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Article de méthode

Analyse quantitative du lipidome cellulaire de Saccharomyces Cerevisiae à l’aide de la chromatographie liquide couplée à la spectrométrie de masse tandem

7.3K vues

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DOI :

10.3791/60616

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8 mars 2020

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Dans cet article

Résumé

Nous présentons un protocole utilisant la chromatographie liquide couplée à la spectrométrie de masse tandem pour identifier et quantifier les lipides cellulaires principaux dans saccharomyces cerevisiae. La méthode décrite pour une évaluation quantitative des classes lipidiques majeures dans une cellule de levure est polyvalente, robuste et sensible.

Résumé

Les lipides sont des molécules amphipathiques structurellement diverses qui sont insolubles dans l’eau. Les lipides sont des facteurs essentiels à l’organisation et à la fonction des membranes biologiques, du stockage et de la production d’énergie, de la signalisation cellulaire, du transport vésiculaire des protéines, de la biogenèse d’organelle et de la mort cellulaire réglementée. Parce que la levure naissante Saccharomyces cerevisiae est un eucaryote unicellulaire favorable à des analyses moléculaires approfondies, son utilisation comme un organisme modèle a aidé à découvrir des mécanismes reliant le métabolisme des lipides et le transport intracellulaire à des processus biologiques complexes dans les cellules eucaryote. La disponibilité d’une méthode d’analyse polyvalente pour l’évaluation quantitative robuste, sensible et précise des grandes classes de lipides au sein d’une cellule de levure est cruciale pour obtenir des connaissances approfondies sur ces mécanismes. Ici, nous présentons un protocole pour utiliser la chromatographie liquide couplée à la spectrométrie de masse tandem (LC-MS/MS) pour l’analyse quantitative des lipides cellulaires principaux de S. cerevisiae. La méthode LC-MS/MS décrite est polyvalente et robuste. Il permet l’identification et la quantification de nombreuses espèces (y compris différentes formes isobariques ou isomériques) dans chacune des 10 classes de lipides. Cette méthode est sensible et permet l’identification et la quantitation de certaines espèces lipidiques à des concentrations aussi basses que 0,2 pmol/L. La méthode a été appliquée avec succès à l’évaluation des lipidomes des cellules entières de levure et de leurs organites purifiés. L’utilisation d’additifs alternatifs de phase mobile pour la spectrométrie de masse d’ionisation électrospray dans cette méthode peut augmenter l’efficacité de l’ionisation pour certaines espèces lipidiques et peut donc être utilisée pour améliorer leur identification et leur quantitation.

Introduction

Un ensemble de preuves indique que les lipides, l’une des principales classes de biomolécules, jouent un rôle essentiel dans de nombreux processus vitaux au sein d’une cellule eucaryote. Ces processus comprennent l’assemblage de bilayers lipidiques qui constituent la membrane plasmatique et les membranes entourant les organites cellulaires, le transport de petites molécules à travers les membranes cellulaires, la réponse aux changements de l’environnement extracellulaire et la transduction intracellulaire du signal, la production et le stockage de l’énergie, l’importation et l’exportation de protéines confinées à différents organites, le trafic vésicular des protéines....

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Protocole

1. Préparation de supports stériles pour la culture de la levure

  1. Préparer 90 ml d’un milieu VP complet qui contient 1% (w/v) extrait de levure et 2% (w/v) bactopeptone.
  2. Préparer 90 ml d’un milieu synthétique minimal de la BNNB contenant 0,67 % (w/v) base d’azote de levure sans acides aminés, 20 mg/L L-histidine, 30 mg/L L-leucine,30 mg/L L-lysine et 20 mg/L uracil.
  3. Répartir 90 ml du support total YP également en deux flacons Erlenmeyer de 250 ml (soit 45 ml chacun).
  4. Répartir 90 ml du milieu synthétique minimal YNB en deux flacons Erlenmeyer de 250 ml (soit 45 ml chacun).
  5. Autoclavez les flaco....

