Name: Aislamiento y diferenciación de Th17 Naïve linfocitos T CD4 (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-09-26T21:15:00.000+00:00
Duration: 12 min 59 s
Description: Aprenda a diferenciar células Th17 a partir de linfocitos T CD4+ naïve de ratones C57BL/6. Este protocolo utiliza Q-PCR, ELISA y citometría de flujo para evaluar la expresión de IL-17A.

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Este trabajo es apoyado en parte por los premios NIH / NCATS clínica y traslacional Ciencia a la Universidad de Florida y TL1 TR000066 TR000064 UL1, un suplemento de la diversidad de los padres de Grant R01AI056152 del Instituto Nacional de Salud, una donación de reactivos BD Biosciences, y la Universidad de la Florida.

Todo uso de los animales se realizó de conformidad con los protocolos aprobados por el Comité de Cuidado de Animales institucional y el uso. 1. Preparación de Mezclas y Medios de Comunicación <ol><li> Estéril de pH de PBS: 7,3 (1 L) 0,23 g NaH 2 PO 4 1,15 g de Na 2 HPO 4 9,0 g de NaCl Recoger el volumen con agua DI. Esterilizar con autoclave. </li><li> Cultivo Celular Medios (100 ml) 89 ml de RPMI 10 ml de 10% de FBS 1 ml Antibiótico antimicótico (ABAM) 100 mg 50 mM 2-mercaptoetanol (3,5 mg de stock 2-mercaptoetanol a 96,5 mg de PBS) </li><li> FACS buffer (Fluorescente Activación clasificación de células) (Para ser usado durante la citometría de flujo) FBS al 2% en PBS estéril </li><li> iTh17 Mix (Basado en el número de muestras, determinar el volumen necesario para todas las mezclas y los medios de comunicación) 1,5 mg / ml de anti-CD28 20 ng / ml de IL-6 5 ng / mlTGF-β </li></ol> 2. Celdas se chapada en triplicado, bajo las siguientes condiciones <ol><li> Placa unido anti-CD3, anti-CD28 (esto es la mezcla de control de activación). </li><li> iTH17: placa unida anti-CD3, anti-CD28, IL-6, TGF-β. </li></ol> 3. Unido a la placa anti-CD3 (10 g / ml) Se recomienda que la preparación de placas unidos a la placa anti-CD3 se hace al menos 4 horas antes de la hora células se añaden a las placas. <ol><li> Añadir 30 l anti-CD3 a los pocillos (anti-CD3 se diluye en PBS estéril) de un nuevo de 96 pocillos de fondo en U Microtest placa de cultivo de tejidos, y toque los lados de la placa para asegurar una cobertura uniforme de los pozos. Se incuba a 37 ° C durante 4 horas y luego refrigerar hasta que sea el momento de añadir las mezclas y las células a la placa. </li></ol> 4. Ratón Disección <ol><li> Este protocolo se basa en el uso de ratones C57BL / 6 micrófonoe, de 3-8 meses de edad, y comprado de El Laboratorio Jackson (Bar Harbor, ME). </li><li> Sacrificio de ratón utilizando asfixia de CO 2, y confirmar la muerte con dislocación cervical posterior. </li><li> Esterilizar ratones herramientas de disección y área de la incisión con etanol al 70% y comenzar la disección. </li><li> Desde el punto de vista ventral, agarra la piel que es anterior a la abertura de la uretra y comenzar a cortar con tijeras hasta la línea media ventral hasta llegar a la zona de la barbilla. Tome precauciones para no desgarrar o cortar en el revestimiento de la pared peritoneal. </li><li> Tire hacia atrás de la piel y de definir para permitir el acceso cómodo a los ganglios linfáticos durante la extracción. </li><li> Los ganglios linfáticos y bazos recogidos todos serán retirados con pinzas, y se colocan en una placa de Petri estéril que contiene 5 ml de tampón de autoMACS compró de Miltenyi Biotec (refiérase a las Figuras 2 y 3 para los ganglios linfáticos y los diagramas de la extirpación del bazo). <ol><li> Retire los ganglios linfáticos axilares que estánencontrado cerca de la axila (axila) detrás de los músculos pectorales de cada ratón. </li><li> Retire los ganglios linfáticos braquial que se encuentran en los tejidos conectivos situados cerca de cada axila. </li><li> Retire los ganglios linfáticos cervicales superficiales que se encuentran en el cuello de cada ratón. </li><li> Retire los ganglios linfáticos inguinales que se encuentran en la región de la cadera en la conjunción de los 3 vasos sanguíneos. </li><li> Para acceder a los ganglios linfáticos mesentéricos, cortados a través de la membrana peritoneal hasta la línea media ventral. Los ganglios linfáticos mesentéricos se encuentran en el tejido conectivo que mantiene juntos los intestinos. Se encuentran generalmente en una serie de 4-8 nudos, y pueden aparecer como un &quot;collar de perlas&quot;. Asegúrese de sacar toda la cadena. </li><li> El bazo se encuentra en la zona abdominal, detrás del estómago y los intestinos. Retírelo tirando y lo extraiga de páncreas. </li></ol></li><li> Moler órganos bajo una campana estéril utilizando 2 preparaciones microscópicas esmerilado. Coloca los ganglios linfáticos o el bazo enel lado esmerilado de un portaobjetos de microscopio, y frotar con el lado mate de la segunda diapositiva hasta desintegrado. Repita hasta que todos los ganglios linfáticos y el bazo se han molido. </li></ol> Nota: Se recomienda comenzar con los ganglios linfáticos y terminar con el bazo, mientras que la sangre será más difícil ver los ganglios linfáticos restantes en el búfer autoMACS. <ol start="9"><li> Para filtrar los órganos de tierra en una suspensión de células individuales, empezar por plegado de una pieza de 40 m de nylon material varias veces, y colocando en la parte superior de un tubo de centrífuga de 15 ml. El material de nylon debe ser aproximadamente 3 x 3 cm </li><li> Utilice una jeringa de 5 ml y aguja de 21 G para aspirar los 5 ml de autoMACS Operando órganos de amortiguamiento y de tierra. Dispensar lentamente en el material de nylon plegado. Tenga cuidado de no perforar el material con la aguja. </li></ol> Nota: Una vez que se consigue suspensión de células individuales, la solución debe aparecer como una solución pálida, consistente con ninguna Visible pedazos de tejido sólido. Si se mantienen sólidos, vuelva a aspirar y dispensar a través de una nueva pieza plegada de nylon colocada en un nuevo tubo de centrífuga de 15 ml. <ol start="11"><li> Siempre mantenga las células en hielo cuando no esté en uso. </li></ol> 5. Separación Celular <ol><li> Para obtener resultados óptimos, obtener al menos un 80% pura CD4 + población de células CD25 través autoMACS separador celular Pro usando el MACS CD4 + CD25 + T reguladoras kit de aislamiento de células, el ratón. El protocolo para la retención