Name: Una guía para la generación y uso de hiPSC NPCs derivados para el Estudio de las Enfermedades Neurológicas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-21T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 30 s
Description: Aprende a generar células progenitoras neuronales (NPCs) a partir de hiPSCs para estudiar enfermedades neurológicas. Este protocolo utiliza inhibidores SMAD duales y transducción lentiviral para investigar mecanismos celulares y moleculares.

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Kristen Brennand es una investigadora de la Fundación de Células Madre de Nueva York - Robertson. El Laboratorio Brennand cuenta con el apoyo de una beca para jóvenes investigadores del cerebro y el comportamiento, una beca R01 del Instituto Nacional de Salud (NIH) MH101454 y la Fundación de Células Madre de Nueva York.

1. hiPSC Diferenciación de células progenitoras neurales <ol><li> Crecer y expandirse hiPSCs en células madre embrionarias humanas (HES) medios de comunicación (Tabla 1) co-cultivadas en un fibroblastos embrionarios de ratón (MEF) capa alimentadora hasta grandes (pero subconfluentes) colonias están listos para la diferenciación neural a través de un cuerpo embrioide (EB) intermedia (Figura 2). Condiciones de rutina cultura hiPSC están bien descritas en otra parte 16,17; Brevemente, hiPSCs crecer en medios de HES en una capa de alimentación MEF hasta la confluencia, el paso entonces enzimáticamente con colagenasa (1 mg / ml en DMEM) y ampliar aproximadamente 1: 3 cada 7 días. </li><li> Para preparar placas recubiertas de poli-L-ornitina / laminina, placas de capa con 10 g / ml de poli-L-ornitina en agua estéril para superficies de plástico (50 g / ml para las superficies de vidrio) y se incuba a temperatura ambiente durante 3-24 horas. Lavar al menos una vez con agua estéril y luego cubra con 5 g / ml laminina en PBS estéril a temperatura ambiente durante 3-24 horas. NOTA: Si envuelto en plástico, placas pueden seralmacenada durante hasta seis meses a -20 ºC. </li><li> En el Día 1, enzimáticamente levantar hiPSCs subconfluentes (generalmente cultivadas en MEFs, o hiPSCs cultivadas en medios definidos, tales como TeSR 18 en Matrigel) de la placa como grandes colonias utilizando 1 mg / ml de colagenasa IV en DMEM / F12. NOTA: Después de 1-2 h de incubación a 37 ºC, las colonias se flotando en el plato. </li><li> Lave suavemente colonias hiPSC (por decantación, la centrifugación no) 1-2x con DMEM / F12, volver a suspender en 2 ml / pocillo de N2 / media B27 (Tabla 1) y la transferencia a los platos no adherente de 6 pocillos (combinar 3 pozos en 1 -bueno) 19. NOTA: Durante la noche, las colonias se formarán grupos esféricas flotantes denomina &quot;cuerpos embrionarios&quot; (EBS). Esperar la muerte celular sustancial. </li><li> En el día 2, las placas de inclinación y permita EBS se asiente. Retire con cuidado los medios de comunicación y lavar una vez con DMEM / F12 para eliminar los residuos. Alimentar con N2 / B27 medio suplementado con inhibidores de Smad duales (0,1 M LDN193189 y 10M SB431542) 12 </sup&gt;. </li><li> En los días 3-7, neuralization se producirá en el contexto de la inhibición SMAD dual; comprobar que los OC son redondos pero no quística. Alimente EBS cada segundo día con los medios de comunicación N2 / B27 suplementado con 0,1 M LDN193189 y 10M SB431542. </li><li> En los días 7-14, después de chapado de EBS a la poli-L-ornitina / laminina placas recubiertas, comprobar usando un microscopio de campo claro que rosetas neurales comienzan a aparecer dentro de unos pocos días (caracterizado como racimos redondos de células neuroepiteliales con la polaridad-apico basal; la Figura 1). Continuar para alimentar EBS adherentes cada segundo día con los medios de N2 / B27 suplementado con 0,1 M LDN193189, 10M SB431542 y 1 g / ml de laminina. </li></ol> 2. Cosecha de Neural Rosetas NOTA: Se recomienda que rosetas neuronales pueden cosechar enzimáticamente usando Neural Rosette Selección Reactivo 20 o reactivo de selección similar. Aunque rosetas neuronales pueden ser recogidos manualmente en 6 pocillos de poli-L-ornitina / laminina placa recubierta, thimetodología s lleva una amplia formación de dominar, y, dependiendo de la habilidad del usuario, puede requerir una segunda ronda de recoger en el día 20 para enriquecer aún más para NPCs y agotar tipos de células no neuronales. <ol><li> Para la selección enzimática de rosetas neuronales en el día 14, los medios de aspirado de EBS adheridas y añadir 1 ml de reactivo neuronal selección roseta por pozo de una placa de 6 pocillos. Se incuba a 37 ºC durante 1 hora. </li><li> Con un Pipetman P1000, retire con cuidado la enzima de cada pocillo. Añadir 1 ml de DMEM / F12 por pocillo de lavar. </li><li> Con un P1000, recoger los 1 ml de DMEM / F12 y rápidamente expulsar al DMEM / F12 de nuevo en el pozo, separando así los rosetones de la