Name: Isolamento e caratterizzazione di cellule satelliti da muscoli Rat Capo Branchiomeric (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-07-20T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 37 s
Description: Impara l'isolamento e la coltura di cellule satelliti da muscoli branchiomerici di ratto su gel di matrice extracellulare. Questo metodo consente di studiare la miogenesi e la rigenerazione muscolare senza espansione cellulare.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Questo studio è stato finanziato da una sovvenzione Mosaic (017.009.009) dell'Organizzazione olandese per la ricerca scientifica (NWO) e da una sovvenzione Start (S-13-167C) per giovani ricercatori della Fondazione AO. Z.Y.R è supportato dal National Institutes of Health (sovvenzione # AG021566, AG035377, NS090051).

Tutti gli esperimenti qui descritti sono stati approvati dal Consiglio locale per esperimenti su animali dalla Radboud University Nijmegen in conformità alle leggi e ai regolamenti (RU-dicembre 2013-205) Olandese. 1. Spot matrice extracellulare Gel <ol><li> Effettuare le seguenti operazioni un giorno prima l&#39;isolamento: <ol><li> Scongelare una aliquota extracellulare matrice gel (100 microlitri) a 4 ° C per almeno 1,5 ore. Diluire 1:10 in modificata mezzo di Eagle Dulbecco; con 4.500 mg / L di glucosio, 4 mM L-glutammina, e 110 mg / ml di sodio piruvato (DMEM). Mantenere il gel matrice extracellulare a 4 ° C in ogni momento. Nota: sbalzi termici si tradurrà in rivestimento irregolare e formazione di cristalli. </li><li> Conservare la soluzione di gel matrice extracellulare diluito in ghiaccio per 15 min. </li><li> Pre-raffreddare una micropipetta 20 microlitri per 10 min. </li><li> Mettere vetrini camera 8 pozzetti in una piastra di Petri 100 mm e trasferire il piatto su una superficie fredda (ad esempio un pacchetto congelatore) per 10 min.</li><li> Utilizzare la micropipetta pre-raffreddata a mettere una goccia di 10 ml di gel matrice extracellulare in ogni pozzetto. Mantenere il piatto Petri sulla superficie fredda per almeno un altro 7 min (Figura 1A). </li><li> Completamente rimuovere il residuo di gel matrice extracellulare (Figura 1B), e asciugare i pozzetti a 37 ° C durante la notte. </li></ol></li></ol> 2. La dissezione di testa Muscoli (Massetere, digastrico, e muscolo elevatore del velo palatino) <ol><li> Prima di dissezione, preparare 50 ml di tampone fosfato salino (PBS) integrato con il 2% penicillina-streptomicina (P / S). Tenere su ghiaccio. </li><li> Dopo l&#39;eutanasia di un giovane ratto adulto (9 settimane) con CO 2 / O 2, decapitare il capo e togliere la pelle dalla testa. Trasferire la testa di PBS ghiacciato completato con 2% P / S in un tubo da 50 ml. </li><li> Muscolo masticatore (derivato dal 1 ° arco branchiale) <ol><li> Mettere la testa con un lato su un tappetino di silicone e fissare con ipodermico needles (Figura 2A). </li><li> Identificare la ghiandola parotide e il nervo facciale (Figura 2A). Esporre la fascia profonda che copre la ghiandola. Tagliare la fascia e rimuovere la ghiandola con le forbici dissezione. Identificare il canale uditivo esterno. Tracciare il nervo facciale dal forame stylomastoid e rimuovere con attenzione i rami temporali, zigomatico, e vestibolari con un bisturi lama n ° 15. </li><li> Liberare il capo superficiale del muscolo massetere rimuovendo la fascia. Identificare teste sia superficiali e profonde del muscolo massetere. Tracciare la testa superficiale fino al suo spessore aponeurosi tendinea inserito nel processo zigomatico del mascellare superiore. </li><li> Separare il tendine dalla sua origine al processo zigomatico con una pinza diritte. Tagliare con una lama di bisturi No. 15 o forbici dissezione e accuratamente la vita (Figura 2B). </li><li> Sezionare il capo superficiale del massetere fino al suo inserimento con l&#39;angolo e la metà inferiore di tha superficie laterale del ramo della mandibola con una lama di bisturi No. 15 (Figura 2C). Ora, rimuovere completamente il muscolo. </li></ol></li><li> Ventre posteriore del muscolo digastrico (derivato dal arco branchiale 2 °) <ol><li> Posizionare la testa in una posizione supina sul pad silicone e fissare con aghi ipodermici (Figura 3A). </li><li> Rimuovere il grasso sottocutaneo sovrastante sia sublinguale e ghiandole sottomandibolari. Quindi, rimuovere la fascia superficiale e ghiandole con le forbici dissezione. Esporre il muscolo digastrico (anteriore e ventre posteriore). </li><li> Tenere il tendine anteriore del ventre posteriore con una pinza diritte, tagliare e sezionare con cura fino alla sua origine nella bolla timpanica (Figura 3B). Fare la stessa cosa sul lato controlaterale. </li></ol></li><li> Muscolo elevatore del velo palatino muscolare (derivato dal 4 ° arco branchiale) <ol><li> Dopo la dissezione del ventre posteriore del muscolo digastrico, Localizzare il muscolo stiloioideo, tirare lateralmente, e rimuovere con cautela (Figura 4A). </li><li> Localizzare il tendine del velo palatino elevatore che inserisce alla bolla timpanica (figura 4A). Sezionare attentamente e tagliare su entrambi i lati. </li><li> Cercare la trachea e l&#39;esofago che corre dietro. Sollevare l&#39;esofago, ed esporre la faringe, laringe e il palato molle. </li><li> Localizzare la zona del palato molle in cui è inserito il palatino elevatore veli e tagliarlo sciolti (Figura 4B). Nota: Subito dopo la dissezione, rimuovere con attenzione tendine e il tessuto connettivo di ogni muscolo sotto il microscopio stereo. Immergere tutti i campioni rapidamente in etanolo al 70%, e trasferirli PBS ghiacciato integrato 2% P / S in una provetta da 15 ml. </li></ol></li></ol> 3. Isolamento di cellule satellite <ol><li> Effettuare