Name: שיטת הרכבה צדדית עבור Long Term הדמיה של פיתוח דג זברה (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-26T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 55 s
Description: למדו שיטת הרכבה צדדית לדמיית זמן אמת ארוכת טווח של עוברי דג זברה. השיטה מאפשרת תנועה חופשית של האזור האחורי תוך שמירה על התפתחות תקינה ותצפית בהתנהגות תאית במורפוגנזה.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Estelle Hirsinger: מימון ליבה ממכון פסטר והסוכנות הלאומית למחקר (ANR-10-BLAN-121801 DEVPROCESS). אסטל הירסינגר היא מהמרכז הלאומי למחקר מדעי (CNRS). בנג'מין סטיבנטון מומן על ידי הסוכנות הלאומית למחקר (ANR-10-BLAN-121801 DEVPROCESS), לאחר מכן מלגת רו (Institut Pasteur) ולאחר מכן מלגת AFM-Téléthon (מספר 16829). כעת הוא נתמך על ידי קרן וולקאם/מלגת סר הנרי דייל.

1. הכנת פתרונות ומשך מחט זכוכית <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן פתרון מניות 25x של Tricaine (3-אמינו אתיל אסתר חומצה בנזואית, המכונה גם אתיל 3-aminobenzoate) בשעה 4 מ&quot;ג / מ&quot;ל ​​ב 20 מ&quot;מ טריס pH 8.8 ולהביא פתרון זה ב- pH 7. Aliquot ב -4 מ&quot;ל ולאחסן ב -20 ° C. הערה: Tricaine ההרדמה פועל באופן מועדף על תעלות נתרן מתח מגודרות עצביות ובכך חוסם שרירי עוויתות ותנועה 6. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן פתרון עבודה של Tricaine בריכוז סופי של 0.17 מ&quot;ג / מ&quot;ל ​​במדיום העובר E3. 7 הערה: הפוך את Tricaine פתרון עובדת מראש כמו ה- pH של פתרון זה נסחף. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ממיסים את נקודת התכה נמוכה agarose לריכוז סופי של 1.5% בטווח הבינוני העובר E3 בתוך שפופרת 50 מ&quot;ל על ידי חימום הפתרון במיקרוגל. תנו פתרון זה לאזן ל -42 - 45 ° C באחת באמבט מים או בחממה הספסל העליון. אם מכינים מנות גדולות עבור אנכיהדמית אור גיליון (שלב 4), לבצע 25 מיליליטר נוסף של 1% היתוך תקן agarose במדיום עובר E3. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש זכוכית בורוסיליקט עם נימים נימה עם ממדים של 1.20 מ&quot;מ OD, מזהה 0.69 מ&quot;מ, אורך 10 מ&quot;מ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אם נימים נמשכים לסוג חולץ מחט חימום-נימה שמתואר בטבלה של ציוד ריאגנטים, השתמש את ההגדרות הבאות: חום 600, משיכת 120, מהירות 50, זמן 225, לחץ 500. עם זוג מלקחיים חדים, הפסקה המחט בעבר רק את הנקודה שבה זה מכופף ליצור מחט נקי וחד עבור orientating עוברים והסרת agarose עודף. אזמל מיקרו-כן, ניתן להשתמש כדי להסיר agarose עודף. </li></ol> Embedding 2. עוברים על הפוך או מיקרוסקופי Upright <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הרם את העוברים עד השלב המתאים במדיום העובר E3. 7 </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בשלב נדרש, עובר dechorionate עם זוג מלקחיים חדים מתחת dissec המשקףמיקרוסקופ טינג. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה עוברים dechorionated עבור 5 דקות לפחות הפתרון עובד Tricaine. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר פתרון agarose מומסת מתקרר ל -45 מעלות צלזיוס, השתמש פיפטה זכוכית פסטר להעביר את העובר dechorionated ישירות לתוך שפופרת 50 מ&quot;ל עם העברת מינימלי של מדיום E3. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר העובר יחד עם כ 1 מ&quot;ל של הרכבה בינונית ומוסיפים כ. 100 μl של הרכבה בינונית יחד עם העובר למעגל המרכזי של צלחת פטרי 35 מ&quot;מ עם תחתית זכוכית עם microwell 10 מ&quot;מ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ככל הרכבה בינונית שוקעת, להזיז את העובר עד קצה המעגל של agarose עם הזנב כלפי חוץ (איור 1 א). השתמש מחט הנימים לשמור על העובר בכיוון לרוחב הרצוי עד ג&#39;ל מוגדר לחלוטין. כדי פיתוח גוף התמונה האחורי, לטפל להתמצא העובר כמו לרוחב אוריינטציה ככל האפשר. לכן, לשמור על העובר בתפקיד זה על ידי adjustmen הזהירts עם המחט נימי. הערה: ניתן להוסיף עוברים מרובים כדי בצלחת גוברת בשלב זה, אם נדרש. אם זה המקרה, להעביר את נמוכה להמיס agarose לתוך המנה הראשונה ולהוסיף את העוברים למרכז הירידה agarose. לאחר מכן, דחף את העוברים אל הקצוות של הטבעת הזכוכית להתמצא לתוך המיקום הרצוי. עד שישה עוברים יכול להיות מותקן בדרך זו לפני agarose הופך הקרושה. </li></ol> הסרת 3. עודף Agarose סביב הגוף האחורי הערה: סעיף זה מתאר את ההליך שבאמצעותו agarose יוסר האזור שמסביב הגוף האחורי. במקרה של התארכות הגוף האחורי, חשוב להבטיח כי הזנב יכול לגדול-אאוט כרגיל. על ידי הסרת agarose לאחר שהעובר נכללה לחלוטין על ידי agarose, העובר ונותר מוקפת באזור הראש כמחצית שק החלמון. