Summary
在这里，我们提出了一种标记血小板裂解物衍生的细胞外囊泡的方案，以监测它们在软骨外植体中的迁移和摄取，这些外植体用作骨关节炎的模型。
Abstract
细胞外囊泡（EV）用于不同的研究，以证明其作为无细胞治疗的潜力，因为它们的货物来自其细胞来源，如血小板裂解物（PL）。当用作治疗时，EV有望进入靶细胞并从中产生反应。在这项研究中，PL衍生的EV已被研究为骨关节炎（OA）的无细胞治疗。因此，建立了一种方法来标记EV并测试它们在软骨外植体上的摄取。PL衍生的EV用亲脂性染料PKH26标记，通过柱洗涤两次，然后在通过纳米颗粒跟踪分析（NTA）进行颗粒定量后 在体外 炎症驱动的OA模型中测试5小时。每小时，将软骨外植体固定，石蜡化，切成6μm切片以安装在载玻片上，并在共聚焦显微镜下观察。这允许验证EV在此期间是否进入靶细胞（软骨细胞）并分析其直接影响。
Introduction
骨关节炎（OA）是一种关节退行性疾病，意味着进行性和不可逆的炎症和关节软骨细胞外基质的破坏1。虽然各种形式的关节炎有许多治疗方法2，3，4，但这些都受到其副作用和有限疗效的限制。使用自体软骨细胞植入的组织工程技术常规应用于早期OA软骨病变中受伤软骨的再生治疗4。基于细胞的疗法受到限制，主要是由于能够有效修复软骨的表型稳定的软骨细胞或软骨祖细胞的数量有限3。因此，开发新的治疗策略来预防疾病进展和再生大软骨病变至关重要。
细胞外囊泡（EV）已被不同的作者建议作为OA的治疗方法5，6。EV是由大多数细胞类型分泌的膜性体，参与细胞间信号传导，并且已被证明可以发挥干细胞的治疗作用7，8，9，因此它们最近引起了对再生医学的兴趣10。来自间充质基质细胞（MSCs）的EV是研究OA的主要治疗EV，尽管其他关节相关细胞已被用作EV来源，例如软骨祖细胞或免疫细胞11，12。
血小板浓缩物，如血小板裂解物（PLs），用于增强不同损伤的伤口愈合，如角膜溃疡13，14，15或肌腱组织再生16，因为假设血小板浓缩物的EV组分可能负责这些影响17.一些与关节相关疾病相关的研究使用血小板衍生的EV（PL-EV）作为改善骨关节炎疾病的治疗方法。PL-EV通过激活Wnt/β-catenin途径18来改善软骨细胞增殖和细胞迁移，促进骨关节炎软骨细胞19中软骨标志物的表达，或者在用PL-EVs18治疗的骨关节炎兔中显示出更高水平的软骨蛋白和更少的囊状异常。
EV含有释放到靶细胞的蛋白质，脂质和核酸，建立细胞间通讯，这是与其治疗应用相关的主要特征20。电动汽车的影响取决于它们到达细胞和随后的货物释放。这种效应可以通过细胞中引起的变化间接证实，例如代谢活动或基因表达修饰。然而，这些方法不允许可视化EV如何到达细胞以发挥其功能。因此，本文提出了一种标记这些PL衍生的EV的方法，以用作炎症驱动的OA软骨外植体的治疗方法。共聚焦显微镜用于监测EV的摄取和进展到外展体中存在的软骨细胞，延时为5小时。
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Protocol
注：软骨外植体是在CEI-IB（IB 3656118 PI）对项目进行伦理批准后，根据机构指南从IdISBa生物库（IB 1995/12 BIO）获得的。
1. 色谱柱制备
- 按照制造商的说明或如下方式平衡色谱柱：
- 取下柱帽并平衡柱。通过洗脱取除去储存缓冲液。
- 用2.5mL磷酸盐缓冲盐水（PBS）洗涤色谱柱3次。在每次洗涤过程中，等待色谱柱吸收整个体积。
注意：不要让色谱柱干燥。 - 在最后一次洗涤后用盖子盖住色谱柱，直到样品制备。
2. 电动汽车标签
注意：该EV标记方案使用先前通过尺寸排阻色谱（SEC）分离的PL-EV样品，其先前描述的条件为21，22。然而，来自任何来源的任何EV样品都可以与该协议一起使用。
- 使用浓缩管浓缩EV样品和对照（PBS）。
- 将样品置于15 mL或500μL浓缩管中，具体取决于EV样品起始量。根据制造商的说明离心管，直到获得几乎干燥的样品。
注：对照样品是检查任何染料背景所必需的。虽然这种方法不需要任何特定的初始体积，但应该考虑到在纯化步骤中会损失大约10%的颗粒。
- 将样品置于15 mL或500μL浓缩管中，具体取决于EV样品起始量。根据制造商的说明离心管，直到获得几乎干燥的样品。
- 用稀释剂C重悬浓缩样品，用200μL重悬EV样品，用100μL重悬对照组，并将其转移到新的1.5mL离心管中。
- 将EV样品分成两个100μL的等分试样，用染料标记一个并用作处理（PKH-PL-EV）;将另一个保留为未标记，但像EV样品一样对其进行处理（NTA-PL-EV），并用它来量化NTA的EV浓度。