le seguenti operazioni di preparazione per SC isolamento da 3 gruppi di muscoli: <ol><li>Preparare 7,5 ml di 0,1% Pronasi in DMEM. Filtrare la soluzione attraverso un filtro di 0,22 micron. Pre-riscaldare la soluzione a 37 ° C a bagnomaria per 10 minuti prima di isolamento. </li><li> Preparare 35 ml di DMEM supplementato con 10% siero di cavallo (HS) e 1% P / S. Pre-calda anche a 37 ° C in un bagno d&#39;acqua. </li><li> Preparare 15 ml terreno di coltura costituito da DMEM integrato con 20% siero bovino fetale (FBS), 10% HS, 1% P / S e 1% di estratto di embrione di pollo (CEE). Pre-calda a 37 ° C in un bagno d&#39;acqua. </li><li> Pre-coat sei pipette di plastica (10 ml) con HS e asciutti per almeno 10 minuti prima dell&#39;uso. </li></ol></li><li> Nella cappa coltura, trasferire ogni muscolo in un pozzetto di una piastra da 6 pozzetti. Utilizzando le forbici dissezione, tagliare il muscolo in piccoli pezzi di circa 2 mm. Fare attenzione a non sminuzzare il tessuto troppo. </li><li> Aggiungere con cautela 2,5 ml di soluzione pronase 0,1% in ciascun pozzetto ed incubare a 37 ° C per 60 min. Agitare delicatamente la piastra dopo 20, 40, e 60 min. Nota: Il duratio esatton dell&#39;incubazione dipende da fattori quali l&#39;età e la tensione degli animali. </li><li> Monitorare al microscopio. Controllare i frammenti muscolari e fermare la digestione enzimatica quando le fibre fasci ottenere un aspetto allentata (Figura 5). </li><li> Aggiungere 2,5 ml di DMEM supplementato con 10% HS e 1% P / S. Trasferire in un tubo da 15 ml e centrifugare le provette a 400 xg per 5 min. Eliminare il surnatante tramite decantazione. </li><li> Aggiungere 5 ml DMEM supplementato con 10% HS e 1% P / S. Pipettare la soluzione su e giù con una pipetta 10 ml di plastica (triturazione) per almeno 20 volte per omogeneizzare il tessuto. </li><li> Centrifugare le provette a 200 xg per 4 minuti. Raccogliere il surnatante e trasferire in una provetta da 15 ml. </li><li> Aggiungere 5 ml DMEM supplementato con 10% HS e 1% P / S. Pipetta nuovo con una pipetta da 10 ml fino i frammenti di tessuto passa facilmente attraverso la pipetta. </li><li> Centrifugare le provette a 200 xg per 4 minuti e raccogliere il surnatante in una provetta da 15 ml. </li><li> Put un filtro cella (40 micron) su un tubo da 50 ml e trasferire il surnatante contenente le cellule dissociate sul filtro. Lavare con 1 ml DMEM per il recupero delle cellule massima. </li><li> Centrifugare le provette a 1000 xg per 10 minuti e scartare il surnatante con una pipetta. </li><li> Risospendere il pellet in 300 microlitri terreno di coltura e contare le cellule in un emocitometro. </li></ol> 4. La differenziazione delle cellule satelliti su Spot matrice extracellulare Gel <ol><li> Diluire la sospensione cellulare per ottenere 1,5 x 10 3 cellule in 10 ml di terreno di coltura. </li><li> Fissare le coperture delle camere diapositive con nastro adesivo e segnare i punti con un pennarello nero sul lato inferiore del vetro dell&#39;oggetto. </li><li> Usando una micropipetta, mettere una goccia di sospensione cellulare 10 microlitri sul punto di gel matrice extracellulare. Controllare al microscopio se la goccia di sospensione cellulare è stato posizionato correttamente sul posto. Incubare per sei ore a 37 ° C. </li><li> Attentoly aggiungere 400 ml di terreno di coltura (DMEM supplementato con 20% FBS, 10% HS, 1% P / S e 1% CEE) e incubare per tre giorni a 37 ° C. Nota: A questo punto, appena isolato SC sono sottoposti a massicci traumi (digerito enzimatico e aspra triturazione), e hanno bisogno di recuperare. Non disturbare le cellule durante i primi tre giorni 37. Successivamente, il terreno di coltura può essere cambiato a seconda del tipo di esperimento. Le macchie gel matrice extracellulare possono essere seminati con una densità cellulare di alta (1,5-2,5 x 10 3/20 ml) per il dosaggio differenziazione. Il terreno di coltura (DMEM integrato con 20% FBS, 10% HS, 1% P / S e 1% di estratto embrionale pollo) può essere sostituito ogni tre giorni. </li><li> In alternativa, se si desidera la crescita e il passaggio seguire i seguenti passi: <ol><li> Scongelare una aliquota extracellulare matrice gel (500 microlitri) a 4 ° C per almeno 1,5 ore. Diluire 1:10 in DMEM e seguire le raccomandazioni di cui al punto 1.1.1. </li><li> Pre-raffreddare una pipetta 10 ml per 10 minuti a 4 &amp;# 176; C. </li><li> Trasferire tre fiasche T75 su una superficie fredda (ad esempio un pacchetto congelatore) per 10 min. </li><li> Usare la pipetta pre-raffreddata a mettere 1 ml di gel matrice extracellulare in ogni pallone. Verificare che la superficie è coperta completamente. Mantenere i flaconi su superficie fredda per almeno altri 7 minuti (Figura 1A). </li><li> Completamente rimuovere il gel matrice extracellulare rimanente con una pipetta 10 ml, e asciugare i pozzetti a 37 ° C per 1 ora. </li><li> Dopo il conteggio, risospendere le SCs appena isolate in 10 ml di terreno di coltura (DMEM supplementato con 20% FBS, 10% HS, 1% P / S e 1% di estratto embrionale pollo) e seme nelle fiasche T75 pre-rivestite. </li><li> Dopo tre giorni, cambiare il supporto (ed ogni terzo giorno) fino all&#39;80% di confluenza è raggiunto. Per passaging, lavare i fiaschi T75 tre volte con PBS. Successivamente aggiungere 1 ml di 0,25% soluzione tripsina e incubare per tre minuti a 37 ° C. Risospendere in 9 ml di terreno di coltura (DMEM integrato con 20% FBS, 10% HS, 1% P / Se 1% di estratto embrionale pollo) e centrifugare a 200 xg per 5 min. Scartare il surnatante. Dopo aver contato, risospendere 1 x 10 6 cellule in 1000 ml di terreno di coltura e di congelare le cellule. </li></ol></li></ol>

Gli autori non hanno interessi contrastanti da rivelare.

