Name: Incapsulamento alginato di cellule staminali pluripotenti usando un ugello coassiale (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-07-02T10:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 13 s
Description: Scopri l'incapsulamento di cellule staminali pluripotenti in idrogel di alginato usando un ugello coassiale. Questo metodo riduce l'aggregazione cellulare e lo stress da taglio, facilitando la produzione su larga scala e la ricerca sulle nicchie staminali.

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Questa ricerca è stata supportata dal progetto S-Innovation dell'Agenzia giapponese per la scienza e la tecnologia (JST), dal Graduate Program for Leaders in Life Innovation (GPLLI) dell'Università di Tokyo e dalla Research Fellowship for Young Scientists of Japan Society for the Promotion of Science. Ringraziamo nac Image Technology Inc. per aver realizzato filmati utilizzando una fotocamera ad alta velocità.

1. Materiali Preparazione <ol><li> Preparare 10 tampone HEPES mM. Portare il pH a 7,0 a RT e aggiungere NaCl allo 0,9%. </li><li> Preparare la soluzione di alginato 5% e la soluzione di EDTA 10 mM mescolando salina tamponata HEPES preparato in 1.1. Portare il pH a 7,0 a RT. </li><li> Autoclave i reagenti (1.1, 1.2) per 20 minuti a 121 ° C. </li><li> Preparare 60 millimetri piatti di gelatina rivestite con strati 1,2-2,0 × 10 6 topo fibroblasti embrionali (MEF), le cellule, che sono trattati come cellule di alimentazione mediante incubazione all&#39;interno DMEM contenente 10% FBS ES-qualificati e 10 mg / ml di mitomicina C per 90 - 120 min. </li><li> Mantenere topo staminali pluripotenti indotte (iPS), le cellule sul piatto con le cellule di alimentazione in presenza di 5 ml di glucosio DMEM contenente il 20% di ES-qualificato FBS, 50 micron di 2-mercaptoetanolo, aminoacido non essenziale, e gli antibiotici ( 100 unità / ml di penicillina G sodio, 100 ug / ml di solfato di streptomicina, e 250 ng / ml di amphotericin B). </li><li> Seed 4 × 10 5 cellule ips su 60 mm piatto gelatina rivestite e incubare a 37 ° C e 5% CO 2. Modificare il terreno di coltura ogni giorno durante l&#39;incubazione. Dopo 3 - 4 giorni di coltura, trypsinize cellule per 1 min con 500 ml di 0,05% tripsina contenente 0,02% EDTA a 37 ° C e 5% CO 2. Dopo di che, staccare le cellule toccando il piatto cultura dieci volte. </li><li> Aggiungere 2,5 ml di DMEM con 10% di FBS e antibiotici ES-qualificato (seguenti cellule iPS topo dissociazione in cellule singole pipettando con 1.000 microlitri micropipetta tre volte) sospensione cellulare centrifugare a 160 g per 3 minuti e rimuovere il surnatante e contare le cellule . Dopo il conteggio delle cellule, reseed le cellule raccolte su un piatto di gelatina a polvere e incubare per 30 minuti per isolare le cellule iPS dalle cellule MEF. Dopo il conteggio delle cellule (di solito 1-3 × 10 6 cellule / piatto può essere raccolto), reseed 4 × 10 5 cellule iPS suil piatto. </li></ol> 2. Cella incapsulamento in alginato Hydrogel Capsule <ol><li> Raccogliere le cellule con la stessa procedura descritta in 1.5 e 1.6. Dopo la centrifugazione a 160 g per 3 minuti, lavare il pellet di cellule iPS con soluzione salina HEPES-buffered tre volte. Dopo ri-sospensione le cellule in soluzione salina tamponata HEPES, filtrare la sospensione cellulare attraverso un filtro 40 micron cellula per rimuovere grandi aggregati, che potrebbero intasare l&#39;ugello. </li><li> Mescolare 2 ml di sospensione cellulare all&#39;interno di soluzione salina tamponata HEPES e 3 ml di soluzione al 5% Alg-Na. Infine 5 ml di sospensione cellulare entro il 3% soluzione Alg-Na si ottiene. Densità cellulare è vantaggiosamente maggiore di 10 6 cellule / ml. </li><li> Dopo aver raccolto la sospensione cellulare in una siringa da 5 ml, installare un ugello coassiale (Figura 1A, B) sulla siringa e disporli su pompa a siringa. Emit N 2 flusso di gas (inferiore 1L / min) attraverso l&#39;ago esterna dell&#39;ugello coassiali eespellere la sospensione cellulare attraverso l&#39;ugello interno. </li><li> Raccogliere gocce in 250 ml di soluzione allo 0,5% di CaCl 2 ed attendere 10 - 20 min per gelificazione mentre agitazione a 60-90 rpm. </li></ol> 3. Trattamento di alginato Capsule (opzionale) <ol><li> Incubare capsule Alg-Ca a 0,05% (w / v) di poli-L-lisina (PLL) soluzione per 5 min a 37 ° C e 5% CO 2. </li><li> Dopo aver lavato le capsule con soluzione salina tamponata con HEPES-, incubare in DMEM contenente 10% FBS per neutralizzare la carica elettrica sulla loro superficie. Utilizzare loro sotto forma di capsule rivestite (Figura 1C). </li><li> Incubare le capsule in soluzione salina tamponata HEPES contenente EDTA 10 mM per 5 min. Le capsule trattato con EDTA sono utilizzati sotto forma di capsule cavi (Figura 1C). </li></ol> 4. Cultura e raccogliere le cellule in alginato Capsule <ol><li> Incubare le cellule incapsulate a 75 rpm con agitazione a 37 ° C e 5% CO 2per 10 giorni. </li><li> Raccogliere e incubare le capsule EDTA 10 mM a 37 ° C e 5% CO 2 per 10 min. Raccogliere le cellule dalle capsule alginato senza trattamento PLL per centrifugazione a 1000 g per 3 min. </li><li> Se capsule di alginato sono trattati con PLL, rompere la membrana Alg-PLL pipettando su e giù intorno dieci volte con un ago attaccato ad una siringa e centrifugare a 1000 - 5000 xg per 5 min. Diametro ago deve essere inferiore formato di capsule e 25 g (260 micron) aghi sono utilizzati in questo esperimento (600 micron) </li><li> Dopo la centrifugazione, raccogliere pellet cellulare rigorosamente da rotte membrane Alg-PLL, se si vuole raccogliere campioni di mRNA da cellule. Rimanenti membrane Alg-PLL eventualmente prevenire mRNA purificazione. </li></ol>