negativo de la población de células CD25 + CD4 se obtiene a través de Miltenyi Biotec. </li></ol> 6. La diferenciación Th17 <ol><li> Recoger la población de células CD25 + CD4 después de la separación con el separador de células autoMACS Pro. </li><li> Contar las células diluidas en una relación de 1:1000 con azul de tripano usando un hemocitómetro. </li><li> Una vez que la concentración se ha determinado a partir de los recuentos de células, se diluye la suspensión de células a 1 x 10 6 células / ml en medio de cultivo celular. </li><li> Saque placas de 96 pocillos con plato obligado anti-CD3 después de 4 horas. </li><li> Lavar los pocillos recubiertos con anti-CD3 con 200 l de PBS. Repite 2 veces. <ol><li> Para lavar añadir 200 l de PBS estéril a pocillos recubiertos con anti-CD3 y eliminar de PBS en un recipiente de residuos. </li></ol></li><li> Añadir 100 l de la mezcla iTh17 o mezcla de control de activación (véase el punto # 2) a los pocillos por triplicado. </li><li> Añadir 100 l de células a cada pocillo en el que ya sea la mezcla de Th17 o la mezcla de control de activación ha sido colocado. </li><li> Se incuban las células durante al menos 72 horas o hasta 5 días (diferenciación Th17 puede obtener después de 72 horas o después de 5 días.) </li><li> La diferenciación de Th17 puede ser evaluada por tinción de citometría de flujo y análisis intracelular, ELISA, o qPCR </li></ol> 7. La activación celular (sólo es necesario para la tinción intracelular) <ol><li> Retire placas de 96 pocillos de incubación al final de cualquiera de las 72 h o 5 días <ol><li> Recordemos que Th17 differentiation se puede lograr ya sea después de 72 horas o 5 días. </li></ol></li><li> Para cada condición (por ejemplo, control de la activación o iTh17), transferir las células que se encuentran en triplicado en un pocillo de una placa de cultivo celular de 24 pocillos. Las células para una condición ahora se han agrupado en un pocillo de la placa de cultivo de 24 pocillos, en lugar de ser por triplicado en la placa de cultivo así fondo en U 96. </li><li> El volumen total de cada pocillo en la placa de cultivo celular de 24 pocillos es ahora 600 l. Elevar el volumen de cada pocillo a 1 ml con medio de cultivo celular. </li><li> Añadir PMA (acetato miristato de forbol) (50 ng / ml), ionomicina (1 M), y BFA (Brefeldina-A) (10 g / ml) a cada pocillo en la placa de cultivo celular de 24 pocillos a las concentraciones listadas. </li><li> Incubar a 37 ° C durante 4 h. </li></ol> 8. La tinción intracelular <ol><li> Las células se tiñen con los marcadores extracelulares e intracelulares deseados para el análisis de citometría de flujo. Para detectar la presencia of IL-17, la tinción intracelular se realiza con anticuerpos anti-IL-17A. Marcadores de superficie extracelulares recomendados incluyen CD4, CD8, y CD25. <ol><li> Utilice el intracelular de citoquinas tinción Starter Kit-Ratón de BD Bioscience para la tinción intracelular de IL-17. </li><li> Para cada muestra, las células de pellets, eliminar el sobrenadante, y resuspender el sedimento de células en 200 l de tampón FACS (2% de FBS en PBS). </li><li> Transferencia de células resuspendidas a 96 citometría de flujo de células placa. </li><li> Haga girar las celdas hacia abajo durante 5 min a 1200 rpm y eliminar el sobrenadante. </li><li> Añadir 200 l de tampón FACS PBS, centrifugar durante 5 min a 1200 rpm, y desechar el sobrenadante. </li><li> Resuspender las células en 100 l de tampón FACS y se aplican 100 l de anticuerpo extracelular (Ab) de la mezcla (mezcla extracelular Ab se hace en tampón FACS). Incubar durante 15 min a TA, cubiertas con papel de aluminio. </li><li> Repita el paso 8.1.4. </li><li> Repita el paso 8.1.5 2x. </li><li> Resuspender las células en 100 l de BD Cytofix / Cytoperm Buffer. Incubcomió durante 20 min a TA, cubierto con papel de aluminio. </li><li> Añadir 100 l de tampón 1x BD Perm / Wash, centrifugar durante 5 min a 1200 rpm y eliminar el sobrenadante. Repita. </li><li> Añadir 50 l de mezcla intracelular Ab. (Mezcla intracelular Ab se hace en 1x BD Perm / Wash) Incubar durante 15 min a TA, cubierto con papel de aluminio. </li><li> Repita el paso 8.1.10. </li><li> Resuspender las células en 200 l de BD tinción Buffer. </li><li> Coloque células resuspendidas en citometría de flujo tubos que contienen 200 l BD tinción Buffer (volumen final es de 400 l). </li><li> Almacenar a 4 ° C hasta que las muestras están listas para ser leído. </li></ol></li></ol> 9. Análisis de citometría de flujo <ol><li> Puerta población de células vivas. </li><li> De la población de células vivas, puerta de CD4 + CD8-población. </li><li> De la población CD8-CD4 +, la puerta de la IL-17A + población. <ol><li> En base a los resultados experimentales anteriores, el 100% de la IL-17A + población será CD25 +. </li></ol></li></ol> * Total de los recuentos de células absolutas se obtuvieron después de la puesta en común de los triplicados de muestras ** Número absoluto de células CD4 + CD25 + IL-17A + se determina multiplicando el número total de células en el porcentaje de puerta en vivo y el porcentaje del total de células que llevan los marcadores específicos de linaje, CD4, CD25, y la IL-17A, como determinado por citometría de flujo. 10. qPCR y ELISA <ol><li> Las células de ubicación no se utilizan para el análisis de citometría de flujo en un tubo Eppendorf de 1,5 ml y se centrifuga a 13.000 rpm durante 5-10 min. Las células que se encuentran en el sedimento de células después de la centrifugación se utilizaron para el análisis de qPCR. Se realizó un análisis qPCR utilizando PTC-200 Peltier termociclador (BioRad). </li><li> Recoger el sobrenadante de los tubos se centrifugaron durante las pruebas ELISA. IL-17A ELISA se realizaron con par de anticuerpos TC11-18h10 (captura, número de catálogo 555068) y TC11-8H4 biotina (detección, número de catálogo 555067) adquirió de BD Biosciences. IL-17A ELISA standards se obtuvieron de eBioscience (número de catálogo 14-8171-80). </li><li> Después de retirar el sobrenadante, resuspender las células restantes que se utilizarán para qPCR en 175 tampón de lisis de ARN l (usar inmediatamente para la extracción de RNA, síntesis de ADNc, y qPCR, o tienda a -80 ° C para su uso posterior). <ol><li> Consulte la Tabla II para primer secuencias de IL-17A y actina (gen mantenimiento de la casa) </li></ol></li></ol>

