-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

HE

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

he_IL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
הדמיה אופטית מבוססת פוטודיודה להקלטת דינמיקה ברשת עם רזולוציית נוירון יחיד בבלתי חוליות לא מהונדסים
הדמיה אופטית מבוססת פוטודיודה להקלטת דינמיקה ברשת עם רזולוציית נוירון יחיד בבלתי חוליות לא מהונדסים
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Photodiode-Based Optical Imaging for Recording Network Dynamics with Single-Neuron Resolution in Non-Transgenic Invertebrates

הדמיה אופטית מבוססת פוטודיודה להקלטת דינמיקה ברשת עם רזולוציית נוירון יחיד בבלתי חוליות לא מהונדסים

Full Text
3,308 Views
10:18 min
July 9, 2020

DOI: 10.3791/61623-v

Evan S. Hill*1,2, Jeffrey W. Brown*1,2, William N. Frost1,2

1Cell Biology and Anatomy, Chicago Medical School,Rosalind Franklin University of Medicine and Science, 2Center for Brain Function and Repair,Rosalind Franklin University of Medicine and Science

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a method for imaging neuronal population activity with single-cell resolution in invertebrates, specifically using voltage-sensitive dyes and a photodiode array. This technique allows for the rapid visualization of network activity across multiple neurons within a single day.

Key Study Components

Research Area

  • Neuroscience
  • Neuronal imaging techniques
  • Invertebrate model systems

Background

  • Challenges in imaging neural activity in non-transgenic species
  • Comparison of voltage-sensitive dyes with traditional calcium imaging
  • Importance of direct recording of action potentials for understanding neuronal function

Methods Used

  • Optical imaging with voltage-sensitive dyes
  • Invertebrate models, particularly Aplysia californica
  • Use of photodiode arrays for simultaneous recordings

Main Results

  • Successful recording of action potentials from many neurons simultaneously
  • Establishment of a protocol adaptable for various species
  • Demonstrated effectiveness of the imaging technique in complex neural networks

Conclusions

  • The study provides a validated protocol for imaging neuronal dynamics in invertebrates
  • It contributes to the field of neuroscience by offering new insights into neuronal population activity

Frequently Asked Questions

What species can be used for this imaging technique?
The technique is adaptable for various non-transgenic invertebrate and vertebrate species.
How does this method compare to calcium imaging?
Voltage-sensitive dyes directly record action potentials, providing a more accurate representation of neuronal activity than the indirect measurements obtained through calcium imaging.
What is the significance of single-cell resolution?
It allows for precise identification of neuronal activity and interactions within populations, enhancing our understanding of neural circuits.
What are voltage-sensitive dyes?
These are dyes that change their optical properties in response to changes in membrane potential, allowing for the visualization of action potentials.
Is this method suitable for in vivo imaging?
While primarily designed for preparations, adaptations may allow for in vivo applications depending on the species.
What are the potential applications of this imaging technique?
It can be used in neuroscience research to study neural dynamics, circuit function, and possibly in drug testing applications.
How long does the imaging process take?
The protocol is structured to allow imaging and analysis within a single day, facilitating rapid results.

פרוטוקול זה מציג שיטה להדמיית פעילות אוכלוסיה עצבית עם רזולוציה של תא יחיד במינים לא מהונדסים של חוליות באמצעות צבעים רגישים למתח ספיגה ומערך פוטודיודות. גישה זו מאפשרת זרימת עבודה מהירה, שבה ניתן לבצע הדמיה וניתוח במהלך יום אחד.

מאמר זה מייצג תיאור מפורט של אופן השימוש במערך פוטו-דיודות ובצבעים רגישים-למתח כדי לרשום פוטנציאל פעולה ממספר גדול של נוירונים בו זמנית. בהשוואה להדמיית סידן של פעילות עצבית, שהיא עקיפה, הצבעים הרגישים למתח שאנו משתמשים בהם מתעדים פוטנציאל פעולה הדומים ישירות לרישומי אלקטרודות חדים, אך על פני נוירונים רבים בו זמנית. ניתן להתאים את זרימת העבודה של ההדמיה האופטית שלנו כדי להמחיש במהירות את פעילות הרשת עם נוירון יחיד ורזולוציה פוטנציאלית של פעולה בודדת במגוון מערכות חסרי חוליות ואפילו בעלי חוליות לא טרנסגניות.

