Name: Viabilità di Bioprinted cellulari Costruisce Utilizzando un dispenser stampante cartesiana Tre (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-09-22T16:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 5 s
Description: Scopri la biostampa 3D di costrutti cellulari vitali con geometrie complesse utilizzando cellule stromali del tessuto adiposo umano e bioinchiostro di alginato. Questo metodo consente un posizionamento preciso delle cellule per applicazioni di ingegneria tissutale.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Questo lavoro è stato sostenuto dal governo sostegno di cui di assegnazione N ° EPS-0903795 assegnati dalla National Science Foundation, NIH NIDCR R01-DE019355 (MJY PI), e Grant 8P20 GM103444 (YM PI).

1. Preparazione del substrato contenente gelatina per tridimensionale Bioprinting di alginato idrogel <ol><li> Preparare il substrato di calcio / gelatina seguendo il metodo substrato calcio / gelatina descritto da Pataky e altri 11 per evitare la redditività ridotta associata ad alto contenuto. Il metodo substrato calcio / gelatina è elencato di seguito. <ol><li> Combinare diidrato cloruro di calcio (1.5 wt%), sodio cloruro (0,9% in peso), e la gelatina porcina (2 wt%) in acqua distillata e far bollire per 2 minuti per creare una soluzione di gelatina 100 mM. </li></ol></li><li> Versare 5 ml della soluzione di gelatina / calcio in 100 mm piatti Petri standard, agitare la soluzione attorno a rendere ancor rivestimento sulla superficie, e posto su una superficie piana in frigorifero a gel O / N (permette di gel di almeno 8 hr prima dell&#39;uso). </li><li> Per aumentare l&#39;opacità della superficie del substrato, aggiungere biossido di titanio (0.3 wt%) alla soluzione di gelatina CaCl / 2. Agitare per 10 min. Autoclave soluzione di gelatina / TiO 2 sul ciclo liquidi per 30 min per sterilizzarlo. <ol><li> Aggiungere 3 ml della / soluzione di gelatina TiO 2 alla superficie delle piastre di gelatina precedentemente preparati. Agitare la miscela per assicurarsi che sia distribuito uniformemente su tutta la superficie. Lasciare gel nel 4 ° C frigo O / N (permettere a gel, almeno 8 ore prima dell&#39;uso). I supporti devono essere utilizzati entro 3 giorni. </li></ol></li></ol> 2. alginato Ossidazione <ol><li> Ossidare il bioink alginato di sodio secondo il metodo per alginato parzialmente ossidato Bouhadir et al 30 descritto di seguito. <ol><li> Per fare una soluzione di alginato ossidato 5%, sciogliere 1 g di alginato di sodio in 100 ml di acqua distillata. Aggiungere una soluzione acquosa di periodato di sodio (0,25 M, 0,25 mmol), l&#39;agente ossidante, per produrre una soluzione al 5% di ossidazione. Mescolare per 19 ore a temperatura ambiente. Aggiungere 40 ml di glicole etilenico alla soluzione dopo 24 ore per terminare la reaction. </li><li> Sciogliere 2.5 g di cloruro di sodio in soluzione. Aggiungere una quantità in eccesso di alcol etilico (rapporto 2: 1) per precipitare i alginati ossidati. Centrifugare a 1.000 xg per raccogliere i precipitati e ri-sciogliere in acqua distillata. Ripetere il lavaggio etanolo. </li><li> Liofilizzare il pellet alginato ossidati e conservare a -20 ° C fino al momento dell&#39;uso. </li></ol></li><li> Determinare il grado di ossidazione misurando la percentuale di sodio periodato consumato prima di essere terminato da glicole etilenico. <ol><li> Preparare una soluzione di ioduro di potassio (20% w / v, pH 7,0 tampone fosfato di sodio) e una soluzione thyodene (10% w / v, pH 7,0 tampone fosfato di sodio). Mescolare le due soluzioni con l&#39;alginato ossidato a RT. </li><li> Gradualmente cadere l&#39;alginato di sodio e soluzione di periodato reagito nella miscela di soluzioni di ioduro di potassio e theodyne. Misurare l&#39;assorbanza della miscela spettrofotometro a 426 nm. Quando ha raggiunto unmassimo, registrare il volume utilizzato di alginato di sodio e soluzione periodato come V 1. </li><li> La