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</ol>

No hay revelaciones para declarar.

Aquí hemos descrito el protocolo para lograr la diferenciación in vitro Th17. El estudio de la diferenciación de Th17 es importante, como la diferenciación de los linfocitos T en el subconjunto de Th17 es crítico para la eliminación efectiva de los patógenos humanos 13. A la inversa, la producción de IL17 se ha asociado con progresión de la enfermedad autoinmune 13. El método de diferenciación de Th17 es aplicable a muchos entornos de investigación, ya que se puede aplicar a numerosos mode...

Los linfocitos T CD4 + (células T) juegan un papel crítico en la defensa inmunitaria mediada por sistema contra microorganismos infecciosos. Por el contrario, las células T también están íntimamente asociados con la aparición y progresión de las enfermedades autoinmunes como la diabetes tipo 1, el lupus eritematoso sistémico, y artritis reumatoide. Linfocitos T CD4 + se activan a través de una combinación de receptor de células T (TCR) interacciones con el antígeno cognado / complejo mayor de histocompatibilidad II (CMHII) moléculas, y las interacciones de los receptores CD28 con B7.1/B7.2 ligandos 15. Además de la provisión de la estimulación de TCR y CD28 co-estimulación, las células presentadoras de antígeno también proporcionan un entorno de citoquinas, que determina el estado de diferenciación de los linfocitos T, dirigiendo de ese modo la respuesta del linfocito T al antígeno dado. Interacciones patógeno Distinct / célula presentadora de antígeno crean ambientes de citoquinas distintas, que sesgar los linfocitos T por distintas vías se centraron en la eliminación del patógeno desencadene. Desafortunadamente, T vías efectoras de los linfocitos, originalmente destinadas a eliminar los patógenos invasores, pueden ser erróneamente dirigidos contra los tejidos propios 15. Por lo tanto, una mejor comprensión del estado de diferenciación cada uno distinto del subconjunto de células T CD4 + es crucial para nuestra comprensión de cómo modular el equilibrio entre la eliminación de patógenos y la tolerancia a la libre. Además de la Th1, Th2, y T reguladoras vías de diferenciación de células inducibles, linfocitos T vírgenes también pueden ser impulsados ​​por citoquinas por la vía Th17. Mientras que las células Th1 patógenos intracelulares de combate, las células Th2 eliminar los patógenos extracelulares, y las células T reguladoras (Tregs) minimizan las respuestas inflamatorias 1, 16; células Th17 juegan un papel importante en la eliminación de bacterias extracelulares y hongos. Células Th17 se denotan generalmente por la expresión del factor de transcripción específico de linaje RORγT y producción de IL-17A, que promueve la activación de los macrófagos y neutrófilos 1, 7. Células Th17 han sido implicados en varios trastornos autoinmunes, y sus modelos de roedores asociados. Por ejemplo, se ha demostrado que la IL-23 (que se requiere para mantener el fenotipo Th17), pero no de IL-12, era el culpable central en la encefalitis autoinmune experimental (EAE), el modelo de enfermedad de roedor para MS. Posteriormente, se ha demostrado que la reducción en la producción de IL-17 se correlacionan con la prevención de EAE 2, 6, 17. Por otra parte, las células Th17 se han asociado con otros trastornos autoinmunes como la artritis y el lupus eritematoso sistémico (LES) 10, 16. IL-23 p19 deficientes - / - ratones mostraron tener números muy bajos de células Th17, y son resistentes al desarrollo de la EAE no sólo, sino también la artritis inducida por colágeno-, un modelo para la artritis reumatoide 10, 18. Además, los ratones tratados con anticuerpos neutralizantes de IL-17A popaer Además, se constató la aparición de la artritis inducida por colágeno para tener la resolución del daño articular 18. Cabe señalar que el papel de las células Th17 en la progresión de la enfermedad autoinmune aún no se ha caracterizado como la investigación reciente también ha demostrado un papel protector de las células Th17 en la diabetes 9, 11 y la inflamación intestinal 14 Tipo 1. Estos estudios confirman la importancia de la diferenciación de Th17 en la autoinmunidad. In vitro diferenciación Th17 es un método necesario en la investigación de células T debido a que hay al menos dos preguntas desconcertantes que requieren una mayor investigación: 1) ¿Cómo funciona exactamente la IL-6 regulan el equilibrio entre Treg y Th17 diferenciación, y 2) ¿Cuáles son los mecanismos exactos detrás de la IL-17 inducida-trastornos inflamatorios? Nuestro método emplea células CD4 + CD25-T a partir de los bazos y ganglios linfáticos de los C57BL / 6 de ratón. Es importante señalar que a pesar de que es posible inducir la diferenciación de Th17 utilizando un impuropoblación, la adquisición de al menos un 80% pura CD4 + población de células CD25-T niega cualquier preocupación de la contaminación y asegura más exitosos resultados de la diferenciación Th17. Con el fin de lograr la diferenciación de Th17 adecuada, las células CD4 + CD25-T se incuban en la presencia de anti-CD3 y anti-CD28, que proporcionan las señales de activación, 1 y 2, respectivamente, y la IL-6, y TGF-β. Aunque se ha informado de que la IL-23 solo se puede utilizar para lograr la diferenciación de Th17, más tarde se demostró que la IL-23 es necesaria para la estabilidad de la población de células Th17, pero TGF-β IL-6 y son esenciales para la diferenciación de Th17 3, 18, ​​19. Estudios murinos han demostrado que el receptor de IL-23 se expresa en células T CD4 + sólo después de que han sido estimuladas con IL-6 y TGF-β 13, 18. Además, las células Th17 desarrollarán con éxito en la presencia de anticuerpos IL-23 de bloqueo, siempre y cuando están presentes 18, 19 TGF-β IL-6 y. Como tal, esta diferenciación Th17 protocolo provIDES las condiciones apropiadas para inducir exitosamente Th17 diferenciación. Desarrollo de una mejor comprensión de los mecanismos subyacentes de Th17 la diferenciación y la IL-17 de producción presentar la oportunidad para el desarrollo de mejores terapias dirigidas a los trastornos autoinmunes 13.

