Name: Utilizzo sinergico delle cellule neurali e precursori peptidi autoassemblanti in Sperimentale Cervical Spinal Cord Injury (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-23T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 57 s
Description: Scopri un metodo per trattare lesioni spinali cervicali utilizzando peptidi autoassemblanti e cellule neurali precursore in un modello murino. Questa tecnica combinatoria promuove la rigenerazione del tessuto nervoso danneggiato.

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Vorremmo riconoscere il sostegno finanziario per questo lavoro dal Canadian Institutes of Health Research (CIHR), Family Foundation Krembil, il Halbert cattedra di riparazione Neural and Regeneration, Phillip e Peggy DeZwirek, e Gordon Yao per il contributo alla Figura 2 . Klaus Zweckberger è stato finanziato da una sovvenzione della &quot;Deutsche Forschungsgesellschaft&quot; (DFG).

NOTA: La seguente protocollo sperimentale è stato approvato dal comitato cura degli animali della University Health Network (Toronto, Canada), ed è in conformità con le politiche stabilite nella guida per la cura e l&#39;uso di animali da esperimento preparata dal Consiglio canadese della cura degli animali . 1. cervicale Contusione Aneurysm Clip / compressione Modello <ol><li> Prima di strumenti autoclave chirurgia e mantenere condizioni di sterilità durante tutta la procedura surgcial mettendo gli strumenti in un bagno di alcool al 70%. </li><li> Anestetizzare ratti Wistar (250-270 g) con una combinazione di ossigeno (O 2), protossido di azoto (N 2 O) (1: 1), e 1,8-2,2% isoflurano e sostenere la respirazione spontanea mediante una maschera di anestesia gas. Per l&#39;induzione dell&#39;anestesia iniziare con 5% isoflurano per 1 minuto e ridurre in seguito. Prima di iniziare l&#39;intervento chirurgico, il controllo di profondità dell&#39;anestesia, dando uno stimolo doloroso (ad es. Le zampe). Applicare pomate grassenegli occhi per evitare secchezza e per prevenire le infezioni successive. </li><li> Mettere i ratti su un cuscino di riscaldamento (37 ° C) e fissare la testa in un telaio stereotassico. </li><li> Radere la regione chirurgica attorno alla colonna vertebrale cervicale e disinfettare con povidone iodio e il 70% di alcol. </li><li> Eseguire un&#39;incisione mediana sopra la spina dorsale della vertebra cervicale (C2), raggiungendo al processus spicco della toracico vertebrale corpo 2 (T2). </li><li> Tagliare lo strato esterno dei muscoli vertebrali direttamente sulla linea mediana (per evitare sanguinamenti) in direzione cranio-caudale e ulteriormente sezionare gli strati muscolari più profondi senza mezzi termini, fino a raggiungere il spinosus processus e le lamine. Inserisci divaricatori. </li><li> Orientare il processus spinosus spicco del corpo vertebra T2 ad osservare i livelli previsti per laminectomia. Dopo l&#39;identificazione e la micro-chirurgica la preparazione delle lamine selezionato, tagliare il flavae ligamenti per allentare le lamine e la spinosus processus. Infine, cut attraverso le lamine laterali con un Clipper ossea al midollo spinale e rimuovere quelli delicatamente, evitando la compressione del midollo spinale stesso. NOTA: I più comuni sono i livelli C5 / 6, C6 / 7, o C7 / T1. Il tasso di mortalità perioperatoria aumenta il più rostrale il livello di pregiudizio. Sanguinamento dal seno venoso paravertebrale è comune e può essere affrontato da compressione attento con la spugna. </li><li> Prima di inserire il clip per traumatizzare il cavo, identificare emergenti radici nervose per risparmiare loro di clipping (soprattutto a livello C5 / 6). </li><li> Per garantire la clip un&#39;induzione, allentare la dura ventrale dal lato dorsale dei corpi vertebrali con un gancio e preparare un corridoio per la clip. </li><li> Infine, inserire la clip aperta e farlo scattare chiuso (chiusura rapida) per ottenere un infortunio contusione. Clip forza di chiusura e la durata della chiusura a clip determinano l&#39;intensità del trauma e l&#39;entità della compressione. Comunemente utilizzati sono forze di clip di tra 