reazione è <img alt="Equazione 1" fo:content-width="0.8in" src="/files/ftp_upload/53156/53156eq1.jpg" width="120" /> . La quantità di periodato di sodio non reagito è <img alt="Equazione 1.5" fo:content-width="1.2in" src="/files/ftp_upload/53156/53156eq1.5.jpg" width="150" /></li><li> Sottrarre la quantità di periodato di sodio non reagito dalla concentrazione iniziale per determinare la quantità di sodio periodato consumato. Usando la formula precedente, determinare il grado di ossidazione finale del alginato. </li></ol></li></ol> 3. alginato Peptide Coniugazione <ol><li> Leganti coniugati con una sequenza di arginina-glicina-aspartato esposti (peptide) nella alginato ossidato precedentemente preparato seguendo il metodo coniugazione RGD-alginato da Rowley et al 31 di seguito descritto per promuovere l&#39;adesione delle cellule e la diffusione. </li><li> Utilizzare carbod acquosachimica iimide con G 4 RGDSPto coniugato 31. </li><li> Sciogliere 1 g di 5% alginato ossidato in 0,1 M 2- (N-morfolino) Acido etansolfonico (MES) tampone pH = 4. Aggiungere 1-etil- (dimetilamminopropil) carbodiimmide (EDC, 0,54 mmol) e N-Hydroxysuccinimide ( NHS, 0,27 mmol) in rapporto 2: 1 per formare ammide intermedia. </li><li> Aggiungere 0,28 mmol peptide, giunto alla spina dorsale del polimero alginato mediante il terminale amminico. Mescolare a RT O / N. </li><li> Arrestare la reazione di accoppiamento con l&#39;aggiunta di 2,5 g di cloruro di sodio alla soluzione. Aggiungere una quantità in eccesso di alcol etilico (rapporto 2: 1) per precipitare i alginati ossidati. Centrifugare la miscela a 4000 xg per 5 minuti per raccogliere i precipitati. Aspirare i media nel cofano coltura cellulare e ri-sciogliere i precipitati in acqua distillata. Ripetere il lavaggio etanolo. </li><li> Liofilizzare precipitati fino a quando non diventa completamente asciugato (apparirà come una sostanza polverosa bianca) e conservare in frigo a -20 ° C per più tardiutilizzare. </li></ol> 4. adiposo umano Cellule tessuto stromale coltura cellulare (di hADSC) <ol><li> Cultura adiposo umano cellule stromali tessuto (di hADSC) in 75 cm trattati boccette di coltura cellulare (fiasche T75), coperto con 15 ml basso DMEM glucosio con il 10% di siero fetale bovino e 1% di penicillina-streptomicina, 1% glutamina e 1% antimicina. Modificare i media, nel cofano coltura cellulare, ogni due giorni fino a quando non hanno raggiunto confluenza (80-90%). </li><li> Una volta confluenti, trasferire i fiaschi T75 alla cappa coltura cellulare e sospendere la hADSC del utilizzando il metodo tripsina digestione enzimatica. <ol><li> Nella cappa, aspirare tutti i terreni di coltura cellulare spento delle cellule. Sciacquare con 5 ml di Dulbecco fosfato-Buffered Saline con calcio e magnesio (DPBS ++). Aspirare il DPBS ++ fuori delle cellule. </li><li> Mentre nella cappa, fare una soluzione di tripsina e DPBS ++ miscelando 1 ml tripsina e 4 ml DPBS ++. Ogni beuta richiede 5 ml della solution, in modo da rendere il volume appropriato per il numero di flaconi confluenti. Aggiungere 5 ml della tripsina / DPBS ++ per ogni pallone e metterli in incubatrice per 2 min. </li><li> Dopo 2 minuti, togliere i flaconi e battere leggermente ai lati del loro di allentare le cellule dai fondi. Guardare ogni beuta sotto un microscopio per assicurare le cellule sono sospese. Collocare i flaconi di nuovo nel cofano coltura cellulare e aggiungere 3 ml di mezzi appropriati di coltura cellulare per ogni pallone. Questo termina la reazione tripsina. </li><li> Trasferire i mezzi di comunicazione cellula-carico da ogni pallone e mettere in una conica da 50 ml. Li centrifugare a 1000 xg per 5 min. Le celle dovrebbero apparire come una piccola pallina bianca sul fondo del cono. Rientro alla cappa coltura cellulare e aspirare i media. Risospendere le cellule in 2 ml di colture cellulari. </li><li> Contare le cellule utilizzando un emocitometro al microscopio. Una volta che le