placa. Recoge las rosetas en un tubo Falcon. </li><li> Pipetear otro 1 ml de DMEM / F12 y expulsar rápidamente en el mismo pozo para separar restantes rosetas. (No se tritura. Trate de no romper los agregados de roseta). Recoge las rosetas neuronales en mismo tubo Falcon. </li><li> Repita el paso 2.4, según sea necesario. Si rosetas no se desprenden fácilmente, añadir more enzima y repetir el proceso (pasos 2.1 a 2.4) </li><li> Girar las células a 300 xg durante 3 min. Aspirar el lavado, y volver a suspender rosetas en 2 ml de medio de NPC (Tabla 1). La transferencia de células (1: 1) en una poli-L-ornitina / laminina recubiertas 6 placa de pocillos. </li><li> De 15 a 21 días, las rosetas neuronales ampliarán; rosetas de alimentación cada segundo día con los medios de comunicación de la APN. </li><li> Evaluar la calidad de las rosetas neuronales y asegurarse de que las células de tipo fibroblasto planos no están expandiendo dentro de la cultura. NOTA: Si no rosetas persisten, la cultura de la APN a veces puede ser salvado por picking manual, seleccionando sólo los mejores de los rosetones recogido en Accutase. Disociar 15 min a 37 ºC. Pellet, lavar y placa en los medios de comunicación de la APN en 24 pocillos placa recubierta de poli-L-ornitina / laminina. </li></ol> 3. Ampliación de células progenitoras neurales NOTA: hiPSC PNJ se puede cultivar en cualquier Matrigel- o poli-L-ornitina / laminina placas recubiertas. Utilizamos típicamente Matrigel-placas, ya que se pueden preparar con mayor rapidez y menor coste. <ol><li> Para preparar placas Matrigel recubiertos, descongelar y volver a suspender rápidamente una alícuota de 1 mg de Matrigel congelado en 24 ml de frío DMEM / F12 y distribuir inmediatamente 2 ml a cada pocillo de dos placas de seis pocillos. Incubar durante al menos 1 hora a 37 ºC. NOTA: Matrigel sólo necesita ser aspirado, no se lava, inmediatamente antes del uso. </li><li> Alimente NPCs cada dos días y mantener a muy alta densidad o que de forma espontánea se diferenciarán a las neuronas. NOTA: NPCs Aunque más establecidos suelen dividieron 1: 4 cada semana, NPCs muy bajos de paso se pueden dividir 1: 2 con tan poca frecuencia como una vez cada dos semanas. </li><li> Para dividir, primeros medios de aspirado y añadir 1 ml cálido Accutase (1X) por pocillo de placa de 6 pocillos. Se incuba a 37 ºC durante 10-15 minutos. </li><li> Transferir suavemente las células desprendidas en un tubo de 15 ml que contenía DMEM / F12 con la menor tensión mecánica posible. No valorar las células, mientras que en la enzima. Células de pellets por spinning a 1000 xg durante 5 min. </li><li> Aspirar el lavado, y volver a suspender NPCs en ~ 1 ml NPC medios por pozo original de 6 pocillos. NOTA: Esperar que un pozo confluente de una placa de 6 pocillos tiene 5-10 millones de células; esto puede ser confirmado contando una alícuota de 10 l de células utilizando un hematocitómetro antes de volver a chapado. </li><li> Después de la resuspensión, NPCs re-placa como NPCs, neuronas o neuroesferas. Para mantener NPCs, placa aproximadamente 1-2 millones de células por pocillo de una placa de 6 pocillos. La eficacia de la formación neurosphere puede variar entre los experimentos y las líneas celulares, pero en general se produce mejor si entre 200.000 y 1.000.000 células se sembraron por pocillo de una placa de 6 pocillos no adherente; si se produce aglutinación de las neuroesferas, reducir el número de células sembradas. Para diferenciar a neuronas, placa de aproximadamente 200.000 células por pocillo de una placa de 6 pocillos, en sustitución de los medios de comunicación de la APN con los medios de comunicación neurona. </li><li> Inmunohistoquímicamente validar cada línea NPC establecido. Una vez que el material celular suficiente ha sido expanded, NPCs etiquetas con anticuerpos para Nestin y Sox2. Líneas Validado NPC también deben diferenciarse en neuronas durante 4-6 semanas, y se marcaron con anticuerpos para III-tubulina y MAP2AB. <ol><li> Fijar las células en paraformaldehído al 4% en PBS a 4ºC durante 10 min. Permeabilizar NPCs a TA durante 15 min en 1,0% de Triton en PBS, y luego bloquear en 5% de suero de burro con 0,1% Triton a TA durante 30 min. </li><li> Incubar con el anticuerpo primario en 5% de suero de burro con 0,1% de Triton, durante la noche a 4ºC. NOTA: Se recomienda los siguientes anticuerpos: cabra anti-Sox2, 1: 200; Nestin de ratón anti-humano, 1: 200; de conejo anti-βIII-tubulina, 1: 500; ratón anti-βIII-tubulina, 1: 500; ratón anti-MAP2AB, 1: 200. (Figura 2). </li><li> Después de un lavado con PBS, se incuban las células anticuerpos secundarios con el anticuerpo secundario conjugado apropiado cabra, ratón o conejo a 1: 300, en en 5% de suero de burro con 0,1% Triton durante 1-2 horas a TA. Para visualizar los núcleos, células de tinción con 0,5 g / ml DAPI (4 &#39;, Montaje de 6-diamidino-2-fenilindol) y luego