNAc-Wiederholungen. Anschließend wurde ein aus einem Vietnam/1203/04-Virus stammendes H5-Hämagglutinin getestet, das ausschließlich alpha-2,3-gebundene Sialinsäuren erkennt.Das Bindungsprofil des H5-Hämagglutinins zeigte die erwartete Spezifität mit einer höheren Avidität für die PAA-verknüpften Strukturen. Abschließend wurde das H1-Hämagglutinin eines humanen saisonalen H1N1-Stamms getestet. Wie erwartet band dieses Hämagglutinin ausschließlich an alpha 2-6-verknüpfte Strukturen, die Sialinsäure enthalten.Wenn man diese Technik einmal beherrscht, kann sie die Bindungsspezifitäten und relativen Affinitäten von Influenzaviren innerhalb eines einzigen Assays aufzeigen. Diese Technik wird die Effizienz von Influenzabindungsassays erheblich verbessern und gleichzeitig den Verbrauch kostbarer biologischer Reagenzien verringern.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

Ein einfaches Slot-Blot-Methode wurde für die Quantifizierung von Influenza Virus Hämagglutinin und Neuraminidase mit universellen Antikörper, die gegen ihre stärksten konservierten Sequenzen durch bioinformatische Analysen identifiziert entwickelt. Dieser innovative Ansatz kann eine sinnvolle Alternative zu quantitativen Bestimmung aller viralen Hämagglutinin und Neuraminidase.

Quantitative Analysen aller Influenza Typ A Viral Hämagglutininen und Neuraminidasen mit Universal Antikörper in Einfache Slot Blot Assays

Diese Methode beschreibt die Verwendung von Infrarot-Farbstoff basierende Imaging-System für den Nachweis von H1N1 in bronchioalveolar Lavage (BAL) Flüssigkeit von infizierten Mäuse mit einer hohen Empfindlichkeit. Diese Methodik in einem 96 durchgeführt werden kann - oder 384-Well-Platte, erfordert &lt;10 ul Volumen von Testmaterial und hat das Potenzial für die gleichzeitige Screening von mehreren Erregern.

High-Throughput Nachweisverfahren für Influenza-Virus

In diesem Video demonstrieren wir den Prozess zum Nachweis von Antikörper-Isotypen in mehreren menschlichen Serumproben anhand eines Microarray-Objektträgers, der mit antigenen Subtypen von Influenzavirusstämmen gedruckt wurde.

Viraler Antigen-Microarray-Assay zum Nachweis von Antikörper-Isotypen im Serum gegen virales Antigen

Das Video zeigt einen Hämagglutinations-Inhibitions-Assay zum Nachweis von Serum-Antikörpern gegen spezifische Antigene. Die Bestätigung der Hämagglutinationshemmung in der Testvertiefung und der Hämagglutination in der Kontrollvertiefung wird durch unterschiedliche visuelle Muster erreicht. Dieser Assay spielt eine entscheidende Rolle bei der Bewertung der Immunantwort, der Wirksamkeit von Impfstoffen und der Untersuchung von Virusinfektionen in der Virologie und Immunologie.

Der Hämagglutinationshemmungsassay zum Nachweis von Serumantikörpern gegen ein Zielantigen

Das Video zeigt einen Assay zur Quantifizierung der Influenzaviren A und B. Dieser Assay verwendet eine Nicking-Endonuklease-Amplifikation mit Influenza-spezifischen Primern und eine Zieldetektion mit molekularen Beacon-Sonden.

Ein molekularbasierter Assay zur Quantifizierung von Influenza-A- und -B-Viren

Dieses Video zeigt einen Assay, der die Influenza-Neuraminidase (NA) misst, die die Antikörpertiter in einer Serumprobe hemmt. Eine Serumprobe, die Antikörper gegen NA enthält, wird auf eine mit Fetuin beschichtete Mikrotiterplatte gegeben. Nach Zugabe des Virus verhindern die Antikörper, dass virale NA Fetuin spaltet und seine Galaktose-Einheit freilegt. Anschließend wird ein Peroxidase-konjugiertes Lektin zugegeben, das an die exponierte Galaktose bindet. Der NA-hemmende Antikörpertiter wird...

