Name: Un modello murino della formazione muscolare da stimolazione elettrica neuromuscolare (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-05-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 24 s
Description: Scopri un modello murino di allenamento muscolare mediante stimolazione elettrica neuromuscolare (NMES). Questo metodo permette di studiare la fisiologia muscolare e sviluppare protocolli clinici ottimizzati.

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Questo lavoro è stato finanziato dal National Institutes of Health (NIH) K12 per terapisti fisici e occupazionali-complete le opportunità di formazione Rehabilitation Research (K12 HD055931), la Fondazione per la terapia fisica e la Pittsburgh Claude D. Pepper Older americani Independence Centro (P30 AG024827 ).

1. Elettrodo Preparazione <ul><li> Tagliare un cm 1 x 1 sezione cm del circuito vettore. </li><li> Stabilizzare 2 perni wirewrap utilizzando una morsa, con perni distanziati di circa 3,5 mm l&#39;uno dall&#39;altro. Le estremità biforcati dei perni deve essere rivolto verso l&#39;alto. </li><li> Piegare wirewrap perni ad un angolo di 90 °, circa a metà della loro lunghezza, con una pinza ad ago. </li><li> Esporre i fili di rame di connettori, di circa 7 cm dal collegamento di piombo, mettendo a nudo l&#39;isolamento del filo. </li><li> Saldare uno dei fili di rame per la estremità biforcata di uno dei perni wirewrap. Ripetere il passaggio di saldatura per il perno wirewrap altro. </li><li> Tirare termorestringente in connessione saldata tra i fili di rame e spille d&#39;oro, al fine di isolare e stabilizzare. Riscaldare il tubo utilizzando la punta di saldatura. </li><li> Inserire le punte non saldati dei perni wirewrap nelle aperture adiacenti del circuito basetta. </li><li> Assicurarsi che i perni wirewrap sono parallele tra loro e stick attraverso la basetta in modo tale che le punte si trovano alla stessa distanza, quando sono immessi attraverso la scheda. </li><li> Incorpora estremità saldati dei perni in resina epossidica trasparente. Lasciare che la resina catalizzi per circa 10 minuti, o fino a completa asciugatura. </li><li> Ripetere l&#39;applicazione di resina finché i perni e la scheda di vettore sono completamente incorporati per fornire integrità strutturale e serracavo per i cavi. </li><li> Carteggiare epossidica utilizzando un file di metallo per esporre le punte dei perni oro. </li><li> Utilizzare un multimetro per garantire che i due cavi non sono elettricamente corto e che i cavi hanno una continuità adeguata </li><li> Collegare l&#39;elettrodo conduce dal dispositivo NMES a femmina 2-way connettore del cavo (patch cord Pomona). </li></ul> 2. Preparazione degli animali <ul><li> Gli animali sono anestetizzati tramite inalazione utilizzando 2% isofluorano (Abbott Laboratories, North Chicago, IL) in 100% O 2 gas. L&#39;animale deve rimanere anestetizzati tutta tha NMES sessione. </li><li> Prima di iniziare il protocollo NMES eseguire una presa punta per garantire che l&#39;animale è anestetizzato completamente. </li><li> Animale deve essere controllata regolarmente per la risposta alla stimolazione in modo da assicurare il livello di anestetico è sufficiente. L&#39;anestesia deve essere regolata in base alle esigenze. Movimento diversa da quella della gamba stimolata, variazioni di profondità respiratoria, e il colore delle mucose dovrebbero essere valutati per monitorare regolarmente profondità di anestesia. </li><li> Posizionare l&#39;animale in decubito laterale. </li><li> Applicare il lubrificante oftalmico agli occhi, al fine di impedire l&#39;essiccamento della cornea durante la procedura. </li><li> Radere l&#39;area arti posteriori da trattare, e pulire con alcool. </li><li> Pulire l&#39;elettrodo con il 3% di candeggina, poi risciacquare con acqua. </li><li> Applicare uno strato di gel conduttivo sul luogo dove l&#39;elettrodo viene applicato. Riapplicare se necessario durante il protocollo NMES per garantire un flusso di corrente tra l&#39;elettrodo e la pelle. </li><li> Una lampada riscaldante or coperta di acqua circolante dovrebbe essere usata per mantenere i normali intervalli di base del corpo. </li><li> Nota: Tutte le procedure sono stati esaminati e