December 1st, 2020
Cette étude visait à présenter une stratégie pour identifier les interactions médicament-peptide. La stratégie consiste à biopanner les peptides courts reconnaissant les médicaments à partir d'un biocapteur de microbalance quartz-cristal (QCM), suivi d'une analyse bioinformatique pour évaluer quantitativement les informations obtenues pour la reconnaissance et l'annotation des sites de liaison médicamenteux sur les protéines.
L’identification des interactions entre les petites molécules et les protéines est essentielle pour la recherche et le développement de médicaments, ainsi que pour favoriser notre compréhension des mécanismes pathologiques sous-jacents aux DTC viraux. Cette méthode facilite le biopanning à haut débit des peptides de reconnaissance de médicaments et la validation globale des sites de liaison des médicaments sur les protéines pour les médicaments à petites molécules d’intérêt. Pour préparer une puce de capteur QCM, fixez une puce de capteur en céramique sur l’oscillateur d’un appareil QCM de 27 mégahertz et enregistrez la fréquence intrinsèque dans la phase aérienne avant l’immobilisation des petites molécules.
Après l’enregistrement, détachez la puce et ajoutez soigneusement une goutte de 20 microlitres d’une solution dérivée de petite molécule d’un millimolaire dans de l’éthanol à 70 % pour créer une monocouche auto-assemblée sur l’électrode d’or de la puce du capteur. Placez la puce dans une boîte de Pétri recouverte d’un tissu humide, protégez-la de la lumière pendant une heure à température ambiante avant de laver doucement la surface de l’électrode avec de l’eau ultra pure. Séchez la copeau avec une légère application d’air et chargez la copeau sur l’appareil QCM.
Après une heure, enregistrez la réduction de fréquence dans la phase aérienne pour mesurer la quantité de petite molécule qui a été immobilisée. Pour le biopannage de la bibliothèque de phages T7, placez une cuvette avec un agitateur magnétique dédié sur le biocapteur QCM réglé à 1000 tours par minute et ajoutez huit millilitres de tampon de réaction à la cuvette Pendant que le tampon est agité, fixez la puce du capteur QCM à l’oscillateur Maintenez le bras de l’oscillateur enfoncé pour immerger la puce dans le tampon et commencez à surveiller la fréquence QCM. Lorsque le gramme du capteur s’équilibre à environ trois Hertz par minute de dérive de fréquence, injectez huit microlitres d’une bibliothèque de phages T7 dans la cuvette et marquez le point d’injection sur le capteur.
Surveiller la réduction de fréquence provoquée par la liaison des phages T7 à la petite molécule immobilisée à la surface de l’électrode d’or. Au bout de 10 minutes, arrêtez le moniteur de fréquence QCM et soulevez rapidement l’oscillateur pour retirer la puce du capteur du lot, détachez la puce du capteur de l’oscillateur et retirez le tampon de la puce. Placez la puce de capteur séchée dans une boîte de Pétri humide et ajoutez une goutte de 20 microlitres de cellules hôtes E-coli en phase logarithmique sur l’électrode en or.
Incuber la parabole sur un mélangeur à microplaques de 96 puits à 37 degrés Celsius et 1000 à 1500 tours par minute pendant 30 minutes, à l’abri de la lumière pour améliorer la récupération des sept phages T7 liés. À la fin de l’incubation, transférez les 20 microlitres de suspension d’E-coli dans 200 microlitres de milieu LB. Selon la procédure générale, effectuez l’isolement de la plaque de phage dans le milieu et le séquençage de l’ADN qui code le médicament, reconnaissant les séquences peptidiques affichées sur chaque capside de phage.
