-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

HE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

he_IL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biochemistry
כולל תפוקה גבוהה של השתקפות פנימית ומיקרוסקופ שחזור אופטי סטוכסטי אופטיים באמצעות שבב פוטוני
כולל תפוקה גבוהה של השתקפות פנימית ומיקרוסקופ שחזור אופטי סטוכסטי אופטיים באמצעות שבב פוטוני
JoVE Journal
Biochemistry
Author Produced
This content is Free Access.
JoVE Journal Biochemistry
High-Throughput Total Internal Reflection Fluorescence and Direct Stochastic Optical Reconstruction Microscopy Using a Photonic Chip

כולל תפוקה גבוהה של השתקפות פנימית ומיקרוסקופ שחזור אופטי סטוכסטי אופטיים באמצעות שבב פוטוני

Full Text
7,460 Views
14:09 min
November 16, 2019

DOI: 10.3791/60378-v

David André Coucheron1, Øystein Ivar Helle1, Cristina Ionica Øie2, Jean-Claude Tinguely1, Balpreet Singh Ahluwalia1

1Department of Physics and Technology,UiT The Arctic University of Norway, 2Vascular Biology Research Group, Department of Medical Biology,UiT The Arctic University of Norway

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a novel chip-based super-resolution optical microscopy technique, focusing on TIRF microscopy and single-molecule localization microscopy. The protocols for chip preparation and imaging are detailed, highlighting the advantages of this approach in cost-effectiveness and throughput.

Key Study Components

Area of Science

  • Fluorescence microscopy
  • Super-resolution imaging
  • Photonic chip technology

Background

  • Traditional TIRF microscopy relies on objective lens illumination.
  • Photonic chips utilize optical waveguides for light guidance.
  • Evanescent waves enable high-resolution imaging at the surface level.
  • This method enhances imaging area and throughput.

Purpose of Study

  • To demonstrate a new imaging procedure using photonic chip-based TIRF microscopy.
  • To compare traditional methods with the chip-based approach.
  • To provide detailed protocols for chip preparation and imaging.

Methods Used

  • Preparation of photonic chips using optical waveguides.
  • Cell seeding and incubation protocols for sample preparation.
  • Imaging setup involving a microscope, laser, and camera.
  • Image capture and processing using Fiji software.

Main Results

  • Successful demonstration of high-throughput imaging capabilities.
  • Clear visibility of scattered light along the waveguide.
  • Effective localization of single molecules using the new setup.
  • Improved imaging resolution compared to traditional methods.

Conclusions

  • The chip-based approach offers significant advantages in fluorescence microscopy.
  • Decoupling illumination and collection enhances imaging possibilities.
  • This method paves the way for future advancements in super-resolution microscopy.

Frequently Asked Questions

What is TIRF microscopy?
TIRF microscopy is a technique that uses total internal reflection to illuminate a thin region of a sample, allowing for high-resolution imaging of surface phenomena.
How does the photonic chip improve imaging?
The photonic chip allows for uniform illumination over a large area and decouples the illumination from the imaging process, enhancing throughput and resolution.
What are evanescent waves?
Evanescent waves are light waves that decay exponentially away from a surface, enabling high-resolution imaging close to the surface in TIRF microscopy.
What is the significance of using PDMS in the setup?
PDMS is used to create a chamber for cell seeding, providing a controlled environment for imaging and ensuring minimal interference during the process.
How are images processed after capture?
Captured images are processed using Fiji software, where stacks of images can be averaged to enhance the quality and resolution of the final image.
What are the advantages of this new imaging technique?
The new technique offers cost-effectiveness, high throughput, and improved resolution compared to traditional microscopy methods.

מיקרוסקופ אופטי ברזולוציה גבוהה מבוססי שבב הוא גישה מקורית למיקרוסקופיה פלואורסצנטית ומציעה יתרונות ביעילות ובתפוקה. כאן, הפרוטוקולים להכנת השבבים וההדמיה מוצגים עבור מיקרוסקופ TIRF ומיקרוסקופ ברזולוציה סופר מבוססי-לוקליזציה.