con Vectashield. </li></ol></li></ol> 4. NPC Transducción <ol><li> Utilice spinfection (centrifugación de placas de cultivo celular en presencia de virus a 1.000 xg durante 1 hr) para aumentar el porcentaje de células transfectadas 21. Aspirar los medios de comunicación y reemplazarla por la sobreexpresión relevante (o control) lentivirus (o retrovirus), tituladas a la multiplicidad deseado de infección (MOI) (típicamente 1-10), diluido en los medios de comunicación de la APN. Use 1,5 ml de volumen por pocillo de una placa de 6 pocillos (o un volumen escala apropiada para otros tipos de placas de cultivo tisular). Giran a 1000 xg y 37 ºC durante 1 hora en una centrífuga de placas. NOTA: Idealmente, la transducción de NPCs con lentiviral o vectores retrovirales dentro de 1-2 días de separación. Si el uso de virus comerciales o preparado en el laboratorio, puede ser útil para titular apropiadamente lotes de virus de antemano por dilución en serie. (Figura 3). </li><li> Para reducir celmuerte lular, sustitución de los medios dentro de 8 horas de spinfection. NOTA: la integración viral y la expresión transgénica deberían ser detectables dentro de las 24 horas por fluorescencia gen reportero. (Si el virus carece de un indicador fluorescente, esto es más difícil de evaluar; transfección exitosa mejor puede ser validada por inmunotransferencia, inmunohistoquímica o qPCR para los productos de sobreexpresión.) Expresión completa puede tardar de 3-7 días; spinfections repetidos con virus adicional puede ser necesaria para aumentar el porcentaje de células transfectadas. Spinfections recurrentes pueden ocurrir a diario, pero no tienen que ser tan frecuentes. Idealmente, si se utiliza un indicador fluorescente,&gt; 80% de las células deben ser etiquetados. </li></ol> 5. Neurosphere ensayo de migración NOTA: neuroesferas forma espontáneamente, tras la disociación enzimática de NPC (por una manera idéntica a la utilizada en la expansión NPC - los pasos 3.3 a 3.6), si las células se cultivan en suspensión en medios NPC. <ol><li> Brevemente, se disocian crecerNPCs d en los medios de comunicación de la APN para 48 horas en placas adherentes a fin de generar neuroesferas. (Figura 4). </li><li> Para la migración neurosphere, preparar placas Matrigel frescas usando los medios de comunicación de la APN frío, en lugar de DMEM, en una placa de 96 pocillos, 1-2 horas antes de la neurosphere picking. No aspirar Matrigel de los pozos. </li><li> Como se publicó originalmente para neuroesferas derivadas de células madre embrionarias de 22, recoger manualmente neuroesferas derivadas de NPC con un microscopio, después de lavar una vez en los medios de comunicación de la APN para eliminar restos celulares. Transferir una neuroesfera a cada pocillo de una placa de 96 pocillos recubierta con Matrigel. </li><li> Añadir un 0,5 mg adicionales Matrigel, diluido en medios NPC frías, a las neuroesferas en cada placa de 96 pocillos. </li><li> Centrar manualmente cada neurosphere individuo en el centro del pozo utilizando una punta de pipeta. NOTA: Es importante escoger neurosferas de tamaño similar, con el fin de reducir la variabilidad en los resultados. </li><li> Permita que la migración se produzca durante 48 horas y luego fijar las células wITH paraformaldehído al 4% y tinción con marcadores inmunohistoquímicos deseados. </li><li> Si la migración radial se determinará, neurosferas fotografía en su totalidad utilizando un objetivo 4x microscopio. Excluir las neuroesferas en contacto con el borde del pozo o una segunda neurosphere del análisis. NOTA: Si la migración se produce durante más de 48 horas, la migración radial resultante probablemente será demasiado grande para la imagen con un objetivo 4x. </li><li> Medir la migración promedio de cada neurosphere utilizando el software NIH ImageJ (Figura 5). Esto se puede hacer utilizando cualquiera de los métodos de análisis descritos a continuación: <ol><li> Migración radial: <ol><li> Trazar manualmente el borde de las células más lejanos migrar utilizando la herramienta de selección a mano alzada a continuación, utilizar la función (Ctrl + M) Medida para calcular el área de la forma resultante. Antes de medir el área, asegúrese de que la zona está marcada en la ventana Set Medidas encontrado en la ficha Analizar. Utilice lavalor de la medición de área y la ecuación para el área de un círculo (A = πr 2) para determinar el radio (exterior). </li><li> Trazar el borde de la neurosphere original, medir el área y calcular el radio (interior) de la misma manera. Calcular la migración radial total como la diferencia entre los radios exterior e interior. </li></ol></li><li> Greatest migración celular: <ol><li> Medir la distancia recorrida de las cinco células más alejadas del borde de la neuroesfera interior con la función de selección de línea recta, seguido por la función (Ctrl + M) Medida. </li></ol></li></ol></li></ol>