SC da diversi muscoli della testa branchiomeric sono stati isolati da una 9 settimane di età ratto Wistar e coltivate direttamente sulla matrice extracellulare spot gel senza previa espansione e passaging. Dopo l&#39;isolamento, le cellule sono state contate e seminate alla stessa densità cellulare. Per l&#39;isolamento parallelo di tre diversi muscoli, questo metodo richiede circa 4 ore. Per evitare la contaminazione cultura, un passaggio critico è il rapido lavaggio in alcool 70% dopo la dissezione dei muscoli. Durante isolamento SC è importante tagliare il tessuto muscolare in piccoli pezzi (circa 2 mm), ma evitare troppa macinazione come questo si tradurrà in una piccola quantità di cellule a causa di danno cellulare. Inoltre, la durata della digestione enzimatica deve essere controllata attentamente al microscopio per evitare ulteriori danni. Lo scopo della digestione è dissociare le miofibre. Poiché più del 90% delle cellule isolate esprimono Pax7, senza ulteriore purificazione è necessaria (figure 6-8).Questo evita fasi di purificazione supplementare altri metodi come la pre-placcatura sui piatti non patinati 14,37,38, frazionamento su Percoll 39,40, cellulare o fluorescente-o magnetico di ordinamento 41,43. Per triturazione è essenziale per indurre taglio tra i frammenti di tessuto e l&#39;apertura della punta della pipetta come questo permette lo sblocco meccanico del SC. Se la triturazione con una pipetta 10 ml (all&#39;interno Punta di diametro 1 mm) è difficile, a 5 ml (all&#39;interno punta Diametro: 2 mm) pipetta possono essere utilizzati prima. In alternativa, pipette Pasteur di vetro possono essere tagliate a diametro desiderato e possono essere usate. Questo metodo è semplice, efficace e consente l&#39;isolamento simultaneo di SC da campioni di muscolo differenti. Le piastre di coltura per SCs possono essere rivestiti con gelatina o collagene, ma i nostri studi precedenti mostrano che gel matrice extracellulare è molto meglio per il mantenimento del potenziale miogenico di collagene 38. Le macchie di gel matrice extracellularedimensioni millimetriche (10 microlitri / Ø 2 mm o 20 microlitri / Ø 4 mm) consente lo studio della proliferazione e differenziazione delle CS con un numero limitato di cellule. Per il saggio differenziazione circa 8 a 20 volte meno cellule sono obbligatori confrontati ad una piastra da 24 pozzetti (Ø 15,6 millimetri), e circa 80 a 200 volte meno rispetto a 35 mm di piastre Petri (Ø 35 mm) 14,38. Dal momento che il gel matrice extracellulare è costoso, questo metodo è anche più conveniente. Inoltre, i vetrini camera possono essere sostituiti da copertura di plastica scivola per ridurre ulteriormente i costi. Per la preparazione del gel matrice extracellulare visto essiccazione overnight delle slitte camera è essenziale. Poiché i punti di gel matrice extracellulare sono trasparenti, è necessario segnare i punti sul lato inferiore con illuminazione posteriore. Le Camere vetrini vengono fissati in una capsula di Petri per una facile manipolazione. Ulteriore espansione coltura cellulare non è necessario, che offre la possibilità di studiare il SC di goccioliler muscoli o campioni di muscolo di piccole dimensioni. In alternativa, ad esempio per la PCR o muscolo costruisce se sono necessari più celle, le SCs appena isolate possono prima essere ampliato in fiasche T75 come indicato sopra. SC isolato utilizzando questo protocollo non sono suscettibili di depurazione mediante citometria a flusso subito dopo l&#39;isolamento. La digestione con pronasi provoca una digestione notevole della superficie antigeni 14. Siero di cavallo e siero fetale bovino che vengono utilizzati per la coltura delle cellule devono prima essere adeguatamente caratterizzati prima di isolamento, come diversi numeri di lotto interessati differenziale mioblasti proliferazione e differenziazione. Negli ultimi anni, vi è un crescente interesse nei muscoli derivanti dagli archi branchiali e mesoderma testa (ad esempio, i muscoli estrinseci) 24. È stato chiaramente dimostrato che i muscoli della testa e degli arti possiedono proprietà altamente differenti. Muscolo masticatore da vecchi animali sembra ritain loro capacità rigenerativa in confronto con i muscoli degli arti 25,26. SC dai muscoli estrinseci in possesso di una solida capacità di proliferazione e differenziazione paragonabili a SC da muscoli della testa, e mostrano un potenziale attecchimento più grande di arto muscolare SC 24. La composizione di distribuzione e miosina tipo di fibra varia tra i gruppi muscolari e anche tra le specie. Muscoli provenienti dal primo arco branchiale nell&#39;uomo contengono fibre sia lente e veloci (sottotipi IIA e IIX), miosine neonatali e myosins tipici per lo sviluppo del muscolo cardiaco. Nei roditori questi muscoli contengono circa il 95% fibre veloci miosina IIA e IIB) 44-46. Gli studi sui muscoli aviaria mostrano che SC di tipi di fibre muscolari differenti variano nella capacità di differenziazione. SC da fibre veloci differenziano solo in fibre muscolari veloci, mentre SC da fibre lente possono differenziarsi in entrambi i tipi di fibra 47. Inoltre, la percentuale di SC nel muscolo velocefibre è inferiore a quello delle fibre muscolari lente 48,49. Ciò indica che la distribuzione tipo fibra deve essere preso in considerazione per studi sui muscoli nella zona craniofacciale. Simile ai muscoli palatoschisi, la LVP nei roditori contiene quasi esclusivamente fibre veloci 50. Per questo motivo, SC del LVP sono adatti per gli studi pre-clinici nel campo della palatoschisi. Questo protocollo offre nuove possibilità per studiare SCs derivate dai muscoli della testa branchiomeric o altri piccoli muscoli o muscoli campioni più piccoli. Ciò faciliterà lo sviluppo di nuove terapie per migliorare la rigenerazione dei muscoli nella zona maxillofacciale in condizioni come palatoschisi ma anche in altre condizioni che interessano muscoli più piccoli.