המטרה העיקרית של כתב יד זה היא להציג הליך הדמיה של מיקרוסקופיה TIRF מבוססת שבב פוטונית שפותחה לאחרונה ומיקרוסקופיה לוקליזציה של מולקולה אחת, כגון dSTORM. המרכיב העיקרי כאן הוא השבב הפוטוני כי הם עשויים מסדרה של waveguide אופטי. האור בתוך הגל האופטי מונחה על סמך השתקפות פנימית מוחלטת.

חלק מהאור קיים על פני השטח בצורה של הגלים האוונסנטים. הגלים האוונסנטים האלה, הם נרקבים באופן אקספוננציאלי מפני השטח, עם עומק חדירה של כמה מאות ננומטרים. זה הופך אותם מתאימים לתאורת TIRF.

תאורת TIRF באמצעות הגל האופטי זמינה על פני שטח גדול במיוחד, המוגדר על ידי הגיאומטריה של waveguide, ולכן מתאים באופן אידיאלי להדמיית תפוקה גבוהה. ההבדל העיקרי בין הגדרת TIRF ו- dSTORM מסורתית בהשוואה לגישה שלנו הוא שאנו משתמשים בשבב פוטוני כדי להאיר את המדגם, במקום לשלוח אור דרך עדשה אובייקטיבית הדמיה. הגישה שלנו מפענחת את התאורה ואת חלק האור הקולקציה, פותחת אפשרויות הדמיה חדשות.

מניחים את השבב בצלחת פטרי זכוכית באמצעות פינצטה וופל, ומכסים לחלוטין עם פתרון 1% Hellmanex. מניחים את צלחת פטרי על לוחית חמה ב 70 מעלות במשך 10 דקות. בעוד עדיין על המשטח החם, לשפשף את פני השטח עם ספוגית רקמת חדר נקי.

מוציאים את השבב מצלחת פטרי. יש לשטוף עם לפחות 100 מיליליטר של מים מיונים. לשטוף עם לפחות 100 מיליליטר של isopropanol, דואג כי הממס אינו מתייבש על פני השטח כדי למנוע כתמי אידוי.

יש לשטוף עם לפחות 100 מיליליטר של מים מיונים. לפוצץ את השבב יבש עם אקדח חנקן. הכינו PDMS מאוחר יותר של 150 מיקרומטר על ידי סיבובו בצלחת פטרי.

השתמש אזמל לחתוך מסגרת כ 1.5 על 1.5 ס"מ משכבת PDMS. הרם את המסגרת מצלחת פטרי עם פינצטה. הפקידו אותו שטוח על שבב נקי ומלוטש.

הדגימה מוכנה כעת לזרועי תאים. לאחר זריעת התא, הסר את השבב מהמדיה. השתמש בצינור כדי להסיר נוזל עודף מחוץ לתא PDMS.

הסר את הנוזל הנוכחי מתוך תא PDMS עם צינור תוך הוספת כ 60 microliters לנקות PBS באותו זמן. החלף את PBS עם 60 microliters לנקות PBS, ולתת לו דגירה במשך דקה אחת. חזור על השלב הקודם, ומאפשר לו לדגר במשך חמש דקות הפעם.

הסר את PBS, ולהחליף אותו עם 60 microliters של פתרון הצבע. השאירו את הדגימה כדי דגירה במשך כ 15 דקות, מגן אותו מפני אור. לשטוף את המדגם עם PBS באמצעות ההליך שתואר קודם לכן.

הסר את ה- PBS והחלף אותו ב- 40 מיקרוליטרים של מאגר ההדמיה בו-זמנית. מניחים כיסוי על גבי, מניעת בועות אוויר להיווצר מתחת. לחץ בעדינות על הכיסוי כנגד תא ההדמיה כדי להסיר כל מדיה עודפת.

