8 de marzo de 2024
El protocolo describe una plataforma microfluídica avanzada para medir cuantitativamente la dinámica de secreción de citocinas de células mononucleares individuales de sangre periférica humana. La plataforma mide hasta tres citocinas en paralelo (IL-6, TNFα e IL-1β) para cada célula individual estimulada con lipopolisacárido como ejemplo.
En este proyecto, nos centramos en el desarrollo y aplicación de nuevas estrategias analíticas, que permiten el análisis directo, cuantitativo y profundo de las funcionalidades celulares a resolución de una sola célula. Por lo tanto, al ir más allá de la medición pura de un punto de datos, nuestro objetivo es comprender y explotar mejor esta multifuncionalidad, que proviene de respuestas complejas en el huésped y en el tejido. Obtener una comprensión integral de estas funcionalidades es complejo, difícil y requiere enfoques interdisciplinarios.
Por lo tanto, uno de los desafíos en este contexto es garantizar que el rango dinámico del desarrollo del ensayo sea el adecuado para capturar la cantidad y la dinámica de una proteína secretada, que puede variar mucho entre muestras, preparaciones y tejidos. La interrupción en la regulación de la respuesta inmunitaria puede inducir diversos trastornos, que conducen a una fiebre leve o a una complicación potencialmente mortal. Yendo más allá de las mediciones tradicionales de puntos finales, propusimos medir directamente la desregulación y la activación de las células inmunitarias de forma dinámica a nivel de una sola célula para obtener información adicional.
Por lo tanto, las citocinas generalmente se detectan en un punto de tiempo específico como una concentración en el sobrenadante o concentración de células activadas. Medición masiva directa para cuantificar la secreción de cada célula individual, enmascarando la heterogeneidad celular que, como medidas de punto final, no distingue entre secreción simultánea y secundaria. Pasando por alto el aspecto dinámico de la respuesta, la funcionalidad celular completa se refiere a la capacidad de una célula inmunitaria para secretar múltiples citocinas simultáneamente.
Esto les permite, por ejemplo, afinar su respuesta frente a las amenazas y medir esta polifuncionalidad de forma dinámica, lo que significa que con el tiempo pueden dar una visión más amplia de los diferentes matices de una respuesta inmunitaria.
Este estudio presenta una plataforma microfluídica avanzada diseñada para medir cuantitativamente la dinámica de secreción de citoquinas a nivel de célula individual. La plataforma permite la medición simultánea de tres citoquinas (IL-6, TNFα y IL-1β) a partir de células mononucleares individuales de sangre periférica humana estimuladas con lipopolisacárido.
Resolver la secreción simultánea y secuencial de citocinas a resolución de célula individual aborda un vacío crítico en la caracterización de la respuesta inmunitaria para el descubrimiento de fármacos. Esta plataforma de microfluidos por gotas permite un análisis cuantitativo y resuelto en el tiempo de células inmunitarias polifuncionales, lo que respalda una confianza predictiva en la validación de objetivos y la reducción de riesgos mecanicistas. Su modularidad y capacidad de multiplexación la posicionan como un recurso reutilizable para líneas de I+D centradas en inmunología.
Esta plataforma microfluídica integra desde el descubrimiento inicial hasta la investigación preclínica, conectando la validación de dianas inmunitarias basada en hipótesis con la identificación de biomarcadores traslacionales.