cellule sono state contate, nella cappa coltura, un&#39;aliquota la quantità di materiale contenente ~ 1,3 million cellule e trasferimento in una conica da 15 ml. Centrifugare la conica 15 ml contenente nuovamente le cellule per 5 minuti a 1000 x g. </li><li> Nel cofano cultura, reseed le restanti celle in più T-75 palloni, l&#39;aggiunta di una concentrazione di ~ 350.000 cellule per ogni pallone. Aggiungere 15 ml di media DMEM e tornare alla incubatore fino confluenti di nuovo. </li><li> Terminato il ciclo di centrifuga, riportare la conica 15 ml per la coltura cellulare. Aspirare il supporto dal pellet cellulare, e risospendere le cellule in soluzione acquosa di alginato ad una concentrazione di 1,3 milioni di cellule per millilitro di bioink, terteriating la soluzione spesso così vi è una distribuzione omogenea di cellule in tutto il bioink. Caricare la soluzione di cellule-carico in una siringa da 3 ml compatibile stampante sterile e avvitare la sterile 22 G punta di plastica. </li></ol></li></ol> 5. Bioprinter Setup <ol><li> Accendere il bioprinter, ogni computer dispenser, e la recirculating bagnomaria. <ol><li> Impostare manualmente la temperatura del bagno a ricircolo d&#39;acqua per per il meccanismo di gelificazione. </li><li> Impostare manualmente i parametri di stampa per ogni dispenser sul computer distributore di correlazione. Impostare il volume di erogazione di 230 nl, il numero di backsteps a 0, e la velocità di erogazione di 10μl -sec. </li></ol></li><li> Aprire il software di progettazione e il programma per la visualizzazione del display della videocamera USB del computer. <ol><li> Utilizzando il software, inserire manualmente le coordinate per una matrice di punti 5 x 5 con 2,4 millimetri spaziatura tra gocce. </li><li> Impostare i parametri di stampa per essere: distanza tra fine punta e superficie del substrato = 0,1 millimetri; siringa altezza viene sollevato tra deposizioni = 20 mm; la quantità di tempo per deposizione = 1 sec. </li><li> Salvare il programma e inviarlo al robot. </li></ol></li><li> Porre la capsula di Petri di gelatina / TiO2 -contenenti sul palco della stampante C 4 °. Chiudere e bloccare la porta della camera. </li><li> Utilizzare il PLC per initialize le fonti di luce ultravioletta, e sterilizzare la camera per 90 sec. </li><li> Una volta che la sterilizzazione è completo, aprire la camera e caricare la siringa contenente del hADSC sospeso in alginato in Gun 1. Chiudere e bloccare la porta della camera. </li><li> Utilizzare il PLC per accendere il sistema di ventilazione, attendere 30 secondi per l&#39;equilibrio della pressione interna. </li><li> Sul computer, eseguire il programma contenente i parametri pathway e stampa geometrica. </li><li> Durante tutto il processo di stampa, vedere lo schermo della telecamera USB del computer per confermare la stampa accurata e uniforme. </li><li> Una volta che la stampa è terminata, consentire i costrutti di gel per 40 min. </li></ol> 6. cellulare vitalità Assessment <ol><li> Coprire i costrutti che non stanno andando per essere ripreso immediatamente dopo la stampa in DMEM e conservare in incubatrice fino al momento di imaging. </li><li> Per quantificare la vitalità dei costrutti, macchia utilizzando un test di fattibilità / citotossicità fluorescenti-based, unimmagine nd utilizzando la microscopia confocale. <ol><li> Seguendo le istruzioni del kit, preparare una soluzione colorante contenente calceina AM e etidio omodimero-1. Per fare 10 ml di soluzione colorante, aggiungere 20 ml di etidio omodimero-1 e 5 ml della calceina am a 10 ml di sterile, coltura di tessuti di prima scelta di Dulbecco Phosphate-Buffered Saline (+ magnesio, + calcio; DPBS ++). </li><li> Immergere i costrutti bioprinted nella soluzione macchia per 15 minuti al buio. </li><li> Immagine costrutti colorate utilizzando un sistema di microscopio confocale a giorni 0 e 8. Prendete più foto di ogni costrutto bioprinted, utilizzando