<ol><li>Brennand, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotypic+differences+in+hiPSC+NPCs+derived+from+patients+with+schizophrenia%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">Phenotypic differences in hiPSC NPCs derived from patients with schizophrenia.</a> Mol Psychiatry. , (2014).</li>
<li>Nicholas, C. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+maturation+of+hPSC-derived+forebrain+interneurons+requires+an+extended+timeline+and+mimics+human+neural+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Functional maturation of hPSC-derived forebrain interneurons requires an extended timeline and mimics human neural development.</a> Cell Stem Cell. 12, 573-586 (2013).</li>
<li>Mariani, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+human+cortical+development+in+vitro+using+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Modeling human cortical development in vitro using induced pluripotent stem cells.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 109, 12770-12775 (2012).</li>
<li>Hashimoto-Torii, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Roles+of+heat+shock+factor+1+in+neuronal+response+to+fetal+environmental+risks+and+its+relevance+to+brain+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Roles of heat shock factor 1 in neuronal response to fetal environmental risks and its relevance to brain disorders.</a> Neuron. 82, 560-572 (2014).</li>
<li>Robicsek, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abnormal+neuronal+differentiation+and+mitochondrial+dysfunction+in+hair+follicle-derived+induced+pluripotent+stem+cells+of+schizophrenia+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">Abnormal neuronal differentiation and mitochondrial dysfunction in hair follicle-derived induced pluripotent stem cells of schizophrenia patients.</a> Mol Psychiatry. 18 (10), 1067-1076 (2013).</li>
<li>Paulsen, B. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Altered+oxygen+metabolism+associated+to+neurogenesis+of+induced+pluripotent+stem+cells+derived+from+a+schizophrenic+patient%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplant%22%5BJournal%5D)">Altered oxygen metabolism associated to neurogenesis of induced pluripotent stem cells derived from a schizophrenic patient.</a> Cell Transplant. 21 (7), 1547-1559 (2012).</li>
<li>Yu, D. X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+hippocampal+neurogenesis+using+human+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Modeling hippocampal neurogenesis using human pluripotent stem cells.</a> Stem Cell Reports. 2, 295-310 (2014).</li>
<li>Brennand, K. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modelling+schizophrenia+using+human+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Modelling schizophrenia using human induced pluripotent stem cells.</a> Nature. 473 (7346), 221-225 (2011).</li>
<li>Wen, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synaptic+dysregulation+in+a+human+iPS+cell+model+of+mental+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Synaptic dysregulation in a human iPS cell model of mental disorders.</a> Nature. , (2014).</li>
<li>Zhang, L., Song, X., Mohri, Y., Qiao, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+pf+Inflammation+and+Tumor+Microenvironment+in+the+Development+of+Gastrointestinal+Cancers%3A+What+Induced+Pluripotent+Stem+Cells+Can+Do%5BTitle%5D)+AND+%22Current+stem+cell+research+%26+therapy%22%5BJournal%5D)">Role pf Inflammation and Tumor Microenvironment in the Development of Gastrointestinal Cancers: What Induced Pluripotent Stem Cells Can Do.</a> Current stem cell research & therapy. , (2014).</li>
<li>An, M. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+Correction+of+Huntington%27s+Disease+Phenotypes+in+Induced+Pluripotent+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Genetic Correction of Huntington's Disease Phenotypes in Induced Pluripotent Stem Cells.</a> Cell Stem Cell. 11 (2), 253-263 (2012).</li>
<li>Chambers, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+efficient+neural+conversion+of+human+ES+and+iPS+cells+by+dual+inhibition+of+SMAD+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Highly efficient neural conversion of human ES and iPS cells by dual inhibition of SMAD signaling.</a> Nat Biotechnol. 27, 275-280 (2009).</li>
<li>Pankratz, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Directed+neural+differentiation+of+human+embryonic+stem+cells+via+an+obligated+primitive+anterior+stage%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Directed neural differentiation of human embryonic stem cells via an obligated primitive anterior stage.</a> Stem Cells. 25, 1511-1520 (2007).</li>
<li>Marchetto, M. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+model+for+neural+development+and+treatment+of+rett+syndrome+using+human+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">A model for neural development and treatment of rett syndrome using human induced pluripotent stem cells.</a> Cell. 143, 527-539 (2010).</li>
<li>Sareen, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromosome+7+and+19+trisomy+in+cultured+human+neural+progenitor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Chromosome 7 and 19 trisomy in cultured human neural progenitor cells.</a> PLoS One. 4, e7630(2009).</li>
<li>Thomson, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+stem+cell+lines+derived+from+human+blastocysts%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts.</a> Science. 282, 1145-1147 (1998).</li>
<li>Cowan, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Derivation+of+embryonic+stem-cell+lines+from+human+blastocysts%5BTitle%5D)+AND+%22N+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Derivation of embryonic stem-cell lines from human blastocysts.</a> N Engl J Med. 350, 1353-1356 (2004).</li>
<li>Ludwig, T. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Derivation+of+human+embryonic+stem+cells+in+defined+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Derivation of human embryonic stem cells in defined conditions.</a> Nat Biotechnol. 24, 185-187 (2006).</li>
<li>Coufal, N. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((L1+retrotransposition+in+human+neural+progenitor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">L1 retrotransposition in human neural progenitor cells.</a> Nature. 460, 1127-1131 (2009).</li>
<li>Xia, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+human-induced+pluripotent+stem+cells+to+model+spinocerebellar+ataxia+type+2+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+molecular+neuroscience+%3A+MN%22%5BJournal%5D)">Generation of human-induced pluripotent stem cells to model spinocerebellar ataxia type 2 in vitro.</a> Journal of molecular neuroscience : MN. 51, 237-248 (2013).</li>
<li>Aasen, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+and+rapid+generation+of+induced+pluripotent+stem+cells+from+human+keratinocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Efficient and rapid generation of induced pluripotent stem cells from human keratinocytes.</a> Nat Biotechnol. 26, 1276-1284 (2008).</li>
<li>Delaloy, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroRNA-9+coordinates+proliferation+and+migration+of+human+embryonic+stem+cell-derived+neural+progenitors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">MicroRNA-9 coordinates proliferation and migration of human embryonic stem cell-derived neural progenitors.</a> Cell Stem Cell. 6, 323-335 (2010).</li>
<li>Kriks, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopamine+neurons+derived+from+human+ES+cells+efficiently+engraft+in+animal+models+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Dopamine neurons derived from human ES cells efficiently engraft in animal models of Parkinson's disease.</a> Nature. 480, 547-551 (2011).</li>
<li>Maroof, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Directed+differentiation+and+functional+maturation+of+cortical+interneurons+from+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Directed differentiation and functional maturation of cortical interneurons from human embryonic stem cells.</a> Cell Stem Cell. 12, 559-572 (2013).</li>
<li>Shi, Y., Kirwan, P., Smith, J., Robinson, H. P., Livesey, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+cerebral+cortex+development+from+pluripotent+stem+cells+to+functional+excitatory+synapses%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Human cerebral cortex development from pluripotent stem cells to functional excitatory synapses.</a> Nat Neurosci. 15, 477-486 (2012).</li>
<li>Espuny-Camacho, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pyramidal+neurons+derived+from+human+pluripotent+stem+cells+integrate+efficiently+into+mouse+brain+circuits+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Pyramidal neurons derived from human pluripotent stem cells integrate efficiently into mouse brain circuits in vivo.</a> Neuron. 77, 440-456 (2013).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Hemos descrito los métodos por los que pueda diferenciar hiPSCs en NPCs, un tipo de célula neuronal en la que se conserva una parte importante de la firma genética de neuronas derivadas de hiPSC y que pueden servir como un sustituto de las vías de desarrollo que posiblemente contribuyen a la patogénesis de la enfermedad 8, 11. Además, como hemos detallado, NPCs son una población neuronal robusta replicativa y fácilmente transducidas, que creemos que puede ser adecuado para los estudios moleculares y bioquímic...