בנוסף, הדגמת הנהלים בפרוטוקול שלנו תהיה אוון היל מהמעבדה שלי. התחל בהרדמה של בעל חיים Aplysia californica במשקל 40 גרם והצמדת הצד הגחוני כלפי מעלה בכלי דיסקציה מרופד בשעווה. בעזרת מספריים לדיסקציה, בצע חתך בקו האמצע של שניים עד שלושה סנטימטרים לאורך החלק הקדמי ביותר של כף הרגל והצמד את דשי כף הרגל משני צידי החתך כדי לחשוף חלק ממערכת העצבים המרכזית והמסה הבוקאלית.

השתמש במלקחיים ובמספריים כדי לנתח בזהירות את המסה הבוקאלית, לחשוף את גרעיני המוח, ולנתק את העצבים המעצבנים את גוף החיה כדי לכרות את מערכת העצבים המרכזית, ולהשאיר אורך ארוך של העצב לגירוי. השתמש בסיכות זעירות כדי למקם את מערכת העצבים המרכזית בכלי מרופד באלסטומר מלא במי מלח ולחלחל את המנה במי מלח המועברים דרך מכשיר קירור פלטייר כדי לשמור על טמפרטורת ההכנה על 15 עד 16 מעלות צלזיוס. השתמש במלקחיים ובמספריים של מיקרו-דיסקציה כדי להסיר רקמת חיבור עודפת מהעצבים ולנתח חלק שטחי של הנדן על הגנגליון או הגרעינים להדמיה.

לאחר מכן טבלו את מערכת העצבים המרכזית הנקייה בתמיסה של 0.5% גלוטרלדהיד במי מלח למשך 20 שניות לפני החזרת מערכת העצבים המרכזית לכלי מרופד באלסטומר מלוח כדי לשטוף את עודפי הגלוטראלדהיד. להכנת תמיסת עבודה של צבע רגיש למתח, הוסף 500 מיקרוליטר מי מלח למנה מוצקה שהוכנה בעבר של RH 155 כדי להשיג ריכוז צבע סופי של 0.3 מיליגרם למיליליטר. והשתמש במיקרו-מתקן כף יד כדי להעמיס 200 מיקרוליטר של תמיסה לחתיכת צינור פוליאתילן בקוטר דומה לזה של הגנגליון שיש להכתים.

בעזרת מיקרומניפולטור, הנח בזהירות את קצה הצינור מעל גנגליון המטרה, והורד את הצינור עד שהוא יוצר אטימה צמודה מעל הגנגליון. סובב את כפתור המוליך של המיקרו-דיספנסר כל חמש דקות למשך שעה כדי לכפות יותר צבע על הגנגליון, ובדוק את הדגימה תוך 30 דקות כדי לאשר שמתרחש צביעה נאותה. לאחר הצביעה, תוך שמירה על האורות מעומעמים, הנח חומר חיץ מתאים משמאל ומימין למקום שבו התכשיר יונח בתא ההדמיה המכיל מי מלח, ולאחר מכן טבל את מערכת העצבים המרכזית בתא.

לחץ על חתיכת כיסוי בגודל מתאים מעל הרקמה ולחץ בחוזקה על הכיסוי כדי לשטח את הרקמה מבלי לפגוע בנוירונים. לאחר מכן הנח את תא ההדמיה מתחת למיקרוסקופ מנתח. אם מגרים עצב כדי לעורר תוכנית מוטורית פיקטיבית, יש להמיס בזהירות קטע של צינור פוליאתילן PE100 על להבה תוך משיכה עדינה של שני קצוות קטע הצינור ולחתוך את ההתחדדות המתקבלת בנקודה הרצויה.

לאחר מכן, חבר אורך של צינורות פולימרים גמישים בעלי קירות עבים לקצה האחורי של אלקטרודת יניקה מפוליאתילן. לאחר מכן השתמש בקטע פה כדי ליצור לחץ שלילי ולמשוך נפח קטן של מי מלח דרך הקצה המחודד של אלקטרודת היניקה. צייר את קצה העצב שיש לגרות לתוך האלקטרודה מתחת למיקרוסקופ ואשר כי במי המלח באלקטרודה חסרות בועות שעלולות להפריע להולכה החשמלית.

