Name: Un procédé de précipitation modification pour isoler les exosomes urinaire (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-16T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 5 s
Description: Apprenez une technique de précipitation modifiée pour isoler les exosomes urinaires humains rapidement et efficacement. Cette méthode évite l'ultracentrifugation et permet des analyses moléculaires comme le Western blot et la qPCR.

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Nous sommes reconnaissants à la Fondation de la famille Roney pour le soutien de cette étude. Nous reconnaissons la contribution du Dr M. Lucrecia Alvarez à la planification et à l’exécution des expériences décrites dans ce travail.

REMARQUE:. Les étapes impliquées dans l&#39;isolement des exosomes urinaires en utilisant le procédé de précipitation modifiée sont illustrés dans la Figure 1 Les premières étapes impliquent l&#39;enlèvement de grandes cellules mortes et les débris cellulaires par centrifugation. Le culot final obtenu à partir du surnageant recueilli à partir de chaque étape subséquente correspond à la exosomes, qui est dissous dans une solution d&#39;isolation pour une extraction supplémentaire de la protéine, d&#39;ARN et de l&#39;ADN. 1. Collecte de l&#39;urine <ol><li> Avant la collecte de l&#39;urine, préparer inhibiteur de protéase cocktail selon les instructions du fabricant et ajouter 3,125 ml de ce cocktail à une prise vide et stérile. Le tube contenant le cocktail d&#39;inhibiteurs de protéase peut alors être distribué aux bénévoles pour la collecte d&#39;urine. REMARQUE: La raison de l&#39;ajout d&#39;un inhibiteur de protease est de réduire au minimum la dégradation des protéines dans l&#39;échantillon d&#39;urine. Bien que nous avons utilisé spécifiquement un cocktail d&#39;inhibiteurs de protéase duSigma, d&#39;autres inhibiteurs de protease disponibles dans le commerce peuvent être substitués. </li><li> Prélever environ 10 ml d&#39;urine de la première miction. Traiter l&#39;urine immédiatement après la collecte sans stockage ou de réfrigération. Isoler les exosomes urinaires en double en utilisant le procédé de précipitation modifié; un des exemplaires est pour l&#39;ADN, l&#39;ARN total et l&#39;extraction des protéines, tandis que l&#39;autre est pour la quantification des particules d&#39;exosomes urinaires. REMARQUE: Un échantillon d&#39;urine de 24 heures peut être recueilli pour l&#39;isolement de exosomes en stockant à 4 ° C. </li></ol> 2. Elimination des débris cellulaires et Tamm-Horsfall Protein (THP) <ol><li> Transfert des échantillons d&#39;urine tubes de 15 ml de centrifugeuses. Centrifugeuse de 10 ml d&#39;urine à 17 000 xg pendant 10 min à 37 ° C pour éliminer les cellules et les débris cellulaires (figure 1). </li><li> Aide d&#39;une pipette, transférer le surnageant dans un nouveau tube pour un traitement ultérieur. Remettre en suspension le culot dans 500 pl de solution d&#39;isolation (250 mM de saccharose, 10 mM qui éprouveanolamine, pH 7,6), suivi par 10 minutes d&#39;incubation avec DL-dithiothréitol (DTT: concentration finale de 200 mg / ml) à 37 ° C. REMARQUE: la TNT est ajouté à dégrader THP, qui emprisonne exosomes, conduisant à une diminution des rendements. Prenez soin de laisser le culot sans être