השתמש בצינור כדי להסיר מדיה עודפת מחוץ לכיסוי. נקו את האזור שמחוץ לכיסוי בעזרת ספוגית לחה במים כדי להימנע מקריסטלים שנוצרו על ידי שאריות מדיה מיובשות. גירסה זו של ההתקנה מורכבת משלושה רכיבים עיקריים.

המיקרוסקופ עם מחזיק המסנן, מקור האור הלבן, המצלמה ואקדח אובייקטיבי. שלב הצימוד, שהוא שלב פייזו תלת-צירי, עם לייזר מזוג סיבים ועדשת צימוד. שלב הדגימה, שהוא שלב ידני חד-צירי, עם קצה והטיה, עם מחזיק ואקום.

הן שלב הצימוד והן שלב הדגימה מותקנים על במה ממונעת דו-צירית לתרגום לדוגמה. מניחים את השבב על משאית הוואקום, עם היבט הצימוד לכיוון מטרת הצימוד. ודא השבב הוא כ אורך מוקד אחד מן המטרה צימוד.

תפעיל את משאבת הוואקום. הפעל את הלייזר למילי וואט אחד. התאימו בערך את גובה השבב כך שהקרן תפגע בקצהו.

כבה את הלייזר. הפעל את מקור האור הלבן. בחר עדשת מטרה להגדלה נמוכה, לדוגמה, 10x.

מקד את המיקרוסקופ על גל. תרגם את המיקרוסקופ לאורך הגל כדי לראות אם הוא מיושר היטב עם הנתיב האופטי. הזיזו את המיקרוסקופ לקצה הצימוד.

הפעל את הלייזר במילי וואט אחד או פחות. תרגם את המיקרוסקופ לאורך קצה הצימוד כדי למצוא את אור הלייזר. תמקד את הקרן בקצה השבב.

כוונן את שלב הצימוד לאורך הנתיב האופטי בכיוון המקטין את גודל נקודת קרן הלייזר עד שהוא נעלם. הקרן נמצאת כעת מעל או מתחת לפני השטח של השבב. כוונן את גובה שלב הצימוד עד שמקום הקרן יופיע שוב ויגדל.

חזור על שני השלבים הקודמים עד שהלייזר יוצר נקודה ממוקדת. העבר את הנקודה הממוקדת לגל ההתעניינות. תרגם את המיקרוסקופ במרחק קצר מהקצה כך שמקום הקרן הממוקד לא יהיה גלוי עוד.

כבה את האור הלבן. התאם את החדות. אם הגל מנחה, האור המפוזר לאורך הגל צריך להיות גלוי בבירור.

התאימו את ציר שלב הצימוד כדי למקסם את עוצמת האור המפוזרת. כבה את הלייזר. תדליק את האור הלבן.

התאם את החדות במידת הצורך. נווט אל אזור הדימות. פוקוס עם המטרה הרצויה לדמיין.

כבה את האור הלבן. הכנס את מסנן הפלואורסצנטיות והפוך את כוח הלייזר למילי-וואט אחד. הגדר את זמן החשיפה למצלמה לכ- 100 אלפיות שניה.

התאם את החדות לפי הצורך. ודא שההתדוג עדיין ממוטב. אתר אזור מעניין להדמיה.

הפעל את לולאת שלב הפיזו כדי לממוצע צמתים. לכוד לפחות 300 תמונות. טען את מחסנית התמונות שנלכדה לפיג'י באמצעות מחסנית וירטואלית.

מתפריט התמונה בפיג'י, בחר ערימות ו- Z Project. חשב את תמונת TIRF על-ידי בחירה בסוג הקרנה, בעוצמה ממוצעת. הפעל את הלייזר למילי-וואט אחד והגדר את זמן החשיפה למצלמה ל- 30 אלפיות שניה.

התאם את החדות והמיקוד. הגדל את כוח הלייזר עד מהבהב הוא ציין. הגדל אזור קטן של הדוגמה.

התאם את החדות. לכוד כמה תמונות כדי לראות אם ההבהובים מופרדים היטב. כוונן את זמן החשיפה למצלמה להבהוב אופטימלי.