Estudios de expresión génica de las neuronas diferenciadas in vitro a partir de células madre pluripotentes inducidas humanas (hiPSCs) por nosotros 1 y otros 2,3 indican que las neuronas hiPSC asemejan fetal en lugar de adultos tejido cerebral. En la actualidad, los modelos basados ​​en hiPSC pueden ser más apropiados para el estudio de la predisposición a, en lugar de características tardía de la enfermedad neurológica. Hemos informado anteriormente de que una fracción significativa de la firma genética de las neuronas hiPSC derivado de la esquizofrenia se conserva en las células esquizofrenia hiPSC derivados neurales progenitoras (NPC), indicando que NPC puede ser un tipo de célula útil para estudiar las vías moleculares que contribuyen a la esquizofrenia 1 . Nosotros y otros han informado de la migración aberrante, aumento del estrés oxidativo y las especies reactivas de oxígeno, la sensibilidad a las tensiones ambientales sub-umbral y la función mitocondrial alterada en la esquizofrenia hiPSC NPC 1,4-6, así como una disminución c neuronalonectividad y la función sináptica en las neuronas hiPSC esquizofrenia 5,7-10. Si los factores moleculares que contribuyen a la migración aberrante y / o el estrés oxidativo en la esquizofrenia hiPSC NPCs también subyacen a la conectividad neuronal reducida en las neuronas hiPSC derivado de la esquizofrenia, NPC podrían ser una población neuronal robusta y altamente replicativa con el que estudiar los mecanismos responsables de la enfermedad. Además, porque se puede generar rápidamente un gran número de células y no es necesario esperar semanas o meses para la maduración neuronal, ensayos basados ​​en NPC son adecuados para el estudio de grandes cohortes de pacientes y son más susceptibles de cribado de alto rendimiento. Creemos que hiPSC NPCs puede servir como sustituto de las vías de desarrollo que posiblemente contribuyen a la patogénesis de la enfermedad, como ya se ha demostrado en los trastornos tan diversos como la esquizofrenia 1 y la enfermedad de Huntington 11. Para diferenciar los NPCs de hiPSCs, neural inicial enla producción se lleva a cabo por doble SMAD inhibición (0,1 mM y 10 mM LDN193189 SB431542) 12. Por antagonizar BMP y TGF señalización con estas pequeñas moléculas, endodermo y mesodermo especificación está bloqueada, la aceleración de la diferenciación neuronal y que conduce a la formación de rosetas neuronales visibles dentro de una semana de la siembra. Patrón Neural se produce temprano en este proceso, presumiblemente durante el período de formación de rosetas neural e inmediatamente después. A falta de otros indicios, estas células nerviosas primitivas suponen un-cerebro anterior como el destino anterior 13. Inmediatamente después de la formación de rosetas neural, y continua a lo largo de la expansión de la APN, NPCs del cerebro anterior se cultivan con FGF2 8,14. Tienen potencial linaje dual y se pueden diferenciar de las poblaciones neuronales del 70-80% neuronas III-tubulina-positivas y 20-30% de proteína ácida glial fibrilar (GFAP) -positivos astrocitos (Figura 1). La mayoría de las neuronas del cerebro anterior hiPSC son VGLUT1-positivo, Y también lo son presumiblemente glutamatérgica, aunque aproximadamente el 30% de las neuronas son GAD67-positivo (GABAérgicas) 8. NPC se pasan rutinariamente más de diez veces in vitro, mientras que el mantenimiento de los perfiles de diferenciación consistentes, y sin acumular anomalías del cariotipo. Los grupos han reportado NPCs pases más de 40 veces 15, sin embargo, nos encontramos con que más allá de diez pasajes, NPCs muestran una mayor propensión a la diferenciación de los astrocitos. NPCs bien tolera múltiples congelaciones deshielos y puede ser la transición a crecer como neuroesferas simplemente cultivando en placas no adherentes. NPCs son transducidas eficientemente por vectores virales, lo que permite una rápida evaluación de las consecuencias moleculares y celulares de la perturbación genética, y fácilmente ampliable para producir suficiente material para estudios bioquímicos. Además, porque los vectores virales permiten robusta sobre-expresión y / o desmontables de genes relevantes de la enfermedad, ya sea en el control o paciente derivada neurcélulas de Al, se puede utilizar esta plataforma para probar el efecto de los antecedentes genéticos de estas manipulaciones. Aunque no es adecuado para sináptica o ensayos basados ​​en actividades que requieren las neuronas maduras, NPCs puede ser una alternativa práctica para muchos análisis moleculares o bioquímicos directas de las células neuronales derivadas del paciente.