An erratum was issue for <a href="http://www.jove.com/video/52802">Isolation and Characterization of Satellite Cells from Rat Head Branchiomeric Muscles</a>. The fourth figure was updated to explain the isolation of the LVP better.

Erratum: Isolation and Characterization of Satellite Cells from Rat Head Branchiomeric Muscles

Circa 1: 500-1: 1000 neonati presentano una fenditura che coinvolge il labbro e / o palato (CLP); Così questo è la malformazione congenita più comune negli esseri umani 1. I muscoli del palato molle sono fondamentali per il funzionamento del palato molle durante il discorso, deglutizione e succhiare. Se una fessura del palato molle è presente, questi muscoli sono anormalmente inseriti nell&#39;estremità posteriore dell&#39;osso palatale. Il palato molle si muove su e giù durante il discorso, impedendo che l&#39;aria di fuggire attraverso il naso. I bambini con una fenditura nel palato non hanno questa funzione di controllo con conseguente fenomeno noto come velopharyngeal disfunzione 2,3. Anche se i protocolli di trattamento sono variabili, la riparazione chirurgica del palato molle si svolge nella prima infanzia (6-36 mesi di età) 4. I muscoli anormalmente inseriti del palato molle possono essere corretti chirurgicamente 5-7, tuttavia, disfunzione velopharyngeal persiste nel 7% al 30%dei pazienti 2,3,8-10. La capacità del muscolo scheletrico di rigenerare attraverso l&#39;azione di cellule satelliti (SCS) è ben consolidata 11,12. Su infortunio muscolare, SC sono attivati ​​e migrano al sito di lesione. Poi proliferano, si differenziano e si fondono per formare nuove fibre muscolari o riparare danneggiati quelle 13. Quiescenti CS esprimono il fattore di trascrizione Pax7 14,15, mentre la loro progenie, i mioblasti proliferanti, inoltre esprimere il fattore miogenico determinazione 1 (MyoD) 16. Mioblasti differenziazione iniziano a esprimere miogenina (MyoG) 17. La differenziazione terminale dei mioblasti è caratterizzato dalla formazione di miofibre, e l&#39;espressione di proteine ​​muscolo-specifici come catena pesante della miosina (MyHC) 16,18. Recentemente, diverse strategie sono state utilizzate nella medicina rigenerativa per migliorare la rigenerazione muscolare dei muscoli degli arti 19-23. Studi specifici sumuscoli della testa branchiomeric sono importanti anche perché è stato recentemente dimostrato che si differenziano da altri muscoli in diversi aspetti 24. In contrasto con i muscoli degli arti, è stato suggerito che i muscoli della testa branchiomeric contengono meno SC 25, rigenerano più lento, e il tessuto connettivo fibroso più si forma dopo l&#39;infortunio 26 Inoltre, proliferando SC da muscoli della testa branchiomeric esprimere anche altri fattori di trascrizione. Ad esempio, Tcf21, un fattore di trascrizione per la formazione del muscolo craniofacciale è fortemente espresso in rigenerare muscoli della testa, ma difficilmente a rigenerare i muscoli degli arti 25. I muscoli del palato molle dei pazienti CLP sono solitamente più piccoli e meno ben organizzata rispetto ai normali muscoli palatini 27,28. Fibre lente e veloci sono entrambi presenti nei muscoli del palato molle ma le fibre lente sono più abbondanti. Al contrario, i muscoli leporino contengono una percentuale di fibra veloci e anche una fornitura capillare ridottarispetto ai normali muscoli del palato molle 29-31. Le fibre veloci sono maggiormente soggetti a danni contrazione indotta 31-33. Il povero fornitura capillare di accompagnamento può anche favorire la fibrosi 34,35. Tutti questi aspetti possono contribuire alla scarsa rigenerazione dei muscoli del palato molle dopo la chiusura chirurgica schisi 36. In considerazione di ciò, un protocollo per l&#39;isolamento e la caratterizzazione di muscolo testa branchiomeric SC è cruciale. Questo offre la possibilità di studiare la biologia SC dei muscoli della testa branchiomeric. Inoltre, le nuove terapie a base di ingegneria dei tessuti possono essere sviluppate per promuovere la rigenerazione muscolare dopo l&#39;intervento chirurgico in CLP e le altre condizioni che compromettono la zona cranio-facciale. In generale, SC possono essere ottenuti dopo la dissociazione del tessuto muscolare 14. Tritare, digestione enzimatica, e triturazione sono generalmente tenuti a rilasciare SC dalla loro nicchia. SC può essere purificato mediante pre-placcatura su piatti non rivestite 14,37,38, fractionation su Percoll 39,40, cellulare o fluorescente-o magnetico di ordinamento 41-43. Qui vi presentiamo un nuovo protocollo economica e rapida per l&#39;isolamento delle cellule satelliti da muscoli della testa branchiomeric di giovani ratti adulti. Questo protocollo è basato su una precedente manoscritto 14 e specificamente idonei per piccoli campioni di tessuto. L&#39;isolamento di SC da muscoli rappresentativi provenienti dal 1 °, 2 °, e 4 ° archi branchiali sono descritti. Dopo l&#39;isolamento, un basso numero di cellule satelliti sono coltivate su extracellulari macchie gel matrice di dimensioni millimetriche per studiare la loro differenziazione. Questo approccio consente di evitare l&#39;obbligo per l&#39;espansione e passaging di SC.

