-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

FR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

French

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Préparation et observation d'échantillons biologiques épais par tomographie électronique à tr...
Préparation et observation d'échantillons biologiques épais par tomographie électronique à tr...
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Preparation and Observation of Thick Biological Samples by Scanning Transmission Electron Tomography

Préparation et observation d'échantillons biologiques épais par tomographie électronique à transmission à balayage

Full Text
9,830 Views
08:04 min
March 12, 2017

DOI: 10.3791/55215-v

Sylvain Trépout1, Philippe Bastin2, Sergio Marco1

1Institut Curie, INSERM U1196,Campus Universitaire d'Orsay, 2Institut Pasteur, Trypanosome Cell Biology Unit, Department of Parasites & Insect Vectors,INSERM U1201

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Ce rapport décrit un protocole de préparation d’échantillons et des conditions d’imagerie spécifiques pour effectuer la tomographie électronique à transmission à balayage d’échantillons biologiques épais.

L’objectif global de cette procédure est d’obtenir une reconstruction tridimensionnelle avec récupération de la profondeur de champ d’un échantillon biologique épais à l’aide de la tomographie électronique à transmission à balayage à faisceau convergent. Cette méthode peut répondre à des questions clés dans le domaine de la biologie structurale sur la tomographie électronique d’échantillons biologiques épais. Le principal avantage de cette technique est que les images peuvent être acquises en mode bit convergent et que le traitement des données peut être effectué sur la plupart des logiciels dédiés à la tomographie.

Pour commencer à préparer l’échantillon de culture cellulaire, centrifugez l’échantillon à 5000 x g pendant cinq minutes. Utilisez ces paramètres de centrifugation tout au long de la préparation de l’échantillon. Jetez le surnageant et remettez les cellules en suspension dans un millilitre de PBS enrichi de 4 % de paraformaldéhyde et de 2 % de glutéraldéhyde.

Incuber la suspension pendant 30 minutes à température ambiante. Centrifugez le mélange, jetez le surnageant et lavez la pastille trois fois avec des portions d’un millilitre de PBS. En utilisant les mêmes conditions d’incubation et la même procédure de lavage, incubez la pastille dans un millilitre de PBS, enrichi de 1 % de tétroxyde d’osmium, et dans un millilitre de PBS enrichi de 2 % d’acétate d’uranyle.

Ensuite, refroidissez l’échantillon à quatre degrés Celsius. Déshydrater la pastille par incubations successives dans des solutions d’éthanol de plus en plus concentrées. Maintien de la température de l’échantillon de quatre degrés Celsius tout au long de l’incubation, de la centrifugation et du lavage.

Remettez en suspension la pastille déshydratée dans un millilitre d’éthanol pur et incubez toute la nuit à 4 degrés Celsius. Ensuite, laissez l’échantillon se réchauffer à température ambiante et centrifugez-le. Incuber la pastille dans des solutions de résine époxy de plus en plus concentrées à température ambiante.

Après le lavage final, remettez la pastille en suspension dans un millilitre de résine époxy pure et incubez toute la nuit à température ambiante. Centrifugez l’échantillon et retirez le surnageant, puis remettez la pastille en suspension dans 200 microlitres de résine époxy et de durcisseur. Transférez la suspension dans la capsule.

Incuber la capsule de plastique à 60 degrés Celsius pendant 48 heures pour polymériser la résine. Retirez la capsule de l’incubateur et vérifiez la polymérisation de la résine. Ajoutez une couche de résine époxy et de durcisseur sur l’échantillon incorporé et incubez à nouveau la capsule dans les mêmes conditions.

Montez l’échantillon nausé dans la résine à l’envers dans un porte-échantillon. Fixez solidement l’échantillon sur le bloc de coupe d’un ultramicrotome. Coupez la capsule en plastique de l’échantillon dans la résine.

Façonnez la résine exposée en une pyramide. Transférez ensuite la capsule et le porte-échantillon dans le bras mobile de l’ultramicrotome. Installez un couteau de coupe et, guidé par un microscope, affinez la forme de la pyramide.

Remplacez le couteau de parage par un couteau d’histologie. Au microscope, ajustez l’angle d’inclinaison de la capsule de manière à ce que la pyramide soit perpendiculaire au bord du couteau. Réglez la vitesse de coupe et coupez l’échantillon.

Après avoir sectionné l’échantillon, transférez la section choisie sur une grille en cuivre traité sur du papier filtre. Laissez sécher l’échantillon, puis chargez-le dans le microscope électronique. Pour concevoir la série d’inclinaison focale traversante, calculez d’abord la profondeur de champ du faisceau d’électrons et l’épaisseur apparente maximale de l’échantillon.

Sur la base de ces valeurs, sélectionnez un intervalle de mise au point et déterminez le nombre d’étapes focales nécessaires pour imager l’ensemble de l’échantillon à l’épaisseur apparente maximale. Ensuite, à faible grossissement, localisez la région d’intérêt dans l’échantillon. Ajustez la hauteur eucentrique de sorte que la valeur d’intérêt ne semble pas bouger lorsque l’échantillon est tourné.