dérangés pendant le transfert du surnageant, et vérifiez que le surnageant est clair de granulés de bois. </li><li> Des échantillons de granulés Vortex toutes les 2 min jusqu&#39;à ce que le culot soit complètement dissous. Ensuite, ajouter 500 ul de solution d&#39;isolation pour le culot dissous. </li><li> Immédiatement après l&#39;addition de solution d&#39;isolation de la pastille, centrifuger à 17 000 xg pendant 10 min à 37 ° C. Déposer le surnageant et de combiner avec le surnageant recueilli plus tôt. </li><li> Reprendre le culot dans 50 ul de solution d&#39;isolation pour l&#39;analyse SDS-PAGE. REMARQUE: PBS TBS ou peuvent être utilisés à la place de la solution d&#39;isolation pour remettre en suspension le culot. </li></ol> 3. Isolement de Exosome Pellet <ol><li> Pour 11 ml de la Supern recueilliesatant, ajouter 3,3 ml de réactif ExoQuick-TC et incuber à 4 ° C pendant au moins 12 h. REMARQUE: le rapport du volume de surnageant de réactif ExoQuick-TC peut être réglée pour augmenter ou diminuer le rendement de exosomal. Nous avons observé que les volumes moindres de réactif ajouté produisent des rendements inférieurs de exosomes. </li><li> Après incubation, centrifuger le mélange échantillon / ExoQuick-TC à 10 000 g pendant 30 min à 25 ° C. </li><li> Transférer le surnageant dans un nouveau tube pour analyse par SDS-PAGE. </li><li> Le culot d&#39;exosomes peut être conservé à -80 ° C pour l&#39;ADN, l&#39;ARN et l&#39;extraction des protéines et la quantification des particules d&#39;exosomes en utilisant ELISA 11 CD9. NOTE: Le culot d&#39;exosomes peut être conservé à -80 ° C pendant 1 an avec congélation et de décongélation limitée. </li></ol> 4. biomarqueurs de détection et analyse des Exosome Pellet <ol><li> Pour les analyses en aval, extraire l&#39;ADN, de l&#39;ARN et de protéines à partir de la pastille de exosomes en utilisant le / ARN / kit d&#39;isolement de protéines de l&#39;ADN et un Ki d&#39;isolement d&#39;ARNt selon les instructions du fabricant. Déterminer les concentrations en utilisant un spectrophotomètre à Nanodrop en mesurant l&#39;absorbance à 260 et 280 nm avec 2 pi d&#39;échantillon. </li><li> Effectuer quantitative en temps réel RT-PCR (qPCR) en utilisant des tests de microARN TaqMan (dans notre cas, nous avons utilisé les droits de miR-192- et miR-spécifiques 1207-5p-tests) ou des amorces spécifiques miARN. </li><li> Pour l&#39;analyse SDS-PAGE, en utilisant 4-12% Bis-Tris gel et les échantillons de protéines séparées par électrophorèse unidimensionnelle. Visualiser gels en utilisant le kit de coloration à l&#39;argent conformément aux instructions du fabricant. </li><li> Effectuer une analyse de buvardage de Western en utilisant des membranes de PVDF selon les instructions fournies par le fabricant. Utilisation anticorps polyclonal de lapin lié à l&#39;apoptose gène-interacting protein 2 ou X Alix et un anticorps monoclonal de souris à gène de susceptibilité à la tumeur 101 protéine TSG101 ou à la détection par transfert de Western. Quantifier la densité des bandes par accès ouvert logiciel NIH ImageJ (http://rsbweb.nih.gov/ij/) ouun programme similaire. </li><li> Quantifier le nombre de particules d&#39;exosomes urinaires obtenus en utilisant un kit ELISA CD9 selon les instructions du fabricant. </li></ol>