approvati dalla University of Pittsburgh Institutional Animal Care e il Comitato Usa e si esibisce in PHS assicurati ed AAALAC Int. programma accreditato e servizi. </li></ul> 3. Stimolazione <ul><li> Posizionamento degli elettrodi per: <ul><li> Per la stimolazione dei muscoli del compartimento anteriore, tra cui il tibiale anteriore e il muscolo estensore lungo delle dita, posizionare l&#39;elettrodo superficie direttamente sul nervo profondo peroneale dell&#39;animale, che è un ramo distale off del nervo peroneo comune, e si trova appena anteriormente al l&#39; testa del perone. </li><li> Per la stimolazione dei muscoli del compartimento anteriore, il posizionamento dell&#39;elettrodo viene confermata quando la stimolazione provoca la flessione dorsale della caviglia e la piena estensione completa delle cifre. D&#39;altra parte, dorsiflessione, in assenza di estensione cifra indica che solo il tibiale anteriore del muscolo viene stimolato. Tale risposta contrattile mirata può essere auspicabile, a seconda del modello di studio. </li><li> La contrazione del muscolo si divide in 2 fasi di stimolazione: un libero mobile, fase concentrica, che si verifica durante la fase iniziale ~ 0,5 secondi. Durante questa prima fase, la zampa si sposta da una posizione di riposo alla massima dorsiflessione ed estensione cifra. La seconda fase della stimolazione è una contrazione isometrica sostenuta alla fine del campo di dorsiflessione e l&#39;estensione cifra. </li></ul></li><li> Stimolazione parametri: <ul><li> Questo modello utilizza il NMES PV 300 Empi elettroterapia dispositivo multifunzione, che offre 2 canali di NMES convenzionali (vedi tabella). Ai fini di questo modello, solo 1 canale viene utilizzato. </li><li> Parametri utilizzati includono simmetrica forma d&#39;onda, una durata di impulso di 150 ms e una frequenza di 50Hz. Tempo di stimolazione è impostato a 5 secondi, con una crescita dello 0,5 seconda rampa e una rampa di 0,5 secondi verso il basso. Ciò consentirà il muscolo di più gradualmente acclicompagno alla stimolazione. Nel protocollo attuale, al largo di tempo tra le contrazioni è stato impostato a 10 secondi, ma questo può essere regolata a seconda dell&#39;effetto desiderato. Diminuzione spegnimento si tradurrà in un inizio più rapido affaticamento muscolare. Questi parametri di stimolazione sono basati su protocolli clinici progettati per migliorare la forza muscolare mediante stimolazione elettrica neuromuscolare, senza indurre danni significativi muscolo scheletrico 1, 15, 16. </li><li> I topi completare due serie di 10 contrazioni, con una pausa in 5 minuti tra le serie. </li><li> Per gli animali adulti, l&#39;intensità è tipicamente NMES iniziata alle 9 mA. Dalla nostra esperienza, questo è approssimativa alla massima intensità di partenza che non induce un danno notevole passo immediatamente dopo stimolazione. Per le sessioni successive NMES, l&#39;intensità è aumentata di 1 mA ogni volta che gli animali sono in grado di completare 20 dorsiflexions completi. </li></ul></li><li> A seguito del completamento della stimolazione protocollo e recomolto dall&#39;anestesia, gli animali in genere dare prova di una normale andatura e la postura. Gait dovrebbe rimanere integro per tutta la durata del programma NMES. </li></ul> 4. Risultati rappresentativi Il protocollo NMES descritto in questo articolo è stato implementato in ceppi di topi, tra cui: wild type (B6/10), B6.SCID e mdx / topi SCID. Risultati rappresentativi di NMES eseguite nell&#39;arco di 4 settimane (20 sessioni) in 3-5 mesi di età mdx / SCID sono presentati. Gli animali sono stati umanamente eutanasia mediante dislocazione cervicale mentre sotto anestesia. Il muscolo tibiale anteriore è stato raccolto ed immediatamente congelato in 2 metil-butano pre-raffreddato in azoto liquido e conservati a -80 ° C. Sezioni seriali (10 um) sono stati ottenuti e montate su vetrini. Le analisi statistiche sono state eseguite utilizzando standard di pacchetti software statistici (SPSS, v19.0 software). In primo luogo, il test di Levene è stato utilizzato per valutare se ci wal&#39;uguaglianza delle varianze s. Campioni indipendenti t-test è stata poi effettuata per valutare le differenze tra NMES e gruppi di