Après l’entretien de la puce du capteur, utilisez un coton-tige imbibé d’une solution de dodécylsulfate de sodium à 1 % pour nettoyer la surface de l’électrode, laver la surface dorée avec de l’eau ultra pure et sécher l’électrode à l’air. Traitez ensuite la surface de l’électrode avec cinq microlitres de solution Parana fraîchement préparée pendant cinq minutes, puis effectuez un lavage à l’eau ultra-pure et un séchage à l’air libre deux fois. Pour effectuer une analyse bio-informatique à l’aide de RELIC, décompressez le programme RELIC autonome sur un PC avec un système d’exploitation Windows et utilisez les séquences d’acides aminés de 15 peptides mères sélectionnés ou d’une ou plusieurs protéines dans chaque fichier texte au format A rapide.
Placez les fichiers texte requis dans le dossier AA-div, info, motif, match, hetero align, fast A con ou fast A scan. Cliquez sur chaque fichier exécutable dans le dossier indépendant pour ouvrir la version personnelle de FTN 95 et entrez le nom et l’extension de fichier appropriés dans la ligne de commande pour exécuter chaque programme et obtenir le fichier de format texte résultant. Les fichiers au format texte obtenus sont présentés ici.
Exportez ensuite le fichier texte résultant vers une feuille de calcul pour générer un graphique d’informations, de contenu ou de scores de similarité cumulatifs calculés à l’aide d’un coup d’environ 62. Grâce à cette stratégie, des sites de liaison à une ou plusieurs petites molécules sur les protéines cibles ont été identifiés avec succès pour six médicaments à petites molécules. Par exemple, 29 peptides qui reconnaissent le médicament cliniquement approuvé Irinotecan immobilisé en tant que monocouche auto-assemblée ont été identifiés par biocapteur QCM basé sur un biocapteur à un cycle L’alignement ultérieur par paires des 29 peptides et de l’acétylcholinestérase a donné des scores maximaux pour des résidus d’acides aminés spécifiques qui étaient cohérents avec ceux constituant le site de liaison de l’irinotécan.
Ce même sous-ensemble de peptides a également été identifié avec succès au voisinage de la triade catalytique dans la carboxylestérase, indiquant que ces acides aminés forment un échafaudage pour la reconnaissance de l’irinotécan lors de la désestérification. Les 27 peptides qui reconnaissent le médicament antigrippal Oseltamivir recouvrant la surface de l’électrode d’or de la puce du capteur QCM ont détecté avec succès le site de liaison de l’oseltamivir dans la neuraminidase. Ce site de liaison est constitué de boucles peptidiques non structurées qui peuvent subir un mouvement dynamique lors de l’amarrage à l’oseltamivir.
Les médicaments, les régions, les produits chimiques, les bactériophages recombinants et les bactéries sont des corbillards biologiques et doivent être manipulés conformément au protocole de gain de culture. N’oubliez pas de toujours porter des gants, des lunettes de protection et une blouse de laboratoire pour plus de sécurité. À la suite de cette procédure, les protéines cibles de divers médicaments peuvent être validées à l’échelle mondiale chez l’homme, les virus pathologiques, et même les plantes afin de comprendre les mécanismes moléculaires et l’efficacité thérapeutique potentielle des médicaments d’intérêt.
Cette étude présente une stratégie pour identifier les interactions entre médicaments et peptides à l'aide d'un biocapteur à microbalance à quartz (QCM). La méthode implique le biopanning de peptides reconnaissant des médicaments et une analyse bioinformatique pour évaluer la reconnaissance des médicaments et les sites de liaison sur les protéines.
This biosensor-based high throughput strategy enables rapid global validation of drug-protein interactions, supporting early-stage target validation and mechanistic de-risking in drug discovery. By identifying drug-recognizing peptides and mapping binding sites on target proteins, the method enhances predictive confidence in lead selection and reduces biological uncertainty in preclinical development. The approach applies to diverse small molecules, offering a reusable capability for assessing ADMET-relevant interactions across therapeutic areas.
The method integrates into the discovery continuum from target validation through lead identification, providing orthogonal confirmation of drug-target interactions that complements biochemical and cellular assays.