<table><tbody><tr><td colspan="4"><fuerte>Reactivo/Material</fuerte></td></tr><tr><td>Estéril Poliestreno Placa de Petri</td><td>Fisher Scientific</td><td>0875713A</td><td>60 mm x 15 mm</td></tr><tr><td>AutoMACS Running Buffer</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-091-221</td><td></td></tr><tr><td>Portaobjetos de Microscopio Premium, Esmerilado</td><td>Fisher Scientific</td><td>12-544-3</td><td>3" x 1"1 mm</td></tr><tr><td>5 ml 21G1 Jeringa y aguja sin látex</td><td>BD Biosciences</td><td>309632</td><td></td></tr><tr><td>Corning 15 ml Tubos de Centrífuga</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>CLS430791</td><td></td></tr><tr><td>Nylon 40 micras</td><td>Miami Aquaculture</td><td>Nylon 40/26</td><td></td></tr><tr><td>Microtest placa de cultivo de tejidos 96 pocillos U bottom </td><td>BD Biosciences</td><td>35-3077</td><td></td></tr><tr><td>Corning Costar 24 pocillos placas de cultivo celular</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>CL3524</td><td></td></tr><tr><td>Tubos Eppendorf 1,5 ml</td><td>Fisher Scientific</td><td>05-408-129</td><td></td></tr><tr><td>Hámster Purgado NA/LE Anti-Ratón CD3e</td><td>BD Biosciences</td><td>553057</td><td></td></tr><tr><td>Hámster Na/LE Purificado Anti-Ratón CD28</td><td>BD Biosciences</td><td>553294</td><td></td></tr><tr><td>Ratón IL-6 Proteína Recombinante</td><td>eBioscience</td><td>14-8061-62</td><td></td></tr><tr><td>TGFbeta</td><td>R& D Systems</td><td>240-B-002</td><td></td></tr><tr><td>Solución de azul de tripán 0.4 %</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>66H2364</td><td></td></tr><tr><td>Pac Rata Azul Anti-Ratón CD4</td><td>BD Biosciences</td><td>558107</td><td></td></tr><tr><td>APC Rata Anti-Ratón CD8a</td><td>BD Biosciences</td><td>553035</td><td></td></tr><tr><td>PE Conjugado Anti-ratón CD25</td><td>eBioscience</td><td>E01155-516</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 700 Rata Anti-ratón IL-17</td><td>BD Biosciences</td><td>560820</td><td></td></tr><tr><td>Kit de inicio de tinción de citocinas intracelulares-ratón</td><td>BD Biosciences</td><td>51-2041AK (559311)</td><td></td></tr><tr><td>MACS CD4+CD25+ kit de aislamiento de células T reguladoras, ratón</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-091-221</td><td></td></tr><tr><td>ABAM </td><td>Cellgro</td><td>30-004-CI</td><td></td></tr><tr><td>RPMI</td><td>Corning, Cellgro</td><td>10-040-CM</td><td></td></tr><tr><td>B 2-Mercapt&#8211; Etanol</td><td>MP Biomédica</td><td>194834</td><td>Peligroso</td></tr><tr><td>Forbol 12-Miristato 13-Acetato (PMA)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ionomicina Sal de Calcio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>13909-1ML</td><td></td></tr><tr><td>Brefeldina A Peligrosa (BFA)</td><td>MP Biomedicals</td><td>159027</td><td></td></tr><tr><td>ELISA IL-17A Captura mAb </td><td>BD Biosciences</td><td>555068</td><td></td></tr><tr><td>ELISA IL-17A Detección mAb </td><td>BD Biosciences</td><td>555067</td><td></td></tr><tr><td>ELISA IL-17A Estándar</td><td>eBioscience</td><td>14-8171-80</td><td></td></tr><tr><td>IL-2 ELISA Kit</td><td>BD Biosciences</td><td>555148</td><td></td></tr><tr><td>TMB Juego de reactivos </td><td>de sustrato BD Biosciences</td><td>555214</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">Equipment </strong</td></tr><tr><td>>autoMACS Pro Cell Separator</td><td>Miltenyi Biotec</td><td>130-092-545</td><td></td></tr><tr><td>Centrífuga Sorvall Legend RT+</td><td>ThermoScientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Incubadora de CO2 serie Napco 8000 WJ</td><td>Termociclador ThermoScientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PTC-200 Peltier</td><td>Biorad</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