controllo. Ematossilina ed eosina (H &amp; E) le macchie sono stati eseguiti per verificare se il protocollo NMES comporterebbe lesioni aumentato nel muscolo distrofico. Una sezione è stato selezionato, e le immagini sono state ottenute utilizzando un microscopio ottico (Nikon Eclipse E800, Nikon, Giappone). Il numero totale di fibre e il numero di fibre con nuclei in posizione centrale sono stati contati manualmente utilizzando il National Institutes of Health (NIH) - ha sviluppato software di analisi dell&#39;immagine, immagine J. c&#39;è stato un aumento significativo dell&#39;indice di rigenerazione (numero di fibre centrale nucleate / numero totale di fibre) negli animali sottoposti a NMES, rispetto ai controlli (p = 0,802; figura 1). Questo suggerisce che l&#39;applicazione di NMES non aumenta la degenerazione-rigenerazione cascata osservate in animali distrofiche, e non è quindi probabileda indurre un danno maggiore muscolare. Colorazione immunofluorescente per CD31 è stata eseguita per investigare l&#39;effetto del 4-settimane protocollo NMES sulla vascolarizzazione muscolare. Brevemente, le sezioni muscolari sono stati fissati in formalina 4% e bloccato con il 5% siero di cavallo (HS). Le sezioni sono state incubate con un anticorpo di ratto anti-topo primario (diluizione 1:300 in 5% di HS) e trattato con 555-marcato di capra anti-topo anticorpo secondario (diluizione 1:300 in 5% di HS). Per quantificare il numero totale di cellule CD31 positive, una parte è stata selezionata, e fotografato con il microscopio a fluorescenza (Nikon Eclipse E800, Giappone). Il numero totale di capillari è stato contato manualmente utilizzando Nord Eclipse Software (Empix Imaging Inc.). C&#39;è stato un significativo aumento del numero di cellule CD31 positive negli animali sottoposti a NMES rispetto ai controlli (p &lt;0,01; figura 2), che indica che il protocollo NMES come descritto promuove l&#39;angiogenesi del muscolo scheletrico. <strong&gt; Nei test in situ contrattile: Quattro settimane dopo il completamento di un protocollo NMES, prove contrattile dei muscoli del compartimento anteriore è stata eseguita utilizzando un apparecchio di prova in situ (modello 809B, Aurora Scientific Inc, Canada), stimolatore (modello 701C, Aurora Scientific Inc , Canada), e la forza trasduttore (Aurora Scientific Inc, Canada). Brevemente, il nervo peroneo di animali anestetizzati stato isolato attraverso una piccola incisione laterale al ginocchio. I topi sono stati quindi posti in posizione supina su una piattaforma e il piede in fase di sperimentazione è stata posizionata sulla pedana. Il arti posteriori utilizzato per il test è stata stabilizzata con nastro in tessuto sul ginocchio e del piede. I muscoli sono stati stimolati utilizzando un gancio elettrodi inseriti sotto la pelle. Contrazione muscolare tetanica è stato testato con una frequenza di 150Hz per 350ms di verificare se il protocollo di 4 settimane NMES indurrebbero miglioramenti nella forza muscolare. I risultati sono stati normalizzati per il peso muscolare bagnato. C&#39;è stato un aumento di circa il 30% in tetanic contrazione degli animali sottoposti a NMES, rispetto ai controlli (p = 0,005) (Figura 3), suggerendo il protocollo descritto migliora la resistenza dei muscoli scheletrici in mdx / SCID animali. <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/3914/3914fig1.jpg" /> . Figura 1 ematossilina eosina e colorazione del muscolo scheletrico distrofici (mdx) / topi immunodeficienti (4-5 mesi) (ingrandimento 10x): a) controlli non trattati, B) dopo 4 settimane di NMES. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/3914/3914fig2.jpg" /> Figura 2. CD31 immunofluorescenza (rosso), come marker di vascolarizzazione muscolo scheletrico, nel muscolo scheletrico di distrofici (mdx) / topi immunodeficienti (4-5 mesi) (20x) a) controlli non trattati, B) dopo 4 settimane NMES. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/3914/3914fig3.jpg" /> Figura 3. Test contrattiledei muscoli compartimento anteriore nel controllo e negli animali trattati con NMES per 4 settimane. mNm = milli Newtonmetri. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/3914/3914fig3large.jpg">Clicca qui per ingrandire la figura</a> .