<ol><li>Zweigerdt, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large+scale+production+of+stem+cells+and+their+derivatives%5BTitle%5D)+AND+%22Adv.+Biochem.+Eng.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Large scale production of stem cells and their derivatives.</a> Adv. Biochem. Eng. Biotechnol. 114, 201-235 (2009).</li>
<li>Chen, A., Chen, X., Choo, A. B. H., Reuveny, S., Oh, S. K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Critical+microcarrier+properties+affecting+the+expansion+of+undifferentiated+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+cell+Res%22%5BJournal%5D)">Critical microcarrier properties affecting the expansion of undifferentiated human embryonic stem cells.</a> Stem cell Res. 7 (2), 97-111 (2011).</li>
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<li>Sakai, M. P., Y, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+Bioactive+Hydrogel+Capsules+for+The+3D+Expansion+of+Pluripotent+Stem+Cells+in+Bioreactors%5BTitle%5D)+AND+%22Biomater.+Sci%22%5BJournal%5D)">Development of Bioactive Hydrogel Capsules for The 3D Expansion of Pluripotent Stem Cells in Bioreactors.</a> Biomater. Sci. 2 (176), 176-183 (2014).</li>
<li>Chowdhury, M. M., Katsuda, T., Montagne, K., Kimura, H., Kojima, N., Akutsu, H., Ochiya, T., Fujii, T., Sakai, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+effects+of+secreted+soluble+factor+preserve+better+pluripotent+state+of+embry-+onic+stem+cell+culture+in+a+membrane-based+compartmentalized+micro-bioreactor%5BTitle%5D)+AND+%22Biomed.+Microdevices%22%5BJournal%5D)">Enhanced effects of secreted soluble factor preserve better pluripotent state of embry- onic stem cell culture in a membrane-based compartmentalized micro-bioreactor.</a> Biomed. Microdevices. 12 (6), 1097-1105 (2010).</li>
<li>Chowdhury, M. M., Kimura, H., Fujii, T., Sakai, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+alternative+fate+other+than+default+neuronal+fate+of+embryonic+stem+cells+in+a+membrane-based+two-chambered+micro-+bioreactor+by+cell-secreted+BMP4%5BTitle%5D)+AND+%22Biomicrofluidics%22%5BJournal%5D)">Induction of alternative fate other than default neuronal fate of embryonic stem cells in a membrane-based two-chambered micro- bioreactor by cell-secreted BMP4.</a> Biomicrofluidics. 6 (1), 14117-14117-13 (2012).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