- 制备2x染料溶液，在稀释剂C中产生8μM PKH26溶液。
- 在样品中每125μL稀释剂C混合1μL1mM PKH26接头。准备以1：1的比例添加到样品中所需的体积。
- 向PKH-PL-EV中加入2x染料溶液，并以1：1的比例对照样品，以达到1x染料浓度和4μM PKH26浓度。将相同体积的PBS添加到NTA-PL-EV样品中。在室温下孵育5分钟。
- 以1：1的比例向样品中加入5%牛血清白蛋白-PBS溶液，并确保最终体积约为400μL。
注意：此步骤允许去除非特异性染料相互作用或未结合的染料。 - 继续将标记的EV与未结合的染料以及染料与色谱柱的非特异性相互作用分开。
3. 贴标EV隔离
- 从色谱柱中取出盖子，加入400μL样品（PKH-PL-EV，NTA-PL-EV或对照），并丢弃所有洗脱的液体。
- 等待样本完全进入列，然后再继续下一步。加入600μLPBS并丢弃所有洗脱的液体。
- 等待 PBS 完全进入列，然后再继续执行下一步。加入600μLPBS，并在1.5中收集600μL的一小部分。mL 离心管（EV 或对照组）。
注意：需要这些步骤来去除样品中多余的染料。需要通过色谱柱进行另一次分离以获得更纯净的EV。因此，以下步骤应在新的平衡柱（步骤4.1）或初始洗涤步骤（步骤4.2）之后的同一色谱柱中执行。 - 为新的EV分离步骤准备色谱柱，以获得更纯净的EV。如果是新列，请重复步骤 2.1。和 2.2.如果是同一色谱柱，请用2.5 mL的20%异丙醇洗涤色谱柱，然后重复步骤2.1和2.2。
- 将步骤2.5中获得的600μL先前洗脱的EV加入色谱柱中，并弃去洗脱的体积。等待液体完全进入色谱柱，然后再继续下一步。
- 加入400μLPBS并丢弃所有洗脱体积。等待液体完全进入色谱柱，然后再继续下一步。
- 加入600μLPBS，并在1.5mL离心管中收集600μL的馏分。使用EV和对照样品进行进一步分析，或将其储存在4 oC下过夜。
- 存储使用的列以供将来使用。
- 用25mL的20%异丙醇洗涤色谱柱并丢弃洗脱的体积。用2.5 mL PBS洗涤色谱柱3次。
- 添加在步骤 1.1.1 中删除的存储缓冲区，并等待缓冲区进入列。用盖子盖住色谱柱，储存在4 oC，直到后续使用。
4. 电动汽车量化
- 按照以下两个步骤所述，准备1：1，000稀释的NTA-PL-EV样品和初始PL-EV样品。
- 准备1 mL 1：10稀释的NTA-PL-EV和1 mL的1：10稀释的初始PL-EV，PBS通过0.2μm过滤器过滤。
- 用PBS制备1 mL先前稀释的先前稀释样品的1：100稀释液，通过0.2μm过滤器过滤。
- 使用无菌注射器将1：1，000稀释的NTA-PL-EV样品或初始PL-EV样品注入NTA泵中。按照制造商的说明和建议进行颗粒浓度和尺寸分布测定。
注意：由于EV浓度取决于样品起始体积，因此可能需要读取中间稀释液并进行调整以获得正确的NTA测定。
5. 用于治疗炎症驱动型OA的EV
- 用PBS清洗软骨两次，并在无菌条件下使用直径为3mm的活检孔将其切除。
注意：在细胞培养罩中执行步骤5.1至5.6中的步骤。 - 将外植体置于96孔培养板中，其中DMEM-F12培养基在37 oC，5%CO2和80%湿度下补充1%青霉素 - 链霉素。
- 为了建立炎症驱动的OA模型，用10 ng / mL oncostatin M和2 ng / mL肿瘤坏死因子-α（TNFα）补充细胞培养基。
- 用1×109 个标记EV（PKH-PL-EV）颗粒/孔处理外植体，或在补充了癌抑素M和TNFα的细胞培养基中对照。
注意：测量含有1×109 个颗粒/孔的样品的体积，并使用相同的体积进行对照。 - 从含有软骨外植体的96孔细胞培养板中取出培养基。向每个孔中加入步骤5.3中描述的200μL细胞培养基。
注意：如果96孔板与胎牛血清（FBS）接触，则用200μLPBS洗涤每个孔三次，以从FBS中除去任何EV。 - 在不同时间停止 体外 测定：0，1，2，3，4和5小时。
- 用200μLPBS洗涤含有软骨外植体的细胞培养孔两次。
- 向组织中加入100μL4%多聚甲醛（PFA），在4 oC下固定3小时。
注：涉及PFA的步骤应按照安全数据表的建议在通风橱中执行。 - 除去PFA，加入100μLPBS，将固定组织储存在4°C，并在48小时内处理样品。
6. 显微镜制备和可视化
注意：该组织学程序包括脱水，石蜡包埋和补液步骤。这些步骤可能会降低整体染料荧光（PKH26数据表中提到的限制）。因此，其他程序，如冷冻切片，可能更适合通过共聚焦显微镜进行EV可视化。
- 将固定组织嵌入石蜡块中。将组织切成6μm厚的部分。