aislamiento y diferenciación de th17 naïve linfocitos t cd4

Isolation and Th17 Differentiation of Na&iuml;ve CD4 T Lymphocytes

Células Th17 son un subconjunto distinto de las células T que se han encontrado para producir interleucina 17 (IL-17), y difieren en función de los otros subconjuntos de células T, incluyendo Th1, Th2, y células T reguladoras. Células Th17 han surgido como un culpable central en las respuestas inmunes inflamatorias exceso de celo asociados con muchos trastornos autoinmunes. En este método purificamos los linfocitos T del bazo y los ganglios linfáticos de ratones C57BL / 6, y estimular a las células T CD4 + purificadas bajo ambientes Th17 inductores de control y. El entorno de Th17-inducir incluye la estimulación en presencia de anticuerpos anti-CD3 y anti-CD28, IL-6, y el TGF-β. Después de la incubación durante al menos 72 horas y hasta por cinco días a 37 ° C, las células se analizan posteriormente para la capacidad de producir IL-17 a través de la citometría de flujo, qPCR, y ELISA. Th17 diferenciado las células CD4 + CD25-T pueden ser utilizados para aclarar aún más el papel que juegan las células Th17 en el inicio y la progresión de la autoinmunidad y el anfitrión defensa. Por otra parte, Th17 diferenciación de CD4 + CD25 de los linfocitos de los modelos knockout / enfermedad murinos distintas puede contribuir a nuestra comprensión de la plasticidad del destino celular.

Este protocolo de diferenciación de Th17 comienza con la extracción del bazo y la axilar, braquial, mesentérica, de cuello uterino, y los ganglios linfáticos inguinales. Una representación de las ubicaciones de cada uno se puede encontrar en las Figuras 2 y 3. Las figuras 1 y 5 tanto proporcionan una representación visual de los métodos descritos en este protocolo. Este protocolo se centra en la diferenciación Th17 de la población de linfoci...

Con funciones efectoras diferenciadas de otros subconjuntos de células T, las células Th17 se han implicado en el centro de la autoinmunidad inflamatoria. Este protocolo de diferenciación in vitro de Th17 en proporciona un medio para determinar si ingenuas linfocitos T CD4 + pueden diferenciarse en células Th17, y para examinar aún más su papel en la autoinmunidad y la respuesta del huésped.

Aislamiento y diferenciación de Th17 Naïve linfocitos T CD4

Th17 cells are a distinct subset of T cells that have been found to produce interleukin 17 (IL-17), and differ in function from the other T cell subsets ...