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר ירידת agarose קבעה, להציף את di פטריsh עם הפתרון עובד Tricaine. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תחת מיקרוסקופ המשקפת לנתח עם בסיס מועבר-אור, להתאים את המיקום במראה זווית אור האירוע כזה כי הניגוד החזק מאפשר קיצוץ agarose להיראות בבירור במהלך כל הניתוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי לבצע לחתוך 1 (איור 1), השתמש מחט נימי או-אזמל מיקרו לחתוך את אמצע הדרך agarose לאורך חלמון, מתוך עמדה רק האחורי לשדה הלב להרכיב את עמדת somite 5 (5 th somite הקדמי). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התחל את החתך הראשוני סמוך ללב להרכיב כמוצג, והדרך מלאה דרך agarose אל הזכוכית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שמור את נימי או מיקרו-אזמל עמוק בתוך agarose, וראיתי לאט ולמטה תוך מתחילים לעשות חתך ארוך על העובר כפי שמוצג באיור 1. גזור קרוב לעובר ככל האפשר ללא ניקוב העובר או חלמון. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר מכן, לבצע חתכים 2 ו -3 (איור 1 </strong&gt;), החל מעמדת נגד העובר ועם לחתוך הולך כל הדרך למטה אל הכוס תחתית צלחת. הפוך לחתוך 2 כך שהוא משיק 5 somites הראשון, המאפשר dorsalward מלא התגלגלות של הגוף האחורי. הפוך לחתוך 3 בזווית של 90 מעלות עם משטח החלמון החל HEARTFIELD. הערה: חיתוך agarose עד קצה עיגול זכוכית (כפי שמוצג באיור 1) עזרי בהסרת agarose כבלוק שלם (שלב 3.6). עם זאת, זה לא הכרחי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החל בצומת של חתכים 1 ו -3, לעשות חתך אלכסוני איטי לקראת סוף לחתוך 2 תוך הרמת לאט כלפי מעלה על מנת לשחרר את הכיכר של agarose המקיפים את הגוף האחורי. הערות: במקרים מסוימים, זה ישוחרר בבלוק אחד בתום הניתוח בבת אחת. במקרים אחרים, זה עלול לקחת כמה ניסיונות דיס-Lodge כל agarose סביב העובר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עם זוג מלקחיים חדים, להסיר את b וחלצהמנעולים של agarose מן המדיום העובר. כדי לסייע בתהליך זה, להעביר את חתיכות agarose אל דופן הכלי ולהשתמש קיר צלחת פטרי כתמיכה תוך הרמת את חתיכות agarose. </li></ol><img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/55210/55210fig1.jpg" /> איור 1: תרשימים של גדר קופצת שמה. (א) התרשים מראה את המיקום של העובר רכוב בתוך טבעת זכוכית במרכז צלחת פטרי. מימין זום של העובר עם כל חתך רצוף דרך הסובבים לראות agarose עם קווים אדומים dottted. (ב) עוברי הרכוב diagrammed לאור לרוחב הצגת קלות הגישה לשתי מטרות הפוכות וזקופות. (ג) digram דומה מראה כיצד עובר יכול להיות מותקן עבור קופצים להגדיר הדמית גיליון אור אנכית. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55210/55210fig1large.jpg" target="_blank">אנא CL</a>איכס כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו. <ol start="9" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אם התכווצויות שרירים אינה חסומה לחלוטין בנקודה זו, להוסיף טיפות Tricaine מפתרון המניות של 4 מ&quot;ג / מ&quot;ל, pH 7. </li></ol> 4. הרכבה של עוברים אנכיים אור גיליון מיקרוסקופי הערה: זוהי וריאציה על השיטה שתוארה לעיל המאפשרת הגישה של יעדים מרובים עבור הדמיה של דגימות ידי SPIM אנכית-חוקית. הרעיון מאחורי וריאציה זו הוא להרים המדגם גבוה במעט התחתונה של המנה, כדי לאפשר גישה קלה של שתי מטרות הדמיה. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפני לדגום הרכבה, מעיל צלחת פטרי פלסטיק 100 מ&quot;מ עם agarose 1% בטווח הבינוני E3 עד לגובה של 5 מ&quot;מ ולאפשר להגדיר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים ירידה של 1 מ&quot;ל agarose נקודת התכה נמוכה אל מרכז הצלחת ולאפשר להגדיר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עוברים שבץ agarose נקודת התכה נמוכה כמו בסעיף 2. עם זאת, הפעם, להסיר את העובר מהצינור 50 מ&quot;לagarose של עם ירידה קטנה של פתרון (0.5 מ&quot;ל) ומקום טיפה קטנה זו על גבי 1 מ&quot;ל לרדת במרכז המנה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש מחט הנימים למקם את העובר במרכז הטיפה הקטנה ולשמור הכיוון הנכון שלה עד מוגדר ג&#39;ל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להציף את המנה עם פתרון Tricaine עבודה להסיר את agarose העודף כאמור בסעיף 3 אבל בלי לחתוך דרך הכרית של 1% agarose הסטנדרטי. </li></ol>