- 使组织切片脱蜡。
注：使用二甲苯的所有步骤均应在通风橱中进行。- 将组织切片浸入二甲苯中30分钟，100%乙醇浸入2分钟，96%乙醇浸入2分钟，75%乙醇浸入1分钟，最后在蒸馏水中浸泡30秒。
- 渗透组织切片。
- 准备0.1%Triton-0.1%柠檬酸钠溶液以透化组织。向每个组织切片中加入20μL滴剂，并在室温下孵育10分钟。用20μLPBS洗涤每节两次。
- 在显微镜载玻片上，加入一滴含有4′，6-二氨基-2-苯基吲哚（DAPI）的安装介质和水性安装介质，以保持荧光。盖住包含步骤6.3.1中的3个组织切片的载玻片。
- 将载玻片在室温下孵育过夜，避光。
- 储存在4°C，避光，直到共聚焦显微镜。
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Representative Results
EV标签和车载监测的原理图如图 1所示。 表1 中NTA检测到的颗粒浓度和EV大小表明，由于在用色谱柱标记后执行两次纯化步骤，EV浓度在加工过程中降低。然而，获得的量在用于处理的颗粒数量的最佳范围内。该颗粒浓度用于计算用于治疗骨关节炎软骨外植体的PKH-PL-EV和对照的体积。
一旦软骨外植体用EV或对照组处理，它们就会固定在不同的时期：0，1，2，3，4和5小时。然后将每组石蜡化，切片，并用含有DAPI的安装介质制备共聚焦显微镜。每个时间点每个组的代表性图像如图 2所示，显示了EV如何进入组织，直到它们到达软骨细胞并随着时间的推移进入它们。
如图 2所示，在孵育1小时后，标记的EV已经局限于软骨细胞周围（用DAPI染色显示为蓝色）（用PKH26染料以红色显示）。对于对照组，可以观察到由于残留染料引起的一些背景，该组没有EV，但按照与EV样品相同的方案进行处理。这些结果证实了标记EV的方案的成功，其可用于 在体外 测定和 体内 实验中监测其通过组织的迁移，如图所示。
图1：EV标签和摄取监测方案的示意图。 缩写： PBS = 磷酸盐缓冲盐水;EV =细胞外囊泡;室温 = 室温;BSA = 牛血清白蛋白;NTA = 纳米颗粒跟踪分析;OA = 骨关节炎;TNFα =肿瘤坏死因子-α;PL =血小板裂解物;PFA = 多聚甲醛;DAPI = 4′，6-二氨基-2-苯基吲哚。 请点击此处查看此图的放大版本。
图2：不同时间电动汽车摄取的代表性图像。 在与PKH标记的EV或对照组一起孵育0，1，2，3，4和5小时骨关节炎外植体后拍摄的共聚焦代表性图像。图像以400倍拍摄。比例尺 = 50 μm。缩写： OA = 骨关节炎;PL =血小板裂解物;EV = 细胞外囊泡。 请点击此处查看此图的放大版本。
| 浓度（颗粒/毫升） | 粒径（纳米） | |
| PL-EV（初始） | 3.03 × 1011 | 134.0 |
| 没有PKH26的NTA-PL-EV（协议后） | 8.30 × 1010 | 132.0 |
表1：通过纳米颗粒跟踪分析进行表征。 缩写： OA = 骨关节炎;PL =血小板裂解物;EV =细胞外囊泡;NTA = 纳米颗粒跟踪分析。
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Discussion
EV成像有助于了解EV特性，例如它们的释放和摄取机制。它们的成像允许监测它们的生物分布，并表征它们作为药物载体的药代动力学特性。然而，EV成像和跟踪可能由于其小尺寸而变得困难，尽管已经开发了许多成像设备和标记技术来帮助研究人员在体外和体内条件下监测EV23，24，25。
通过光学显微镜跟踪EV时存在两种可能性：生物发光和荧光成像。两者都用于检测可见光光谱（390-700nm）内的电动汽车。生物发光是一种在荧光素酶催化其底物氧化后产生的化学发光。虽然该信号需要超灵敏电荷耦合器件（CCD）相机进行检测，但由于信号不需要外部光源26，因此具有较高的信噪比。
荧光成像使用蛋白质或有机染料，它们在从外部光源激发后发出信号。与生物发光相比，荧光更容易被CCD相机检测到。此外，在生物发光中，应考虑底物毒性和底物生物发光的半衰期，以便实时EV跟踪27，28。
相比之下，基于荧光蛋白质和有机染料的标记在光学显微镜中以优异的分辨率使用。虽然荧光强度取决于EV蛋白表达水平，膜域EV标记的效率以及激发光源，但荧光染料为EV成像25提供了稳定而强大的信号。大多数有机荧光染料最初用于细胞膜成像。这些染料通常结合荧光团，通过不同的官能团29在EV上标记脂质双层或感兴趣的蛋白质。