להדמיה של הגנגליון, העבר את החדר למתקן ההדמיה והתחל זלוף מי מלח דרך תא ההקלטה. הנח בדיקת טמפרטורה ליד התכשיר והגדר את הטמפרטורה בהתאם למין המצולם. הנח חוט כסף כלוריד אחד במורד אלקטרודת היניקה, וודא שהוא יוצר קשר עם מי המלח באלקטרודה והנח חוט כסף כלוריד כסף לתוך מי המלח באמבטיה ליד אלקטרודת היניקה.

הורד את עדשת הטבילה במים לתוך מי המלח וסגור את דיאפרגמת הבסיס. הרם או הורד את מעבה תת-השלב והתאם את המיקוד עד שקצוות הסרעפת יהיו במיקוד חד, ויוצרים תאורת קוהלר. התמקדו באזור ההכנה לתמונה ורכשו תמונה של הגנגליון המעניין עם המצלמה הדיגיטלית הפרפוקלית.

הגדר את מתג ההגברה של לוח הבקרה ל-1X ולחץ על לחצן עוצמת האור במנוחה כדי לבדוק את עוצמת האור הממוצעת במנוחה של הדיודות. כוונן את רמת המתח הנשלחת מממריץ לאספקת החשמל של מנורת LED והמשך לבדוק את רמת עוצמת האור הממוצעת במנוחה עד שהיא תהיה בטווח הרצוי. לאחר מכן הגדר את מתג הרווח של לוח הבקרה ל-100X עבור ההקלטה ובדוק שוב שהקפיץ או שולחן האוויר צפים.

כשהאורות עדיין מעומעמים, הגדר את משך הקובץ, הנתיב והשם בתוכנת ההדמיה ולחץ על קח נתונים כדי להשיג קבצים עד לקיבולת ה-RAM הזמין של המחשב. הקפד להישאר דומם במהלך ההקלטה מכיוון שרעידות קטנות עלולות להכניס חפצים גדולים לנתוני ההקלטה האופטית. כדי להציג את הנתונים מיד לאחר הרכישה, השתמש בפונקציה המונחת על גבי כדי להניח את הנתונים שנאספו על ידי כל 464 הדיודות על תמונת הגנגליון ולחץ על כל אחת מהדיודות המיוצגות בתוכנה כדי להרחיב את הנתונים המוקלטים במסך מעקב נפרד.

כדי להשיג יישור מדויק של הדיודות ביחס לתכשיר, הזן את גורמי ה-X, Y וההגדלה כפי שנקבעו על ידי בדיקת חור סיכה. כדי למקסם את נראות פוטנציאל הפעולה ולשפר את תפוקת הנוירונים למיון ספייק לאחר מכן, הטיל מסנן Butterworth מעבר פס עם חיתוכים של חמישה ו-100 הרץ כדי להסיר את הרעש בתדר הנמוך והגבוה כאחד. כדי לשמור את הנתונים האופטיים המסוננים כקובץ טקסט לניתוח עוקב, במסך הדף, בחר בתיבת המסנן TP.

ותחת לשונית הפלט, בחר שמור דף כ- ASCII. לאחר מכן הזן שם קובץ מתאים בתיבת הדו-שיח שמופיעה. מגע העור עם טורף כוכב הים שלו מפעיל את שחיית המילוט של טריטוניה דיומדיה המורכבת מסדרה קצבית של כיפופי גוף שלמים המניעים אותו למקום מבטחים.

באיור זה מוצגים נתונים גולמיים ומסוננים מ-20 דיודות המתעדות פעילות לפני, במהלך ואחרי גירוי של עצב הדוושה שלוש. מיד לאחר הרכישה, ניתן להציג טופוגרפית את האותות הנמדדים על ידי כל 464 הדיודות של מערך ההקלטה על גבי תמונה של ההכנה בתוכנת ההדמיה. בניתוח זה, מיון ספייק של עקבות הדיודות המסוננות עם ניתוח רכיבים עצמאי, או ICA, הניב 53 עקבות עצביים ייחודיים, 30 מהם מוצגים כאן.