Ein Assay zur Messung von Antikörpertitern zur Influenza-Neuraminidase-Hemmung

Wir beschreiben den Enzyme-linked Lectin Assay (ELLA) zur Messung von Influenza-Neuraminidase (NA)-Inhibitions-Antikörpertitern in Seren. Der Assay verwendet Erdnuss-Agglutinin, um Galaktose-Rückstände zu quantifizieren, die zugänglich werden, wenn NA Sialinsäure von Fetuin-beschichteten 96-Well-Platten entfernt.

Messung von Influenza-Neuraminidase Inhibition Antikörpertiter durch Enzyme-Linked-Lectin-Assay

Diese Studie beschreibt ein   Imaging-basierte Mikroneutralisationstest auf die antigenen Beziehungen zwischen Viren zu analysieren. Das Protokoll verwendet einen Flachbettscanner und hat vier Schritte, einschließlich der Titration Titration Quantifizierung, Neutralisierung und Neutralisierung Quantifizierung. Der Test funktioniert gut mit aktuellen zirkulierenden Influenza A (H1N1) pdm09, A (H3N2) und B-Viren.

Optimierung eines Assay Quantitative Mikroneutralisations

Die vorgestellten Protokolle wird beschrieben, wie einen Hämagglutination Inhibition Assay Quantifizierung des Influenza-spezifischen Antikörper-Titer von Serumproben von Grippe-Impfstoff Empfängern durchführen. Der erste Test bestimmt optimale virale Antigen-Konzentrationen durch Hämagglutination. Die zweite Probe quantifiziert Influenza-spezifischen Antikörper-Titer Hämagglutination Inhibition.

Eine optimierte Hämagglutination Inhibition (HI) Assay, Influenza-spezifischen Antikörper-Titer zu quantifizieren

Wir beschreiben eine Methode, um der Aktivierung des Fc-vermittelten Effektor-Funktionen durch Antikörper dieses Ziel der Influenza Virus Hämagglutinin messen. Dieser Test kann auch angepasst werden, um die Fähigkeit der monoklonale Antikörper oder polyklonalen Seren gezielt andere virale Oberfläche Glykoproteine induzieren Fc-vermittelten Immunität zu beurteilen.

Eine Methode zur Bewertung von Fc-vermittelten Effektor-Funktionen durch Influenza Hämagglutinin spezifische Antikörper induziert

Wir präsentieren ein Protokoll zur Verwendung eines Protein-Mikroarrays, das durch den Druck von Influenza-Antigenen auf nitrozellulosebeschichtete Dias konstruiert wurde, um gleichzeitig Serum für mehrere Antikörper-Isotypen gegen über 250 Antigene aus verschiedenen Virusstämmen zu sonden, Messung der Breite von Serumantikörpern über Virussubtypen hinweg.

Verwendung eines Influenza-Antigen-Mikroarrays zur Messung der Breite von Serum-Antikörpern über Virussubtypen hinweg

Erfahren Sie, wie ein miniaturisiertes Glycan-Microarray die Avidität und Spezifität von Influenza-A-Virus-Hämagglutininen analysiert. Diese Methode ermöglicht die gleichzeitige Bewertung von Rezeptorbindung und Bindungsstärke in einem einzigen Assay.

Ein miniaturisiertes Glycan Microarray-Test zur Beurteilung der Avidität und Spezifität von Influenza-A-Virus Hämagglutininarten (Video) | JoVE Journal

Ein miniaturisiertes Glycan Microarray-Test zur Beurteilung der Avidität und Spezifität von Influenza-A-Virus Hämagglutininarten

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