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Non abbiamo nulla da rivelare.

Questi risultati suggeriscono che il nostro modello sviluppato murino di NMES promuove l&#39;angiogenesi del muscolo scheletrico (Figura 2) e il rafforzamento (Figura 3), ma non indurre un danno del muscolo scheletrico (Figura 1). Va osservato che i parametri di stimolazione descritti qui sono stati progettati per indurre un muscolo sovraccarico ai muscoli compartimento anteriore. Così come è il caso per scenari clinici, il posizionamento degli elettrodi può essere regolato per stimolare altri gruppi muscolari, sebbene la risposta di muscolo NMES può essere diverso, a seconda del tipo di composizione delle fibre. NMES durata, il numero totale di sessioni di trattamento, e il numero totale di ripetizioni può essere modificato secondo lo studio di progettazione. Come con qualsiasi protocollo, questo metodo ha dei limiti che devono essere notato. Nel presente studio, la stimolazione è stata eseguita sopra il nervo peroneale profondo. Tuttavia, nella clinica, la stimolazione is in genere somministrato al gruppo motore. Nel modello animale, la stimolazione del nervo richiederebbe una intensità inferiore in modo da ottenere la contrazione muscolare piena. Un altro limite del modello presentato è che siamo in grado di ottenere informazioni riguardanti il ​​livello di comfort durante l&#39;applicazione del NMES, dato che gli animali sono anestetizzati. Pertanto, la tollerabilità di intensità paragonabile in una popolazione clinica è difficile da valutare. Tuttavia, i nostri risultati istologici suggeriscono il nostro modello NMES, come descritto, non induce lesioni muscolari. Lo sviluppo di modelli animali che imitano le modalità comunemente implementate in clinica ci forniscono utili strumenti di laboratorio che consente una migliore comprensione delle risposte cellulari e molecolari per interventi terapeutici. Inoltre, tali modelli sono utili per condurre studi pre-clinici per affinare entrambi i protocolli di riabilitazione esistenti e sviluppare nuove indicazioni.

<table border="1"><tbody><tr><td> Nome del reattivo </td><td> Azienda </td><td> Numero di catalogo </td></tr><tr><td> Vettoriali avvolgere articoli wire con terminale a saldare biforcato </td><td> Newark </td><td> T68 </td></tr><tr><td> Vector circuito </td><td> Newark </td><td> 3662-2 </td></tr><tr><td> Pomona Cavo patch </td><td> Newark </td><td> P-36-0 </td></tr><tr><td> Epoxy 5 minuti </td><td> VO Baker Co. </td><td> 4001 </td></tr><tr><td> Spectra 360 elettrodi Gel </td><td> Milliken Medical </td><td> MR41217 </td></tr><tr><td> Portable dispositivo di stimolazione neuromuscolare </td><td> EMPI </td><td> 300PV </td></tr></tbody></table>

un modello murino della formazione muscolare da stimolazione elettrica neuromuscolare

A Murine Model of Muscle Training by Neuromuscular Electrical Stimulation

Neuromuscolare stimolazione elettrica (NMES) è una modalità comune clinico che è ampiamente utilizzato per ripristinare 1, 2 mantenere o migliorare 3-5 capacità funzionale del muscolo. Stimolazione transcutanea superficie del muscolo scheletrico prevede un flusso di corrente tra un catodo e un anodo, inducendo così l&#39;eccitazione del gruppo motore e le fibre muscolari circostanti. NMES è una modalità interessante per valutare la risposta del muscolo scheletrico di adattamento per diverse ragioni. In primo luogo, fornisce un modello riproducibile sperimentale in cui adattamenti fisiologici, come ad esempio hypertophy miofibre e il rafforzamento muscolare 6, angiogenesi 7-9, la secrezione di fattore di crescita 9-11, e precursore di attivazione delle cellule muscolari 12 sono ben documentati. Queste risposte fisiologiche possono essere attentamente titolata utilizzando diversi parametri di stimolazione (per la revisione Cochrane, vedi 13). Inoltre, NMES recluteunità motorie non selettivo, ed in modo spazialmente e temporalmente fisso sincrono 14, che offre il vantaggio di esercitare un effetto di trattamento su tutte le fibre, indipendentemente dal tipo di fibra. Anche se ci sono controindicazioni specifiche a NMES in popolazioni cliniche, incluse le patologie venose periferiche o neoplasie, ad esempio, NMES è sicura e fattibile, anche per coloro che sono malati e / o costretto a letto e per le popolazioni in cui l&#39;esercizio rigoroso può essere impegnativo. Qui, dimostriamo il protocollo di adattamento elettrodi disponibili in commercio ed eseguendo un protocollo NMES utilizzando un modello murino. Questo modello animale ha il vantaggio di utilizzare un dispositivo clinicamente disponibile e fornendo un feedback immediato per quanto riguarda il posizionamento dell&#39;elettrodo di suscitare l&#39;effetto desiderato muscolo contrattile. Ai fini della presente manoscritto, verrà descritto il protocollo per la stimolazione muscolare dei muscoli compartimento anteriore degli arti posteriori di un topo.