<table><tbody><tr><td>Ago ipodermico 25&nbsp; G 0,5&nbsp; x&nbsp; 25&nbsp; m</td><td>BD Microlance</td><td>300400</td><td></td></tr><tr><td>Forbici da dissezione</td><td>Braun</td><td>BC154R</td><td></td></tr><tr><td>Micro pinze dritte Braun</td><td></td><td>BD330R</td><td></td></tr><tr><td>Lama per bisturi chirurgico n. 15</td><td>Swann-Morton</td><td>0205</td><td></td></tr><tr><td>Alcool 70%</td><td>Denteck</td><td>2.010.005</td><td></td></tr><tr><td>Permanox Slide, 8 camere</td><td>Thermo Scientific</td><td>177445</td><td></td></tr><tr><td>Piastra per colture cellulari a 6 pozzetti</td><td>Greiner bio-one</td><td>657160</td><td></td></tr><tr><td>Piastre per colture cellulari (100 x 20 mm)</td><td>Greiner bio-one</td><td>664160</td><td></td></tr><tr><td>Provetta da centrifuga conica sterile da 15 ml</td><td>BD Biosciences</td><td>352097</td><td></td></tr><tr><td>Provetta da centrifuga conica sterile da 50 ml</td><td>BD Biosciences</td><td>352098</td><td></td></tr><tr><td>Filtro cellulare (40 &mu; m)</td><td>Gibco</td><td>431750</td><td></td></tr><tr><td>Pipetta sierologica da 10 ml</td><td>Greiner bio-one</td><td>607180</td><td></td></tr><tr><td>20&nbsp; &micro; l FT20</td><td>Greiner bio-one</td><td>774288</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel, senza fenolo rosso</td><td>BD Biosciences</td><td>356237</td><td>10 ml</td></tr><tr><td>Pronasi</td><td>Calbiochem</td><td>53702</td><td>10&nbsp; KU</td></tr><tr><td>Soluzione salina tamponata con fosfato</td><td>Gibco</td><td>14190-144</td><td>500 ml</td></tr><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle Medium, glicemia alta, integratore GlutaMAX, piruvato&nbsp;</td><td>Gibco</td><td>10569-010</td><td>500 ml</td></tr><tr><td>Siero Fetale Bovino&nbsp; &nbsp;</td><td>Fisher Scientific 3600511</td><td></td><td>500 ml</td></tr><tr><td>Siero di Cavallo</td><td>Gibco</td><td>26050088</td><td>500 ml</td></tr><tr><td>Penicillina-Streptomicina (10.000 U/ml)</td><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td>100 ml</td></tr><tr><td>Estratto di Embrione di Pollo</td><td>MP Biomedicals 2850145</td><td></td><td>20 ml</td></tr></tbody></table>

isolamento e caratterizzazione di cellule satelliti da muscoli rat capo branchiomeric

Isolation and Characterization of Satellite Cells from Rat Head Branchiomeric Muscles

La fibrosi e la rigenerazione muscolare difettosa possono ostacolare il recupero funzionale dei muscoli del palato molle dopo la riparazione della palatoschisi. Ciò causa problemi persistenti nel linguaggio, nella deglutizione e nella suzione. I sistemi di coltura in vitro che consentono lo studio di cellule satelliti (cellule staminali miogeniche) provenienti dai muscoli della testa sono fondamentali per sviluppare nuove terapie basate sull'ingegneria tissutale per promuovere la rigenerazione muscolare dopo l'intervento chirurgico. Questi sistemi offriranno nuove prospettive per il trattamento dei pazienti affetti da palatoschisi. Viene presentato un protocollo per l'isolamento, la coltura e la differenziazione di cellule satelliti dai muscoli della testa. L'isolamento si basa sulla digestione enzimatica e sulla triturazione per rilasciare le cellule satelliti. Inoltre, questo protocollo comprende un metodo innovativo che utilizza rivestimenti in gel di matrici extracellulari di dimensioni millimetriche, che richiede solo un basso numero di cellule satelliti per i saggi di differenziazione.