<ol><li>Graeden, E., Sive, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+Imaging+of+the+Zebrafish+Embryonic+Brain+by+Confocal+Microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Live Imaging of the Zebrafish Embryonic Brain by Confocal Microscopy.</a> J Vis Exp. (26), e1-e2 (2009).</li>
<li>Delaune, E. A., François, P., Shih, N. P., Amacher, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-Cell-Resolution+Imaging+of+the+Impact+of+Notch+Signaling+and+Mitosis+on+Segmentation+Clock+Dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Cell%22%5BJournal%5D)">Single-Cell-Resolution Imaging of the Impact of Notch Signaling and Mitosis on Segmentation Clock Dynamics.</a> Dev Cell. 23 (5), 995-1005 (2012).</li>
<li>Lawton, A. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulated+tissue+fluidity+steers+zebrafish+body+elongation%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Regulated tissue fluidity steers zebrafish body elongation.</a> Development. 140 (3), 573-582 (2013).</li>
<li>Dray, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-Fibronectin+Interactions+Propel+Vertebrate+Trunk+Elongation+via+Tissue+Mechanics%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell-Fibronectin Interactions Propel Vertebrate Trunk Elongation via Tissue Mechanics.</a> Curr Biol. 23 (14), 1335-1341 (2013).</li>
<li>Steventon, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Species+tailoured+contribution+of+volumetric+growth+and+tissue+convergence+to+posterior+body+elongation+in+vertebrates%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Species tailoured contribution of volumetric growth and tissue convergence to posterior body elongation in vertebrates.</a> Development. 143, 1732-1741 (2016).</li>
<li>Attili, S., Hughes, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anaesthetic+Tricaine+Acts+Preferentially+on+Neural+Voltage-Gated+Sodium+Channels+and+Fails+to+Block+Directly+Evoked+Muscle+Contraction%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Anaesthetic Tricaine Acts Preferentially on Neural Voltage-Gated Sodium Channels and Fails to Block Directly Evoked Muscle Contraction.</a> PLoS ONE. 9 (8), 103751-103756 (2014).</li>
<li>Westerfield, M. <a target="_blank" href="https://zfin.org/zf_info/zfbook/zfbk.html">The Zebrafish Book, 5th Edition; A guide for the laboratory use of zebrafish (Danio rerio)</a>. , University of Oregon Press. Eugene. Paperback (2007).</li>
<li>Schröter, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamics+of+zebrafish+somitogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Dynamics of zebrafish somitogenesis.</a> Dev Dyn. 237 (3), 545-553 (2008).</li>
<li>Megason, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+toto+imaging+of+embryogenesis+with+confocal+time-lapse+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol+%28Clifton%2C+N.J.%29%22%5BJournal%5D)">In toto imaging of embryogenesis with confocal time-lapse microscopy.</a> Methods Mol Biol (Clifton, N.J.). 546, Chapter 19 317-332 (2009).</li>
<li>Sugiyama, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Illuminating+cell-cycle+progression+in+the+developing+zebrafish+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22PNAS%22%5BJournal%5D)">Illuminating cell-cycle progression in the developing zebrafish embryo.</a> PNAS. 106 (49), 20812-20817 (2009).</li>
</ol>