一个有机荧光染料家族是亲脂性PKH染料家族，由荧光团和亲脂性碳青组成，该碳氰锚定在脂质双层中用于荧光成像30，31。PKH染料已被用于体外和体内研究，因为它们的体内半衰期范围为5至>100天。因此，染料在体内的持久性可能导致比染料半衰期更短的研究中的误导性结果。然而，PKH染料可用作示踪剂以显示EV迁移32。
PKH26是这种PKH亲脂性荧光团家族的成员，在红色光谱中发现，激发峰为551nm，发射峰为567nm。这使得它与其他检测通道（例如罗丹明，藻红素或DAPI33）兼容，在这种情况下，允许检测标有PKH26的EV向标有DAPI的软骨细胞的迁移。重要的是要注意，尽管PL在这里被用作EV源，但该协议可以用于来自其他来源的EV，并用于其他目的，例如，跟踪标记的EV的 体内 分布。
该协议有一些限制;例如，有人担心PKH26会增加EV的大小，这可能会影响它们的生物分布和细胞摄取。然而，在EV尺寸被PKH26增加的情况下，标记程序与该协议34中描述的不同。这些研究人员没有包括洗涤和纯化步骤，从而导致更高水平的游离染料，这可能导致更大的EV尺寸。此外，本方案通过在有和没有PKH26的情况下执行并行EV纯化来克服这个问题。这允许对未标记的EV样品进行表征，其处理方式与标记的EV样品相同。因此，可以避免由于混淆非特异性标记的颗粒（脂蛋白或蛋白质样品污染物）或由于标记混合物中存在非EV颗粒而产生的误导性定量，如前所述35，36。
本文采用色谱柱尺寸排阻色谱法进行两个纯化循环。第一种可由蔗糖梯度离心取代。然而，所有EV群体都收集在具有该色谱柱的同一洗脱等分试样中，并且不受高速离心中遇到的高 g 力的影响。然而，避免离心可能会导致过程变慢，特别是在分离周期之间需要柱洗的情况下。该方案的另一个限制是由于色谱柱的体积有限，在开始标记过程之前需要样品浓度。通过使用具有更高承载能力的柱子可以克服这一障碍。
其他EV标记方案描述了不同染料的使用;然而，它们使用超速离心步骤可能会损害EV的完整性37.这里描述的协议允许使用共聚焦显微镜轻松监测软骨外植体中的EV迁移和摄取，而无需任何特定功能。此外，这可以外推到其它组织和脂质样品或条件 ，例如体内 测定。
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Disclosures
作者没有利益冲突需要披露。
Acknowledgments
这项研究由卡洛斯三世社会研究所资助，由欧洲社会基金和ERDF欧洲区域发展基金共同资助（MS16/00124;CP16/00124）;由PROJECTA JUNIOR DEL PROYECTO TALENT PLUS，CONSTRUYENDO SALUD，GENERANDO VALOR（JUNIOR01/18）资助，由巴利阿里群岛的可持续旅游税资助;由 Direcció General d'Investigació， Conselleria d'Investigació， Govern Balear （FPI/2046/2017）;由FUTURMed内的FOLIUM博士后计划（FOLIUM 17/01）资助，由巴利阿里群岛的可持续旅游税资助50%，由ESF资助50%;并由巴利阿里银行基金会和基金会委员会（CDI21/03）提供。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Material | |||
| 1.5 mL Centrifuge tube | SPL life sciences | PLC60015 | |
| 1 mL Syringe BD Plastipak | BD | 303174 | |
| 2-Propanol (Isopropanol) | Panreac AppliChem | 1.310.901.211 | Prepared at 20% with Milli-Q water |
| 96-well culture plate | SPL life sciences | PLC30096 | |
| Absolute ethanol Pharmpur | Scharlab | ET0006005P | Used to prepare 96% and 75% ethanol with Milli-Q water |
| Biopsy Punch with plunger 3 mm | Scandidact | MTP-33-32 | |
| Bovine serum Albumin (BSA) | Sigma-Aldrich | A7030 | Prepared at 5% with PBS |
| Cartilage explants | IdISBa Biobank | ||
