-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

HE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

he_IL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
הקלטות תיקון מהדק subcellular מן האחוזה Somatodendritic של נוירונים Nigral דופמין
הקלטות תיקון מהדק subcellular מן האחוזה Somatodendritic של נוירונים Nigral דופמין
JoVE Journal
Neuroscience
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
Subcellular Patch-clamp Recordings from the Somatodendritic Domain of Nigral Dopamine Neurons

הקלטות תיקון מהדק subcellular מן האחוזה Somatodendritic של נוירונים Nigral דופמין

Full Text
15,544 Views
09:17 min
November 2, 2016

DOI: 10.3791/54601-v

Dominique Engel1

1GIGA-Neurosciences,Quartier Hôpital, University of Liege

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a protocol for subcellular patch-clamp recordings from dendrites of dopamine neurons in vitro. The method aims to enhance the stability and reliability of recordings from these fine structures, which are crucial for understanding neuronal function.

Key Study Components

Area of Science

  • Neurobiology
  • Electrophysiology
  • Neuronal signaling

Background

  • Dendrites play a vital role in neuronal communication.
  • Studying ion channels at the subcellular level is essential for understanding neuron function.
  • Patch-clamp techniques allow for detailed analysis of ion channel activity.
  • Accessing dendrites for recording is technically challenging due to their small size.

Purpose of Study

  • To provide a reliable method for recording from dendrites of dopamine neurons.
  • To investigate the functional properties of individual ion channels.
  • To enhance understanding of neuronal signaling mechanisms.

Methods Used

  • Preparation of brain slices using sucrose-ACSF.
  • Patch-clamp recording techniques in cell-attached and whole-cell modes.
  • Use of calcium and sodium channel blockers to suppress action potentials.
  • Histological analysis with biocytin labeling for neuron identification.

Main Results

  • Successful recordings from dendrites with high seal resistance.
  • Characterization of hyperpolarization-activated cation currents.
  • Demonstration of the technique's feasibility within a single day.
  • Integration of electrophysiological data with histological findings.

Conclusions

  • The protocol enables detailed study of dendritic ion channel function.
  • It provides a foundation for further research in neurobiology.
  • Future studies can build on this method to explore neuronal identity and function.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of this patch-clamp technique?
It allows for mapping the function of ion channels at the subcellular level in neurons.
How long does it take to master this technique?
Once mastered, this technique can be performed in one day.
What are the key components of the recording setup?
The setup includes a patch pipette, a micro manipulator, and a recording chamber.
What is the purpose of using calcium and sodium channel blockers?
They suppress action potentials during recordings to isolate specific ion channel activity.
How is the identity of the recorded neuron confirmed?
By allowing biocytin to diffuse and using histological techniques for visualization.
What type of neurons are targeted in this study?
Dopamine neurons are the primary focus of this research.

הקלטות מהדק טלאי תת-תאיות מציעות את האפשרות לחקור את התכונות הפונקציונליות של דנדריטים. עם זאת, מבנים עדינים אלה אינם נגישים בקלות בשל קוטרם הקטן. הפרוטוקול המתואר כאן נועד להקל על איסוף הקלטות יציבות ואמינות מהדנדריטים של נוירוני דופמין בפרוסות במבחנה.

שיטה זו יכולה לעזור לענות על שאלות מפתח בתחום הנוירוביולוגיה, כגון כיצד תעלות יונים בודדות עם שער מתח תורמות לתפקודים של נוירון ספציפי. היתרון העיקרי של טכניקה זו הוא בכך שהיא מאפשרת למפות את תפקוד תעלות היונים ברמה התת-תאית בנוירונים. התחל את ההליך הזה על ידי הנחת המוח על צלחת פטרי של 9 סנטימטרים, כשהחלק התחתון מכוסה בשכבה של SiliGuard.

לאחר מכן, הקיפו את המוח בסוכרוז קר כקרח-ACSF. להכנת פרוסות עטרה, בצע שני חתכים כדי להסיר את המוח הקטן ואת החלק הרוסטרלי של המוח. לאחר מכן מרחו דבק ציאנואקרילט על מגש הדגימה, והדביקו את גוש המוח למגש כך שהחלק הרוסטרלי פונה לשלב החיתוך.

לאחר מכן, מרחו כמה טיפות סוכרוז-ACSF על המוח וטבלו לאט את המגש בתא החיתוך. לאחר מכן, כוונן את סכין הגילוח בזווית של 15 מעלות בהתייחס למישור האופקי. חותכים פרוסות מוח קורונליות של כ-500 מיקרומטר בכיוון האף לפני שמגיעים לחומר השחור.