גירוי זנב מרתיע מאוד ל-Aplysia californica מעורר גלים חוזרים ונשנים של תגובת בריחה קצבית דו-חלקית המורכבת מתקופת דהירה של מספר מחזורים של ריאות ראש ומשיכות זנב המניעות את החיה במהירות קדימה ותקופת זחילה שלאחר מכן. בניתוח מייצג זה, דקה אחת לתוך הקלטה אופטית רציפה של 20 דקות, עצב הדוושה תשע עורר כדי לעורר את רצף התוכנית המוטורית של דהירה-זחילה. ההתפלגות המרחבית הגאוסית ההסתברותית של האותות מכל 81 הנוירונים המתועדים מופו על הגנגליון.

הפחתת הממדים שהוחלה על ההקלטה המלאה גילתה כי שלבי הדהירה והזחילה של תוכנית המילוט תפסו אזורים נפרדים ויצרו מסלולים שונים במרחב הרכיבים העיקרי. כאשר מנסים פרוטוקול זה, שיקולים חשובים כוללים: אופטימיזציה של הצביעה, מזעור רעידות וניתוב מספיק אור דרך ההכנה ל-PDA תוך מזעור פוטו-הלבנה של הצבע. דוגמאות לניתוח לאחר הרכישה שחשף תובנות רשת ברמת האוכלוסייה כוללות זיהוי אנסמבל פונקציונלי באמצעות אשכולות קונצנזוס באלגוריתם למידה לא מפוקח והפחתת מימדים באמצעות ניתוח רכיבים עיקריים.

השילוב של מערכת ההדמיה מבוססת מערך הפוטו-דיודות שלנו והשימוש שלנו בצבעים רגישים למתח סופג מאפשר ניטור של התפתחות הרשת הדינמית לאורך פרקי זמן ממושכים.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

ביולוגיה גיליון 161 הקלטה אופטית צבעים רגישים למתח הדמיה בקנה מידה גדול טריטוניה אפליה ברגיה

Related Videos

In vivo 2-Photon סידן הדמיה ב Layer 2 / 3 של עכברים

08:10

In vivo 2-Photon סידן הדמיה ב Layer 2 / 3 של עכברים

Related Videos

29.4K Views

הקלטה אופטית של הפעילות החשמלית גינאה חזיר רשתות enteric באמצעות מתח רגיש צבעים

14:23

הקלטה אופטית של הפעילות החשמלית גינאה חזיר רשתות enteric באמצעות מתח רגיש צבעים

Related Videos

10.3K Views

דימות אופטי של נוירונים גנגליון סרטן Stomatogastric עם מתח רגיש צבעים

09:36

דימות אופטי של נוירונים גנגליון סרטן Stomatogastric עם מתח רגיש צבעים

Related Videos

13.5K Views

הקלטה אופטית של פעילות עצבית suprathreshold עם רזולוצית תא בודד ויחיד ספייק

08:48

הקלטה אופטית של פעילות עצבית suprathreshold עם רזולוצית תא בודד ויחיד ספייק

Related Videos

12.3K Views

הקלטת דיי מתח רגישה מהאקסונים, הדנדריטים וקוצים הדנדריטים של נוירונים בודדים בפרוסות מוח

12:51

הקלטת דיי מתח רגישה מהאקסונים, הדנדריטים וקוצים הדנדריטים של נוירונים בודדים בפרוסות מוח

Related Videos

17.2K Views

הקלטה אופטית של פעילות עצבית בפרוסות מוח מוכתמות בצבע רגיש למתח

03:10

הקלטה אופטית של פעילות עצבית בפרוסות מוח מוכתמות בצבע רגיש למתח

Related Videos

514 Views

שיטה לנאמנות גבוהה בקרת optogenetic של פרט פירמידת נוירונים בvivo

13:44

שיטה לנאמנות גבוהה בקרת optogenetic של פרט פירמידת נוירונים בvivo

Related Videos

19.5K Views

בהדמיה עצבית סיד vivo ב C. elegans

11:06

בהדמיה עצבית סיד vivo ב C. elegans

Related Videos

25.7K Views

סידן רציומטרי הדמיה של נוירונים בודדים ב מתנהג Caenorhabditis Elegans

11:26

סידן רציומטרי הדמיה של נוירונים בודדים ב מתנהג Caenorhabditis Elegans

Related Videos

12.1K Views

מולטי-סיב פונסה להקליט פעילות עצבית בבעלי חיים הנעים באופן חופשי

05:52

מולטי-סיב פונסה להקליט פעילות עצבית בבעלי חיים הנעים באופן חופשי

Related Videos

38.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code