El objetivo general de este procedimiento es diferenciar células TH 17 a partir de linfocitos T CD cuatro positivos naïve. Esto se logra primero mediante la extracción de los ganglios linfáticos y el bazo de un ratón adulto C 57 black six. En el segundo paso, los tejidos se trituran para obtener una suspensión de células individuales.Las células T CD4 positivas y CD25 negativas se aíslan y cultivan luego bajo condiciones de inducción TH17 o condiciones de control de activación. Finalmente, se puede utilizar Q-PCR-ELISA y citometría de flujo para evaluar la expresión de IL-17A. Así, este método puede proporcionar información sobre la diferenciación de linfocitos T CD4 en células TH17 en ratones C57BL/6.También puede aplicarse a otros modelos de ratón. La demostración de este método es fundamental, ya que los ganglios linfáticos son muy pequeños, lo que dificulta los pasos de disección. Sin la visualización directa de este método, al menos cuatro horas antes de agregar las células, recubra los pocillos de una nueva placa de cultivo celular en microplaca UBO de 96 pocillos con 30 microlitros de anti-CD3 diluido en PBS estéril; golpee suavemente los lados de la placa para asegurar una cobertura uniforme de los pocillos y luego incube la placa a 37 grados Celsius. Después de cuatro horas, refrigere la placa hasta el momento de agregar las células.Tras confirmar la muerte por dislocación cervical, se esteriliza el área de incisión en un ratón adulto C57 Black Six con etanol al 70 %. A continuación, se sujeta la piel anterior a la abertura uretral y se realiza un corte desde la línea media ventral hasta la zona del mentón, teniendo cuidado de no alterar el peritoneo. Luego, se fija la piel con alfileres para permitir el acceso a los ganglios linfáticos y al bazo con fines de extracción.Ahora retire los ganglios linfáticos axilares localizados cerca de la axila del ratón, detrás de los músculos pectorales, y coloque el tejido en una placa de Petri que contenga cinco mililitros de tampón de funcionamiento AutoMax. A continuación, retire los ganglios linfáticos braquiales ubicados en el tejido conectivo cerca de cada axila. Luego, extraiga los ganglios linfáticos cervicales superficiales encontrados en el cuello del animal, a ambos lados de la tráquea, y posteriormente retire los ganglios linfáticos inguinales localizados en la región de la cadera, en la unión de los tres vasos sanguíneos.Para acceder a los ganglios linfáticos mesentéricos, primero corte la línea media ventral a través del revestimiento peritoneal. Los ganglios linfáticos mesentéricos se encuentran profundamente dentro del mesenterio del ratón, generalmente en una cadena de cuatro a ocho ganglios que pueden aparecer como un collar de perlas. Retire el bazo tirando de él y separándolo del páncreas.Luego, colóquelo en la placa de Petri con los ganglios linfáticos para triturar los órganos. Coloque los ganglios linfáticos sobre el lado esmerilado de un portaobjetos y frote los tejidos con el lado esmerilado de un segundo portaobjetos. Para filtrar los órganos triturados y obtener una suspensión de células individuales, primero doble varias veces un trozo de material de nailon de 40 micrones de aproximadamente tres pulgadas por tres pulgadas y colóquelo en la parte superior de un tubo cónico de 15 mililitros.Utilice una jeringa de cinco mililitros equipada con una aguja de calibre 21 para aspirar las células y el tampón, y luego dispensar lentamente la solución celular en el nylon plegado. Tenga cuidado de evitar perforar el material con la aguja. Una vez que se haya obtenido una suspensión única de células, la solución debe presentarse homogénea, sin piezas visibles de tejido sólido.Coloque esta solución en hielo. Después de separar las células mediante AutoMax hasta alcanzar una pureza de al menos 80 % de células CD4 positivas y CD25 negativas, cuente las células mediante exclusión con azul de tripano y luego diluya la suspensión celular a una concentración de 1 × 10⁶ células por mililitro en medio de cultivo celular.Ahora enjuague todos los pocillos de la placa recubierta con anti-CD3 con 200 microlitros de PBS, descartando cada lavado en un recipiente de desecho. Luego añada 100 microlitros de la mezcla inductora de TH17 o las mezclas de control de activación a los pocillos correspondientes en triplicado.Finalmente, añada 100 microlitros de células a cada pocillo e incube las células durante al menos 72 horas o hasta cinco días para lograr la diferenciación de células TH17 para ELISA y QPCR. Tras el período de incubación, reúna en un solo tubo eppendorf las réplicas triples de cada muestra. Después de centrifugar las células, transfiera el sobrenadante a tubos eppendorf separados y almacénelos a menos 20 grados Celsius para medir posteriormente la producción de IL-17A mediante ELISA.A. Para preparar la QPCR después de eliminar el sobrenadante, resuspender los pellets restantes en 175 microlitros de tampón de lisis