הפעל את לולאת הבמה של הפיזו. הקלט ערימת תמונות של 30,000 מסגרות לפחות, בהתאם לצפיפות המהבהבה. פתח את פיג'י וטען את מחסנית dSTORM כתמונות וירטואליות.

התאם את החדות במידת הצורך. השתמש בכלי המלבן כדי לבחור את האזור שברצונך לבנות מחדש. פתח את ניתוח Run בתוסף ThunderSTORM בפיג'י.

קבעו את הגדרות המצלמה הבסיסיות ב-ThunderSTORM, המתאימות למכשיר שלכם. פרמטרי ברירת המחדל הנותרים הם בדרך כלל משביעי רצון. תתחיל את השחזור.

רשימת ההתאמה לוקליזציה המסופקת על-ידי תוכנת השחזור מסוננת כדי להסיר לוקליזציה לא ספציפית. תיקון דריפט נוסף מוחל במידת הצורך. ההבדל העיקרי בין הדמיה מבוססת שבב לבין הדמיה מסורתית הוא המכשור ורכישת הנתונים.

לפיכך, ניתן להעריך את איכות התמונות המשוחזרות באותו אופן כמו תמונה ממיקרוסקופ מסחרי ברזולוציית-על. מאז נעשה שימוש ברוגידים מרובי מצבים, התמונה המתקבלת עשויה, עם זאת, להפגין בעירור לא אנושי אם נאספות מעט מדי תמונות. אפשרות זו מוצגת בלוח א'.

הגדלת כמות דפוסי העירור אמורה לגרום לזרזר inhomogeneous, כפי שמוצג בלוח b. כאן יש לנו תא אנדותל סינוזואידי כבד, עם קרום פלזמה שכותרתו פלואורסצנטי. חלוניות a ו- b הן תמונות מוגבלות בעיוון.

חלונית c מציגה תמונה מוגבלת דיפוזיה של ההצבה בחלונית b. חלונית d מציגה תמונת dSTORM של אותו אזור. תאי אנדותל סינוזואידיים בכבד יש fenestrations בגודל ננו בקרום הפלזמה שלהם, אשר נראים בבירור בתמונה סופר רזולוציה בפאנל d.

אחד היתרונות העיקריים של הדמיה מבוססת שבב ברזולוציית-על הוא שדה הצפייה הגדול שניתן להשגה. פאנל a מראה 500 מיקרון על ידי 500 מיקרון גדול dSTORM תמונה של תאי אנדותל סינוזואידיים בכבד עם microtubulin שכותרתו פלואורסצנטי. חלונית b מציגה את ערכת ה- magenta מהחלונית a, עם תמונות עם רזולוציית דיפוזיה מוגבלת ותמונות ברזולוציית-על להשוואה.

לוח c מציג את ההסטה הירוקה מהחלונית a. הרזולוציה של התמונה שנתפסה היא 77 ננומטר. בסרטון זה, ביצענו שדה גדול של תצוגה TIRF ו dSTORM הדמיה של תאי אנדותל סינוזואידיים בכבד באמצעות שבב פוטוני להארה.

השיטה שלנו פחות מורכבת, קומפקטית וגמישה יותר מהדרך המקובלת לביצוע TIRF באמצעות מטרת מיקרוסקופ של צמצם מספרי קבוע מראש ושדה תצוגה נמוך. מיקרוסקופ לוקליזציה, כגון dSTORM, היא אחת מכמה טכניקות הדמיה ברזולוציית-על שחקרנו באמצעות שבב פוטוני. לדוגמה, אור יכול להיות מוגבל הרבה יותר בחוזקה בתוך חומר גל אופטי אינדקס שבירה גבוהה מאשר זה אפשרי באמצעות עדשה אובייקטיבית הדמיה.