<html> Cultura incapsulamento può essere confrontato con le culture diretti sospensione. Coltura in sospensione è un metodo semplice per ottenere grandi quantità di cellule staminali pluripotenti rispetto ai metodi di incapsulamento. Tuttavia, controllando l&#39;aggregazione di cellule in coltura in sospensione è ancora impegnativo. Nel metodo di incapsulamento, aggregazione cellulare è limitata in capsule e può quindi essere ben controllata. Una pubblicazione precedente ha mostrato che le cellule incapsulate formano agg...

Le cellule staminali pluripotenti indotte (cellule iPS) sono attualmente fonte di intensa ricerca grazie al loro ruolo nella medicina rigenerativa. Tuttavia, sono necessarie enormi quantità di cellule per la rigenerazione dei tessuti. Ad esempio, circa un miliardo di cellule pancreatiche necessarie per un paziente diabetico di tipo 11. Tuttavia, la coltura convenzionale su piastra è in grado di ottenere solo 1 × 105 cellule/cm2, richiedendo quindi 1 m2 di area di coltura per ottenere abbastanza cellule pancreatiche derivate da cellule staminali per trattare un paziente diabetico di tipo 1. Lo sviluppo di un sistema per la coltura di massa di cellule staminali pluripotenti, come il microcarrier2 e la coltura in sospensione, è quindi necessario per la medicina rigenerativa. La coltura in sospensione rappresenta un metodo promettente di coltura di massa, ma il controllo dell'aggregazione delle cellule è difficile nelle colture in sospensione diretta di cellule iPS umane3. Infatti, le celle sospese sono esposte a sollecitazioni di taglio, che causano danni cellulari3 o differenziazione4.
Sono state condotte ricerche sull'incapsulamento a base di idrogel per risolvere i problemi associati alla coltura in sospensione. Nelle capsule di idrogel, le cellule sono protette dal flusso del mezzo. Rapporti precedenti hanno documentato l'uso di vari tipi di idrogel, tra cui agarosio5, PEG6 e alginato (Alg), per l'incapsulamento cellulare. L'idrogel di Alg-Ca è uno degli idrogel più utili per l'incapsulamento cellulare perché l'idrogel di Alg-Ca si forma immediatamente dopo aver versato la soluzione di alginato in una soluzione di CaCl2 ed è anche prontamente digerito da enzimi o reagenti chelanti. 
Qui, abbiamo stabilito un processo di incapsulamento stabile dell'alginato per le cellule iPS utilizzando un ugello coassiale. Utilizzando il flusso di gas N2 per la formazione di goccioline, è possibile incapsulare le cellule in capsule uniformi senza la necessità di altri reagenti come l'olio. In questo metodo, la velocità di flusso di N2 e la concentrazione sia di CaCl2 che di alginato sono le principali condizioni operative che influenzano le dimensioni, la forma e l'uniformità delle capsule. Questo rapporto dimostra l'ottimizzazione di queste condizioni operative attraverso l'uso di una telecamera ad alta velocità e di un microscopio.