parametri Z-stack da 30 fette ottici su una profondità di 300 micron, e contano manualmente le cellule. Se le cellule appaiono di colore giallo o verde li contano come vivi, e se rosso, contarli come morto. </li></ol></li><li> Calcolare la percentuale vitalità cellulare come il numero di cellule vive diviso per il numero totale di cellule nel costrutto; La vitalità cellulare = numero dicellule vive (verde + giallo) / numero di cellule totali (verde + giallo + rosso) x 100%. </li><li> Calcolare la quantità di proliferazione cellulare per ogni campione come il numero di cellule del giorno 8 diviso per il numero di cellule al giorno 0; La proliferazione cellulare = numero di cellule dal vivo il giorno 8 / cellule vive contare il giorno 0 x 100%. </li></ol> 7. RGD peptide Coniugazione Analisi <ol><li> Per analizzare il successo di RGD peptide coniugazione in alginato, alginato confrontare RGD coniugato e alginato non-coniugato. Per fare questo, immagine i costrutti stampati con (4 &#39;, 6-diamidino-2-phenylindole, Dihydrochloride) (DAPI) e falloidina macchie. <ol><li> Effettuare le phalloidins soluzione di lavoro diluendo 5 ml di soluzione madre metanolica con 200 ml di DPBS ++. Conservare a -20 ° C fino al momento dell&#39;uso. </li><li> Effettuare una soluzione stock di 300 micron della macchia DAPI seguente equazione: (0,10509 g / L) / (350,3 g / mol) = 3 × 10 -4 M = 0,0003 M = 0.300 mm = 300 micron. Fai °e DAPI soluzione di lavoro diluendo la soluzione madre 1: 100 in DPBS ++ per ottenere 3 micron soluzione. Conservare a -20 ° C fino al momento dell&#39;uso. </li></ol></li><li> Completamente immergere il campione in paraformaldeide al 4%. Incubare per 1 ora a RT. Lavare tre volte con DPBS ++, permettendo la soluzione a sedere per 5 minuti ogni lavaggio. Trasferire il campione di gel dal pozzo di un vetrino, lanciando il gel sopra nel processo. Immergere il gel in 0.1% Triton X-100 (0,1 g / 100 ml) in DPBS ++ per 10 min. Lavare tre volte con DPBS ++, permettendo a 5 minuti per ogni lavaggio. </li><li> Colorare i costrutti stampati con falloidina immergendole nella soluzione di lavoro. Coprire con un foglio e incubare per 4 ore. Rimuovere la macchia falloidina e lavare tre volte con DPBS ++. Il primo lavaggio dovrebbe essere veloce, questi ultimi lavaggi dovrebbero sedere per 5 minuti ciascuno. </li><li> Colorare i costrutti stampati con DAPI immergendole nella soluzione di lavoro DAPI. Coprire con un foglio e incubare a temperatura ambiente per 30 min. lavaggiotre volte con DPBS ++, permettendo ogni lavaggio a sedere per 5 min. Osservare e immagine dei campioni su un sistema microscopio confocale. </li></ol>

<ol><li>Langer, R., Vacanti, J. P. Tissue Engineering. Science. 260 (5110), 920-926 (1993).</li>
<li>Derby, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Review%3A+Printing+and+Prototyping+of+Tissues+and+Scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Review: Printing and Prototyping of Tissues and Scaffolds.</a> Science. 338 (6109), 921-926 (2012).</li>
<li>Kachurin, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct-Write+Construction+of+Tissue-Engineered+Scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Mat.+Res.+Soc.+Symp.+Proc%22%5BJournal%5D)">Direct-Write Construction of Tissue-Engineered Scaffolds.</a> Mat. Res. Soc. Symp. Proc. 698, 10-1557 (2002).</li>
<li>Sachlos, E., Czernuszka, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Making+Tissue+Engineering+Scaffolds+Work.+Review+on+the+Application+of+Solid+Freeform+Fabrication+Technology+to+the+Production+of+Tissue+Engineering+Scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22European+Cells+and+Materials%22%5BJournal%5D)">Making Tissue Engineering Scaffolds Work. Review on the Application of Solid Freeform Fabrication Technology to the Production of Tissue Engineering Scaffolds.</a> European Cells and Materials. 5, 29-40 (2003).</li>