15-35 g ed un clipping durata es 1 min. (Figura 1). </li><li> Dopo la rimozione della clip, adattare muscoli in 2 strati e chiudere la ferita. </li><li> Smettere di anestesia e lasciare che il risveglio degli animali sotto la vostra osservazione continua fino a quando non riprende conoscenza sufficiente decubito sternale. Infine, mettere il topo in una singola gabbia e seguire le linee guida di trattamento post-operatorio. </li><li> Poiché gli animali lottano con la gravità di questo tipo di lesioni, è necessario prestare particolare attenzione ai trattamenti post-operatori: <ol><li> Somministrare antidolorifici (buprenorfina e Meloxicam per 3 giorni e 5 giorni, rispettivamente e in base ai sintomi clinici). </li><li> Dare ulteriore sottocutanea soluzione salina per 3 giorni (2 volte al giorno, 5-10 millilitri (ml)). </li><li> Fornire antibiotici nell&#39;acqua potabile 2 giorni prima e entro 7 giorni dopo l&#39;intervento chirurgico (es moxifloxacina) </li><li> Premere la vescica urinaria 2-3 volte al giorno fino al recupero della funzione della vescica è costantely apparente. </li><li> Osservare deficit neurologici e condizioni fisiologiche degli animali operati, almeno una volta al giorno. </li></ol></li></ol> 2. Iniezione SAP e NPC (14 giorni dopo la lesione) <ol><li> Indurre l&#39;anestesia come descritto in 1.1. a 1,3, fissare la testa del topo in un telaio stereotassico, togliere i punti o clip ferita, e disinfettare la ferita e la zona chirurgica con povidone iodio e 70% di alcol. </li><li> Sezionare con cura i muscoli paravertebrali, inserire divaricatori, rimuovere il tessuto cicatriziale microscopicamente dalla dura, e ri-esporre il sito della lesione. </li><li> Preparare PAS in una concentrazione di 1% (w / v) effettuare un gel matrice extracellulare. SAP QL6 hanno un pH fisiologicamente compatibili e non devono essere tamponato prima dell&#39;iniezione. Per la visualizzazione dei SAP nel midollo spinale, usare un derivato fluorescente QL6 (QL6-FITC). </li><li> Iniettare SAP (5 microlitri (microlitri) al centro della lesione, distribuito in 2 porzioni, ciascuna2.5 bilaterali microlitri della linea mediana. Utilizzare una siringa Hamilton collegata al telaio stereotassico con un bicchiere micro capillare (100 micrometri (micron) di diametro esterno (OD)). Aprire la dura accuratamente con la punta di un ago appuntito, e inserire il capillare di vetro stereotactically 2 millimetri (mm) nel midollo spinale traumatizzato. </li><li> Dopo l&#39;iniezione 1/3 del volume, rimuovere l&#39;ago alla profondità 1,5 mm e dopo altri 1/3 a 1 mm. Dopo l&#39;iniezione dell&#39;intero volume, e prima della rimozione della siringa, attendere 5 minuti per stabilizzare la formazione di gel. </li><li> Per generare NPC, utilizzare topi adulti DsRed (o YFP topi positivi, verdi) e isolare e coltivare dalla zona paraventrical 4,18,21. </li><li> Valutare la vitalità di NPC di Trypan Blue colorazione che indicano la presenza di cellule vive ~ 90% nella sospensione cellulare. Diluire le cellule nel terreno di crescita (50 x 103 cellule vive / ml) e poi li usano per il trapianto di cellule. </li><li> Fare quattro 2 ml (8 microlitri vo totalelume, contenente 4 x 10 5 NPC) iniezioni intraspinali bilaterale a 2 mm rostrale e caudale del luogo di ferita. Dopo l&#39;apertura della dura, inserire il vetro micro capillare Hamilton 1,5 millimetri sotto la superficie dorsale del midollo spinale e iniettare 2 ml di sospensione cellulare. Scegliere una velocità di iniezione a circa 0,5 ml / min (min). </li><li> Alla fine di ogni iniezione e prima della rimozione del capillare fuori del cavo, attendere almeno 1 min permettendo tessuto estende per accogliere il nuovo volume cellulare. (Figura 2) </li></ol> 3. L&#39;impianto di subdurale pompe per la crescita Application Factor <ol><li> Al fine di arricchire il liquido cerebro-spinale (CSF) con fattori di crescita sostenendo la sopravvivenza cellulare, utilizzare pompe micro-osmotica diluitivi fattori di crescita sub-durally tutto 7-14 giorni, con un tasso di diluizione di 0,5 microlitri / hr, un diametro del catetere di 0,04 OD cm, e