<table><tbody><tr><td>Fibroblasto embrionale di topo</td><td>Cell Biolabs</td><td>SNL 76/7</td><td></td></tr><tr><td>Cellula staminale pluripotente indotta dal</td><td>topo RIKEN Bio centro di ricerca</td><td>iPS-MEF-Ng-20D-17</td><td></td></tr><tr><td>DMEM ad alto glucosio</td><td>GIBCO</td><td>11995</td><td></td></tr><tr><td>ES qualificato&nbsp; FBS</td><td>GIBCO</td><td>16141079</td><td></td></tr><tr><td>Antibiotici antibatterici</td><td>GIBCO</td><td>15240</td><td></td></tr><tr><td>Aminoacido non essenziale</td><td>GIBCO</td><td>11140</td><td></td></tr><tr><td>2-mercaptoetanolo</td><td>GIBCO</td><td>21985-023</td><td></td></tr><tr><td>ESGRO Fattore inibitorio della leucemia</td><td>Merck Millipore</td><td>ESG1107</td><td></td></tr><tr><td>Tripsina/EDTA</td><td>GIBCO</td><td>25300</td><td></td></tr><tr><td>Ago da 26 G/16 G</td> Siringa <td>Hoshiseido</td><td></td><td></td></tr><tr><td>da 10 ml</td><td>TERUMO</td><td>SS-10ESZ</td><td></td></tr><tr><td>Sodio&nbsp; Cloruro</td><td>Wako</td><td>191-01665</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>SIGMA</td><td>H4034</td><td></td></tr><tr><td>Alginato di sodio</td><td>Wako</td><td>194-09955</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro di calcio</td><td>Wako</td><td>039-00475</td><td></td></tr><tr><td>Poli-L-lisina (MW = 15.000 - 30.000)</td><td>SIGMA</td><td>P7890</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>DOJINDO</td><td>345-01865</td><td></td></tr><tr><td>Pompa Sylinge</td><td>AS ONE</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microscopio</td><td>Olympus</td><td>IX71</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio</td><td>Leica</td><td>DM IRB</td><td></td></tr><tr><td>Fotocamera Hispeed</td><td>nac tecnologia di immagine</td><td>Memrecam HX-3</td><td></td></tr></tbody></table>

incapsulamento alginato di cellule staminali pluripotenti usando un ugello coassiale

Alginate Encapsulation of Pluripotent Stem Cells Using a Co-axial Nozzle

Le cellule staminali pluripotenti (cellule PS) sono al centro di un'intensa ricerca grazie al loro ruolo nella medicina rigenerativa e nello screening dei farmaci. Tuttavia, lo sviluppo di un sistema di coltura di massa sarebbe necessario per l'utilizzo delle cellule PS in queste applicazioni. La coltura in sospensione è un metodo di coltura promettente per la produzione di massa di cellule PS, anche se alcuni problemi come il controllo dell'aggregazione e la limitazione dello stress di taglio dal terreno di coltura sono ancora irrisolti. Per risolvere questi problemi, abbiamo sviluppato un metodo di incapsulamento dell'alginato di calcio (Alg-Ca) utilizzando un ugello coassiale. Questo metodo può controllare facilmente le dimensioni delle capsule facendo fluire in confluenza il gas N2. Il diametro della capsula controllabile deve essere maggiore di 500 μm perché una portata troppo elevata di gas N2 provoca la rottura delle goccioline e quindi delle capsule di dimensioni eterogenee. Inoltre, una bassa concentrazione di Alg-Na e CaCl2 provoca la formazione di capsule non sferiche. Sebbene una capsula di Alg-Ca senza un rivestimento di Alg-PLL si dissolva facilmente consentendo la raccolta di cellule, queste possono anche potenzialmente fuoriuscire da capsule prive di un rivestimento di Alg-PLL. In effetti, un rivestimento in alginato-PLL può prevenire la perdita cellulare ma è anche difficile da rompere. Questa tecnologia può essere utilizzata per la ricerca sulla nicchia delle cellule staminali e sulla produzione di massa di cellule PS perché l'incapsulamento può modificare il microambiente che circonda le cellule, compresa la matrice extracellulare e la concentrazione di fattori secreti.

