30 de octubre de 2011
Este protocolo de vídeo se muestra el aislamiento y la expansión de las células madre como de mutliforme resecado quirúrgicamente de glioblastoma humano (GBM) del tejido tumoral usando el método de ensayo de cultivo neuroesfera.
El objetivo de este protocolo es el aislamiento y la expansión de células tumorales de glioblastoma multiforme humano utilizando el método de neuroesferas. Esto se logra primero mediante la picadura del tejido tumoral obtenido, seguido por disociación mecánica, y finalmente por la siembra de las células resultantes para su crecimiento en cultivo de neuroesferas. En este video, vamos a mostrar cómo aislar y expandir células con características de células madre a partir de tejido tumoral de glioblastoma humano utilizando el método de cultivo de neuroesferas.
Este método también puede utilizarse para cultivar células de otros tumores cerebrales, así como de tumores sólidos como los de mama, próstata, hígado y pulmón. Bien, comencemos. Después de recibir el tejido tumoral de GBM resecado procedente de la cirugía, se elimina el medio.
El tumor se lava dos o tres veces utilizando PBS estéril para eliminar contaminantes como sangre y restos celulares. Después del lavado, coloque el tumor resecado en una placa de Petri estéril. Primero, corte el tumor en porciones más pequeñas, luego transfiera una porción del tejido tumoral a una placa de Petri separada y triture el tejido con un bisturí número 10 hasta obtener trozos diminutos.
Esto aumentará el área de superficie disponible para la disociación enzimática. La picadura puede tardar de uno a tres minutos, dependiendo del tamaño del tumor. Ahora agregue de tres a cinco ml de tripsina precalentada al tejido picado y transfiera la mezcla a un tubo falcon estéril de 15 ml.
Coloque el tubo de 15 ml en un baño de agua a 37 grados durante 10 a 15 minutos. Agite el tubo cada cinco minutos. Para asegurar una mejor digestión del tejido, agregue un volumen igual de inhibidor de tripsina para detener la reacción.
La activación de la tripsina se asegura pipeteando hacia arriba y hacia abajo varias veces. Centrifugue la suspensión a 800 RRP M o 110 G durante cinco minutos. Retire el sobrenadante, luego resuspenda el pellet en un ml de medio basal para células madre neurales, colocando la punta contra el fondo del tubo.
Pipetee de tres a siete veces hacia arriba y hacia abajo para deshacer grumos hasta obtener una suspensión lechosa; pipetear en exceso podría provocar la muerte celular. Coloque un filtro de 40 micrones sobre un tubo de 50 ml. Añada ahora 10 a 15 ml de medio basal a la suspensión celular y mezcle suavemente; haga pasar la suspensión celular a través del filtro de 40 micrones para eliminar restos y grumos no asociados.
PT las células y retire el sobrenadante al vacío. Reuspenda las células en uno o dos ml de medio completo. Luego pipetee suavemente hacia arriba y hacia abajo para homogeneizar la suspensión.
Mezcle 10 microlitros de suspensión celular en 90 microlitros de azul de tripano. Mezcle bien la suspensión y transfiera 10 microlitros al hemocitómetro. Realice un recuento celular como se muestra aquí.
Se requiere una suspensión de células individuales sin agregados para obtener un recuento celular preciso. No incluya células positivas para azul de trian. Al contar para sembrar las células en un matraz T 80.
Añada 20 ml de medio completo para células madre neurales a un tubo de 50 ml. Añada la cantidad adecuada de suspensión celular para alcanzar una densidad de 200.000 células por ml. A continuación, añada EGF para obtener una concentración final de 20 nanogramos por ml.
Añada heparina al 0,2 % en una concentración de un microlitro por ml. Finalmente, añada BFGF para alcanzar una concentración final de 10 nanogramos por ml. Mezcle las células en medio completo suplementado con factores de crecimiento.