למחברים אין מה לחשוף.

טכניקה זו מאפשרת הרכבה עוברת להישמר עדיין במהלך העברת המיקרוסקופ ושוב לטווח ארוך ניסויי הזמן לשגות הדמיה שמטרתה הבאה התארכות גוף אחורית בסקאלות אורך המרובה. יתר על כן, זה הוא תכליתי בכך שהיא מאפשרת הדמיה משני מיקרוסקופיה זקוף הפוך בחרו קופץ, וכן המלצה ניתנת למען איך זה יכול להיות מותאם נוסף כדי SPIM אנכית חוקית. שלב קריטי פרוטוקול זה הוא ההסרה הזהירה של agarose העודף סביב הגוף האחורי כי חשוב המאפשר התפתחות התקינה...

התארכות גוף האחורית היא תהליך חיוני בהתפתחות עוברית שבאמצעותו העובר משתרע מהווה חלק גדול של ציר הגוף. זוהי דוגמא של תהליך מורכב המוךפו&quot;גנטי שהולך שבאמצעותו התנהגויות תאים מרובות לפעול בצורה מתואמת כדי ליצור את morphogenesis ברמה של רקמות פרט. דפורמציות רקמות הפרש אלה ולאחר מכן לפעול יחד כדי ליצור את ההתארכות של הגוף האחורי ברמת המבנה כולו. כדי להבין כיצד תהליכים אלה נשלטים ומתואמים במהלך פיתוח, אנחנו חייבים להיות מסוגלים לעקוב אחר התהליכים האלה בקני מידה מרובות (כלומר ברמה של מולקולות, תאים, אוכלוסיות תאים ורקמות) ולהתייחס זה ישירות morphogenesis של המבנה כולו . עוברי דג זברה הם אידיאליים עבור התארכות גוף אחורי הדמיה כמו השקיפות האופטית שלהם והגודל קטן מאפשרים ליישום הדמית אור פולשנית מתקרבים גם מתאים ליבהדמית דואר. 1 זה כבר שמעיד סדרת הפרסומים האחרונים כי שפכו אור על התפתחות גוף אחורית ברמה של מולקולות, 2 תאים בודדים, 3 והתנהגויות בין רקמות, 4 וכן ברמה של אוכלוסיית תא כולו איברים. 5 שיטות הדמיה מתקדמות כגון confocal, מיקרוסקופיה-פוטון רב מיקרוסקופיה תאורת מטוס סלקטיבית (SPIM) מאפשרות הדמיה לטווח הארוך של תהליכים התפתחותיים עם ירידת ההשפעה רעילה אור צילום לבן. טכניקות חזקות עבור ההרכבה של דגימות חיות נדרשות להשיג שלוש מטרות: 1) תמיכה מספקת כדי לשמור על דגימות בכיוון הנכון במהלך העברה המיקרוסקופ במהלך רכישה, 2) חופש מספיק תנועה של המדגם כדי לאפשר את התולדה של באזור הגוף האחורי מבלי להשפיע devel הרגילopment, ולבסוף 3) במידה מסוימת ב צדדי של שיטת ההרכבה לאפשר הדמיה על סט-אפ הדמיה המגוון. פרוטוקול זה מציג טכניקת הרכבת הדמיה בפיתוח של דג הזברה ד rerio. טכניקה זו כרוכה הרכבה עוברים כך אזורים שק ראש וחלמון כמעט כלולים כולו agarose, תוך השארת באזור הגוף האחורי להאריך ולהתפתח באופן תקין. ככזה, הוא גם בשיטה מתאימה ההדמיה לטווח הארוך של אזורים אחרים בגוף מתפתח כמו agarose מאפשר הדמיה על ידי שיטות הדמית אור רגילות. פרוטוקול זה מדגים הרכבה של עוברים בכיוון לרוחב, אם כי אפשר גם לעלות עוברים אוריינטציות alterative. עוד יציגו כיצד להתאים את השיטה עבור זקוף, פנימה ובמאונך setups מיקרוסקופ אור גליון.