<ol><li>Miranda, K. C., Bond, D. T., McKee, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nucleic+acids+within+urinary+exosomes%2Fmicrovesicles+are+potential+biomarkers+for+renal+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+Int%22%5BJournal%5D)">Nucleic acids within urinary exosomes/microvesicles are potential biomarkers for renal disease.</a> Kidney Int. 78, 191-199 (2010).</li>
<li>Pisitkun, T., Shen, R. F., Knepper, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+proteomic+profiling+of+exosomes+in+human+urine%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Identification and proteomic profiling of exosomes in human urine.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 101, 13368-13373 (2004).</li>
<li>Raj, D. A., Fiume, I., Capasso, G., Pocsfalvi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+multiplex+quantitative+proteomics+strategy+for+protein+biomarker+studies+in+urinary+exosomes%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+Int%22%5BJournal%5D)">A multiplex quantitative proteomics strategy for protein biomarker studies in urinary exosomes.</a> Kidney Int. 81 (12), 1263-1273 (2012).</li>
<li>Pisitkun, T., Gandolfo, M. T., Das, S., Knepper, M. A., Bagnasco, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+systems+biology+principles+to+protein+biomarker+discovery%3A+urinary+exosomal+proteome+in+renal+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Proteomics+Clin+Appl%22%5BJournal%5D)">Application of systems biology principles to protein biomarker discovery: urinary exosomal proteome in renal transplantation.</a> Proteomics Clin Appl. 6 (5-6), 268-278 (2012).</li>
<li>Gonzales, P. A., Zhou, H., Pisitkun, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+purification+of+exosomes+in+urine%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation and purification of exosomes in urine.</a> Methods Mol Biol. 641, 89-99 (2010).</li>
<li>Zhou, H., Yuen, P. S., Pisitkun, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collection%2C+storage%2C+preservation%2C+and+normalization+of+human+urinary+exosomes+for+biomarker+discovery%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+Int%22%5BJournal%5D)">Collection, storage, preservation, and normalization of human urinary exosomes for biomarker discovery.</a> Kidney Int. 69, 1471-1476 (2006).</li>
<li>Thery, C., Amigorena, S., Clayton, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+characterization+of+exosomes+from+cell+culture+supernatants+and+biological+fluids%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Prot+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation and characterization of exosomes from cell culture supernatants and biological fluids.</a> Curr Prot Cell Biol. 43, 3.22.1-3.22.29 (2006).</li>
<li>Cheruvanky, A., Zhou, H., Pisitkun, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+isolation+of+urinary+exosomal+biomarkers+using+a+nanomembrane+ultrafiltration+concentrator%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Renal+Physiol%22%5BJournal%5D)">Rapid isolation of urinary exosomal biomarkers using a nanomembrane ultrafiltration concentrator.</a> Am J Physiol Renal Physiol. 292, 1657-1661 (2007).</li>
<li>Gonzales, P. A., Pisitkun, T., Hoffert, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-scale+proteomics+and+phosphoproteomics+of+urinary+exosomes%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Soc+Nephrol%22%5BJournal%5D)">Large-scale proteomics and phosphoproteomics of urinary exosomes.</a> J Am Soc Nephrol. 20, 363-379 (2009).</li>
<li>Rood, I. M., Deegens, J. K., Merchant, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+three+methods+for+isolation+of+urinary+microvesicles+to+identify+biomarkers+of+nephrotic+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+Int%22%5BJournal%5D)">Comparison of three methods for isolation of urinary microvesicles to identify biomarkers of nephrotic syndrome.</a> Kidney Int. 78, 810-816 (2010).</li>
<li>Alvarez, M. L., Khosroheidari, M., Kanchi Ravi, R., DiStefano, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+protein%2C+microRNA%2C+and+mRNA+yields+using+different+methods+of+urinary+exosome+isolation+for+the+discovery+of+kidney+disease+biomarkers%5BTitle%5D)+AND+%22Kidney+Int.+Nov%22%5BJournal%5D)">Comparison of protein, microRNA, and mRNA yields using different methods of urinary exosome isolation for the discovery of kidney disease biomarkers.</a> Kidney Int. Nov. 82 (9), 1024-1032 (2012).</li>
<li>Kang, S. W., Kim, Y. W., Kim, Y. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Study+of+the+association+of+-667+aquaporin-2+%28AQP-2%29+A%2FG+promoter+polymorphism+with+the+incidence+and+clinical+course+of+chronic+kidney+disease+in+Korea%5BTitle%5D)+AND+%22Renal+Fail%22%5BJournal%5D)">Study of the association of -667 aquaporin-2 (AQP-2) A/G promoter polymorphism with the incidence and clinical course of chronic kidney disease in Korea.</a> Renal Fail. 29, 693-698 (2007).</li>
</ol>