<li>Yeong, W. Y., Chua, C. K., Leong, K. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+Prototyping+in+Tissue+Engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Challenges+and+Potential.+Trends+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Rapid Prototyping in Tissue Engineering.</a> Challenges and Potential. Trends Biotechnol. 22 (12), 643-652 (2004).</li>
<li>Landers, R., Pfister, A., Hubner, U., John, H., Schmelzeisen, R., Mulhaupt, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+Soft+Tissue+Engineering+Scaffolds+by+means+of+Rapid+Prototyping+Techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Materials+Science%22%5BJournal%5D)">Fabrication of Soft Tissue Engineering Scaffolds by means of Rapid Prototyping Techniques.</a> Journal of Materials Science. 37 (15), 3107-3116 (2002).</li>
<li>Murphy, S. V., Skardal, A., Atala, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+Hydrogels+for+Bio%E2%80%93Printing+Applications%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedical+Materials+Research+Part+A%22%5BJournal%5D)">Evaluation of Hydrogels for Bio–Printing Applications.</a> Journal of Biomedical Materials Research Part A. 101A (1), 272-284 (2013).</li>
<li>Burg, K. J. L., Boland, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Minimally+Invasive+Tissue+Engineering+Composites+and+Cell+Printing%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Eng+Med+Biol+Mag%22%5BJournal%5D)">Minimally Invasive Tissue Engineering Composites and Cell Printing.</a> IEEE Eng Med Biol Mag. 22 (5), 84-91 (2003).</li>
<li>Billiet, T., Vandenhaute, M., Schelfhout, J., Van Vlierberghe, S., Dubruel, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Review+of+Trends+and+Limitations+in+Hydrogel-Rapid+Prototyping+for+Tissue+Engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">A Review of Trends and Limitations in Hydrogel-Rapid Prototyping for Tissue Engineering.</a> Biomaterials. 33 (26), 6020-6041 (2012).</li>
<li>Khalil, S., Nam, J., Sun, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multi%E2%80%93Nozzle+Deposition+for+Construction+of+3D%5BTitle%5D)+AND+%22Biopolymer+Tissue+Scaffolds.+Rapid+Prototyping+Journal%22%5BJournal%5D)">Multi–Nozzle Deposition for Construction of 3D.</a> Biopolymer Tissue Scaffolds. Rapid Prototyping Journal. 11 (1), 9-17 (2005).</li>
<li>Pataky, K., Braschler, T., Negro, A., Renaud, P., Lutolf, M. P., Brugger, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microdrop+Printing+of+Hydrogel+Bioinks+into+Three%E2%80%93Dimensional+Tissue%E2%80%93Like+Geometries%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Mater%22%5BJournal%5D)">Microdrop Printing of Hydrogel Bioinks into Three–Dimensional Tissue–Like Geometries.</a> Adv Mater. 24 (3), 391-396 (2011).</li>
<li>Pati, F., Shim, J. H., Lee, J. S., Cho, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-Dimensional+Printing+of+Cell%E2%80%93Laden+Constructs+for+Heterogeneous+Tissue+Regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Manufacturing+Letters%22%5BJournal%5D)">Three-Dimensional Printing of Cell–Laden Constructs for Heterogeneous Tissue Regeneration.</a> Manufacturing Letters. 1 (1), 49-53 (2013).</li>
<li>Gruene, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser+Printing+of+Three%E2%80%93Dimensional+Multicellular+Arrays+for+Studies+of+Cell%E2%80%93Cell+and+Cell%E2%80%93Environment+Interactions%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Laser Printing of Three–Dimensional Multicellular Arrays for Studies of Cell–Cell and Cell–Environment Interactions.</a> Tissue Eng. 17 (10), 973-982 (2011).</li>
<li>Khalil, S., Sun, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioprinting+Endothelial+Cells+With+Alginate+for+3D+Tissue+Constructs%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Bioprinting Endothelial Cells With Alginate for 3D Tissue Constructs.</a> J Biomed Eng. 131 (11), 1-8 (2009).</li>