| Concentrating tube 15 mL Nanosep 100 kD Omega | Pall | MCP100C41 | |
| Concentrating tube 500 µL Nanosep 100 kD Omega | Pall | OD003C33 | |
| Cover glass 24 x 60 mm | Deltalab | D102460 | |
| DMEM-F12 -GlutaMAX medium | Biowest | L0092 | |
| Dulbecco's PBS (1x) | Capricorn Scientific | PBS-1A | |
| Embedded paraffin tissue blocks | IdISBa Biobank | Fee for service | |
| Exo-spin mini-HD columns | Cell guidance systems | EX05 | |
| Feather S35 Microtome Blade | Feather | 43037 | |
| Filtropur S 0.2 µm syringe filter | Sarstedt | 83.1826.001 | |
| Fluoroshield with DAPI | Sigma-Aldrich | F-6057 | |
| Oncostatin M Human | Sigma-Aldrich | O9635-10UG | Prepare a stock solution to a final concentration of 0.1 µg/µL diluten in PBS-0.1% BSA |
| Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | 8.18715.1000 | Prepared at 4% with PBS and stored at 4 °C |
| Penicillin-Streptomycin Solution 100x | Biowest | L0022 | |
| PKH26 Red Fluorescent Cell Linker Kit for General Cell Membrane Labeling | Sigma-Aldrich | MINI26 | PKH26 and Dliuent C included |
| Sodium citrate dihydrate | Scharlab | SO019911000 | |
| Superfrost Plus Microscope Slides | Thermo Scientific | J1800AMNZ | |
| TNFα | R&D systems | 210-TA-005 | Prepare a stock solution to a final concentration of 0.01 µg/µL diluted in PBS-0.1% BSA |
| Triton X-100 | Sigma-Aldrich | T8787 | Used to prepare a 0.1% Triton-0.1% sodium citrate solution with Milli-Q water |
| Xylene | Scharlab | XI0050005P | |
| Equipment | |||
| Centrifuge 5430 R | Eppendorf | 5428000210 | F-45-48-11 rotor |
| NanoSight NS300 | Malvern | NS300 | Device with embedded laser at λ= 532 nm and camera sCMOS |
| Shandon Finesse 325 Manual Microtome | Thermo Scientific™ | A78100101 | |
| TCS-SPE confocal microscope | Leica Microsystems | 5200000271 |
References
- Sutton, S., et al. The contribution of the synovium, synovial derived inflammatory cytokines and neuropeptides to the pathogenesis of osteoarthritis. The Veterinary Journal. 179 (1), 10-24 (2009).