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Résultats

Notre méthode pour une évaluation quantitative des lipides cellulaires principaux dans une cellule de levure avec l’aide de LC-MS/MS était polyvalente et robuste. Il nous a permis d’identifier et de quantifier 10 différentes classes de lipides dans les cellules de la Cérévisiae de S. cultivées dans le milieu minimal synthétique de YNB contenant initialement 2% de glucose. Ces classes de lipides comprennent les acides gras gratuits (non stérilisés) (FFA), CL, phytoceramide (PHC), .......

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Discussion

Les précautions suivantes sont importantes pour la mise en œuvre réussie du protocole décrit ici :

1. Le chloroforme et le méthanol sont toxiques. Ils extraient efficacement diverses substances des surfaces, y compris la plasticware de laboratoire et votre peau. Par conséquent, manipuler ces solvants organiques avec prudence en évitant l’utilisation de plastiques dans les étapes qui impliquent le contact avec le chloroforme et / ou le méthanol, en utilisant des pipettes en verre borosilicate p.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Remerciements

Nous sommes reconnaissants aux membres actuels et anciens du laboratoire Titorenko pour les discussions. Nous remercions le Centre for Biological Applications of Mass Spectrometry et le Centre for Structural and Functional Genomics (tous deux de l’Université Concordia) pour leurs services exceptionnels. Cette étude a été appuyée par des subventions du Conseil de recherches en sciences naturelles et en génie (NSERC) du Canada (RGPIN 2014-04482) et du Fonds de la chaire de l’Université Concordia (CC0113). K.M. a reçu l’appui du Prix du mérite de l’Université Concordia.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
15 mL Tubes à centrifuger en verre haute vitesse avec bouchons doublés de téflonPYREX05-550
2 mL Flacons d’échantillons en verre avec bouchons doublés de téflonFisher Scientific60180A-SV9-1P
2-PropanolFisher ScientificA461-500
AcétonitrileFisher ScientificA9554
Agilent série 1100 Système LCAgilent TechnologiesG1312A
Agilent1100 Plaque de puitsAgilent TechnologiesG1367A
Acétate d’ammoniumFisher ScientificA11450
Bicarbonate d’ammoniumSigma9830
Formiate d’ammoniumFisher ScientificA11550
Hydroxyde d’ammoniumFisher ScientificA470-250
BactopeptoneFisher ScientificBP1420-2
CardiolipinAvanti Polar Lipids750332
Centra CL2 centrifugeuse cliniqueThermo Scientific004260F
CéramideAvanti Lipides polaires860517
ChloroformeFisher ScientificC297-4
CSH C18 VanGuardEaux186006944Système de pré-colonne
Acide gras libre (19:0)Matreya1028
Perles de verre (lavées à l’acide, 425-600 &mu ; M)Sigma-AldrichG8772
GlucoseFisher ScientificD16-10
HémacytomètreFisher Scientific267110
L-histidineSigmaH8125
Logiciel de recherche lipidique (V4.1)Fisher ScientificV4.1Logiciel d’analyse LC-MS/MS
L-leucineSigmaL8912
L-lysineSigmaL5501
MéthanolFisher ScientificA4564
PhosphatidylcholineAvanti Lipides polaires850340
PhosphatidyléthanolamineAvanti Lipides polaires850704
PhosphatidylglycérolAvanti Lipides polaires
PhosphatidylinositolAvanti Polar LipidsLM1502
PhosphatidylsérineAvanti Polar Lipids840028
Colonne en phase inverse CSH C18Waters186006102
SphingosineAvanti Polar Lipids860669
Thermo Orbitrap Velos MSFisher ScientificETD-10600
TricylglycérolLarodan, MalmöTAG Mixte FA
Sonicateur à ultrasonsFisher Scientific15337416
UracilSigmaU0750
VortexFisher Scientific2215365
Extrait de levureFisher ScientificBP1422-2
Base azotée de levure sans acides aminésFisher ScientificDF0919-15-3
Souche de levure BY4742DharmaconYSC1049
840446

Références

  1. Bou Khalil, M., et al. Lipidomics era: accomplishments and challenges. Mass Spectrometry Review. 29 (6), 877-929 (2010).
  2. Shevchenko, A., Simons, K. Lipidomics: coming to grips with lipid diversity. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 11 (8)....

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Réimpressions et autorisations

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