<table><tbody><tr><td><חזק>חומרים מתכלים</חזקים></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>כלים עם תחתית זכוכית</td><td>מטק</td><td>P35-1.5-10-C</td><td>צלחת פטרי 35 מ"מ, מיקרווול 10 מ"מ. נימים מזכוכית כיסוי מס' 1.5</td></tr><tr><td>למחטי הזרקה</td><td>&nbsp; סאטר&nbsp;</td><td>BF 120-94-10</td><td>אנו משתמשים בזכוכית אורוסיליקט עם נימה, OD 1.20 מ"מ, ID 0.94 מ"מ, אורך 10 ס"מ. עם זאת, מחטי נימה אינן נחוצות ורוב מחטי ההזרקה הסטנדרטיות אמורות לעבוד.</td></tr><tr><td>מיקרו-אזמל</td><td>נוצה</td><td>P-715</td><td>מיקרו נוצה אזמל אופטי חד פעמי עם ידית פלסטיק</td></tr><tr><td>פסטר פיפטות</td><td></td><td></td><td>230 מ"מ ארוך</td></tr><tr><td><חזק>ריאגנטים</חזק></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>טריקאין</td><td>סיגמא-אולדריץ'</td><td>A5040</td><td></td></tr><tr><td>נקודת התכה נמוכה אגרוז</td><td>סיגמא-אולדריץ'</td><td>A9414</td><td></td></tr><tr><td>< מלקחיים חזקים></חזקים></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>עדינים&nbsp;</td><td>FINE SCIENCE TOOLS GMBH&nbsp;</td><td>11252-30&nbsp;</td><td>דומונט #5</td></tr><tr><td>מושך מחט&nbsp;</td><td>סאטר&nbsp;</td><td>P97</td><td>חולץ מחט נימה חימום</td></tr><tr><td>מיקרוסקופ ניתוח משקפת</td><td>Leica</td><td>S8 Apo</td><td></td></tr></tbody></table>

שיטת הרכבה צדדית עבור long term הדמיה של פיתוח דג זברה

A Versatile Mounting Method for Long Term Imaging of Zebrafish Development

עוברי דג זברה להציע מערכת ניסיונית אידיאלית ללמוד תהליכים מורכבים המוךפו&quot;גנטי שהולכים בשל קלויות נגישות ושקיפות אופטית שלהם. בפרט, התארכות גוף האחורי הוא תהליך חיוני בהתפתחות עוברית שבאמצעותו דפורמציות רקמות מרובות לפעול יחד כדי לכוון את ההיווצרות של חלק גדול של ציר הגוף. על מנת להתבונן בתהליך זה על ידי הדמיה לטווח ארוכת זמן לשגות יש צורך לנצל טכניקת הרכבה המאפשרת תמיכה מספקת כדי לשמור על דגימות בכיוון הנכון במהלך העברת המיקרוסקופ והרכישה. בנוסף, ההרכבה חייבת גם לספק חופש מספיק תנועה של התולדה של אזור הגוף האחורי מבלי להשפיע ההתפתחות התקינה שלו. לבסוף, חייב להיות מידה מסוימת ב צדדי של שיטת ההרכבה לאפשר הדמיה על סט-אפ הדמיה המגוון. כאן, אנו מציגים טכניקת הרכבת הדמיה בפיתוח elongatio גוף האחוריn של דג הזברה ד rerio. טכניקה זו כרוכה הרכבה עוברת כך אזורי צק הראש והחלמון כמעט כלולים כולו agarose, ומותיר מחוץ לו באזור הגוף האחורי להאריך ולהתפתח באופן תקין. אנו נראים כיצד זה יכול להיות מותאם עבור קופצים להגדיר מיקרוסקופ זקוף, הפוך ואנכי אור גיליון. בעוד פרוטוקול זה מתמקד הרכבה עוברת הדמיה של הגוף האחורי, זה יכול בקלות להיות מותאם עבור הדמית החיה של היבטים רבים של פיתוח דג זברה.