de ARN para la extracción inmediata de ARN o almacenar a menos 80 grados Celsius hasta que se inicie el procedimiento tras el período de incubación. Como preparación para la activación celular antes de la tinción intracelular de IL-17, distribuir cada uno de los triplicados de células control de activación o inducción de TH17 en pocillos individuales de una placa de cultivo celular de 24 pocillos. Añadir 400 microlitros de medio de cultivo celular a cada pocillo.Para llevar el volumen total a un mililitro, agregue luego PMA, ionomicina y falden A a cada pocillo e incube las células durante cuatro horas a 37 grados Celsius para detectar la presencia de IL-17A mediante tinción intracelular y citometría de flujo. Primero, transfiera las células de cada pocillo de la placa de 24 pocillos a un tubo eppendorf separado. Luego, centrifugue los tubos.Retire los sobrenadantes y resuspenda los sedimentos celulares en 200 microlitros de tampón fax. Transfiera las células resuspendidas a una placa de citometría de flujo de 96 pocillos y centrifugue nuevamente las células después de lavar los sedimentos con 200 microlitros de tampón fax; resuspenda las células en 100 microlitros de tampón fax y añada 100 microlitros de la mezcla de anticuerpos para tinción extracelular. Incube durante 15 minutos a temperatura ambiente protegido de la luz.Después de lavar las células dos veces, incubar los pellet en 100 microlitros de tampón BD cyto. Fix cyto perm cubierto con papel de aluminio durante 20 minutos a temperatura ambiente. A continuación, lavar las células dos veces en 100 microlitros de tampón de permeabilización BD al 1X, e incubar luego las células en 50 microlitros de mezcla de anticuerpos intracelulares cubierto con papel de aluminio durante 15 minutos a temperatura ambiente.Después de lavar nuevamente las células, suspenda las células en 200 microlitros de tampón de tinción BD y luego transfiera las células a tubos para citometría de flujo que contienen 200 microlitros del tampón de tinción. Almacene los tubos a cuatro grados Celsius hasta que estén listos para ser leídos para el análisis por citometría de flujo. Primero, seleccione la población de células vivas. A continuación, utilice la población de células vivas para seleccionar la población positiva para CD cuatro y negativa para CD ocho.Finalmente, a partir de la población CD cuatro positiva y CD ocho negativa, se realiza un análisis de la población positiva para IL-17A con el fin de diferenciar las células TH17; para ello, las células no fraccionadas de los ganglios linfáticos y del bazo deben ser enriquecidas para la población de linfocitos T CD cuatro positiva y CD 25 negativa. En esta figura se muestran las células no fraccionadas de los ganglios linfáticos agrupados, las células del bazo y las fracciones de células T separadas mediante AutoMax, teñidas con anticuerpos anti-CD cuatro y anti-CD 25. Este primer diagrama de dispersión muestra un perfil representativo del porcentaje de linfocitos CD cuatro positivos, CD 25 positivos y CD cuatro positivos CD 25 negativos presentes en las células no fraccionadas de los ganglios linfáticos y del bazo.El procedimiento de aislamiento también proporciona una población enriquecida de linfocitos T reguladores CD4+CD25+ que puede utilizarse en experimentos adicionales. En este último gráfico de dispersión, se muestra el enriquecimiento celular deseado con una población que es 84% CD4+CD25- de linfocitos T. Esta población enriquecida de linfocitos T CD4+CD25- ayuda a garantizar una diferenciación TH17 más exitosa, como se ilustra en esta figura.Mientras que la incubación de linfocitos T CD4 positivo CD25 negativo con anti-CD3 y anti-CD28 durante cinco días produce linfocitos T CD25 positivo, la incubación bajo condiciones inductoras de TH17 genera un subconjunto de linfocitos CD4 positivo CD25 positivo productores de IL-17. El estado de diferenciación TH17 puede evaluarse adicionalmente mediante PCR cuantitativa y ELISA; aquí se muestran datos de linfocitos T CD4 positivo CD25 negativo enriquecidos, incubados bajo condiciones de control o inductoras de TH17. Los linfocitos T CD4 positivo CD25 negativo incubados bajo condiciones TH17 sobreexpresan IL-17A, lo cual puede determinarse mediante QPCR y ELISA. El factor de transcripción específico para TH17, RORγt, también es sobreexpresado por las células T CD4 positivo CD25 negativo incubadas bajo condiciones inductoras de TH17, como puede medirse por QPCR.Al seguir este procedimiento, es importante recordar lograr al menos un 80 % de pureza de células CD4 positivas y CD25 negativas antes de incubar las células bajo condiciones inductoras de TH17. Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo diseccionar ganglios linfáticos y bazo de ratones C57BL/6, cómo incubar células bajo condiciones inductoras de T8.17 o condiciones de control de activación, y cómo evaluar la diferenciación de linfocitos T CD4 naïve en células T8.17 South.