Usando questo protocollo, il muscolo massetere (un lato) produce 0,8-1 x 10 6 cellule, il muscolo digastrico (posteriore pancia) produce 1,5-2 x 10 5 cellule, e le rese palatini muscolo elevatore veli 1-1,5 x 10 5 cellule. I rendimenti cellulari dipendono dal tipo di muscolo, affaticamento, e l&#39;età dell&#39;animale. Per confronto tra i tre gruppi muscolari, SC appena isolate sono state seminate alla stessa densità di cellule (1,5 x 10 3/10 ml). Direttamente dopo l&#39;isolamento, più del 90% delle cellule appena isolate esprimere Pax7 (Figura 6). Giorno 4, 7 e 10 colture sono state colorate con anticorpi contro Pax7, MyoD, MyoG e MyHC immunocolorazione. Cinque campi arbitrari sono stati contati per la cultura con un obiettivo 20X. Al giorno 4 Pax 7 e Myo D si esprime in tutti i gruppi muscolari (figure 6 e 7 e 8), ma la progenie di SatCs dal massetere e muscoli digastrici iniziano exprescantare miogenina prima del muscolo elevatore del velo palatino muscolare (Figura 9). Al giorno 10, l&#39;espressione di MyoG è fortemente ridotta in tutti i gruppi (Figura 9). Pochi giorni dopo la semina sui punti gel matrice extracellulare, le cellule proliferanti cominciano a fondersi e formare miotubi multi-nucleate, che esprimono la catena miosina pesante. Piccoli miotubi sono chiaramente visibili al giorno 7 (Figura 10). Al giorno 10, spasmi dei miotubi può osservare (Video 1). <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/52802/52802fig1.jpg" /> Figura 1:. Extracellulari macchie gel matrice in una diapositiva camera (A) per una facile manipolazione, posizionare la slitta camera 8-bene in un piatto da 100 millimetri di Petri. Dispensare 10 ml di gel matrice extracellulare in ciascuna camera e metterlo su una superficie fredda (7 min). (B) Camera slitta dopo il superamento della matrice extracellulare gel viene rimosso. <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/52802/52802fig2.jpg" /> Figura 2:. Dissezione del muscolo massetere (A) testa dell&#39;animale in una vista laterale. Ear (E), ghiandola parotide (P) e del nervo facciale (VII). (B) tendinee aponeurosi (Te) della testa superficiale del muscolo massetere (Ms) e muscolo temporale (T). Separare il tendine dalla sua inserzione con una pinza. (C) sezionare con cautela il muscolo fino al suo inserimento al ramo della mandibola. E: orecchio, P: ghiandola parotide, VII: nervo facciale, T: muscolo temporale, Ms: capo superficiale del muscolo massetere, Te: tendine, Mp: profondo capo del muscolo massetere. <img alt="Figura 3" src="/files/ftp_upload/52802/52802fig3.jpg" /> Figura 3: La dissezione del ventre posteriore del muscolo digastrico (.A) Testa dell&#39;animale in posizione supina. Localizzare ghiandola sottomandibolare (Sg), massetere (M), nervo facciale (VII) e muscolo sternocleidomastoideo (SCM). Rimuovere la ghiandola sottomandibolare. (B) Localizzare anteriore digastrico muscolo (AD) e ventre posteriore (PD). Con una pinza dritto, prendere il tendine anteriore del ventre posteriore, tagliare e sezionare con cura fino alla sua origine nella bolla timpanica (ty). E: orecchio, Sg: ghiandola sottomandibolare, VII: nervo facciale, M: massetere muscolare, SMC: muscolo sternocleidomastoideo, AD: anteriore ventre muscolare digastrico, PD: posteriore ventre muscolare digastrico, Ty: bolla timpanica. <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/52802/52802fig4.jpg" /> Figura 4:. Dissezione del muscolo elevatore del velo palatino (A) Veduta generale dopo la dissezione del muscolo digastrico (ventre posteriore). Muscolo stiloioideo (St) e tendine del muscolo elevatorevelo palatino può essere localizzato. Nota la trachea (T) e dell&#39;esofago (Es) esecuzione dietro. (B) Dopo aver sollevato la trachea e l&#39;esofago faringe (P) è esposto. L&#39;inserimento del palatini elevatore veli nel palato molle è ora visibile. La freccia indica il palato molle sezionato con i muscoli Palatini elevatore veli su entrambi i lati. E: orecchio, St: muscolo stiloioideo, VII: nervo facciale, M: massetere muscolare, AD: anteriore ventre muscolare digastrico, PD: posteriore ventre muscolare digastrico, T: trachea, Es: esofago, P: Faringe, * muscolo elevatore del velo palatino muscolare . <img alt="Figura 5" src="/files/ftp_upload/52802/52802fig5.jpg" /> Figura 5: Aspetto del tessuto muscolare (A) prima e (B) dopo la digestione enzimatica con Pronasi. Si noti che fasci muscolari sembrano essere allentato dopo la digestione enzimatica. Figura 6: Pax 7 immunostaining SCs appena isolate, applicati al gel matrice extracellulare alla fine di isolamento (circa 6 ore dopo la digestione del tessuto iniziale).. Cinque campi arbitrari sono stati contati utilizzando un obiettivo 10X con una media di 210 cellule per campo. Circa il 90% delle cellule sono Pax 7 positive. DAPI: blu, Pax7: rosso. Barra Scala, 100 micron. <img alt="Figura 7" src="/files/ftp_upload/52802/52802fig7highres.jpg" width="700" /> Figura 7:. Pax 7, MyoD immunostaining Giorno 4, 7 e 10 colture sono state colorate con anticorpi contro Pax7 e MyoD immunocolorazione. (A - C) e (D - F) microfotografie rappresentative della giornata 4 e 7 le culture del muscolo massetere. (G e H </strong&gt;) Il numero di Pax7 + e MyoD + nuclei per campo microscopico è stato contato e espresso come percentuale del numero totale di nuclei (DAPI). DAPI: blu, Pax7: rosso, e MyoD: verde. Bilancia bar, 100 micron. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52802/52802fig7highres.jpg" target="_blank">Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 8" src="/files/ftp_upload/52802/52802fig8highres.jpg" width="700" /> Figura 8:. Distribuzione di Pax7 ± / MyoD ± in colture di cellule mononucleate in colture da massetere, digastrico e elevatore veli muscolare palatina (A - C) Giorno 4, 7 e 10 colture sono state colorate con anticorpi contro Pax7 e MyoD immunocolorazione. Il numero totale di cellule si basa sul numero totale di nuclei (DAPI). (D) la quantificazione dei dati Pax7 ± / MyoD ± cells. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52802/52802fig8highres.jpg" target="_blank">Clicca qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> <img alt="Figura 9" src="/files/ftp_upload/52802/52802fig9highres.jpg" width="700" /> Figura 9:. Immunostaining Myogenin Giorno 4, 7 e 10 colture sono state colorate con anticorpi contro Myogenin. (A - D) microfotografie rappresentativi di giorno 4 e 7 culture dal Palatino muscolo elevatore veli. (E) Il numero di MyoG + nuclei per campo microscopico stato contato ed espresso come percentuale del numero totale di nuclei (DAPI). Quantificazione (F) I dati delle cellule MyoG +. DAPI: blu, Myogenin: verde. Bilancia bar, 100 micron. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52802/52802fig9highres.jpg" target="_blank">Cliccate qui per vedere una versione più grande di questo figur</a>e. <img alt="Figura 10" src="/files/ftp_upload/52802/52802fig10.jpg" /> Figura 10:. Miosina pesante catena immunostaining Day 4, 7 e 10 colture sono state colorate con anticorpi contro catena pesante della miosina (MyHC). Microfotografie rappresentativi di giorno 4, 7 e 10 culture dal digastrico (DIG) muscolare. Al giorno 7, piccoli miotubi sono presenti, mentre a giorni 10 miotubi lunghe e ben organizzati sono evidenti. Bilancia bar, 200 micron. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52802/52802fig10large.jpg" target="_blank">Cliccate qui per vedere una versione più grande di questa figura.</a> Video 1:.. Myotube spasmi Esempi di due campi rappresentativi con miotubi contrazioni sono indicati per il giorno 10 culture di muscolo digastrico <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52802/Video1.mpg" target="_blank">Cliccate qui per vedere il video.</a>

Questo protocollo descrive l&#39;isolamento delle cellule satelliti da muscoli della testa branchiomeric di un ratto 9 settimane di età. I muscoli provengono da diversi archi branchiali. Successivamente, le cellule satelliti sono coltivate su un rivestimento macchia di dimensioni millimetriche per studiare la loro differenziazione. Questo approccio evita l&#39;espansione e passaging di cellule satelliti.

Isolamento e caratterizzazione di cellule satelliti da muscoli Rat Capo Branchiomeric

Fibrosis and defective muscle regeneration can hamper the functional recovery of the soft palate muscles after cleft palate repair. This causes persistent ...