un volume serbatoio di 100 microlitri. </li><li> Scegli fattori di crescita preferiti(Ad esempio, il cervello derivato fattore di crescita (BDGF), fattore di crescita epidermico (EGF), fattore di crescita dei fibroblasti (FGF)), riempire le pompe 6-10 ore prima dell&#39;impianto, e equilibrare le pompe in un bagno d&#39;acqua a 37 ° C. </li><li> Subito dopo iniezioni NPC, preparare un incavo sottocutaneo per posizionare la pompa. Località preferiti sono i fianchi laterali della regione addominale thoraco- evitando grande fastidio locale causati dalla pompa stessa. </li><li> Per ottenere la più alta concentrazione di fattori di crescita, assicurarsi che la punta aperta del catetere finisce vicino al luogo della lesione. Pertanto, eseguire un salto-laminectomia del livello superiore o inferiore adiacente. Ad esempio, se il SCI è a C7 / T1, eseguire una piccola laminectomia C5. </li><li> Mettere la pompa nella cavità sottocutaneo, abbreviare il catetere alla lunghezza necessaria, e fissarlo con diversi punti di sutura (6.0) sui muscoli paravertebrali evitando qualsiasi movimento lussazione associata. </li><li> Dopo l&#39;apertura della dura (per esempio, in C5) con la punta affilatadi un ago, introdurre il catetere nello spazio subdurale e farlo scivolare in una direzione caudale senza alcuna resistenza e senza danneggiare il cavo. La lamina saltato di esempio C6 serve come punto supplementare di fissazione e la stabilizzazione del catetere. </li><li> Assicurarsi che il catetere senza intoppi e non si piega. </li><li> Chiudi muscoli di strato, e la pelle, con suture o clip. (Figura 3) </li><li> Smettere di anestesia e lasciare che il risveglio degli animali sotto la vostra osservazione continua fino a quando non riprende conoscenza sufficiente decubito sternale. Infine, riporli in una singola gabbia e seguire le linee guida di trattamento post-operatorio. </li><li> Fornire un trattamento speciale post-operatorio, anche se, gli animali potrebbero aver recuperato in parte in questo momento-point: <ol><li> Somministrare antidolorifici (Buprenorthine e Meloxicam per 3 giorni e 5 giorni, rispettivamente e in base ai sintomi clinici). </li><li> Fornire antibiotici in bottiglie d&#39;acqua fino a 2 giorni prima7 giorni dopo l&#39;intervento chirurgico (es moxifloxacina). </li><li> Continuare comprimendo la vescica urinaria, se ancora necessario. </li><li> Dare fluidi sottocutanei aggiuntive, se i topi appaiono disidratati. </li><li> Mantenere osservando la funzione neurologica e condizioni fisiologiche degli animali operati almeno una volta al giorno. </li><li> Somministrare trattamento immunosoppressione 2 giorni prima dell&#39;iniezione NPC e entro 7 giorni dopo transplanation (minociclina) e fino al sacrificio (Sandimmune), rispettivamente. </li></ol></li></ol> 4. Tissue Assessment <ol><li> Sacrifica animali alla fine del periodo di osservazione (ad es. 4 settimane dopo SCI) in anestesia profonda (5% isoflurano per 2-3 min) e li transcardially profumato con 50 ml freddo (4 ° C) seguito da soluzione fisiologica 150 ml freddo 4 % paraformaldeide in 0,1 M tampone fosfato salino (PBS). </li><li> Rimuovere il midollo spinale e metterlo in 4% paraformaldeide in 0,1 M tampone fosfato salino (PBS) per 24 ore. </li><li&gt; Mettere midollo spinale in soluzione di saccarosio al 25% per crioprotezione per 48 ore. </li><li> Fornire criosezioni longitudinali con spessore &lt;30 micron. </li><li> Per la colorazione immunoistochimica di tutti i cellulari-nuclei fornire un uso di sfondo DAPI (1: 1.000). DsRed NPC positivi appaiono di colore rosso, QL-6 FITC appare verde, e sia quindi non ha bisogno di essere tinto appositamente. (Figura 4). </li><li> Per la microscopia elettronica a scansione (SEM) lasciano i campioni in ammollo in glutaraldeide a 4 ° C per 2 ore, disidratano lentamente in 10 passi% di incremento di etanolo per 5 minuti e metterli in un liquido in pressione di CO 2 sifone per 1 ora. Ponteggi cappotto con oro utilizzando una verniciatura polverizzazione. Prendete le immagini con un microscopio elettronico a scansione Hitachi S-3400N. (Figura 5) </li></ol>