- Zylińska, B., Silmanowicz, P., Sobczyńska-Rak, A., Jarosz, Ł, Szponder, T. Treatment of articular cartilage defects: Focus on tissue engineering. In Vivo. 32 (6), 1289-1300 (2018).
- Mobasheri, A., Kalamegam, G., Musumeci, G., Batt, M. E. Chondrocyte and mesenchymal stem cell-based therapies for cartilage repair in osteoarthritis and related orthopaedic conditions. Maturitas. 78 (3), 188-198 (2014).
- Ringe, J., Burmester, G. R., Sittinger, M. Regenerative medicine in rheumatic disease-progress in tissue engineering. Nature Reviews Rheumatology. 8 (8), 493-498 (2012).
- Ringe, J., Burmester, G. R., Sittinger, M. Regenerative medicine in rheumatic disease-progress in tissue engineering. Nature Reviews Rheumatology. 8 (8), 493-498 (2012).
- Burke, J., et al. et al.Therapeutic potential of mesenchymal stem cell based therapy for osteoarthritis. Clinical and Translational Medicine. 5 (1), 27 (2016).
- Doeppner, T. R., et al. Extracellular vesicles improve post-stroke neuroregeneration and prevent postischemic immunosuppression. Stem Cells Translational Medicine. 4 (10), 1131-1143 (2015).
- Bruno, S., et al. Mesenchymal stem cell-derived microvesicles protect against acute tubular injury. Journal of the American Society of Nephrology. 20 (5), 1053-1067 (2009).
- Bruno, S., Camussi, G. Role of mesenchymal stem cell-derived microvesicles in tissue repair. Pediatric Nephrology. 28 (12), 2249-2254 (2013).
- Théry, C. Exosomes: secreted vesicles and intercellular communications. F1000 Biology Reports. 3, 15 (2011).
- D'Arrigo, D., et al. Secretome and extracellular vesicles as new biological therapies for knee osteoarthritis: a systematic review. Journal of Clinical Medicine. 8 (11), 1867 (2019).
- Ryan, S. T., et al. Extracellular vesicles from mesenchymal stromal cells for the treatment of inflammation-related conditions. International Journal of Molecular Sciences. 22 (6), 1-34 (2021).
- El Backly, R., et al. Platelet lysate induces in vitro wound healing of human keratinocytes associated with a strong proinflammatory response. Tissue Engineering. Part A. 17 (13-14), 1787-1800 (2011).
- Yuta, K., et al. Graefe's archive for clinical and experimental ophthalmology outcomes of phacoemulsification in patients with chronic ocular graft-versus-host disease. Bone Marrow Transplantation. 45 (3), 479-483 (2013).
- Del Bue, M., et al. Platelet lysate promotes in vitro proliferation of equine mesenchymal stem cells and tenocytes. Veterinary Research Communications. 31, Suppl. 1 289-292 (2007).
- Klatte-Schulz, F., et al. Comparative analysis of different platelet lysates and platelet rich preparations to stimulate tendon cell biology: an in vitro study. International Journal of Molecular Sciences. 19 (1), 212 (2018).
- Headland, S. E., et al. Neutrophil-derived microvesicles enter cartilage and protect the joint in inflammatory arthritis. Science Translational Medicine. 7 (315), 1-13 (2015).