<table><tbody><tr><td>DMEM/F12</td><td>Life Technologies</td><td>#11330</td><td>para medios HES</td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>Life Technologies</td><td>#10565</td><td>para medios neuronales</td></tr><tr><td>KO-Serum Replacement</td><td>Life Technologies</td><td>#10828</td><td>Necesita ser probado por lotes</td></tr><tr><td>Glutamax</td><td>Life Technologies</td><td>#35050</td><td></td></tr><tr><td>NEAA</td><td>Life Technologies</td><td>&nbsp;#11140</td><td></td></tr><tr><td>N2</td><td>Life Technologies</td><td>&nbsp;#17502-048</td><td>Necesita ser probado por lotes</td></tr><tr><td>B27-RA</td><td>Life Technologies</td><td>&nbsp;#12587-010</td><td>Necesita ser probado por lotes</td></tr><tr><td>FGF2</td><td>Life Technologies</td><td>#13256-029</td><td>Resuspender en PBS + 1% BSA</td></tr><tr><td></td><td>LDN193189 Stemgent</td><td>#04-0074</td><td></td></tr><tr><td></td><td>SB431542 Stemgent</td><td>#04-0010</td><td></td></tr><tr><td>BDNF</td><td>Peprotech</td><td>#450-02</td><td>Resuspender en PBS + 0.1% BSA</td></tr><tr><td>GDNF&nbsp;</td><td>Peprotech</td><td>&nbsp;#450-10</td><td>Resuspender en PBS + 0.1% BSA</td></tr><tr><td>Dibutiril cíclico-AMP</td><td>Sigma</td><td>&nbsp;#D0627</td><td>Resuspender en PBS + 0.1% BSA</td></tr><tr><td>Ácido L-ascórbico</td><td>Sigma</td><td>#A0278</td><td>Resuspender en H20</td></tr><tr><td>STEMdiff Reactivo de selección de roseta neural</td><td>Stemcell Technologies</td><td>&nbsp;#05832</td><td></td></tr><tr><td>Accutase</td><td>Innovador Cell Technologies</td><td>AT-104</td><td></td></tr><tr><td>Colagenasa IV</td><td>Life Technologies</td><td>#17104019</td><td></td></tr><tr><td>CF1 mEFs</td><td>Millipore</td><td>#PMEF-CF</td><td></td></tr><tr><td>Poly-L-Ornithine</td><td>Sigma</td><td>P3655</td><td></td></tr><tr><td>Laminina, Ratón Natural 1 mg</td><td>Life Technologies</td><td>#23017-015</td><td></td></tr><tr><td>BD Matrigel</td><td>BD</td><td>#354230</td><td>Vuelva a suspender en hielo en DMEM frío a 10 mg / ml, use 1 mg por dos placas equivalentes a 6 pocillos</td></tr><tr><td>Placas de 6 pocillos tratadas con cultivo de tejidos</td><td>Corning</td><td>3506</td><td></td></tr><tr><td>Placa de 6 pocillos de fijación ultra baja</td><td>Corning</td><td>3471</td><td></td></tr><tr><td>cabra anti-Sox2&nbsp;</td><td>Santa Cruz</td><td>sc&shy; 17320</td><td>uso a 1:200</td></tr><tr><td>ratón anti-humano Nestin</td><td>Millipore</td><td>MAB5326</td><td>uso a 1:200</td></tr><tr><td>conejo anti-y beta; III-tubulina</td><td>Covance</td><td>PRB&shy; Uso de 435P</td><td>a 1:500</td></tr><tr><td>ratón anti-y beta; III-tubulina</td><td>Covance</td><td>MMS&shy; Uso 435P</td><td>a 1:500</td></tr><tr><td>ratón anti-MAP2AB</td><td>Sigma</td><td>M1406</td><td>uso a 1:200</td></tr><tr><td>Centrífuga de placas</td><td>Beckman Coulter</td><td>Beckman Coulter Allegra X-14 (con portador de placas SX4750)</td><td></td></tr></tbody></table>