Luego transfiera la suspensión a un matraz T 80. Incube el matraz a 37 grados Celsius y 5 %CO2 durante siete a 10 días. Después de ocho días en cultivo, las esferas están completamente desarrolladas y listas para ser pasajeadas.
Recolecte el contenido del matraz y transfiéralo a una centrífuga de 50 ml. Centrifugue las células a 800 RPM durante cinco minutos. Aspire el sobrenadante, luego resuspenda el pellet en 1 ml de tripsina precalentada.
Incube las células en baño de agua a 37 grados Celsius durante dos minutos. Añada una cantidad igual de inhibidor de tripsina y mezcle bien para asegurar una activación. Luego, pelete las células.
Elimine el sobrenadante y resuspenda las células en un ml de medio completo, pipeteando suavemente hacia arriba y hacia abajo para homogeneizar la suspensión celular. Realice un recuento celular como se describió anteriormente para sembrar las células en un frasco T80 con 20 ml de medio completo en un tubo de 50 ml. Añada una cantidad adecuada de suspensión celular para alcanzar una densidad de 50.000 células por ml.
Ahora agregue factores de crecimiento, incluyendo E-G-F-B-F-G-F, y heparina a la concentración descrita anteriormente. Mezcle suavemente la suspensión celular resultante, luego transfiera la suspensión a una botella T 80 y colóquela en el incubador durante siete a 10 días. Este es un ejemplo de cultivo primario de GBM.
Después de cuatro días en esta etapa, puede observarse que las células se están proliferando y comenzando a formar esferas. No debe observar grandes agrupaciones esféricas de células en esta etapa. Esto habría resultado de una preparación inadecuada del tejido.
Después de estar en cultivo durante siete a 10 días, se han formado esferas de diferentes tamaños; cuando las esferas alcanzan un diámetro promedio de 150 a 200 micrones, están listas para ser pasajeadas. Este es un ejemplo de un cultivo de GBM en pase después de ocho días. Nuevamente, se pueden observar esferas de distintos tamaños; las esferas sanas presentan microespículas en su periferia.
La preparación de una suspensión de células individuales es un aspecto muy importante en cualquier cultivo de esferoides. De lo contrario, podría terminar observando agregados celulares incluso al día siguiente de sembrar las células. Estos agregados podrían asumirse como esferas, pero debe tenerse en cuenta que los células perforantes necesitan al menos una semana para formar esferas verdaderas.
La cantidad de desechos en el cultivo de esferas de tumor primario varía según muchos factores, como el origen del tejido, la precisión con la que se ha extirpado el tejido y la técnica de procesamiento del tejido. Esperamos que este video sea útil y le deseamos buena suerte en sus experimentos.
Este protocolo en video demuestra el aislamiento y la expansión de células con características de células madre a partir de tejido tumoral de glioblastoma multiforme humano (GBM) resecado quirúrgicamente, utilizando el método de cultivo por ensayo de neuroesferas. El protocolo describe los pasos desde la preparación del tejido hasta el cultivo celular, proporcionando información sobre las técnicas empleadas para lograr una expansión celular exitosa.
El ensayo de neuroesferas permite el aislamiento y la expansión de células semejantes a células madre del glioblastoma, proporcionando un sistema relevante para la enfermedad que sirve para la validación de dianas y la reducción mecanicista de riesgos en el descubrimiento de fármacos oncológicos. Este enfoque respalda la confianza predictiva al modelar poblaciones de células iniciadoras de tumores fundamentales para comprender la progresión del GBM y la resistencia terapéutica. Facilita los flujos de trabajo de descubrimiento temprano al generar modelos celulares escalables y reproducibles para el desarrollo de ensayos y la identificación de compuestos líderes.
El ensayo de neuroesferas se integra en la fase inicial del descubrimiento, apoyando la validación de dianas mediante ensayos funcionales en modelos de células con características de células madre antes de la identificación de compuestos líderes y las pruebas de eficacia preclínicas.