Al protocollo 2.5, la soluzione di alginato espulso forma una forma sferica subito dopo l&#39;espulsione (Figura 2A - H). Se la sospensione viene espulso con una portata N 2 inferiore 1L / min, la dimensione delle goccioline è uniforme (figura 2I). Tuttavia, se il flusso di N 2 è superiore a 1L / min, la goccia si rompe (figura 2G, a freccia bianca) e la dimensione delle goccioline diventa eterogenea (Figura 2J). Dato questo, è dif...

Abbiamo stabilito un metodo per incapsulare cellule staminali pluripotenti (cellule PS) in capsule di idrogel di alginato utilizzando un ugello coassiale. Ciò impedisce alle cellule di aggregarsi eccessivamente e limita lo stress da taglio sperimentato dalle cellule in coltura in sospensione. La tecnica è applicabile alla produzione di massa di cellule PS e alla ricerca sulla nicchia delle cellule staminali.

Incapsulamento alginato di cellule staminali pluripotenti usando un ugello coassiale

Pluripotent stem cells (PS cells) are the focus of intense research due to their role in regenerative medicine and drug screening.  However, the ...

L'obiettivo generale di questa procedura è incorporare in modo sicuro ed efficace cellule staminali in capsule di idrogel di alginato e coltivarle all'interno delle capsule per controllare l'aggregazione e il microambiente; ciò si ottiene innanzitutto mescolando una sospensione filtrata di cellule staminali e una soluzione di alginato di sodio. La miscela viene quindi trasferita in una siringa e un ugello coassiale viene installato sulla siringa prima di posizionarla su una pompa per siringhe. Successivamente, le goccioline vengono formate espellendo la sospensione cellulare con un flusso di gas azoto, seguito dalla raccolta e dalla soluzione di cloruro di calcio.Le capsule vengono quindi trattate con poli-L-lisina per prevenire la fuoriuscita cellulare e con EDTA per fluidificare l'interno delle capsule, prima di coltivare le cellule incapsulate in condizioni di agitazione rotatoria. Infine, le cellule vengono raccolte dalle capsule mediante EDTA e distruzione fisica della membrana. In definitiva, l'incapsulamento in alginato delle cellule staminali pluripotenti impedisce alle cellule di aggregarsi eccessivamente e riduce lo stress da taglio subito dalle cellule in coltura in sospensione.Questo metodo può contribuire a rispondere a domande fondamentali nel campo biologico e biomedico, come l'ampia espansione della trapiantologia cellulare e lo studio della nicchia delle cellule staminali. Iniziare l'incapsulamento cellulare raccogliendo le cellule come descritto nel protocollo testuale, centrifugando a 160 ×g per tre minuti. Lavare il pellet di cellule staminali pluripotenti indotte o cellule IPS mediante Resus, sospendendole in soluzione salina tamponata con HEPES e centrifugando per tre volte dopo il Resus, sospendendo le cellule in soluzione salina tamponata con HEPES.Filtrare la sospensione cellulare attraverso un filtro cellulare da 40 micron per rimuovere gli aggregati più grandi, che potrebbero ostruire l'ugello. Successivamente, mescolare due millilitri di sospensione cellulare filtrata e tre millilitri di soluzione di alginato di sodio al 5%. Per ottenere una sospensione cellulare finale di cinque millilitri in alginato di sodio al 3%, la densità cellulare deve essere superiore a 1 milione di cellule per millilitro.Dopo aver raccolto la sospensione cellulare in una siringa da cinque millilitri, montare un ugello coassiale sulla siringa e posizionarla su una pompa per siringhe; far fuoriuscire un flusso di gas azoto attraverso l'ago esterno dell'ugello coassiale ed espellere la sospensione cellulare attraverso l'ugello interno. Raccogliere le goccioline in 250 millilitri di soluzione di cloruro di calcio allo 0,5% e attendere da 10 a 20 minuti affinché avvenga la gelificazione, sotto agitazione a 60-90 giri al minuto. Dopo il lavaggio con soluzione salina tamponata, le capsule raccolte vengono utilizzate come capsule nude; incubare le capsule di alginato di calcio in una soluzione allo 0,05% peso/volume.Soluzione di poli-L-lisina per cinque minuti a 37 