Vérifiez que le retour sur investissement reste visible sur toute la plage d’inclinaison. Remplissez les paramètres de la série d’inclinaison focale pour la collecte automatique d’images et acquérez les images. Importez la série d’images dans un programme de traitement d’images et alignez les images collectées au même angle d’inclinaison dans une hiérarchie pyramidale.

Trouvez l’alignement à chaque angle d’inclinaison en empilant les images alignées. Parcourez la pile pour vous assurer que seule la zone sélectionnée se déplace d’une image à l’autre et réalignez les images si nécessaire. Une fois l’alignement vérifié dans l’ensemble de l’échantillon, fusionnez les informations de mise au point aux paramètres élevés pour obtenir la série avec une seule image par angle d’inclinaison.

Effectuez l’alignement de la série d’inclinaison en fonction des minima locaux ou des repères. Effectuez une reconstruction 3D et inspectez l’image résultante. Si la reconstruction apparaît floue ou déformée, réalignez la série d’images d’origine.

Un échantillon de T. brucei a été imagé et analysé à l’aide de cette méthode. À un angle d’inclinaison de zéro degré, plusieurs détails de la poche flagellaire sont visibles.

À l’angle d’inclinaison plus élevé de 70 degrés, seule une partie de chaque image collectée dans la série focale traversante est nette. Cette position change tout au long de la série. En fusionnant les sections de mise au point, une seule image avec une zone de mise au point plus grande est produite.

Cet effet est encore plus prononcé lorsque les zones à haute fréquence de la série d’inclinaison focale traversante sont mises en évidence. Les informations à haute fréquence couvrent la majeure partie de l’image combinée, ce qui indique que la série d’inclinaison focale traversante a été bien traitée. Une fois maîtrisée, la partie traitement d’image peut être réalisée en trois à quatre heures environ, selon les paramètres d’alignement et de reconstruction choisis.

Lors de cette procédure, il est important de se rappeler que la qualité de la reconstruction finale dépend grandement de la qualité des tests d’alignement précédents. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon d’effectuer la collecte et le traitement d’image d’une série d’inclinaison focale.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Biologie cellulaire numéro 121 la tomographie électronique la microscopie électronique à balayage par transmission échantillon biologique épais Trypanosoma brucei La profondeur de champ par-focal tilt-series

Related Videos

Utilisation Tomoauto: Un protocole pour la tomographie à haut débit automatisé cryo-électronique

11:33

Utilisation Tomoauto: Un protocole pour la tomographie à haut débit automatisé cryo-électronique

Related Videos

11.4K Views

Une méthode pour obtenir des coupes sériées ultraminces de micro-organismes en microscopie électronique à Transmission

09:46

Une méthode pour obtenir des coupes sériées ultraminces de micro-organismes en microscopie électronique à Transmission

Related Videos

15.1K Views

Préparation de l’échantillon miniaturisé pour la microscopie électronique à Transmission

09:04

Préparation de l’échantillon miniaturisé pour la microscopie électronique à Transmission

Related Videos

20.6K Views

Traitement de l'embryon, de la coquille d'œuf et de la culture fongique pour la microscopie électronique à balayage

09:15

Traitement de l'embryon, de la coquille d'œuf et de la culture fongique pour la microscopie électronique à balayage

Related Videos

9.9K Views

Flux de travail de tomographie en réseau pour l’acquisition ciblée d’informations de volume à l’aide de la microscopie électronique à balayage

09:47

Flux de travail de tomographie en réseau pour l’acquisition ciblée d’informations de volume à l’aide de la microscopie électronique à balayage

Related Videos

5.3K Views

Préparation de lamelles à partir d’échantillons biologiques vitreux à l’aide d’un microscope électronique à balayage à double faisceau pour la cryotomographie électronique

07:00

Préparation de lamelles à partir d’échantillons biologiques vitreux à l’aide d’un microscope électronique à balayage à double faisceau pour la cryotomographie électronique

Related Videos

4K Views

Stratégies d’optimisation de l’acquisition de données de tomographie électronique cryogénique

08:16

Stratégies d’optimisation de l’acquisition de données de tomographie électronique cryogénique

Related Videos

4.9K Views

Cryotomographie électronique Collecte de données à distance et moyenne par sous-tomogramme

08:55

Cryotomographie électronique Collecte de données à distance et moyenne par sous-tomogramme

Related Videos

5.8K Views

Visualisation d’organites in situ par tomographie cryo-STEM

08:37

Visualisation d’organites in situ par tomographie cryo-STEM

Related Videos

3K Views

Visualisation de l'ATP synthase dimères dans les mitochondries par cryo-tomographie

10:39

Visualisation de l'ATP synthase dimères dans les mitochondries par cryo-tomographie

Related Videos

30.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code