Un modello murino di stimolazione elettrica neuromuscolare (NMES), una modalità sicuro ed economico clinica, ai muscoli compartimento anteriore viene descritto. Questo modello ha il vantaggio di modificare un dispositivo facilmente disponibile clinica allo scopo di elicitare contrazioni muscolari mirate e specifiche nei topi.

Un modello murino della formazione muscolare da stimolazione elettrica neuromuscolare

La stimolazione elettrica neuromuscolare (NMES) è una modalità clinica comune, ampiamente utilizzata per ripristinare1, mantenere2 o migliorare3-5 la funzionalità muscolare...

L'obiettivo generale di questa procedura è dimostrare un modello murino di allenamento muscolare mediante stimolazione elettrica neuromuscolare. Questo viene realizzato adattando innanzitutto un elettrodo superficiale clinicamente disponibile, progettato per l'uso nell'uomo, a un elettrodo superficiale utilizzabile nei topi; successivamente si anestetizza e posiziona l'animale per la stimolazione. Quindi si posiziona l'elettrodo superficiale direttamente sopra il nervo fibulare profondo, appena distale rispetto alla testa del perone.L'ultimo passaggio consiste nell'eseguire il protocollo di stimolazione dei muscoli anteriori flessori. In definitiva, l'analisi istologica mostra un aumento della vascolarizzazione del muscolo scheletrico e i test contrattili in situ mostrano un aumento della forza tetanica massima. Ciao, mi chiamo Fabrizio.Sono professore assistente presso il Dipartimento di Medicina Fisica e Riabilitativa dell'Università di Pittsburgh e direttore del Cellular Rehabilitation Laboratory. Oggi vi mostreremo un modello di allenamento muscolare basato sul principio dello specchio, utilizzando una stimolazione elettrica neuromuscolare. In questa prima parte della dimostrazione, vi illustreremo come modificare un elettrodo superficiale clinicamente disponibile in un elettrodo utilizzabile per stimolare il muscolo scheletrico nei topi.Nella seconda parte, illustreremo come implementare questo protocollo di stimolazione elettrica neuromuscolare nei vostri esperimenti e nello sviluppo di modelli animali che riproducono fedelmente le condizioni cliniche. L’utilizzo del modello clinico è importante perché ci permette di rispondere a domande relative alla fisiologia del muscolo scheletrico, ad esempio in che modo l’attivazione muscolare innesta risposte meccanotrasduttive, analizzabili a livello molecolare, cellulare e tissutale. Salve, mi chiamo Ricardo Ferrari.Sono uno studente di dottorato in terapia fisica presso il Dipartimento di Terapia Fisica dell'Università di Pittsburgh. La stimolazione elettrica muscolare è una procedura comune in ambito clinico per aumentare la forza muscolare e migliorare la guarigione muscolare. Tuttavia, rimangono molte domande riguardo ai parametri ottimali da utilizzare.Questo modello animale potrebbe contribuire allo sviluppo di protocolli specifici di stimolazione elettrica per l'uso in ambito clinico. Per preparare l'elettrodo, iniziare piegando due perni d'oro lunghi sei millimetri ad un angolo di 90 gradi. Successivamente, esporre circa sette centimetri di due fili di rame rimuovendo l'isolamento esterno.Quindi saldare i fili dei connettori ai due perni dorati, posizionati a circa 3,5 millimetri di distanza l'uno dall'altro. Successivamente, posizionare un tubo termorestringente sul collegamento tra i fili di rame e i perni dorati per isolamento e stabilizzazione; riscaldare il tubo termorestringente, assicurandosi che i perni dorati siano paralleli tra loro, e inserirli attraverso la scheda circuitale in modo che le punte siano allineate. In seguito, incapsulare i perni con più applicazioni di resina epossidica trasparente, lasciando asciugare completamente l'epossidico tra un'applicazione e l'altra; alla fine, carteggiare l'epossidico per esporre le punte dei perni dorati.Successivamente, utilizzare