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica con agitazione. Dopo aver raccolto le capsule in un tubo e averle lavate con soluzione salina tamponata, incubarle in DMEM contenente 10% di FBS. Per neutralizzare la carica elettrica sulla loro superficie, utilizzare le capsule ottenute come capsule rivestite per generare capsule cave.Incubare le capsule in mucchi di soluzione salina tampone contenente EDTA 10 millimolare per cinque minuti. Le capsule trattate con EDTA vengono utilizzate come capsule cave. Incubare le cellule incapsulate a 75 giri al minuto con agitazione a 37 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica per 10 giorni; al termine dell'incubazione, raccogliere e incubare le capsule in EDTA 10 millimolare a 37 gradi Celsius e 5% di anidride carbonica per 10 minuti.Raccogliere le cellule dalle capsule di alginato senza trattamento con poli-L-lisina mediante centrifugazione a 1000 ×g per tre minuti. Se le capsule di alginato sono state trattate con poli-L-lisina, rompere la membrana di alginato-poli-L-lisina pipettando su e gi&ugrave; circa 10 volte con un ago collegato a una siringa. Il diametro dell'ago deve essere inferiore alla dimensione delle capsule, e in questo esperimento vengono utilizzati aghi da 25 gauge.Dopo centrifugazione a 1000-5.000 ×g per cinque minuti, raccogliere il pellet cellulare esclusivamente da membrane di alginato poli-L-lisina rotte. Se i campioni di mRNA vengono raccolti dalle cellule, si noti che le membrane residue di alginato poli-L-lisina potrebbero impedire la purificazione dell'mRNA, come visualizzato mediante una telecamera ad alta velocità. La soluzione di alginato espulsa assume immediatamente una forma sferica dopo l'espulsione. Se la sospensione viene espulsa con una portata di azoto inferiore a un litro al minuto, le gocce presentano dimensioni uniformi.Tuttavia, se il flusso di azoto è superiore a un litro al minuto, la goccia si rompe e le dimensioni delle gocce diventano eterogenee. Per questo motivo, è difficile preparare gocce più piccole di 500 micron utilizzando questo metodo. Nel processo di gelificazione, le gocce di alginato di sodio formano capsule sferiche di alginato di calcio in soluzione di cloruro di calcio.Tuttavia, se la concentrazione di alginato di sodio è sufficientemente elevata, una bassa concentrazione di alginato di sodio provoca forme irregolari, non sferiche e non uniformi delle capsule, che presentano problemi nel processo di codifica. Anche se la concentrazione di alginato di sodio non è sufficiente, capsule sferiche possono essere formate aumentando la concentrazione di calcio. Tuttavia, una concentrazione di circa 50 millimolari di cloruro di calcio è appropriata per l'incapsulamento, poiché una concentrazione troppo elevata di cloruro di calcio riduce la crescita cellulare e la vitalità.Le cellule incapsulate possono crescere all'interno delle capsule, ma può verificarsi una fuoriuscita cellulare nelle capsule prive del rivestimento di alginato di poli-L-lisina. Nel caso delle cellule staminali pluripotenti indotte di topo, le cellule formano aggregati di forma discoidale all'interno di ciascuna capsula di alginato di calcio, mentre si raggrumano e formano singoli aggregati sferici all'interno di ciascuna capsula cava. Dopo aver visionato questo video, si dovrebbe avere una buona comprensione di come incapsulare e coltivare cellule con controllo dimensionale.L'idrogeno viene catturato senza alcun equipaggiamento speciale e senza assorbenti organici.

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Developmental Biology

Biologia dello sviluppo

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Incapsulamento cellulare in idrogel 3D per l&#39;ingegneria tissutale

Abbiamo ottimizzato una tecnica di microincapsulazione come una piattaforma efficace 3D per la propagazione e la differenziazione delle cellule staminali embrionali per endoderma e dopaminergici (DA) neuroni. Esso fornisce inoltre l'opportunità di immuno-isolamento di cellule dall'host durante il trapianto. Questa piattaforma può essere adattato per altri tipi di cellule.

