Name: Verfahren für Adaptive Labor Entwicklung von Mikroorganismen Mit einem Chemostat (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-09-20T08:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 3 s
Description: Erfahren Sie die adaptive Labor-Evolution von Mikroorganismen mit einem Chemostat. Diese Methode ermöglicht die kontinuierliche Selektion von E. coli unter kontrollierten Bedingungen und liefert wertvolle Einblicke in Stressantworten und metabolische Anpassungen.

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Diese Studie wurde finanziell unterstützt vom koreanischen Ministerium für Wissenschaft, IKT und Zukunftsplanung (Intelligent Synthetic Biology Center program 2012M3A6A8054887). P. Kim wurde durch ein Stipendium der Katholischen Universität von Korea (2015) unterstützt.

1. Vorbereitung der Ausrüstung <ol><li> Besorgen Sie sich ein Chemostat Glas (150-250 ml) oder einem Erlenmeyerkolben (250 ml) mit einer Einlassöffnung und eine Austrittsöffnung enthält. Verbinden Sie die Anschlüsse mit Silikonschlauch so dass für Flussraten von 10 bis 100 ml / h. Optional kann ein Entlüftungsventil, eine Luftaustrittsöffnung, und temperiertes Wasser Einlass- und Auslasskanäle verwenden. </li><li> Besorgen Sie sich eine Vorrichtung, die geeignet für die chemostat Glas, die für das Rühren und Temperaturkontrolle bietet (oder einen Dreh Schüttelinkubator verwenden). </li><li> Erhalten zwei peristaltische Pumpen, um frisches Medium zu liefern und die Kultur zu sammeln. </li><li> Besorgen Sie sich ein Reservoir Glas (10-20 L) eine mittlere Austrittsöffnung und eine Lufteinlassöffnung enthält. </li><li> Erhalten Silikonschlauch geeignet für die Verdünnungsrate (dh ID 0,8 mm, Durchflussbereich von 0,06 bis 36 ml / min; L / S 13 Schläuche). </li></ol> 2. Medium Vorbereitung und Sterilisation <ol><li> Initial Medium <ol><li> Man löst 0,3 g Glucose, 0,08 g NH 4Cl, 0,05 g NaCl, 0,75 g Na 2 HPO 4 · 2H 2 O und 0,3 g KH 2 PO 4 in 90 ml destilliertem Wasser (DW) in einem Chemostat jar. </li><li> Seal die chemostat Glas zusammen mit dem Schlauch mit Schellen. Sie nicht die Lüftungsöffnung abzudichten. </li><li> Sterilisieren Sie die chemostat Glas in einem Autoklaven bei 121 ° C für 15 min. Nach der Sterilisation, speichern Sie die chemostat Glas bei Raumtemperatur. </li><li> Man löst 0,02 g MgSO 4 · 7H 2 O, 0,01 g CaCl 2 und 0,1 mg Thiamin in 10 ml DW (Lösung A). </li><li> Filterlösung A eine Spritze und eine vorge sterilisierten Spritzenfilter unter Verwendung von (a 0,45 um Porenfilter). </li><li> Fügen Sie die Lösung A Filtrate zum Chemostat Glas. </li></ol></li><li> Stress-Medium <ol><li> Man löst 30 g Glucose, 8 g NH 4 Cl, 5 g NaCl, 75 g Na 2 HPO 4 · 2H 2 O, 30 g KH 2 PO 4 und 300 g Dinatriumsuccinat Hexahydrat (Na 2 · Succinat · 6H &lt;sub&gt; 2 O; der Stressor in diesem Experiment verwendet) in 9,9 L DW in einem Reservoir jar. </li><li> Verschließen Sie den Behälter Glas zusammen mit dem Schlauch mit Schellen. Sie nicht die Lüftungsöffnung abzudichten. </li><li> Sterilisieren des Behälters jar in einem Autoklaven bei 121 ° C für 15 min. Nach der Sterilisation, speichern Sie das Gefäß bei Raumtemperatur. </li><li> Man löst 2 g MgSO 4 · 7H 2 O, 1 g CaCl 2 und 10 mg Thiamin in 100 ml DW (Lösung A). </li><li> Filter Lösung A mit einer Spritze und einem vorher sterilisierten Spritzenfilter (0,45 &amp; mgr; m ein Porenfilter). </li><li> Fügen Sie die Lösung A Filtrate zum Reservoir Glas. </li><li> Aseptisch schließen Sie das sterilisierte Silikonschlauch