Frais de publication de cet article ont été payés par SBI Biosciences.

La plupart des procédés impliquant la précipitation des exosomes à partir d&#39;urine ne abordent pas le retrait du réseau polymère formé par la protéine de Tamm-Horsfall (THP). Cette protéine est présente en grandes quantités dans l&#39;urine, où il pièges putativement exosomes pendant la centrifugation à basse vitesse initiale. Dans notre méthode modifiée, nous avons réduit THP utilisant la TNT avant la précipitation exosomes. Comme le montre la Figure 2, une plus grande quantité de THP a été observée...

Exosomes urinaires sont de petites vésicules internes de 100 nm de corps multivésiculaires (MVB) provenant de tous les types de cellules dans des conditions normales et pathologiques dans l&#39;espace urinaire y compris podocytes glomérulaires, les cellules des tubules rénaux et les cellules qui tapissent les systèmes de drainage urinaire qui semblent être enrichi pour miARN 1 -2. De nombreux chercheurs ont détecté des protéines distinctes dans exosomes isolés à partir de l&#39;urine d&#39;individus sains ainsi que ceux atteints d&#39;insuffisance rénale et / ou de maladies systématiques 3-5. Les exosomes peuvent être isolés en utilisant différentes méthodes telles que deux étapes ultracentrifugation différentielle avec ou sans saccharose 6-7, combinant filtre nanomembrane avec ultracentrifugation 8-9, 10-11 ou précipitation. Nous avons récemment développé une méthode simple, rapide, évolutive et efficace pour isoler les exosomes urinaires et de détecter les miARN et des biomarqueurs protéiques 11. Bien que les biomarqueurs peuvent être détectés dans une variété de différents fluides biologiques, urine est le choix le plus pratique pour les patients atteints de maladies du rein et des voies urinaires, car il peut être obtenu en grandes quantités d&#39;une manière relativement non invasive. Bien qu&#39;il existe plusieurs méthodes pour isoler les exosomes urinaires 6-11, le procédé le plus couramment utilisé dépend ultracentrifugation différentielle avec un coussin de saccharose à 30%. Bien que cette méthode soit efficace et la qualité des exosomes isolés résultant de cette procédure est élevée, la technique elle-même requiert un personnel qualifié et prend beaucoup de temps, ce qui nécessite plusieurs étapes d&#39;ultracentrifugation. D&#39;autres méthodes, telles que la filtration et la précipitation, ont été développés pour l&#39;isolement d&#39;exosomes, y compris une qui utilise un réactif de précipitation propriétaire (ce est à dire, ExoQuick-TC: Biosciences système; Mountain View, CA). Bien que les précipitations en utilisant ce réactif est rapide et relativement facile, la pureté des exosomes isolés est faible par rapport à la meth ultracentrifugationod. Récemment, nous avons comparé les six procédés pour l&#39;isolement d&#39;exosomes urinaires, y compris une modification de la méthode de précipitation au moyen ExoQuick-TC que nous avons développé dans notre laboratoire 11. Nous avons constaté que cette méthode de précipitation modifiée a donné de plus grandes quantités de protéines, de miARN et ARNm et la procédure elle-même était plus rapide et plus facile à mettre en œuvre que ultracentrifugation. Ici, nous décrivons le protocole expérimental de notre méthode de précipitation modifiée de manière progressive, et inclure une discussion sur les avantages et les inconvénients de cette technique par rapport à d&#39;autres méthodes d&#39;isolement de exosomes. Le procédé de précipitation modifié implique une précipitation initiale de particules d&#39;exosomes, suivie de l&#39;élimination de la protéine de Tamm-Horsfall, qui est corrélée avec des protéines exosomales, et connu pour réduire le rendement des exosomes à partir d&#39;urine. Nous avons constaté que ces modifications ont augmenté le rendement et la pureté de la préparation de exosomal de l&#39;urine.