- Liu, X., et al. Exosomes derived from platelet-rich plasma present a novel potential in alleviating knee osteoarthritis by promoting proliferation and inhibiting apoptosis of chondrocyte via Wnt/β-catenin signaling pathway. Journal of Orthopaedic Surgery and Research. 14 (1), 470 (2019).
- Otahal, A., et al. Characterization and chondroprotective effects of extracellular vesicles from plasma- and serum-based autologous blood-derived products for osteoarthritis therapy. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 8 (1), 584050 (2020).
- Penfornis, P., Vallabhaneni, K. C., Whitt, J., Pochampally, R. Extracellular vesicles as carriers of microRNA, proteins and lipids in tumor microenvironment. International Journal of Cancer. 138 (1), 14-21 (2016).
- Ortega, F. G., et al. Interfering with endolysosomal trafficking enhances release of bioactive exosomes. Nanomedicine: Nanotechnology, Biology, and Medicine. 20, 102014 (2019).
- de Miguel Pérez, D., et al. Extracellular vesicle-miRNAs as liquid biopsy biomarkers for disease identification and prognosis in metastatic colorectal cancer patients. Scientific Reports. 10 (1), 1-13 (2020).
- Morelli, A. E., et al. Endocytosis, intracellular sorting, and processing of exosomes by dendritic cells. Blood. 104 (10), 3257-3266 (2004).
- Feng, D., et al. Cellular internalization of exosomes occurs through phagocytosis. Traffic. 11 (5), 675-687 (2010).
- Chuo, S. T. Y., Chien, J. C. Y., Lai, C. P. K. Imaging extracellular vesicles: Current and emerging methods. Journal of Biomedical Science. 25, 91 (2018).
- Rice, B. W., Cable, M. D., Nelson, M. B. In vivo imaging of light-emitting probes. Journal of Biomedical Optics. 6 (4), 432 (2001).
- Lai, C. P., et al. Visualization and tracking of tumour extracellular vesicle delivery and RNA translation using multiplexed reporters. Nature Communications. 6, 7029 (2015).
- Takahashi, Y., et al. Visualization and in vivo tracking of the exosomes of murine melanoma B16-BL6 cells in mice after intravenous injection. Journal of Biotechnology. 165 (2), 77-84 (2013).
- Askenasy, N., Farkas, D. L. Optical imaging of PKH-labeled hematopoietic cells in recipient bone marrow in vivo. Stem Cells. 20 (6), 501-513 (2002).
- Tamura, R., Uemoto, S., Tabata, Y. Immunosuppressive effect of mesenchymal stem cell-derived exosomes on a concanavalin A-induced liver injury model. Inflammation and Regeneration. 36, 26 (2016).
- Deddens, J. C., et al. Circulating extracellular vesicles contain miRNAs and are released as early biomarkers for cardiac injury. Journal of Cardiovascular Translational Research. 9 (4), 291-301 (2016).
- Skardelly, M., et al. Long-term benefit of human fetal neuronal progenitor cell transplantation in a clinically adapted model after traumatic brain injury. Journal of Neurotrauma. 28 (3), 401-414 (2011).
- Protocol guide: Exosome labeling using PKH lipophilic membrane dyes. Sigma-Aldrich. , Available from: https://www.sigmaaldrich.com/technical-documents/protocols/biology/cell-culture/exosome-labeling-pkh.html (2021).
- Dehghani, M., Gulvin, S. M., Flax, J., Gaborski, T. R. Systematic evaluation of PKH labelling on extracellular vesicle size by nanoparticle tracking analysis. Scientific Reports. 10 (1), 1-10 (2020).
- Morales-Kastresana, A., et al. Labeling extracellular vesicles for nanoscale flow cytometry. Scientific Reports. 7 (1), 1-10 (2017).
- Takov, K., Yellon, D. M., Davidson, S. M. Confounding factors in vesicle uptake studies using fluorescent lipophilic membrane dyes. Journal of Extracellular Vesicles. 6 (1), 1388731 (2017).
- Mortati, L., et al. In vitro study of extracellular vesicles migration in cartilage-derived osteoarthritis samples using real-time quantitative multimodal nonlinear optics imaging. Pharmaceutics. 12 (8), 1-18 (2020).