mit dem Reservoir Glas und die peristaltische Pumpen befestigen. </li></ol></li><li> High-Stress-Mittel <ol><li> Bereiten Sie das Medium , wie in Abschnitt 2.2, aber mit einer größeren Konzentration von Stressor (dh 3-5 g / l höher in der Succinat - Anpassung). Hinweis: Dieses Protokoll zur Anpassung an eine Stress than kann über das Medium geliefert werden. Im Falle von physikalischen Stressoren, wie Temperatur, Rühren oder Beleuchtung, die Kultivierung sollte entsprechend ausgelegt werden. </li></ol></li></ol> 3. Erste Anbau <ol><li> Impfen eine einzige Kolonie von Wildtyp E. coli in einem 15 ml Teströhrchen mit 4 ml des anfänglichen Mediums. </li><li> Inkubieren des Teströhrchens in einem Schüttelinkubator 12 Stunden bei 37 ° C und 220 Umdrehungen pro Minute. </li><li> Aseptisch 1 ml der Vorkultur in Chemostat Glas. </li><li> Inkubieren Sie die chemostat Glas und bietet für die Belüftung (Luft 50 ml / min) und Rühren (200 Umdrehungen pro Minute), bei 37 ° C für 6 Stunden. </li></ol> 4. Stress-Anpassung <ol><li> Aseptisch schließen Sie das Ende des Silikonschläuche von den Pumpen zum Chemostat Glas. </li><li> Starten Sie den Ausgang Pumpe (10 ml / h oder höher) und sammeln Kultur. Hinweis: Die Kultur in der exponentiellen Phase sein sollte, in der Regel 4-8 Stunden nach der anfänglichen Kultivierung. </li><li> CHeck der optischen Dichte (600 nm) der Kultur aus dem Auslassschlauch. </li><li> Starten Sie den Zulaufpumpe (10 ml / h, auf eine Rate von Verdünnung von 0,1 h -1 entspricht). </li><li> Überprüfen Sie die optische Dichte der Kultur bei 600 nm von dem Auslass alle 24 h Schläuche. </li><li> Betreiben Sie den chemostat für 96 Stunden (9,6-fache Umsatz) oder mehr. Wenn die optische Dichte stabil ist, tauschen Sie das Reservoir, das den hochbelasteten Medium enthält. Wenn die optische Dichte von weniger als 0,2 ist, stoppen Sie die Fütterung Zulaufpumpe für 6 Stunden. Starten Sie den Zulaufpumpe und prüfen, ob die optische Dichte über 0,2 ist. </li><li> Nach und nach die Konzentration des Stressor erhöhen, indem sie zu einem Reservoir Ändern einer höheren Stressor Konzentration enthält. </li><li> Nehmen Sie Proben der angepassten Kultur , wenn es einen Meilenstein erreicht (zB ein Stamm angepasst bis 100 g / L Succinat Stress) und Speicher für weitere Genomanalyse. </li><li> Für die Probenlagerung, mischen Sie die Kulturprobe (0,5 ml) mit einer sterilisierten 80% Glycerin solutiauf (0,5 ml) und lagern Sie es bei -80 ° C. Hinweis: Wenn der Mikroorganismus die Fähigkeit erwirbt die Stressoren während der ALE-Verfahren abzubauen, die Stressor Konzentration in der Fermentations Glas wie in der frischen Reservoir ist nicht das Gleiche. </li></ol> 5. Einzelkolonie Isolierung des Stress angepasst Dehnungs <ol><li> Bereiten Agarplattenmedium (1,6% Agar), enthaltend die gleichen Stressor und bei der gleichen Konzentration des Mediums. </li><li> Platte die Austritts Kultur (0,1 ml) aus dem Chemostat und inkubieren bei 37 ° C für 16 Stunden. </li><li> Pick einzelne Kolonien von der Platte einen sterilen Zahnstocher und inokulieren sie in 15 ml Teströhrchen das gleiche Stressor enthält, und bei der gleichen mittleren Konzentration wie im Chemostat, und Inkubation für 6 Stunden. </li><li> 1 ml der Kulturbrühe in einen 250 ml Erlenmeyerkolben mit 50 ml Medium enthält. Ernte 0,5 ml der Kulturbrühe alle 1 h und Messung der OD bei 600 nm. Vergleichen Sie die Wachstumsrate des angepassten strain derjenigen des Wildtyp-Stamm der Stressor gegeben. </li></ol>