una guía para la generación y uso de hipsc npcs derivados para el estudio de las enfermedades neurológicas

A Guide to Generating and Using hiPSC Derived NPCs for the Study of Neurological Diseases

Los estudios post-mortem de enfermedades neurológicas no son ideales para identificar las causas subyacentes del inicio de la enfermedad, ya que muchas enfermedades incluyen un largo período de progresión de la enfermedad antes de la aparición de los síntomas. Debido a que los fibroblastos de los pacientes y los controles sanos pueden reprogramarse de manera eficiente en células madre pluripotentes inducidas por humanos (hiPSC), y posteriormente diferenciarse en células progenitoras neurales (NPC) y neuronas para el estudio de estas enfermedades, ahora es posible recapitular los eventos de desarrollo que ocurrieron antes de la aparición de los síntomas en los pacientes. Presentamos un método mediante el cual se pueden diferenciar de manera eficiente las hiPSC en NPC, que además de ser capaces de diferenciarse aún más en neuronas funcionales, también pueden ser fuertemente transitadas, congeladas-descongeladas o transicionadas para crecer como neuroesferas, lo que permite un rápido cribado genético para identificar los factores moleculares que afectan a los fenotipos celulares, incluyendo la replicación, la migración, el estrés oxidativo y/o la apoptosis. Las NPC hiPSC derivadas de pacientes son una plataforma única, ideal para las pruebas empíricas de las consecuencias celulares o moleculares de la manipulación de la expresión génica.

Rosetas neuronales pueden ser identificadas morfológicamente, utilizando un microscopio de campo claro, por su aspecto característico como racimos redondos de células neuroepiteliales con la polaridad-apico basal (Figura 1). Aunque NPCs son típicamente cultivaron a muy alta densidad celular, inmediatamente después de los pases, ligeramente soma de forma piramidal y la estructura de neuritas bipolar es visible (Figura 1D). NPCs validados expresan nestina y Sox2 en la mayoría de las célul...

Este protocolo describe cómo se pueden diferenciar las células progenitoras neurales de las células madre pluripotentes inducidas humanas, con el fin de producir una población de células neuronales robusta y replicativa, que puede usarse para identificar las vías de desarrollo que contribuyen a la patogénesis de la enfermedad en muchos trastornos neurológicos.

Una guía para la generación y uso de hiPSC NPCs derivados para el Estudio de las Enfermedades Neurológicas

Post-mortem studies of neurological diseases are not ideal for identifying the underlying causes of disease initiation, as many diseases include a long ...