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</ol>

Covidien ha fornito il SAP QL6 per questo studio.

Questo protocollo è stato sviluppato per consentire al lettore di eseguire un modello di lesione cervicale nei ratti e di utilizzare un approccio di trattamento combinato con SAP e NPC favore di un migliore recupero dopo cervicale SCI. Soprattutto in confronto ad altri modelli traumi cervicali, come il (emi) -transection modello o modelli di peso goccia e concussione, il modello / compressione clip di contusione rappresenta sia principali meccanismi fisiopatologici traumi - contusione e per ...

Più del 50% delle lesioni del midollo spinale sono legati alla colonna cervicale. Nella clinica impostazione due principali meccanismi patofisiologici sono descritti: il primo contusione del midollo spinale e successivamente, la compressione continua causata da fratture ossee, emorragie o gonfiore tessuto. Le clip da aneurisma contusione modello / compressione imita entrambi i meccanismi fisiopatologici: scattare la clip produce una contusione e la durata del ritaglio rappresenta la componente di compressione, ammettendo che la compressione in ambito clinico causate da fratture ossee, emorragie o gonfiore dei tessuti ultima più significativa più a lungo. La clip da aneurisma utilizzato viene modificato da una molla ad anello che garantisce esatte e riproducibili forza clipping. Soprattutto in confronto al emi-resezione o il modello contusione, questa clip aneurisma modello imita migliori ambienti clinici. Mentre i pazienti con lesioni toraciche soffrono di paraplegia, la maggior parte dei pazienti con inj cervicaleuries sono tetraplegico e completamente dipendente. La struttura anatomica del midollo cervicale, tuttavia, mostra differenze significative rispetto alla toracica o lombare della colonna vertebrale, e quindi, è rivolto in particolare in questo protocollo. Lo sviluppo di cavità intramidollari e cicatrici di tessuto sono ostacoli per il recupero e la rigenerazione. Per superare questi ostacoli l&#39;uso di materiale scaffold è un approccio promettente. Peptidi autoassemblanti possono essere iniettati direttamente nel epicentro della lesione. Ci si riuniscono in scaffolds nano-fibre ponte della cavità e migliorare l&#39;ambiente inibitorio, riducendo l&#39;infiammazione e spaventare i tessuti. Mentre i materiali rigidi provocano danni considerevoli del midollo spinale durante l&#39;impianto, i peptidi fluidi possono essere iniettati in modo sicuro e senza gravi danni aggiuntivi. Migliorare l&#39;ambiente inibitorio con peptidi autoassemblanti prima del trapianto di cellule staminali, quindi, sostenere cella integrazione, differenziazione e, infine, il recupero funzionale, dopo una lesione del midollo spinale cervicale.