לאחר מכן התאם את העובי כדי לחתוך פרוסות של 300 מיקרומטר המכילות את אזור העניין. הפרד את הפרוסות מגוש הרקמות בעזרת מחט שופע דקה מאוד המחוברת למזרק במקביל לקצה סכין הגילוח. לאחר מכן, העבירו את הפרוסות לתא המילואים בחום של 34 מעלות צלזיוס למשך שעה.

בהליך זה, העבירו פרוסת מוח לתא ההקלטה. עוגן את הפרוסה בתחתית תא ההקלטה עם טבעת פלטינה, וודא שהפרוסה באיכות טובה עם משטח חלק ואחיד. לאחר מכן בחר נוירון עם דנדריט המשתרע על פני מרחק רב באותו מישור, וודא שניתן לעקוב אחר הדנדריט המעניין לסומה מוגדרת היטב.

לאחר מכן, מלאו את פיפטת התיקון בתמיסת אלקטרודה. כדי לתקן את הדנדריט במצב מחובר לתא, זהה והתמקד בחלק מהדנדריט הפעל לחץ חיובי על הפיפטה, והורד אותה באמצעות המניפולטור המיקרו

.

לאחר מכן מקם את הפיפטה קרוב לקרום והתאם את הלחץ על מנת ליצור גומה קטנה. לאחר מכן, שחרר את הלחץ על קצה הפיפטה ותקן את הדנדריט, תוך שליטה בהתנגדות הפיפטה. נסה להשיג התנגדות איטום גדולה מג'יגה-אוהם אחד, במקרה הטוב בין שלושה לעשרה ג'יגה-אוהם, עבור הקלטות מחוברות לתא.

לאחר מכן, החזר את הפיפטה הרחק מהקרום, בכמה מיקרומטרים, כדי למנוע עיוות של הדנדריט. זרמי הפעולה הנראים כאן מייצגים את פוטנציאל הפעולה הספונטני של נוירונים ניגרליים. כדי לדכא את זרמי הפעולה, יש למרוח חוסמי תעלות סידן ונתרן על ACSF.

לאחר מכן הפעל שלב מתח של 90 מילי-וולט, מפוטנציאל החזקה של אפס מילי-וולט, כדי לעורר את זרם הקטיון המופעל על ידי היפר-פולריזציה. בסוף ההקלטה, קרע את התיקון כדי להשיג את כל מצב התא. לאחר מכן, משוך לאט ובעדינות את הפיפטה הדנדריטית מהממברנה העצבית כדי לקבל טלאי חיצוני.

כדי להקליט מהסומה המתאימה במצב התא השלם, אתר את הסומה המתאימה של הדנדריט. הורד פיפטה עם התנגדות בין חמישה לעשרה מגה-אוהם עם תמיסה תוך-תאית מבוססת אשלגן לגוף התא. לאחר מכן הפעל לחץ שלילי קצר על קצה הפיפטה כדי לקרוע את הממברנה על מנת להשיג את מצב התא השלם.

בדוק את זהות הנוירון במצב מהדק זרם על ידי הפעלת צעדי זרם היפר ודה-פולריזציה ארוכים, ואפשר לביוציטין מהפיפטה, להתפזר לאורך הדנדריטים. לאחר 10 דקות, משוך את הפיפטה כדי לקבל תיקון חיצוני החוצה. השתמש ברצף של תנועות רוחביות קצרות כלפי מעלה כדי להעדיף סגירה נכונה של קרום התא, ברגע שהפיפטה נמצאת מעל הפרוסה, כדי לצאת לחלוטין מתא ההקלטה.

שמור את הפרוסה בתא ההקלטה למשך 15 דקות נוספות ב-ACSF סטנדרטי כדי לאפשר שיווי משקל של הביוציטין והנוירון המוקלט. לאחר מכן העבירו בעדינות את הפרוסה לבקבוק זכוכית ענבר של 25 מיליליטר המכיל ACSF סטנדרטי להיסטולוגיה. בהליך זה, אתר בערך את הנוירון המסומן בפרוסה עם אפיפלואורסצנטיות.

בחן בקצרה סוכת דנדריטי של נוירונים ואתר את האקסון והבלב האקסונלי באמצעות מטרה פי 10. לאחר מכן, עבור למיקרוסקופ הקונפוקלי, ובחר את דיודת הלייזר של 488 ננומטר כדי לעורר את הנוירון המסומן. עקוב אחר הרחבת האקסון והדנדריטים בציר Z, והקלט תמונות עוקבות על מנת לקבל מחסנית Z עבור התא כולו.

התאם את הרזולוציה של ציר Z ואסוף את התמונות הקונפוקליות של התא בהגדלה נמוכה וגבוהה. בסוף, פתח את קובץ התמונה של הנוירון באמצעות תוכנת הדמיה. השווה את תמונת ההקרנה Z עם תמונת IR-DGC בעין כדי לאתר את המיקום המדויק של פיפטת התיקון במהלך ההקלטה האלקטרופיזיולוגית.