Microcapsule di alginato come piattaforma 3D per la propagazione e la differenziazione delle cellule staminali embrionali umane (hESC) per diverse linee

Combinando goccia generazione monodisperse con ordinamento inerziale di cellule e particelle, si descrive un metodo per incapsulare un numero desiderato di celle o particelle in una singola goccia a tassi kHz. Abbiamo dimostrato efficienze due volte superiori a quelli di incapsulamento non ordinate per raccogliere le gocce singola e doppia-particelle.

High Throughput singola cellula e cellula Multiple-Micro-incapsulamento

Qui, presentiamo un protocollo per l'incapsulamento di cellule cataboliche, che consumano lipidi per la produzione di calore nel tessuto adiposo intra-addominale e aumentano la dissipazione di energia nei topi obesi.

Incapsulamento termogenico preadipocytes al trapianto nel tessuto adiposo Depositi tessuti

Questo protocollo descrive una metodologia di bioprinting che utilizza un sistema di deposito robotico automatizzato che incorpora segnali di guida topografici incisi con la deposizione di precisione di una cella contenente idrogel bioink. Le celle stampate vengono consegnate direttamente alle caratteristiche incise e sono in grado di percepirle e orientarsi con esse.

Tecnica Automated robotica erogazione di orientamento della superficie e Bioprinting di celle

Questo video e il manoscritto descrivono un metodo basato sull'emulsione per incapsulare le cellule di mammiferi da 0,5% a 10% di branchi alginato, che possono essere prodotti in grandi lotti utilizzando un recipiente semplice mescolato. Le cellule incapsulate possono essere coltivate in vitro o trapiantate per applicazioni di terapia cellulare.

L&#39;incapsulamento delle cellule dei mammiferi nei branelli di Alginate usando un vaso semplice mescolato

Presentato qui è un set-up biostampa tridimensionale semplice da usare, nucleo/guscio, tridimensionale per la fabbricazione in un solo passaggio di scaffold cavi, adatto per l'ingegneria tissutale di strutture vascolari e altre strutture tubolari.

Scaffold di stampa Core/shell per l'ingegneria dei tessuti di strutture tubolari

Presentiamo qui un metodo che combina l'uso della cancellazione epigenetica chimica con segnali correlati al meccanosensing per generare in modo efficiente cellule pluripotenti di mammiferi, senza la necessità di trasfezione genica o vettori retrovirali. Questa strategia è, quindi, promettente per la medicina traslazionale e rappresenta un notevole progresso nella tecnologia degli organoidi delle cellule staminali.

Una strategia in due fasi che combina modificazione epigenetica e segnali biomeccanici per generare cellule pluripotenti di mammifero

Questo articolo descrive l'incapsulamento di cellule staminali pluripotenti umane (hPSC) utilizzando un dispositivo di messa a fuoco del flusso coassiale. Dimostriamo che questa tecnologia di incapsulamento microfluidico consente una formazione efficiente di sferoidi hPSC.

Fabbricazione microfluidica di microcapsule Core-Shell che trasportano sferoidi di cellule staminali pluripotenti umane

Il presente protocollo descrive una tecnica per produrre sferoidi tissutali su larga scala in modo economico utilizzando un dispositivo simile a un timbro stampato in 3D.

Generazione di sferoidi tissutali tramite un dispositivo simile a un timbro stampato in 3D

Questo lavoro descrive un protocollo per la stampa 3D incorporata a forma libera di cellule staminali neurali all'interno di compositi di matrice extracellulare ricottura autorigeneranti. Il protocollo consente la modellazione programmabile di costrutti di tessuto neurale umano interconnessi con alta fedeltà.

Supporto composito a matrice microgel-extracellulare per la stampa 3D embedded di costrutti neurali umani

Scopri l'incapsulamento di cellule staminali pluripotenti in idrogel di alginato usando un ugello coassiale. Questo metodo riduce l'aggregazione cellulare e lo stress da taglio, facilitando la produzione su larga scala e la ricerca sulle nicchie staminali.

Incapsulamento alginato di cellule staminali pluripotenti usando un ugello coassiale

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