<table><tbody><tr><td>Clip aneurismatico</td><td>SharpTech</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microscopio chirurgico</td><td>Leica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sistema di microiniezione</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Strumento stereotassico per piccoli animali</td><td>David Kopf Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Siringa Hamilton</td><td>Hamilton company</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pompe sotto-durali</td><td><a href="http://www.alzet.com" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Alzet osmotic micro pump 1007D</a></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Strumenti chirurgici</td><td>Fine Science tools</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isoflurano USP</td><td>Pharmaceutical Partners of Canada Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cloruro di sodio 0,9% iniettabile USP</td><td>Baxter</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Povidone iodio 7,5%</td><td>Purdue Pharma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alcol isopropilico 70% USP</td><td>GreenField Ethanol Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>QL6 SAP</td><td>Covidien</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Blu di tripano 0,4%</td><td>Gibco</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fattore di crescita derivato dalle piastrine (PDGF)</td><td>Sigma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fattore di crescita epidermico (EGF)</td><td>Sigma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fattore di crescita dei fibroblasti (FGF)</td><td>Sigma</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

utilizzo sinergico delle cellule neurali e precursori peptidi autoassemblanti in sperimentale cervical spinal cord injury

Synergetic Use of Neural Precursor Cells and Self-assembling Peptides in Experimental Cervical Spinal Cord Injury

Lesioni del midollo spinale (SCI) causano gravi danni neurologici e conseguenze psicologiche, economiche e sociali per i pazienti e le loro famiglie. Clinicamente, più del 50% del SCI influisce sulla colonna cervicale 1. Come conseguenza della lesione primaria, una cascata di meccanismi secondari tra cui l&#39;infiammazione, apoptosi, e demielinizzazione si verificano infine porta alla cicatrizzazione dei tessuti e sviluppo di cavità intramidollari 2,3. Entrambi rappresentano barriere fisiche e chimiche per il trapianto di cellule, l&#39;integrazione, e la rigenerazione. Pertanto, plasmare l&#39;ambiente inibitorio e bridging cavità per creare un ambiente favorevole per il trapianto di cellule e la rigenerazione è un promettente target terapeutico 4. Qui, un modello contusione / compressione cervicale SCI utilizzando una clip da aneurisma è descritto. Questo modello è più clinicamente rilevante rispetto ad altri modelli sperimentali, poiché transezione completa o rotture del cavo sono rare. Anche in CONFRONTOn al modello carico di caduta, quali in particolare i danni colonne dorso, la compressione circonferenziale del midollo spinale appare vantaggiosa. Clip forza di chiusura e la durata possono essere regolati per ottenere diverse gravità infortuni. Una molla anello facilita calibrazione precisa e costanza della clip di forza. In condizioni fisiologiche, peptidi autoassemblanti sintetici (SAP) di auto-assemblarsi in nanofibre e, quindi, sono attraenti per l&#39;applicazione in SCI 5. Possono essere iniettato direttamente nella lesione minimizzare danneggiamento del cavo. SAP sono strutture biocompatibili erigere ponteggi per colmare le cavità intramidollari e quindi, dotare il cavo danneggiato per i trattamenti rigenerativi. K2 (QL) 6K2 (QL6) è un romanzo SAP introdotto da Dong et a l. 6 In confronto ad altri peptidi, QL6 auto-assembla in β-sheets a pH neutro 6 0,14 giorni dopo SCI, dopo la fase acuta, SAP vengono iniettati nel centro della lesione e cellule precursori neurali (NPC) sono InjeCTED in colonne dorsali adiacenti. Al fine di sostenere la sopravvivenza delle cellule, il trapianto è combinato con la somministrazione continua subdurale di fattori di crescita da parte di micro pompe osmotiche per 7 giorni.