מוצגת כאן תמונת IR-DGC של נוירון דופמין ופיפטה על הדנדריט הפרוקסימלי. עקבות הזרם מציגות את הקיבולת של זרמי דליפת ה-EN בתגובה לפקודת מתח של חמישה מילי-וולט, בתצורה מחוברת לתא, עם התנגדות איטום של חמישה ג'יגה-אוהם. שלב מתח היפרפולריזציה, מפוטנציאל ממברנה של אפס מילי-וולט, גרם לזרם קטיון המופעל על ידי היפרפולריזציה המופעל באיטיות.

עקבות הזרם היו הפוכות וצוידו בפונקציה מעריכית אחת, שנותנת קבוע זמן של 632 אלפיות השנייה. להלן תגובות המתח של כל התא שהוקלט סומה לפולסים של זרם היפר ודפולריזציה של שנייה אחת בנוכחות חוסמי זרם נתרן וסידן מגודרים במתח כדי להסיר פוטנציאל פעולה במהלך הקלטה מחוברת לתא. לאחר שליטה, ניתן לבצע טכניקה זו ביום אחד, אם היא מבוצעת כראוי.

בעת ניסיון הליך זה, חשוב לזכור להשיג רקמה בריאה ותנאי הקלטה יציבים. בעקבות ההליך הזה, שיטות אחרות, כמו אימונוהיסטוכימיה, יכולות להתבצע במטרה לענות על שאלות נוספות כמו זהות תא העצב המוקלט. לאחר פיתוחה, טכניקה זו סללה את הדרך לחוקרים בתחום הנוירופיזיולוגיה לחקור את תפקודן ותפקידן של תעלות יונים מגודרות מתח בתאים מעוררים.

לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להבין היטב כיצד להקליט ולבחון את התפלגות הזרמים הזורמים דרך תעלות יונים מגודרות מתח בדנדריטים.

Explore More Videos

Neuroscience גיליון 117 דנדריט תיקון- clamp הקלטות כפולות מצורף תא תיוג biocytin מורפולוגיה עצבית nigra substantia נוירון דופאמין ערוץ יון

Related Videos

פרופיל Voltage-Expression מגודרת אשלגן mRNA ערוץ בנוירונים Nigral באמצעות תא יחיד RT-PCR טכניקות

07:31

פרופיל Voltage-Expression מגודרת אשלגן mRNA ערוץ בנוירונים Nigral באמצעות תא יחיד RT-PCR טכניקות

Related Videos

15.6K Views

מדידת תא בודדה של שחרור דופמין במתח-clamp וAmperometry סימולטני

07:30

מדידת תא בודדה של שחרור דופמין במתח-clamp וAmperometry סימולטני

Related Videos

14.4K Views

הקלטות מהדק טלאי מהדנדריט של נוירון דופמינרגי בפרוסת מוח

03:06

הקלטות מהדק טלאי מהדנדריט של נוירון דופמינרגי בפרוסת מוח

Related Videos

785 Views

רישום מהדק טלאי של תא שלם בנוירון ג'לטינוזה מהותי של פרוסת חוט השדרה

03:45

רישום מהדק טלאי של תא שלם בנוירון ג'לטינוזה מהותי של פרוסת חוט השדרה

Related Videos

775 Views

הקלטות מהדק טלאי מחורר של גופי תאי עצב חושיים באוזן הפנימית

02:50

הקלטות מהדק טלאי מחורר של גופי תאי עצב חושיים באוזן הפנימית

Related Videos

710 Views

הקלטות מהדק טלאי של תא שלם על גרעיני שורש גבי חולדה שלמים

04:11

הקלטות מהדק טלאי של תא שלם על גרעיני שורש גבי חולדה שלמים

Related Videos

779 Views

הקלטת תיקון מהדק מצורף תא אחד ערוצים

13:07

הקלטת תיקון מהדק מצורף תא אחד ערוצים

Related Videos

25.6K Views

הקלטות תיקון מהדק כל תא פרוסות המוח

07:23

הקלטות תיקון מהדק כל תא פרוסות המוח

Related Videos

62.8K Views

הצמד תיקון הקלטות על Intact השורש הגבי הגרעינים מן חולדות בוגרות

12:00

הצמד תיקון הקלטות על Intact השורש הגבי הגרעינים מן חולדות בוגרות

Related Videos

15.4K Views

תגובת שרשרת של פולימראז מולטיפלקס שעתוק במהופך תא בודד לאחר תיקון-קלאמפ

10:44

תגובת שרשרת של פולימראז מולטיפלקס שעתוק במהופך תא בודד לאחר תיקון-קלאמפ

Related Videos

10.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code