El objetivo general de este procedimiento es generar células progenitoras neurales o NPCs a partir de células madre pluripotentes inducidas humanas o PSCs de alto grado, como una plataforma para estudiar los mecanismos celulares y moleculares que contribuyen a las enfermedades neurológicas. Esto se logra primero diferenciando las PSCs de alto grado mediante inhibidores duales de SMAD hacia rosetas neurales. El segundo paso consiste en recolectar estas rosetas neurales y permitir que crezcan hasta formar poblaciones expandibles de NPCs.A continuación, transducción lentiviral con una infección por centrifugación. Este paso, utilizado para mejorar la eficiencia, sirve para manipular la expresión génica. El paso final consiste en cultivar las NPC en suspensión para que formen espontáneamente neuroesferas.En última instancia, esta plataforma puede utilizarse para analizar una variedad de fenotipos celulares. Por ejemplo, medir el efecto de la manipulación genética sobre la migración neuronal. Aunque este método puede proporcionar información sobre mecanismos celulares como la migración.También puede aplicarse para estudiar otros procesos biológicos como la replicación, el estrés oxidati

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Research

Investigación

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Se describe una metodología que combina el cultivo de células automatizadas con alto contenido de imágenes para visualizar y cuantificar múltiples procesos celulares y de las estructuras, de un modo de alto rendimiento. Estos métodos pueden ayudar en la anotación más funcional de los genomas, así como identificar las redes de genes de enfermedades y los posibles objetivos farmacológicos.

Filtrado de contenido de alta en las enfermedades neurodegenerativas

Este video muestra el ensayo de migración de la neurosfera de células precursoras neurales, un ensayo in vitro para estudiar la respuesta migratoria de las células precursoras neurales de la neurosfera, a través de un análisis microscópico.

Ensayo de la neurosfera NPC: un ensayo in vitro para evaluar la respuesta migratoria de las células precursoras neurales de la neurosfera

Este video muestra un protocolo para aislar células de hipocampos de ratas, incluyendo neuronas, astrocitos y microglía.

Obtención de varias poblaciones de células neuronales a partir de un hipocampo de ratas

El modelado del desarrollo del cerebro humano se ha visto obstaculizado debido a la complejidad sin precedentes del tejido epitelial neural. Aquí, se describe un método para la generación robusta de organoides cerebrales para delinear eventos tempranos del desarrollo del cerebro humano y para modelar la microcefalia in vitro.

Generación de derivados de IPSC organoides cerebro humano para modelar los trastornos del neurodesarrollo temprano

Desarrollo neurológico procesos como proliferación, migración y consecuencia del neurite son a menudo perturbados en enfermedades neuropsiquiátricas. Así, presentamos protocolos evaluar rápida y reproducible estos procesos del neurodesarrollo en NPCs humanos derivado de iPSC. Estos protocolos permiten la evaluación de los efectos relevantes factores de crecimiento y terapias en desarrollo de NPC.

Rápida detección de los fenotipos del neurodesarrollo en las células precursoras neuronales humanos (PNJ)

Este estudio introduce y describe protocolos para derivar dos organoides neuronales humanos específicos como un modelo relevante y preciso para el estudio de 1) desarrollo de glioblastoma humano dentro de organoides neuronales humanos exclusivamente en humanos y 2) neurona dopaminérgica diferenciación que genera un organoide tridimensional.

Organoides neuronales humanos para el estudio del cáncer cerebral y las enfermedades neurodegenerativas

El protocolo presentado describe un método para un ensayo de crecimiento de neurito y la evaluación de la neurotoxicidad de compuestos de moléculas pequeñas.

Un ensayo de crecimiento de neurita y evaluación de neurotoxicidad con neuronas derivadas de células de progenitor neuronales humanos

Se describe un protocolo para reprogramar fibroblastos derivados de la piel humana en células progenitoras neuronales inducidas (iNPCs), y su posterior diferenciación en astrocitos inducidos (iAs). Este método conduce a la generación rápida y reproducible de iNPCs e iAs en grandes cantidades.

Modelado in vitro para enfermedades neurológicas utilizando la conversión directa de fibroblastos a células progenitoras neuronales y la diferenciación en astrocitos

Presentamos protocolos detallados para la generación y caracterización de modelos de desarrollo neocortical basados en células madre pluripotentes inducidas humanas (hIPSC) 2D y 3D, así como metodologías complementarias que permiten el análisis cualitativo y cuantitativo de la biogénesis y función del cilio primario (PC).

Modelos 2D y 3D basados en células madre pluripotentes inducidas por humanos para diseccionar la participación del cilio primario durante el desarrollo neocortical

Este protocolo demuestra cómo las simulaciones neuronales basadas en física pueden utilizarse para interpretar biomarcadores electrofisiológicos de neuroterapias y descubrir su efecto en los circuitos neuronales, proporcionando un enfoque mecanicamente fundamentado para el desarrollo neuroterapéutico.

Un protocolo para descubrir los mecanismos neuronales de los efectos neuroterapéuticos en la electroencefalografía utilizando el neurosolver neocortical humano

Aprende a generar células progenitoras neuronales (NPCs) a partir de hiPSCs para estudiar enfermedades neurológicas. Este protocolo utiliza inhibidores SMAD duales y transducción lentiviral para investigar mecanismos celulares y moleculares.

Una guía para la generación y uso de hiPSC NPCs derivados para el Estudio de las Enfermedades Neurológicas

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