Quando si esegue il procedimento sopra descritto, si otterrà un ponteggio SAP colmare la cavità e offrendo un miglioramento dell'ambiente inibitorio, meno spaventare tessuti e l'aumento di sopravvivenza NPC. Figura 4 mostra una sezione longitudinale di un ratto midollo spinale ottenuto al luogo di ferita sei settimane dopo SCI e 4 settimane dopo QL6 SAP iniezione e NPC trapianto. Peptidi QL6 sono state iniettate con successo nel cavo, aggregato nell'epicentro e diffusi rostro-caudale nella penombra. Mic...

Il trattamento della lesione del midollo spinale cervicale sia con peptidi autoassemblanti (SAP) che con cellule precursori neurali (NPC), insieme a fattori di crescita, è un approccio promettente per promuovere la rigenerazione e il recupero. Viene stabilito un modello di ratto con clip per contusione/aneurisma da compressione di lesione spinale cervicale e un trattamento combinato che prevede l'iniezione di SAP e il trapianto di NPC.

Utilizzo sinergico delle cellule neurali e precursori peptidi autoassemblanti in Sperimentale Cervical Spinal Cord Injury

Spinal cord injuries (SCI) cause serious neurological impairment and psychological, economic, and social consequences for patients and their families. ...

L'obiettivo generale di questa procedura è quello di introdurre un modello di clip di compressione della contusione della lesione spinale cervicale nei ratti e un protocollo per il trattamento combinato che coinvolge l'iniezione di SAP e il trapianto di NPC. In primo luogo, una clip per aneurisma viene posizionata attorno al midollo spinale e mantenuta in posizione per un minuto. Ciò si traduce in una lesione da compressione da contusione bilaterale.Successivamente, i SAP vengono iniettati nell'epicentro della lesione, gli NPC vengono iniettati immediatamente dopo l'iniezione di SAP. Viene inserita una pompa osmotica con catetere subdurale per l'erogazione prolungata dei fattori di crescita. Questa procedura si traduce nella consegna di NPC al midollo spinale danneggiato.La sopravvivenza e l'attecchimento delle NPC sono supportati dal trattamento combinatorio con SAPs e fattori di crescita. Le implicazioni di questa tecnica si estendono verso una terapia per la lesione traumatica del midollo spinale perché fornisce un modello clinicamente rilevante che può essere utilizzato per studiare terapie COMBINATOR basate su cellule che promuovono la rigenerazione del midollo spinale. Il seguente protocollo sperimentale è stato approvato dall'Animal Care Committee della University Health Network, Toronto, Canada, ed è conforme alle politiche stabilite nella guida alla cura e all'uso degli animali da esperimento preparata dal Canadian Council of Animal Care.Tutte le procedure chirurgiche devono essere eseguite in condizioni sterili utilizzando attrezzature e soluzioni sterili e, secondo le linee guida delle istituzioni e del governo, questa procedura utilizza ratti di peso compreso tra 250 e 270 grammi prima di iniziare la procedura. Fornire agli animali antibiotici nell'acqua potabile per due giorni il giorno della procedura. Dopo aver posizionato il ratto in una camera di anestesia e aver indotto l'anestesia con fluoro ISO al 5% in ossigeno e protossido di azoto uno a uno per un minuto, ridurre il fluoro ISO dall'1,8 al 2,2%Applicare l'unguento lambic sugli occhi e confermare l'anestesia chirurgica eseguendo un pizzico della zampa.Quindi posiziona il ratto su un cuscino riscaldato e fissa la testa in una cornice stereotassica con un cono per il naso. Dopo aver rasato la pelliccia intorno al rachide cervicale, disinfettare la pelle tamponando con iodio povidone, seguito da etanolo al 70% dopo aver praticato un'incisione sulla linea mediana dalla regione delle due vertebre cervicali C al processo prominente del corpo vertebrale toracico T due. Usa le forbici chirurgiche per