<ol><li>Rando, O. J., Verstrepen, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Timescales+of+genetic+and+epigenetic+inheritance%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Timescales of genetic and epigenetic inheritance.</a> Cell. 128, 655-668 (2007).</li>
<li>Kim, H. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Short-term+differential+adaptation+to+anaerobic+stress+via+genomic+mutations+by+Escherichia+coli+strains+K-12+and+B+lacking+alcohol+dehydrogenase%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Short-term differential adaptation to anaerobic stress via genomic mutations by Escherichia coli strains K-12 and B lacking alcohol dehydrogenase.</a> Front Microbiol. 5, 476(2014).</li>
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<li>Lee, J. Y., Seo, J., Kim, E. S., Lee, H. S., Kim, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adaptive+evolution+of+Corynebacterium+glutamicum+resistant+to+oxidative+stress+and+its+global+gene+expression+profiling%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol+Lett%22%5BJournal%5D)">Adaptive evolution of Corynebacterium glutamicum resistant to oxidative stress and its global gene expression profiling.</a> Biotechnol Lett. 35, 709-717 (2013).</li>
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<li>Kwon, Y. D., Kim, S., Lee, S. Y., Kim, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+continuous+adaptation+of+Escherichia+coli+to+high+succinate+stress+and+transcriptome+analysis+of+the+tolerant+strain%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biosci+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Long-term continuous adaptation of Escherichia coli to high succinate stress and transcriptome analysis of the tolerant strain.</a> J Biosci Bioeng. 111, 26-30 (2011).</li>
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</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Mikroorganismen sind in der Lage aufgrund ihrer schnellen Wachstumsrate und der genetischen Vielfalt zu fast allen Umgebungen anzupassen. Adaptive Laborentwicklung ermöglicht Mikroorganismen unter Bedingungen entwickelt, zu entwickeln, die eine Möglichkeit der Auswahl der einzelnen Organismen beherbergt spontane Mutationen bereit, die unter den gegebenen Bedingungen von Vorteil sind. Die chemostat Technik ist robuster für den folgenden Gründen künstlich angetrieben Evolution als Übertragungs...

Mikroorganismen können auf unterschiedliche Umgebungen überleben und sich anzupassen. Unter starkem Stress, Anpassung kann 1-3 über Erwerb von positiven Phänotypen durch statistische genomische Mutationen und anschließende positive Selektion auftreten. Daher kann mikrobiellen Zellen anzupassen durch metabolische oder regulatorische Netzwerke für ein optimales Wachstum zu ändern, die &quot;adaptive Evolution&quot; bezeichnet wird. Vor kurzem sind wichtige mikrobielle Tendenzen, wie Ausbrüche von Superbugs und dem Auftreten von robusten mikrobielle Stämme, sind sehr eng miteinander verbunden Evolution unter Stressbedingungen zu adaptiv. Unter definierten Laborbedingungen, sind wir die Mechanismen der molekularen Evolution zu studieren können und sogar die Richtung der mikrobiellen Evolution für verschiedene Anwendungen zu steuern. Im Gegensatz zu mehrzelligen Organismen sind einzellige Organismen gut geeignet, um adaptive Labor Entwicklung (ALE) aus den folgenden Gründen: sie regenerieren schnell, sie pflegen große Populationen, und es ist leicht hom zu erstellen und zu pflegenogeneous Umgebungen. In Kombination mit den jüngsten Fortschritten in der DNA-Sequenzierungstechniken und Hochdurchsatz-Technologien, ermöglicht ALE für die direkte Beobachtung von genomischen Veränderungen, die zu einer systemischen regulatorischen Veränderungen führen. Mutations Dynamik und Vielfalt der Bevölkerung sind auch zu beobachten. Die Gentechnik - Strategien können aus der Analyse der ALE - Stämme 4,5 bestimmt werden. Chemostatkultur ist eine Methode verwendet Steady-State - Zellen zu erhalten und die Produktivität bei Fermentationsprozessen 6 erhöhen. Frisches Medium wird zugesetzt und Kulturbrühe wird während des Verfahrens geerntet (letzteres enthält Medium und Biomasse). Langzeit Chemostat - Kultur, ändert jedoch den steady-state Produktivität der Kultur und bewirkt die Anhäufung von spontanen Mutationen und Selektion während der Kultivierung (Abbildung 1a). Unter verschiedenen Selektionsdruck (Stressoren), wird die Akkumulation von Mutationen verbessert. Eine allmähliche Zunahme der Spannung in einem langfristigen<html> Chemostat sorgt für eine kontinuierliche Auswahl von Mutationen , die gegen den gegebenen Stressoren arbeiten, wie beispielsweise Temperatur, pH, osmotischer Druck, Nährstoffmangel, Oxidation, toxische Endprodukte usw. Colony Übertragung von einem festen Medium und serielle Übertragung aus einem flüssigen Medium (wiederholte Batch - Kultur) erlauben auch Forscher entwickelten Mikroorganismen (Abbildung 1b und 1c) zu erhalten. Obwohl Chemostatkultur komplizierte Methoden erfordert, ist der Pool der Vielfalt (Anzahl der Replikationen und Populationsgröße) höher als die durch Kolonie-Transfer und serielle Übertragungstechniken erhalten. Die stabile Stressbelastung auf einzelne Zellen und verringerte Veränderung der zellulären Zustand während Chemostatkultur (Steady State) sind weitere Vorteile von ALE im Vergleich zu Batch-Kultur-basierte Techniken. Stress-induzierten ALE von Escherichia coli zu hoher Succinat Bedingungen unterworfen wird in diesem Artikel eingeführt. iles / ftp_upload / 54446 / 54446fig1.jpg &quot;/&gt; Abbildung 1: Methoden der adaptiven Labor Evolution (A) Chemostat;. (B) eine serielle Übertragung; (C) Kolonie übertragen. Die Top - Zahlen das Konzept der Methoden für das ALE illustrieren, und die unteren Zahlen die Anzahl der Zellen darstellen , die während ALE wuchs. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54446/54446fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54446/54446fig1large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a>