un voltmetro per verificare che i cavi non siano in corto circuito. Quindi, utilizzare un tubo di plastica per isolare i perni metallici del connettore elettrico femmina a due vie. Successivamente, collegare i cavi dell'elettrodo al connettore elettrico femmina a due vie.Tutte le procedure sono state esaminate e approvate dal comitato Iacuc dell'Università di Pittsburgh e sono state eseguite in programmi e strutture accreditate PHS Assured e ALAC. I programmi e le strutture internazionali accreditati anestetizzano l'animale mediante inalazione di isoflurano. L'animale deve rimanere anestetizzato per tutta la durata della sessione di NMES.Verificare l'anestesia mediante un test del riflesso estensore alla pressione sul dito del piede. Successivamente, posizionare l'animale in posizione laterale. Poi rasare l'arto posteriore, pulirlo con alcolato e pulire l'elettrodo con candeggina al 3%.Quindi, utilizzando acqua, impostare i parametri di stimolazione, inclusa una durata dell'impulso di 150 microsecondi e una frequenza di 50 PP s. Impostare quindi il tempo di stimolazione a cinque secondi, con un incremento di 0,5 secondi e un decremento di 0,5 secondi. Questo permetterà al muscolo di adattarsi gradualmente alla stimolazione ed è più confortevole per l'animale.Successivamente, impostare il tempo di pausa tra le contrazioni su 10 secondi. Questo valore può essere regolato in base all'effetto desiderato, ma tempi di pausa più brevi determineranno un'avvio più rapido dell'affaticamento muscolare. Poi, sterilizzare l'elettrodo con una soluzione al 3% di candeggina e successivamente con acqua, applicare del gel conduttivo sull'elettrodo per la stimolazione dei muscoli del compartimento anteriore, inclusi il muscolo tibiale anteriore e il muscolo estensore lungo delle dita, e posizionare l'elettrodo superficiale direttamente sopra il nervo perineale comune dell'animale, localizzato appena distale al condilo femorale laterale.La posizione dell'elettrodo viene confermata quando la stimolazione provoca una completa dorsiflessione della caviglia e un'estensione completa delle dita. D'altro canto, la dorsiflessione della zampa senza estensione delle dita suggerisce che solo il muscolo tibiale anteriore sta venendo stimolato. Successivamente, impostare l'intensità della stimolazione elettrica neuromuscolare (NMES) a nove milliampere ed eseguire due serie di contrazioni per un totale di 20 contrazioni, con una pausa di cinque minuti tra le serie; durante il periodo di riposo, si effettua la stimolazione del membro controlaterale.Ora posizionare l'animale nella camera di recupero. Dopo quattro settimane di stimolazione elettrica neuromuscolare in topi MDX di età compresa tra tre e cinque mesi, la colorazione ematossilina-eosina del muscolo scheletrico non rivela un aumento del numero di fibre con nucleo centrale rispetto ai controlli non stimolati. Ciò suggerisce che l'applicazione della stimolazione elettrica neuromuscolare non innesca la cascata di degenerazione e rigenerazione.L'immunoeistochimica per CD31 come marcatore delle cellule endoteliali rivela che, rispetto ai topi di controllo non sottoposti a stimolazione, quattro settimane di stimolazione elettrica neuromuscolare (NMES) hanno determinato una significativa angiogenesi nel muscolo trattato. Questa figura mostra l'aumento della forza tetanica massima nei muscoli trattati con NMES rispetto ai muscoli di controllo non trattati. Una volta acquisita padronanza di questa tecnica, il completamento del protocollo richiede circa 15 minuti per animale.La parte più difficile di questo protocollo consiste nel trovare la posizione corretta per posizionare l'elettrodo al fine di ottenere la risposta muscolare desiderata. Grazie per aver guardato. Non esitate a contattare il nostro laboratorio qualora abbiate domande.

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