<table><tbody><tr><td>Corning 15 ml Tube à centrifuger</td><td>Corning (Sigma Aldrich)</td><td>CLS430791</td><td></td></tr><tr><td>Cocktail inhibiteur de protéase</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P8340</td><td></td></tr><tr><td>Centrifugeuse</td><td>Sorvall</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DL-dithiothreitol</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D9779</td><td>utilisé à la concentration finale de 200 mg/ml</td></tr><tr><td>Novex NuPAGE SYSTÈME SDS-PAGE (4-12 % Bis-Tris Gel 1,0 mm, 10 puits</td><td>Invitrogen</td><td>NP0321BOX</td><td>Pour l’analyse SDS-PAGE</td></tr><tr><td>ECL Advance Western blot detection</td> kit <td>GE Healthcare Life Sciences</td><td>RPN2135</td><td>Pour la détection par western blot de biomarqueurs</td></tr><tr><td>Exoquick-TC Reagent</td><td>System Biosciences (SBI)</td><td>EXOTC50A-1</td><td>Pour l’isolement des exosomes</td></tr><tr><td>Exosome CD9 ELISA Complete</td><td>Kit System Biosciences (SBI)</td><td>EXOEL-CD9-A-1</td><td>Pour la quantification des exosomes</td></tr><tr><td>AllPrep DNA/ARN/Protéines mini kit</td><td>Qiagen</td><td>80004</td><td>Pour l’isolement de l’ADN, de l’ARN et des protéines</td></tr><tr><td>Rneasy MinElute Kit de nettoyage</td><td>Qiagen</td><td>74204</td><td></td></tr><tr><td>NanoDrop 2000 Spectrophotomètre UV-Vis</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td>Pour la quantification des protéines</td></tr><tr><td>ProteoSilver Sliver Stain Kit</td><td>Sigma Aldrich</td><td>PROTSIL1-1KT</td><td>Pour la coloration des gels</td></tr> <tr><td>SDS-PAGESystème d’électrophorèse mini-cellulaire Xcell SureLock</td><td>Life Technologies</td><td></td><td>Pour l’exécution des gels SDS-PAGE Dosages</td></tr> de <tr><td>microARN TaqMan</td> Life <td>Technologies</td><td></td><td>Pour les tests RT-PCR</td></tr><tr><td>Logiciel qBasePlus v1.5</td><td>Biogazelle NV</td><td></td><td>Pour l’analyse des données de test RT-PCR</td></tr><tr><td>Anticorps polyclonal de lapin contre ALIX</td><td>Millipore</td><td></td><td>Pour la détection de biomarqueurs</td></tr> <tr><td>par transfert westernAnticorps monoclonal de souris contre TSG101</td><td>Abcam</td><td></td><td>Pour la détection de biomarqueurs par transfert Western</td></tr></tbody></table>

un procédé de précipitation modification pour isoler les exosomes urinaire

A Modified Precipitation Method to Isolate Urinary Exosomes

L’identification de biomarqueurs permettant la détection précoce des maladies rénales dans l’urine et le plasma est un domaine d’intérêt actif depuis plusieurs années. Les vésicules d’exosomes urinaires, d’une taille de 40 à 100 nm, sont libérées dans l’urine dans des conditions normales par les cellules de tous les segments de néphron et peuvent contenir des protéines, des ARNm et des microARN représentatifs de leur type d’origine cellulaire. Dans des conditions de dysfonctionnement ou de lésion rénale, les exosomes peuvent contenir des proportions modifiées de ces composants, qui peuvent servir de biomarqueurs de la maladie. Il existe actuellement plusieurs méthodes disponibles pour l’isolement des exosomes urinaires, et nous avons déjà effectué une comparaison expérimentale de chacune de ces approches, dont trois basées sur l’ultracentrifugation, l’une utilisant un concentrateur d’ultrafiltration à nanomembrane, l’autre utilisant un réactif de précipitation commercial et la dernière utilisant une modification de la technique de précipitation à l’aide du réactif ExoQuick que nous avons développé dans notre laboratoire. Nous avons constaté que la méthode de précipitation modifiée produisait le rendement le plus élevé de particules d’exosomes, de miARN et d’ARNm, ce qui rend cette approche adaptée à l’isolement des exosomes pour le profilage ultérieur de l’ARN. Nous concluons que la méthode de précipitation des exosomes modifiés offre une alternative rapide, évolutive et efficace pour l’isolement des exosomes de l’urine. Dans ce rapport, nous décrivons notre technique de précipitation modifiée à l’aide du réactif ExoQuick pour isoler les exosomes de l’urine humaine.