tagliare lo strato esterno dei muscoli vertebrali direttamente sulla linea mediana in una direzione cranio coddle, usa le forbici chirurgiche per smussare gli strati muscolari più profondi fino a raggiungere i processi, l'osi e la laminazione.Inserire i goniometri e tenerli premuti. Aprire gli strati muscolari, quindi orientare il processo prominente del corpo della vertebra T due e identificare i livelli mirati per la laminectomia. Quindi utilizzare un bisturi numero 15 per tagliare il legamento scorticato per allentare i lamini e il processo di posis.Successivamente, usa un tagliaossa per tagliare i lamini lateralmente al midollo spinale e rimuovi delicatamente i lamini senza comprimere il midollo spinale. Ora prenditi un momento per identificare le radici nervose emergenti per evitare che vengano tagliate. Quindi utilizzare un gancio per allentare la dura ventrale dal lato dorsale dei corpi vertebrali e preparare un corridoio per la clip.Assicurarsi che la molla ad anello della clip sia impostata in modo da erogare la forza desiderata. La forza della clip determina l'entità del trauma e della compressione. Inserire la clip aperta attorno al midollo spinale e lasciarla chiudere a scatto per indurre una lesione contusiva.Spesso vengono utilizzate forze di clip comprese tra 15 e 35 grammi con una durata di clipping di un minuto dopo l'esecuzione della lesione del midollo spinale. Rimuovere la clip e chiudere i muscoli in due strati, seguiti dalla chiusura della pelle. Una volta che la ferita è stata chiusa correttamente, interrompere l'anestesia e osservare il topo mentre si sveglia.Dopo che l'animale ha riacquistato sufficiente coscienza per lo sternale, sdraiato, metti il ratto in una gabbia pulita. A causa della gravità di questo tipo di lesione, è imperativo seguire i seguenti trattamenti postoperatori. Innanzitutto, assicurati di somministrare antidolorifici come buprenorfina e meloxicam per tre o cinque giorni a seconda dei sintomi.Prevenire anche la disidratazione per via sottocutanea. Iniettare da cinque a 10 millilitri di soluzione salina due volte al giorno per tre giorni e continuare a fornire antibiotici nell'acqua potabile per cinque giorni. Post-operatorio. Spremere la vescica urinaria due o tre volte al giorno fino a quando il recupero costante della funzione vescicale è evidente anche dopo che gli animali sembrano guariti.Assicurati di osservare gli animali operati per deficit neurologici e condizioni fisiologiche. L'iniezione viene eseguita 14 giorni dopo la lesione del midollo spinale. Prima di iniziare l'intervento, preparare i SAPs a una concentrazione dell'1% in peso per volume in acqua sterile e riempire un capillare di vetro da 100 micrometri collegato a una siringa Hamilton.Con la soluzione, collegare la siringa di Hamilton al telaio stereotassico. Dopo l'anestesia, il ratto fissa la testa nel telaio stereotassico e disinfetta il sito chirurgico con iodio povidone e alcol al 70%. Come prima, ancora una volta, dopo aver aperto la pelle, sezionare con cura la coppia di muscoli vertebrali e inserire i divaricatori.Utilizzare un bisturi numero 15 per rimuovere il tessuto cicatriziale dalla dura madre e riesporre il sito della lesione. Quindi utilizzare la punta di un ago affilato per aprire con cautela la dura madre. Infine, stereotassicamente, inserire il capillare di vetro a una profondità di due millimetri nel midollo spinale traumatizzato e iniettare i SAP.Dopo aver iniettato i SAP, lasciare che il capillare rimanga nel sito di iniezione per un minuto prima della rimozione per consentire l'allungamento del tessuto per accogliere la soluzione iniettata. Quindi ripetere l'iniezione nel sito successivo. Qui, le NPC sono state isolate dalla zona paraventricolare di un topo rosso DS adulto e coltivate secondo le procedure precedentemente pubblicate.Poco prima