<table><tbody><tr><td>Mini-Chemostat-Fermenter</td><td>Biotron Inc.</td><td>-</td><td>hergestellt auf Sonderbestellung</td></tr><tr><td></td><td>Cole-Parmer</td><td>Masterflex L/S 13</td> Die <td>Schlauchgröße kann je nach Verdünnungsrate und Größe des Fermenterbehälters variiert werden.</td></tr><tr><td>Behälter</td><td>Bellco</td><td>Media Vorratsflasche</td><td>20 L</td></tr><tr><td>Chemikalien</td><td>Sigma-Aldrich-Reagenz</td><td></td><td></td></tr> <tr><td>Glukose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G5767</td><td>ACS Reagenz</td></tr><tr><td>NH4Cl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9434</td><td>für die Molekularbiologie, geeignet für Zellkultur, &ge; 99,5%</td></tr> <tr><td></td><td>NaCl Sigma-Aldrich</td><td>746398</td><td>ACS-Reagenz, &ge; 99</td></tr><tr><td>%Na2HPO4&middot; 2H2O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>4272</td><td>98,5-101%</td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>795488</td><td>ACS-Reagenz, &ge; 99%</td></tr><tr><td>MgSO4&middot; 7H2O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>230391</td><td>ACS-Reagenz, &ge; 98%</td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>793639</td><td>ACS-Reagenz, &ge; 96%</td></tr> <tr><td>Thiamin & Middot; HCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T4625</td><td>Reagenzqualität, &ge; 99%</td></tr><tr><td>Na2&middot; Succinat & Middot; 6H2O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S2378</td><td>ReagentPlus, &ge; 99%</td></tr></tbody></table>

verfahren für adaptive labor entwicklung von mikroorganismen mit einem chemostat

Procedure for Adaptive Laboratory Evolution of Microorganisms Using a Chemostat

Natürliche Evolution beinhaltet genetische Vielfalt wie Umweltveränderungen und eine Selektion zwischen kleinen Populationen. Adaptive Laborevolution (ALE) bezieht sich auf die experimentelle Situation, in der die Evolution mit lebenden Organismen unter kontrollierten Bedingungen und Stressoren beobachtet wird; Organismen werden dadurch künstlich zu evolutionären Veränderungen gezwungen. Mikroorganismen sind in der Umwelt einer Vielzahl von Stressoren ausgesetzt und in der Lage, bestimmte stressinduzierbare Proteine zu regulieren, um ihre Überlebenschancen zu erhöhen. Natürlich vorkommende spontane Mutationen führen zu Veränderungen im Genom eines Mikroorganismus, die seine Überlebenschancen beeinträchtigen. Eine langfristige Exposition gegenüber der Chemostat-Kultur provoziert eine Anhäufung spontaner Mutationen und macht den anpassungsfähigsten Stamm dominant. Im Vergleich zu den Methoden des Kolonietransfers und des seriellen Transfers weist die Chemostat-Kultur die höchste Anzahl von Zellteilungen und damit die höchste Anzahl verschiedener Populationen auf. Obwohl die Chemostat-Kultur für ALE kompliziertere Kulturgeräte erfordert, ist sie zu Beginn des Vorgangs weniger arbeitsintensiv. Vergleichende genomische und transkriptomische Analysen des angepassten Stammes liefern evolutionäre Hinweise darauf, wie die Stressoren zu Mutationen beitragen, die den Stress überwinden. Das Ziel der vorliegenden Arbeit ist es, eine beschleunigte Evolution von Mikroorganismen unter kontrollierten Laborbedingungen herbeizuführen.