הפרוטוקול שתואר לעיל פרטי שיטה תכליתית עבור ההרכבה של עוברי דג זברה עבור הדמית הזמן לשגות לטווח ארוך. דוגמא לכך היא שמוצגת באיור 2 א ו בסרטון אנימציה / וידאו איור 1. עוברים הוזרקו בשלב 1 תא עם mRNA המקודד את החלבון פלורסנט photoconvertible kikumeGR. בשלב 15 somite הם היו רכובים כמתואר לעיל צילמו במשך 12 שעות על מיקרוסקופ confocal הפוכה עם מטרה 10X. ערימות confocal וכתוצאה הוקרנו מקסימאלי שיוצגו כמוצג. סרט זה מראה ב...

כאן, אנו מציגים שיטת הרכבה רב-תכליתית המאפשרת הדמיה ארוכת טווח של התפתחות הגוף האחורי של עוברי דג זברה חיים מבלי להפריע להתפתחות תקינה.

שיטת הרכבה צדדית עבור Long Term הדמיה של פיתוח דג זברה

Zebrafish embryos offer an ideal experimental system to study complex morphogenetic processes due to their ease of accessibility and optical transparency. ...

המטרה הכללית של שיטה זו היא קיבוע של עוברים של Zebrafish לצורך דימות חי, המאפשר צמיחה תקינה של אזור הגוף האחורי. ניתן להתאים שיטה זו לדימות של אזורים אחרים ב-Zebrafish המתפתח. טכניקה זו מסייעת במתן מענה לשאלות מפתח בביולוגיה של ההתפתחות, כגון כיצד התנהגויות של תאים בודדים מובילות למורפוגנזה ברמת רקמות שלמות.היתרון המרכזי של טכניקה זו הוא שהיא מאפשרת תנועה חופשית של החלק האחורי של הגוף תוך שמירה על העובר באוריינטציה הנכונה. ראשית, הוסיפו agarose בנקודת התכה נמוכה בריכוז סופי של 1.5% למצע E3 במבחנה של 50 milliliters, והמיסו את ה-agarose על ידי חימום במיקרוגל. המתינו עד שהתמיס יגיע לשיווי משקל בטמפרטורה של 42 עד 45 degrees celsius במקלח מים או באינקובטור שולחני.לאחר משיכת מחטי זכוכית לפי הפרוטוקול הכתוב. בעזרת פינצטה, שברו את המחט מעט אחרי הנקודה שבה היא גמישה כדי ליצור מחט נקייה וחדה להכוונת עוברים ולהסרת עודפי אגרוז. הגדילו את העוברים עד לשלב המתאים במצע E3.לאחר מכן, תחת מיקרוסקופ דיסקציה בינוקולרי, השתמשו בפינצטה חדה כדי להסיר את הדחור (dechorionate) מהעוברים. הדגרימו את העוברים לאחר הסרת הדחור למשך חמש דקות לפחות בתמיסת עבודה של tricaine. לאחר מכן, השתמשו בפיפטת פסטור מזכוכית כדי להעביר את העובר ללא הדחור עם כמות מינימלית של E3 ישירות לשפופרת של 50 מיליליטר המכילה agarose בטמפרטור

a-versatile-mounting-method-for-long-term-imaging-zebrafish

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

ביולוגיה התפתחותית

כאן אנו מתארים שיטה הרכבה עוברי דג הזברה הדמיה לטווח ארוך, שני הפוטונים הדמיה רקמות נזק טכניקות זמן לשגות הדמיה confocal.

שני הפוטונים axotomy ואת זמן לשגות הדמיה confocal עוברי דג הזברה לחיות

מאמר זה מתאר שיטה להרכיב עוברים חיים של דגי זברה לצורך הדמיה ארוכת טווח. שיטה זו חסכונית וקלה לביצוע באמצעות צלחות רגילות של מיקרוסקופ תחתית זכוכית לצורך הדמיה במיקרוסקופ הפוך. ההרכבה מתבצעת בשכבות אגרוז בריכוזים שונים.