della microiniezione, diluire le NPC nel terreno di crescita a una concentrazione di 50 volte 10 al terzo di cellule vive per microlitro per il trapianto di cellule e caricarle in un capillare di vetro su una siringa di Hamilton. Gli NPC vengono iniettati immediatamente dopo l'iniezione di SAP. Per fare ciò, inserire il capillare di vetro della siringa di Hamilton a 0,2 millimetri di rostrale dal sito della lesione e 1,5 millimetri sotto la superficie dorsale del midollo spinale.Iniettare due microlitri della sospensione cellulare a una velocità di circa 0,5 microlitri al minuto. Al termine della prima iniezione, lasciare che il capillare rimanga nel midollo spinale per un minuto come prima, quindi ritrarre il capillare, spostarlo in un sito adiacente e ripetere la procedura di iniezione. Dopo aver atteso un minuto, come prima, ritrarre il capillare e spostarlo di due millimetri coccolare sul sito della lesione.Eseguire due iniezioni da due microlitri in questa posizione. Questa immagine mostra tutti i siti di iniezione relativi alla lesione del midollo spinale. L'impianto di mini pompe osmotiche subdurali per il supporto del fattore di crescita viene eseguito immediatamente dopo le iniezioni di NPC.Per prima cosa scegli un sito di impianto. Le sedi preferite sono i fianchi laterali della regione toracoaddominale per evitare fastidi causati dalla pompa stessa. Dopo aver disinfettato la regione come prima, viene preparata una rientranza sottocutanea per la pompa.Successivamente, eseguire una laminectomia saltata delle vertebre superiori o inferiori adiacenti alla lesione del midollo spinale. Qui, la lesione del midollo spinale è stata eseguita a C sette T uno, e quindi la laminectomia viene eseguita a C cinque. Ora posiziona la pompa nell'incavo sottocutaneo, quindi taglia il catetere alla lunghezza necessaria e infine usa le suture 6.0 per fissarlo alla coppia di muscoli vertebrali.Evitare qualsiasi lussazione associata al movimento. Usa la punta di un ago affilato per aprire la dura madre sotto la laminectomia. Quindi introdurre il catetere nello spazio subdurale e lasciarlo scivolare in una direzione di coccola senza resistenza e senza ferire il cordone.Ora, controlla che il catetere funzioni senza intoppi e non abbia pieghe o pieghe come mostrato qui. Quindi chiudere i muscoli strato per strato usando suture o clip, quindi chiudere la pelle. Una volta che la ferita è ben chiusa, interrompere l'anestesia e osservare l'animale mentre si sveglia.Dopo che l'animale ha riacquistato sufficiente coscienza per la sdraiata sternale, metti il ratto in una gabbia pulita. Assicurati di seguire tutte le procedure di trattamento postoperatorie, incluso il monitoraggio dell'animale e l'analgesia post-chirurgica. Somministrare il trattamento di immunosoppressione due giorni prima dell'iniezione di NPC e fino a sette giorni dopo il trapianto e fino al sacrificio, rispettivamente.Questa immagine al microscopio a fluorescenza mostra una sezione longitudinale di un midollo spinale traumatizzato di un ratto. La colorazione è costituita da SAP a fluorescenza DPI marcati con QL sei. Le fitte appaiono verdi e si sono aggregate nell'epicentro della lesione.Le NPC rossamente positive iniettate DS si sono diffuse nelle direzioni rostrale e coccola indicate dalla fluorescenza rossa. La barra della scala rappresenta cinque millimetri. Qui un'immagine al microscopio elettronico a scansione mostra la formazione di scaffold in nanofibra di SAP assemblati.La barra della scala rappresenta un micrometro. Dopo aver visto questo video, dovresti avere una buona comprensione delle procedure chirurgiche coinvolte nella compressione della clip, SCI, e di come l'approccio promettente del trattamento combinato con SAPs e NPC possa essere studiato in questo modello.

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