Für High-Succinat Stress Anpassung, die Wildtyp - E coli - W3110 - Stamm war in einem Chemostat bei D kultiviert = 0,1 h -1 für 270 Tage (Abbildung 2). <img alt="Figur 2" src="/files/ftp_upload/54446/54446fig2.jpg" /> Abbildung 2: High-Succinat Stress Anpassung von E. coli W3110 unter Verwendung Chemostat - Kultur. Dünne Pfeile zeigen die Zeiten , bei denen die Konzentration ...

mit Chemostatkultur Hier präsentieren wir ein Protokoll adaptive gerichtete Evolution von Mikroorganismen unter Bedingungen zu erhalten. Auch genomische Analyse des entwickelten Stamm wird diskutiert.

Verfahren für Adaptive Labor Entwicklung von Mikroorganismen Mit einem Chemostat

Natural evolution involves genetic diversity such as environmental change and a selection between small populations. Adaptive laboratory evolution (ALE) ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, einem Mikroorganismus die Evolution unter Laborbedingungen zu ermöglichen. Diese Methode kann helfen, zentrale Fragen im Bereich der Mikrobiologie zu beantworten, wie beispielsweise Beziehungen der Nebennierenfunktion, Stressantworten, metabolische Ingenieurtechnik und natürlich die Evolution. Der Hauptvorteil dieser Technik liegt in der kontinuierlichen Selektion des am besten angepassten Nachkommen unter bestimmten Laborbedingungen.Beginnen Sie dieses Verfahren mit der Vorbereitung der Ausrüstung sowie des initialen Mediums, des Stressmediums und des Hochstressmediums, wie im Textprotokoll beschrieben. Impfen Sie eine einzelne Kolonie oder einen Wildtyp von E. coli in ein 15-Milliliter-Reagenzglas, das vier Milliliter initiales Medium enthält. Inkubieren Sie das Reagenzglas 12 Stunden lang in einem schüttelnden Inkubator bei 37 Grad Celsius und 220 U/min.Die Chemostatflasche unter Belüftung und Rühren bei 37 Grad Celsius sechs Stunden lang inkubieren. Nach der Inkubation das Ende des Silikonschlauchs der Pumpen aseptisch mit der Chemostatflasche verbinden. Ein Milliliter der Vorkultur aseptisch in die Chemostatflasche überfü

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Research

Forschung

JoVE Journal

Genetics

Genetik

Quelle: Jian, X., et al., Automatisierte mikrobielle Kultivierung und adaptive Evolution mit dem mikrobiellen Mikrotröpfchenkultursystem (MMC). J. Vis. Exp. (2022).Dieses Video zeigt die Verwendung eines mikrobiellen Mikrotröpfchenkultursystems, um die adaptive Evolution von Bakterien in Richtung Methanoltoleranz voranzutreiben. Durch das Mischen von künstlich hergestellten Bakterienkulturen mit einem Stressmedium mit hohem Methanolgehalt und deren Segmentierung in Mikrotröpfchen wählt das...

Adaptive Evolution von Bakterien mit Hilfe eines mikrobiellen Mikrotröpfchen-Kultursystems

Quelle: Jeong, H., et al. Verfahren zur adaptiven Laborevolution von Mikroorganismen unter Verwendung einer Chemostat. J. Vis. Exp. (2016).Dieses Video demonstriert die selektive Isolierung und das Wachstum von stressadaptierten Bakterien aus einer Kultur, die langanhaltenden Stressbedingungen ausgesetzt ist. Die Kultur wird auf stressorhaltigem Agar beschichtet, und eine einzelne Kolonie wird ausgewählt, um ein flüssiges Medium mit dem Stressor zu inokulieren. Die Absorption wird in...