הרכבה שכבתית של אגר: הכנת עוברים חיים של דגי זברה להדמיה ארוכת טווח במיקרוסקופ הפוך

סרטון זה מתאר הוראות שלב אחר שלב להרכבת עוברים חיים של דגי זברה על 6 פלטות באר באמצעות אגרוז נמס נמוך. הוא גם מספק את התהליך כדי לרכוש תמונות של עוברים חיים ולנתח אותו באמצעות תוכנה.

אגר הרכבה: שיטה בסיסית להרכבת עוברים חיים של דגי זברה להדמיה ארוכת טווח

ההתפתחות של דג הזברה יכולה להיות אחרי על פני ימים עם מיקרוסקופיה גיליון אור כאשר עוברים מוטבעות בצינורות פולימר ברורים אופטי עם agarose ריכוז נמוך.

רב שכבתי וההרכבה למיקרוסקופיה גיליון אור לטווח ארוך של דג הזברה

הדמיית ההתנהגות הדינמית של אברונים ומבנים תת-תאיים אחרים in vivo יכולה לשפוך אור על תפקודם במצבים פיזיולוגיים ומחלות. כאן, אנו מציגים שיטות לתיוג גנטי של שני אברונים, צנטרוזומים ומיטוכונדריה, והדמיית הדינמיקה שלהם בעוברי דג זברה חיים באמצעות מיקרוסקופיה רחבת שדה וקונפוקלית.

הדמית מבני subcellular בעובר דג הזברה החייה

כתב יד זה מתאר את zWEDGI (דג זברה Wounding והתקן מלכודת צמיחה, הדמיה), אשר הוא מכשיר ממודר שנועדה אוריינט לרסן את הזחלים דג זברה. העיצוב מאפשרת חיתוך זנב ארוך טווח אוסף של תמונות מיקרוסקופ פלואורסצנטי ברזולוציה גבוהה של ריפוי הפצע והתחדשות.

התקן הדמיה חיה לטווח ארוך עבור משופרת מניפולציה ניסויית של הזחלים דג זברה

מאמר זה מתאר שיטה לטעינת עוברי שברירי הדגים עבור מיקרוסקופ הזמן המורחבת הקפיצה הדקה. שיטה בעלות נמוכה זו קלה לביצוע באמצעות מנות מיקרוסקופית תחתית רגילות של זכוכית להדמיה בכל מיקרוסקופ הפוך. ההרכבה מבוצעת בשכבות של הצמח בריכוזים שונים.

שיטת הרכבה שכבתית עבור מיקרוסקופ זמן מורחב מיקרוסקופיה של כל העוברים דגים

פרוטוקול זה מתאר גישה לתיוג תותוג טומוטו והדמיה רב ממדית של התפתחות עיניים מוקדמות של דגי זברה. אנו מתארים תיוג, הטמעה והדמיה בארבעה ממדים (4D) באמצעות מיקרוסקופיה קונפוקלית לסריקת לייזר, ושיקולים למיטוב רכישת ערכות נתונים לניתוח מנגנונים של מורפוגנזה של אופטית.

הדמיה תלת מימדית של מורפוגנזה של גביע זברה אופטי

פרוטוקול זה משתמש בהדמיה של יריעות אור כדי לחקור את תפקוד התכווצות הלב בזחלי דגי זברה ולקבל תובנות על מכניקת הלב באמצעות מעקב אחר תאים וניתוח אינטראקטיבי.

הדמיית גיליון אור 4D של התכווצות הלב של דגי זברה

מתוארת אסטרטגיית הכנת דגימה להדמיית עוברים מוקדמים של דגי זברה בתוך כוריון שלם באמצעות מיקרוסקופ יריעות אור. הוא מנתח את הכיוונים השונים שהעוברים רוכשים בתוך הכוריון בשלבי 70% אפיבולי וניצן ומפרט אסטרטגיות הדמיה להשגת רזולוציה בקנה מידה תאי בכל העובר באמצעות מערכת יריעות האור.

אסטרטגיות הדמיה והרכבה של מיקרוסקופ גיליון אור עבור עוברים מוקדמים של דגי זברה

למדו שיטת הרכבה צדדית לדמיית זמן אמת ארוכת טווח של עוברי דג זברה. השיטה מאפשרת תנועה חופשית של האזור האחורי תוך שמירה על התפתחות תקינה ותצפית בהתנהגות תאית במורפוגנזה.

שיטת הרכבה צדדית עבור Long Term הדמיה של פיתוח דג זברה

גלה סרטונים נוספים