Exosomes urinaires portent protéines, miARN et ARNm biomarqueurs sécrétées par les cellules épithéliales rénales. L&#39;isolement et la détection de ces exosomes peuvent fournir un outil diagnostique utile pour la détection précoce des maladies rénales telles que la néphropathie diabétique. Il existe plusieurs méthodes pour l&#39;isolement d&#39;exosomes à partir d&#39;échantillons d&#39;urine prélevés chez des sujets humains. Nous avons déjà comparé six méthodes d&#39;isolement de l&#39;urine exosomes et étudié les pro...

Ce manuscrit décrit un protocole permettant d’isoler les exosomes de l’urine humaine à l’aide d’une technique de précipitation modifiée.

Un procédé de précipitation modification pour isoler les exosomes urinaire

Identification of biomarkers that allow early detection of kidney diseases in urine and plasma has been an area of active interest for several years. ...

L'objectif général de cette procédure est de concevoir une méthode modifiée de précipitation des exosomes offrant une alternative rapide, évolutive et efficace pour l'isolement des exosomes à partir d'urine. Cela est réalisé en éliminant d'abord les grandes cellules mortes et les débris cellulaires de l'échantillon d'urine par centrifugation, puis en transférant le surnageant contenant les exosomes urinaires dans un tube neuf. Dans une deuxième étape, le culot est dissous dans une solution d'isolement contenant du DTT afin d'éliminer la protéine TAM horse fall.Ensuite, après une nouvelle centrifugation, le surnageant exempt de TP est incubé toute la nuit avec le réactif Exo-Quick TC afin de précipiter les exosomes le jour suivant. Les échantillons traités au réactif Exo-Quick TC sont centrifugés une dernière fois pour obtenir le culot d'exosomes. Enfin, des procédés en aval tels que le Western blot et la RT-qPCR peuvent être réalisés sur les exosomes afin d'identifier les biomarqueurs d'intérêt.Le principal avantage de cette technique par rapport aux méthodes existantes telles que la filtration par ultracentrifugation et la précipitation est que la méthode arm ne nécessite aucune étape d'ultracentrifugation, est facile à réaliser et relativement rapide, tout en fournissant un rendement élevé d'exosomes relativement pur pour des analyses moléculaires ultérieures. Avant la collecte d'urine, ajoutez 3,125 millilitres de cocktail d'inhibiteurs de protéases fraîchement préparé dans un récipient stérile vide, puis recueillez environ 10 millilitres d'urine du premier jet dans ce récipient. Transférez l'échantillon dans des tubes coniques de 15 millilitres.Veuillez noter qu'un échantillon d'urine de 24 heures collecté peut également être utilisé pour l'isolement d'exosomes en le conservant à quatre degrés Celsius. Faire centrifuger les tubes pendant 10 minutes à 17 000 ×g et à 37 degrés Celsius afin d'éliminer ou de séparer les débris cellulaires des exosomes urinaires. Ensuite, en prenant soin de ne pas perturber le culot, transférer le surnageant dans un tube propre et resuspendre le culot dans 500 microlitres de solution d'isolement.Incuber le culot avec du DTT à une concentration finale de 200 milligrammes par millilitre à 37 degrés Celsius pendant 10 minutes. Vortexer l'échantillon toutes les deux minutes. Ensuite, lorsque le culot est complètement dissous, ajouter 500 microlitres de solution d'isolement à l'échantillon et centrifuger immédiatement la suspension obtenue.Rassembler le surnageant avec le surnageant précédemment collecté et resuspendre le nouveau culot dans 50 microlitres de solution d'isolement. Pour l'analyse par électrophorèse SDS-PAGE afin d'isoler les exosomes, incuber d'abord 11 millilitres du surnageant combiné avec 3,3 millilitres de réactif ExoQuick TC à quatre degrés Celsius pendant au moins 12 heures. Après l'incubation, centrifuger l'échantillon, puis transférer le surnageant dans un tube neuf pour l'analyse par SDS-PAGE ; le culot contenant les exosomes urinaires est utilisé pour extraire l'ADN, l'ARN ou les protéines, ou est conservé à moins 80 degrés Celsius.Utilisez un spectrophotomètre NanoDrop pour déterminer les concentrations d'ADN et d'ARN de chaque extraction en mesurant l'absorbance à 260 et 280 nanomètres avec deux microlitres d'échantillon ici. Une reproduction modifiée d'une analyse SDS-PAGE et de la détection de biomarqueurs par analyse sanguine western est présentée dans les pistes avec de l'urine non traitée et les premières bandes protéiques du culot urinaire correspondant à 90 à 100 kilodaltons ont été observées, indiquant respectivement la présence et l'élimination de la protéine TAM horse fall dans le surnageant final et les pistes de culot d'exosomes. La bande protéique TAM horse fall n'a pas été observée, indiquant une élimination de la protéine TAM horse fall lors des étapes précédentes et entraînant une augmentation du rendement du culot d'exosomes.Dans cette expérience, les biomarqueurs Alex et TSG 1 0 1 ont été détectés même lorsque de faibles quantités d'échantillon ont été utilisées, indiquant un culot d'exosomes très pur pour l'analyse des biomarqueurs et l'absence de protéines solubles abondantes, y compris la protéine TAM horse fall. Après son développement, cette technique a ouvert la voie aux chercheurs dans le domaine de la maladie rénale chronique pour utiliser les exosomes isolés de l'urine afin de détecter précocement et de diagnostiquer la néphropathie diabétique.