Isolierung stressadaptierter Bakterien durch Einzelkolonie-Selektion

Zellwachstumsrate ist ein regulierter Prozess und eine wesentliche Determinante für Zellphysiologie. Kontinuierliche Kultivierung mit Chemostate ermöglicht extrinsischen Kontrolle der Zellwachstumsrate von Nährstoffmangel erleichtert die Untersuchung der molekularen Netzwerke, die Zellwachstum und wie diese Netzwerke entwickeln, um das Zellwachstum zu optimieren steuern.

Der Einsatz von Chemostate in Microbial Systems Biology

Wir entwickelten und validierten ein small-footprint Reihe von Miniatur Chemostate aus leicht verfügbaren Teile für niedrigen Kosten gebaut. Physiologische und experimenteller Evolution Ergebnisse waren ähnlich größeres Volumen Chemostate. Die ministat Array bietet eine kompakte, kostengünstige und leicht zugängliche Plattform für traditionelle Chemostatexperimenten, funktionaler Genomik und chemische Screening-Anwendungen.

Design und die Verwendung Multiplexed Chemostat Arrays

Wir beschreiben ein kostengünstiges, konfigurierbares Morbidostat, das die Charakterisierung von Antibiotikaresistenzen durch dynamische Anpassung der Wirkstoffkonzentration ermöglicht. Das Gerät kann mit einer gemultiplexten mikrofluidischen Plattform integriert werden. Der Ansatz kann für Laborstudien zur Antibiotikaresistenz skaliert werden.

Design und die Verwendung eines Low Cost, Automatisierte Morbidostat für Adaptive Evolution der Bakterien unter Antibiotikums Selection

Das eVOLVER-Framework ermöglicht eine durchgängige mikrobielle Kultur mit hoher Auflösung und dynamischer Kontrolle über experimentelle Parameter. Dieses Protokoll zeigt, wie man das System für ein komplexes Fitness-Experiment einsetzt, das die Anwender bei der Programmierung automatisierter Kontrolle über viele einzelne Kulturen, das Messen, Sammeln und Interagieren mit experimentellen Daten in Echtzeit führt.

Die Entwicklung automatisierter, durchsatzer, kontinuierlicher Zellwachstumsexperimente mit eVOLVER

Dieses Protokoll beschreibt, wie das mikrobielle Mikrotröpfchenkultursystem (MMC) verwendet wird, um eine automatisierte mikrobielle Kultivierung und adaptive Evolution durchzuführen. MMC kann Mikroorganismen automatisch und kontinuierlich kultivieren und subkultivieren und ihr Wachstum online mit relativ hohem Durchsatz und guter Parallelisierung überwachen, wodurch der Arbeits- und Reagenzienverbrauch reduziert wird.

Automatisierte mikrobielle Kultivierung und adaptive Evolution mit mikrobiellem Mikrotröpfchenkultursystem (MMC)

Dieses Protokoll beschreibt, wie das Escherichia coli Long-Term Evolution Experiment (LTEE) durch die Durchführung seiner täglichen Transfers und regelmäßigen Einfrierungen aufrechterhalten werden kann und wie Wettbewerbstests durchgeführt werden, um Fitnessverbesserungen bei evolutionären Bakterien zu messen. Diese Verfahren können als Vorlage für Forscher dienen, die ihre eigenen Experimente zur mikrobiellen Evolution starten.

Tägliche Transfers, Archivierung von Populationen und Fitnessmessung im Langzeit-Evolutionsexperiment mit Escherichia coli

Hier stellen wir ein experimentelles Evolutionsprotokoll zur Anpassung bei Thermophilen vor, bei dem kostengünstige, energieeffiziente Tisch-Thermomischer als Inkubatoren verwendet werden. Die Technik wird durch die Charakterisierung der Temperaturanpassung bei Sulfolobus acidocaldarius, einem Archaeon mit einer optimalen Wachstumstemperatur von 75 °C, demonstriert.

Anpassung an den Extremen des Lebens: Experimentelle Evolution mit dem extremophilen Archaeon Sulfolobus acidocaldarius

Wir stellen ein Protokoll für das millifluidische kontinuierliche Kulturgerät (MCCD) vor, das die Kultivierung von Bakterienpopulationen unter konstanten nährstoffarmen Bedingungen (bis zu hunderten nanomolaren Konzentrationen) oder zeitlichen Nährstoffschwankungen auf einem winzigen Zeitrahmen ermöglicht.

Ein Continuous Culture Millifluidic Device zur Untersuchung von Escherichia coli unter niedrigen und schwankenden Nährstoffbedingungen

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