L'obiettivo generale di questa procedura è isolare le cellule satelliti da muscoli rappresentativi derivanti dal primo, secondo e quarto arco branchiale per la loro coltura su una matrice extracellulare. Punti di gel. Questo viene ottenuto mediante la dissezione iniziale dei muscoli mascellare, digastrico e levator veli palatini di un ratto adulto giovane.Nel secondo passaggio, le cellule satelliti di ciascun campione muscolare vengono isolate mediante digestione enzimatica, con durata specifica. Le cellule vengono quindi coltivate su gel di matrice extracellulare. Infine, lo stato dinamico della miogenesi delle colture di cellule satelliti può essere monitorato mediante colorazione per i marcatori muscolari di interesse.Il labbro leporino e il palatoschisi sono tra le malformazioni craniofacciali più comuni nell'uomo. Quando è presente una fessura, è necessario un intervento chirurgico per chiudere il difetto e consentire uno sviluppo normale del linguaggio. Tuttavia, la fibrosi e una rigenerazione muscolare difettosa possono ostacolare il recupero funzionale dei muscoli del palato molle. Dopo la correzione del palatoschisi, è possibile dimostrare un metodo innovativo per la coltura di cellule satelliti appena isolate, utilizzando rivestimenti di dimensioni millimetriche a base di gel di matrice extracellulare.Questo evita la necessità di espansione. Seminare queste cellule un giorno prima dell'isolamento, posizionando otto camere a pozzetti in una piastra di Petri da 100 millimetri e trasferendo la piastra su una superficie fredda. Dopo 10 minuti, utilizzare una micropipetta pre-riempita per dispensare una singola goccia da 10 microlitri di gel di matrice extracellulare in ciascun pozzetto.Dopo aver raffreddato i vetrini per altri sette minuti, rimuovere completamente il gel rimanente e asciugare i pozzetti a 37 gradi Celsius durante la notte; il giorno successivo. Per dissezionare il muscolo massetere, rimuovere la pelle dalla testa di un ratto di nove settimane e utilizzare aghi ipodermici per fissare la testa su un lato. Su un tappetino di silicone, isolare la ghiandola parotide e il nervo facciale e rimuovere la ghiandola.Successivamente, utilizzando una lama di bisturi numero 15, rimuovere con attenzione il nervo facciale. Identificare la testa superficiale del muscolo massetere. Successivamente, utilizzare una pinza dritta per separare il tendine dalla sua origine al processo zigomatico, seguita dal taglio accurato del tendine con forbici da dissezione.Utilizzando il bisturi, dissezionare la testa superficiale del muscolo massetere fino al suo inserimento all'angolo e alla metà inferiore della superficie laterale del ramo della mandibola. Per dissezionare il ventre posteriore del muscolo digastrico, fissare la testa in posizione supina con degli aghi ed eliminare il tessuto adiposo sottocutaneo sovrastante sia la ghiandola sottolinguale che quella sottomandibolare. Esporre i ventri anteriore e posteriore del muscolo digastrico, quindi afferrare con una pinza dritta il tendine anteriore del ventre posteriore e dissezionare con attenzione il tendine fino alla sua origine nella bulla timpanica.Per dissezionare il muscolo levatore del velo palatino, localizzare il muscolo stilofaringeo. Tirarlo lateralmente e rimuovere con attenzione il tessuto muscolare. Successivamente, localizzare il tendine del levatore del velo palatino che si inserisce sulla bulla timpanica e procedere con attenzione alla sua dissezione.Quindi sollevare l'esofago da dietro la trachea. Identificare la zona del palato molle in cui si inserisce il muscolo levator veli palatini e staccare il muscolo. Successivamente immergere il muscolo in etanolo al 70% e trasferirlo in PBS freddo su ghiaccio integrato con antibiotici.Per isolare le cellule satelliti, trasferire ciascun muscolo in pozzetti separati di una piastra a sei pozzetti e tagliare i tessuti in piccoli pezzi di due millimetri, avendo cura di non triturare eccessivamente i muscoli. Successivamente, incubare con attenzione i frammenti di tessuto in 2,5 millilitri di soluzione di pronasi 0,1% per pozzetto a 37 gradi Celsius per 60 minuti, agitando delicatamente ogni 20 minuti.Quando i fasci di fibre Exhibit A presentano un aspetto allentato, aggiungere 2,5 millilitri di DMEM integrato con siero equino e antibiotici in ciascun pozzetto e trasferire i tessuti digeriti in provette coniche individuali da 15 millilitri. Centrifugare le sospensioni di tessuto e decantare i soprannatanti. Quindi aggiungere cinque millilitri di mezzo in ciascuna provetta e omogeneizzare il tessuto con una pipetta di plastica da 10 millilitri.Centrifugare nuovamente i tessuti e trasferire i soprannatanti in nuovi tubi conici da 15 millilitri. Aggiungere quindi altri cinque millilitri di mezzo ai tubi e risospendere nuovamente i pezzi di tessuto fino a quando i frammenti passano facilmente attraverso la pipetta. Dopo un’ulteriore centrifugazione, raccogliere i soprannatanti nei tubi corrispondenti appropriati e filtrare le sospensioni cellulari attraverso filtri da 40 micrometri in singoli tubi da 50 millilitri.Lavare i filtri con un millilitro di DMEM per un recupero cellulare massimo. Quindi centrifugare le cellule, risospendere i pellet in mezzo fresco e contare le cellule per coltivare le cellule satelliti isolate. Successivamente, diluire le sospensioni cellulari a 1,5 volte 10 alla tre cellule per 10 microlitri di mezzo di coltura.Quindi aggiungere 10 microlitri di cellule su ciascun punto di gel di matrice extracellulare precedentemente preparato e incubare i gel a 37 gradi Celsius dopo sei ore. Aggiungere con attenzione 400 microlitri di mezzo di coltura a ciascun punto di gel e reinserire i vetrini nell'incubatore. Dopo tre giorni, avviare la differenziazione delle cellule aggiungendo il mezzo di coltura appropriato immediatamente dopo l'isolamento.Oltre il 90% delle cellule satelliti appena isolate esprime Pax7. Entro il quarto giorno, Pax7 e MyoD sono espressi dalle cellule satelliti di tutti i gruppi muscolari. MyoG è fortemente espressa al settimo giorno in tutti i gruppi muscolari. Quattro giorni dopo la semina sulla matrice extracellulare, le cellule proliferanti iniziano a fondersi formando piccoli miotubi multinucleati, che esprimono la catena pesante della miosina al settimo e al decimo giorno.Ai giorno 10 sono evidenti lunghi e ben organizzati tubuli miogenici. È inoltre possibile osservare il fremito dei tubuli miogenici. Questo protocollo consente lo studio delle cellule satelliti provenienti dai muscoli della testa e offre nuove possibilità per il trattamento dei pazienti affetti da palatoschisi.

