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DOI: 10.3791/65960-v
Danila Di Meo*1, Josephine Ramazzotti*1, Marina Scardigli*1,2, Franco Cheli1, Luca Pesce1,3, Niamh Brady1, Giacomo Mazzamuto1,4,5, Irene Costantini1,4,6, Francesco S. Pavone1,4,5
1European Laboratory for Non-linear Spectroscopy (LENS),University of Florence, 2Division of Physiology, Department of Experimental and Clinical Medicine,University of Florence, 3Department of Physics,University of Pisa, 4National Research Council - National Institute of Optics (CNR-INO), 5Department of Physics and Astronomy,University of Florence, 6Department of Biology,University of Florence
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
This study presents a high-throughput protocol for simultaneous optical clearing, multi-round labeling, and 3D volumetric reconstruction of postmortem human brain sections. By integrating the S WITCH - H 2 O 2 - Antigen R etrieval - 2,2'-thiodiethanol (TDE) SHORT technique with light-sheet fluorescence microscopy, the methodology allows for detailed structural characterization at micrometer resolution.
Das vorliegende Protokoll bietet ein Schritt-für-Schritt-Verfahren für die schnelle und gleichzeitige optische Reinigung, die Multi-Round-Markierung und die volumetrische 3D-Rekonstruktion von Dutzenden von postmortalen menschlichen Hirnschnitten durch die Kombination der (SWITCH - H2O2 - Antigen Retrieval - 2,2'-thiodiethanol [TDE]) SHORT-Gewebetransformationstechnik mit Lichtblatt-Fluoreszenzmikroskopie-Bildgebung in einem routinemäßigen Hochdurchsatzprotokoll.
Das menschliche Gehirn ist ein komplexes Organ, das verschiedene Fähigkeiten umfasst. Um seine Funktionsweise zu verstehen, ist es wichtig, eine detaillierte Zellsensorik über das gesamte Gehirn hinweg zu konstruieren. Unser routinemäßiges Hochdurchsatzprotokoll ermöglicht die Analyse der 3D-Zytoarchitektur von volumetrischen Bereichen des menschlichen Gehirns mit Mikrometerauflösung und ermöglicht so die strukturelle Charakterisierung.
Die volumetrische Rekonstruktion großer Bereiche des menschlichen Gehirns stellt mehrere experimentelle Herausforderungen dar, die mit den massiven Abmessungen der Gehirnproben, der komplexen biologischen Zusammensetzung, den variablen postmortalen Fixierungs- und Lagerbedingungen und den autofluoreszierenden Signalen von lipofuszinartigen Pigmenten zusammenhängen. All dies kann die optische Reinigungseffizienz und die Demonstrationsqualität beeinträchtigen. Im Vergleich zu anderen Clearing-Techniken kann die Kurzgewebstransformationsmethode in Kombination mit der Lichtblattmikroskopie für die schnelle und gleichzeitige Verarbeitung mehrerer menschlicher Hirnschnitte verwendet werden.
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