isolation-and-th17-differentiation-of-nave-cd4-t-lymphocytes

Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Este procedimiento describe la detección y aislamiento de los leucocitos de ratón TH17 que secretan activamente IL-17 a la estimulación.

Detección y aislamiento de células viables Ratón T IL-17 Secretoras

Se describe un método para la generación de regulación, la memoria y el ingenuo células T de un donante de sangre humana única. Polarizada Tregs puede ser entonces en comparación con otros subconjuntos en una variedad de aplicaciones genéticas y funcionales con homogeneidad genética, incluyendo un ensayo de supresión también detallan aquí.

La generación de células T reguladoras inducidas de células humanas primarias T vírgenes y de memoria

+ &gt; 'jove_content'Naïve se polarizan en varios subconjuntos dependiendo del entorno en el momento de la activación.  La diferenciación de los linfocitos T CD4+ naïve a varios subconjuntos efectores se puede lograr in vitro mediante la adición de estímulos del receptor de linfocitos T y señales específicas de citocinas.

Ratón Naïve CD4<sup&gt; +</sup&gt; Aislamiento de células T y<em&gt; In vitro</em&gt; Diferenciación en subconjuntos de células T

Aquí, proporcionamos un protocolo optimizado para el aislamiento y clonación de la escasa entidad de células T periféricas Vδ1+CD4+ que es, como demostramos recientemente, un progenitor de células T αβ extratímicas. Esta técnica permite aislar, clonar y expandir eficientemente estas células en cultivo ex vivo.

Aislamiento y<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Cultura de Vδ1<sup&gt; +</sup&gt; CD4<sup&gt; +</sup&gt; Las células γδ T, una célula αβT Progenitor Extrathymic

Este protocolo describe la diferenciación de linfocitos T CD4+ naïve en linfocitos Th17 patógenos in vitro. Específicamente, cuando se combina con un enfoque basado en citometría de flujo multiparamétrica, se puede obtener una pureza del 90% de las células Th17 patógenas a partir de células T CD4+ naïve utilizando este método de diferenciación.

Diferenciación in vitro de linfocitos T CD4+ naive en linfocitos Th17 patógenos en ratón

Presentamos un protocolo para la transducción retroviral de ARN guía en células T primarias de ratones transgénicos Cas9, proporcionando una alternativa eficiente para la edición de genes en el estudio de la diferenciación Th17.

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Protocolo Aislamiento eficiente para B y linfocitos T a partir Humanos Palatine amígdalas

Aprenda a diferenciar células Th17 a partir de linfocitos T CD4+ naïve de ratones C57BL/6. Este protocolo utiliza Q-PCR, ELISA y citometría de flujo para evaluar la expresión de IL-17A.

Aislamiento y diferenciación de Th17 Naïve linfocitos T CD4

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