September 12th, 2025
Este estudio presenta un método de imagen en 3D que utiliza tejidos intestinales de montaje completo y microscopía multifotónica para cuantificar el moco secretado, lo que permite un análisis volumétrico preciso y la visualización de la dinámica del moco en respuesta a estímulos como el cloruro de carbamoilcolina.
Nuestra investigación se centra en los mecanismos de inyección microbiana con tejidos mucosos, subrayando el papel fundamental del moco en la modulación de estas interacciones. La cuantificación tradicional de moco 2D carece de detalles espaciales y volumétricos. Nuestro protocolo permite un análisis 3D preciso, revelando cambios estructurales y de distribución por intervenciones moleculares que se pasan por alto en los métodos existentes.
Este protocolo combina imágenes hormonales con cuantificación 3D, proporcionando mediciones robustas y reproducibles de la arquitectura del moco intestinal aplicables a diversas condiciones experimentales e intervenciones moleculares que superan la evaluación convencional en 2D. Para empezar, coloca un ratón anestesiado de seis a ocho semanas sobre una almohadilla térmica para mantener su temperatura corporal. Desinfecta la superficie de la piel del ratón con alcohol y haz una incisión en la parte inferior izquierda del abdomen para exponer el ceco mientras mantienes la anestesia.
Ahora, identifica el íleon o colon proximal. Coloca el anillo intestinal sobre una gasa estéril. Enjuaga con PBS estéril y asegura ambos extremos con pinzas arteriales para crear un lazo cerrado de tres centímetros de longitud.
Bajo anestesia, inyectar no más de 200 microlitros de PBS estéril o reactivo de cloruro de carbamoilcolina en el circuito intestinal ligado. Tras 30 minutos de tratamiento, extrae el anillo intestinal del animal sacrificado. Con pinzas, sujeta el ace intestinal y enjuágalo suavemente con PBS estéril.
Abre el anillo intestinal longitudinalmente, con una pequeña porción sin cortar, y vuelve a enjuagar el tejido en PBS estéril. Aplana el pañuelo en un recipiente de seis centímetros y corta la parte restante. Utiliza segmentos de alambre de cobre para anclarlo a la base de agarosa.
Ahora, añade 10 mililitros de solución de paraformaldehído al 4% al recipiente para fijar el tejido durante 12 a 24 horas. Tras la incubación, retira la solución de paraformaldehído y lava el tejido al menos tres veces con PBS para eliminar cualquier residuo de paraformaldehído. A continuación, sumergir el tejido en 10 mililitros de tampón bloqueante compuesto por PBS suplementado con 0,4% de Triton X-100 y 3% BSA, y almacenado a cuatro grados Celsius durante 12 a 24 horas.
Quita el buffer de bloqueo. Tingue el tejido con una solución de colorante que contiene aglutinina germinal de trigo y faloidina. En los tejidos del intestino delgado y el colon tratados con PBS, el moco positivo para WGA se localizó predominantemente en las células caliciformes en la superficie epitelial.
Tras el tratamiento con cloruro de carbamoilcolina, la cantidad de moco positivo para WGA en la luz intestinal aumentó notablemente tanto en el intestino delgado como en el colon, pero el moco se dispersó esporádicamente en lugar de formar una capa continua. El volumen de mucosidad WGA-positiva asociada a células caliciformes se redujo significativamente tras el tratamiento con cloruro de carbamoilcolina tanto en el intestino delgado como en el colon, lo que indica secreción activa. Todos los volúmenes de mucosidad de células caliciformes en los tejidos tratados con PBS estaban por debajo de 1.000 micrómetros cúbicos.
Los elementos positivos para WGA que superaban los 1.000 micrómetros cúbicos fueron clasificados como mucosidad secretada en la lúmen. El tratamiento con cloruro de carbamoilcolina aumentó el volumen total de moco secretado aproximadamente entre cinco y veinte veces tanto en el intestino delgado como en el colon.
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Este estudio presenta un protocolo novedoso para la imagen 3D del moco intestinal utilizando tejidos completos y microscopía multifotón. Permite un análisis volumétrico preciso y la visualización de la dinámica del moco en respuesta a varios estímulos.
Accurate three-dimensional quantification of intestinal mucus addresses a critical gap in discovery-stage gastrointestinal research by enabling absolute volumetric and spatial analysis of mucus secretion. This capability enhances predictive confidence in evaluating mucosal barrier function and the impact of molecular interventions, supporting risk-adjusted decisions in early target validation and mechanistic de-risking. The protocol's reproducibility and quantitative outputs position it as a foundational tool for pipeline advancement in mucosal biology and immunology portfolios.
This protocol integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis testing, quantitative readouts, and mechanistic de-risking in gastrointestinal research workflows.