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Nous décrivons ici les deux protocoles d’isolement vésicule extracellulaire, centrifugation d’ultrafiltration et ultracentrifugation avec centrifugation en gradient de densité, d’isoler des vésicules extracellulaires des échantillons de liquide de lavage broncho-alvéolaire murine. Les vésicules extracellulaires dérivés du murin de lavage bronchoalvéolaire par ces deux méthodes sont quantifiés et caractérisés.

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Nous présentons ici un protocole pour améliorer transitoirement la fonction cardiaque chez les souris de dystrophie musculaire de Duchenne en transplantant des exosomes dérivée de cellules progénitrices myogéniques normal.

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Ce protocole illustre 1) l’isolement et la culture de fibroblastes primaires à partir du muscle gastrocnémien de souris adulte ainsi que 2) la purification et la caractérisation des exosomes à l’aide d’une méthode d’ultracentrifugation différentielle combinée à des gradients de densité de saccharose suivis d’analyses par western blot.

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Le présent protocole fournit des descriptions détaillées pour l’isolement efficace des vésicules extracellulaires urinaires à l’aide de billes magnétiques fonctionnalisées. De plus, il englobe des analyses ultérieures, y compris le western blot, la protéomique et la phosphoprotéomique.

Isolement par affinité chimique de vésicules extracellulaires à partir de biofluides pour l’analyse protéomique et phosphoprotéomique

Les vésicules extracellulaires sont extrêmement prometteuses pour les applications biomédicales, mais les méthodes d’isolement actuelles prennent du temps et ne sont pas pratiques pour une utilisation clinique. Dans cette étude, nous présentons un dispositif microfluidique qui permet d’isoler directement des vésicules extracellulaires à partir de grands volumes de biofluides de manière continue avec un minimum d’étapes.

Isolement en une seule étape de vésicules extracellulaires à partir d’échantillons de grand volume avec un dispositif microfluidique A4F bifurqué

Apprenez une technique de précipitation modifiée pour isoler les exosomes urinaires humains rapidement et efficacement. Cette méthode évite l'ultracentrifugation et permet des analyses moléculaires comme le Western blot et la qPCR.

Un procédé de précipitation modification pour isoler les exosomes urinaire

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