isolation-characterization-satellite-cells-from-rat-head

Research

Ricerca

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologia dello sviluppo

Questo video dimostra l'isolamento di cellule satelliti dai tessuti muscolari branchiomerici della testa di ratto attraverso la dissezione dei tessuti, la digestione enzimatica e la successiva purificazione meccanica e centrifuga. Le cellule vengono quindi seminate su pozzetti rivestiti di matrice extracellulare per la differenziazione in mioblasti e, infine, in miotubi e fibre muscolari mature.

Una tecnica per isolare le cellule satelliti dal tessuto muscolare della testa di ratto

L'isolamento e la cultura della miofibre è il gold...

Isolamento e la coltura di miofibre individuali e delle loro cellule satelliti da adulto muscolo scheletrico

L'isolamento e la coltura di una popolazione pura di cellule satelliti quiescenti, una popolazione di cellule staminali muscolari, è essenziale per la comprensione del muscolo biologia delle cellule staminali e rigenerazione, nonché trapianto di cellule staminali per terapie in distrofia muscolare e altre malattie degenerative.

Isolamento, Cultura e trapianto di cellule muscolari satellite

La coltura in vitro di sistemi si sono dimostrati indispensabili per la nostra comprensione di myogenesis vertebrati. Tuttavia, resta ancora molto da imparare su nonmammalian sviluppo muscolo scheletrico e la crescita, in particolare in taxa basali. Un protocollo efficiente e robusto per isolare le cellule staminali di questo tessuto, le cellule precursori miogenici (PPM), e mantenendo la loro auto-rinnovo, proliferazione e differenziazione in un ambiente coltura primaria consente...

Preparazione di primaria Miogenica precursori cellulari / Culture mioblasti dal basale vertebrati Lignaggi

I principali tipi di cellule aderenti derivati dal muscolo umano sono le cellule miogeniche e i fibroblasti. Qui, le popolazioni cellulari vengono arricchite utilizzando lo smistamento cellulare attivato magneticamente basato sull'antigene CD56. La successiva immunomarcatura con anticorpi specifici e l'uso di tecniche di analisi delle immagini consentono la quantificazione delle caratteristiche citoplasmatiche e nucleari nelle singole cellule.

Isolamento e quantitativa immunocitochimica caratterizzazione di cellule miogeniche primarie e fibroblasti da muscolo scheletrico umano

Qui descriviamo una metodologia per ottenere una popolazione pura di mioblasti umani dal tessuto muscolare adulto. Queste cellule sono utilizzate per studiare la differenziazione muscolare scheletrica in vitro e, in particolare, per studiare le proteine ​​coinvolte nella segnalazione Ca 2+ .

Isolamento dei mioblasti umani, valutazione della differenziazione myogenica e misurazione dell&#39;entrata del calcio a livello di deposito

La precisa identificazione delle cellule satelliti è essenziale per lo studio delle loro funzioni in varie condizioni fisiologiche e patologiche. Questo articolo presenta un protocollo per identificare cellule satelliti su sezioni del muscolo scheletrico adulto tramite basati su immunofluorescenza colorazione.

Identificazione delle cellule satelliti del muscolo scheletrico dall'immunofluorescenza con Pax7 e Laminin anticorpi

Qui, proponiamo un metodo per ottenere in modo efficiente le singole fibre muscolari nelle prime fasi dello sviluppo post-natale dal mutante omozygoso lamin modello murino 8, un modello molto severo per la distrofia muscolare Emery-Dreifuss (EDMD).

Isolamento e cultura della miofibra singola da un modello Murine della distrofia muscolare di Emery-Dreifuss nei primi sviluppi post-Natal

Questo protocollo descrive l'isolamento delle cellule staminali muscolari e dei progenitori fibro-adipogeni dai singoli muscoli scheletrici nei topi. Il protocollo prevede la dissezione di un singolo muscolo, l'isolamento delle cellule staminali mediante selezione cellulare attivata a fluorescenza, la valutazione della purezza mediante colorazione con immunofluorescenza e la misurazione quantitativa dell'ingresso in fase S mediante saggio di incorporazione di 5-etinil-2'-deossiuridina.

Isolamento di popolazioni di cellule staminali quiescenti da singoli muscoli scheletrici

Di seguito viene presentato un protocollo efficiente per l'isolamento di cellule satelliti di cellule di arto di topo (FACS) attivato dalla fluorescenza, adattato allo studio della regolazione della trascrizione nelle fibre muscolari mediante scissione sotto bersagli e rilascio mediante nucleasi (CUT&amp;RUN).

Un protocollo efficiente per l'analisi CUT&amp;RUN di cellule satelliti di topo isolate da FACS

Questo protocollo fornisce un metodo standardizzato per isolare e arricchire mioblasti primari da muscoli scheletrici di topo adulti e neonati attraverso dissociazione tissutale, filtrazione sequenziale, preplaccatura e condizioni di coltura definite, consentendo l'istituzione e il mantenimento di colture mioblastiche derivate da cellule satellitari per applicazioni sperimentali a valle.

Isolamento delle cellule satelliti muscolari scheletrici per studi in vitro sulla miogenesi

Impara l'isolamento e la coltura di cellule satelliti da muscoli branchiomerici di ratto su gel di matrice extracellulare. Questo metodo consente di studiare la miogenesi e la rigenerazione muscolare senza espansione cellulare.

Isolamento e caratterizzazione di cellule satelliti da muscoli Rat Capo Branchiomeric

Esplora altri video