מאפיין זה של תאורת שבבים מצא יישום בהגברת הרזולוציה של שיטת מיקרוסקופיה אופטית מבוססת תנודות אינטנסיביות ומיקרוסקופיה מובנית של תאורה. בנוסף, שבבים פוטוני גם נהנה מזעור, עלות תועלת, התקנה אופטית פשוטה. להיות טכנולוגיה משולבת עושה את זה תואם עם פונקציות אופטיות אחרות על השבב.

בסך הכל, זה מאפשר retrofitting לתוך מיקרוסקופים מוגבלים diffraction קונבנציונאלי, המאפשר רזולוציה סופר על חשבון נמוך.

Explore More Videos

ביוכימיה סוגיה 153 קרינה פלואורסצנטית השתקפות פנימית מוחלטת מיקרוסקופ אופטי ברזולוציה גבוהה ננוסקופיה מדריכי גל אופטיקה משולבת

Related Videos

פלורסנט מיקרוסקופית עצמים ללא עדשה על שבב

11:23

פלורסנט מיקרוסקופית עצמים ללא עדשה על שבב

Related Videos

18.2K Views

טכניקה מיקרוסקופית TIRF הדמיה בזמן אמת סימולטני של TCR וחלבונים הקשורים אליו לשידור אותות

16:10

טכניקה מיקרוסקופית TIRF הדמיה בזמן אמת סימולטני של TCR וחלבונים הקשורים אליו לשידור אותות

Related Videos

24.5K Views

Lensfree על שבב טומוגרפית מיקרוסקופית העסקת רב זווית תאורה פיקסל סופר רזולוציה

08:41

Lensfree על שבב טומוגרפית מיקרוסקופית העסקת רב זווית תאורה פיקסל סופר רזולוציה

Related Videos

12K Views

המולקולה בודדת מיקרוסקופ פלואורסצנטי במישורים נתמך bilayers

20:00

המולקולה בודדת מיקרוסקופ פלואורסצנטי במישורים נתמך bilayers

Related Videos

14.5K Views

A Guide to מיקרוסקופית TIRF תאורה מובנית ב- High Speed ​​עם צבעים מרובים

11:15

A Guide to מיקרוסקופית TIRF תאורה מובנית ב- High Speed ​​עם צבעים מרובים

Related Videos

26.3K Views

יישום של מערכת קוהרנטית אנטי סטוקס פיזור ראמאן (CARS) על טי: ספיר OPO לייזר מבוסס תקן לייזר מיקרוסקופ סריקה

12:54

יישום של מערכת קוהרנטית אנטי סטוקס פיזור ראמאן (CARS) על טי: ספיר OPO לייזר מבוסס תקן לייזר מיקרוסקופ סריקה

Related Videos

11.7K Views

הדמיה חוטים ביניים Microtubules עם מיקרוסקופ 2-ממדי ישירה שחזור אופטי סטוכסטי

14:23

הדמיה חוטים ביניים Microtubules עם מיקרוסקופ 2-ממדי ישירה שחזור אופטי סטוכסטי

Related Videos

11.5K Views

ניצוח מספר מצבי הדמיה עם מיקרוסקופ זריחה אחת

08:32

ניצוח מספר מצבי הדמיה עם מיקרוסקופ זריחה אחת

Related Videos

10.3K Views

להמחיש אדהזיה היווצרות בתאים באמצעות מתקדם ספינינג מיקרוסקופ פלורסצנטיות השתקפות פנימית דיסק-סיכום

10:19

להמחיש אדהזיה היווצרות בתאים באמצעות מתקדם ספינינג מיקרוסקופ פלורסצנטיות השתקפות פנימית דיסק-סיכום

Related Videos

7K Views

השתקפות הפרעה סימולטנית ומיקרוסקופיה פלואורסצנטית של השתקפות פנימית כוללת להדמיה מיקרוטובולים דינמיים וחלבונים נלווים

06:43

השתקפות הפרעה סימולטנית ומיקרוסקופיה פלואורסצנטית של השתקפות פנימית כוללת להדמיה מיקרוטובולים דינמיים וחלבונים נלווים

Related Videos

4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code