<li>Xu, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hybrid+Printing+of+Mechanically+and+Biologically+Improved+Constructs+for+Cartilage+Tissue+Engineering+Applications%5BTitle%5D)+AND+%22Biofabrication%22%5BJournal%5D)">Hybrid Printing of Mechanically and Biologically Improved Constructs for Cartilage Tissue Engineering Applications.</a> Biofabrication. 5 (1), 1-10 (2012).</li>
<li>Zhang, T., Yan, K. C., Ouyang, L., Sun, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+Characterization+of+Bioprinted+in+vitro+Soft+Tissue+Models%5BTitle%5D)+AND+%22Biofabrication%22%5BJournal%5D)">Mechanical Characterization of Bioprinted in vitro Soft Tissue Models.</a> Biofabrication. 5 (4), 1-10 (2013).</li>
<li>Chung, J. H. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bio%E2%80%93ink+Properties+and+Printability+for+Extrusion+Printing+Living+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomater.+Sci.%2C+Polym.+Ed%22%5BJournal%5D)">Bio–ink Properties and Printability for Extrusion Printing Living Cells.</a> J. Biomater. Sci., Polym. Ed. 1 (7), 763-773 (2013).</li>
<li>Yang, S., Leong, K. F., Du, Z., Chua, C. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Design+of+Scaffolds+for+Use+in+Tissue+Engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Part+II.+Rapid+Prototyping+Techniques.+Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">The Design of Scaffolds for Use in Tissue Engineering.</a> Part II. Rapid Prototyping Techniques. Tissue Engineering. 8 (1), 1-11 (2002).</li>
<li>Ferris, C. J., Gilmore, K. G., Wallace, G. G., Panhuis, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biofabrication%3A+An+Overview+of+the+Approaches+Used+for+Printing+of+Living+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Microbiol.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Biofabrication: An Overview of the Approaches Used for Printing of Living Cells.</a> Appl. Microbiol. Biotechnol. 97 (10), 4243-4258 (2013).</li>
<li>Lu, L., Mikos, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Importance+of+New+Processing+Techniques+in+Tissue+Engineering%5BTitle%5D)+AND+%22MRS+Bull%22%5BJournal%5D)">The Importance of New Processing Techniques in Tissue Engineering.</a> MRS Bull. 21 (11), 28-32 (1996).</li>
<li>Wake, M. C., Gupta, P. K., Mikos, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+pliable+biodegradable+polymer+foams+to+engineer+soft+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplant%22%5BJournal%5D)">Fabrication of pliable biodegradable polymer foams to engineer soft tissues.</a> Cell Transplant. 5, 465-473 (1996).</li>
<li>Mironov, V., Visconti, R. P., Kasyanov, V., Forgacs, G., Drake, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organ+Printing%3A+Tissue+Spheroids+as+Building+Blocks%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Organ Printing: Tissue Spheroids as Building Blocks.</a> Biomaterials. 30 (12), 2164-2174 (2009).</li>
<li>Norotte, C., Marga, F. S., Niklason, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scaffold%E2%80%93free+Vascular+Tissue+Engineering+Using+Bioprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Scaffold–free Vascular Tissue Engineering Using Bioprinting.</a> Biomaterials. 30 (30), 5910-5917 (2009).</li>
<li>Devillard, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+Patterning+by+Laser%E2%80%93Assisted+Bioprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell Patterning by Laser–Assisted Bioprinting.</a> Methods Cell Biol. 119, 159-174 (2014).</li>
<li>Binder, K. W., Allen, A. J., Yoo, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drop%E2%80%93on%E2%80%93Demand+Inkjet+Bioprinting%3A+a+Primer%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther+Reg%22%5BJournal%5D)">Drop–on–Demand Inkjet Bioprinting: a Primer.</a> Gene Ther Reg. 6 (1), 33(2011).</li>
<li>Xu, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viability+and+Electrophysiology+of+Neural+Cell+Structures+Generated+by+the+Inkjet+Printing+Method%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Viability and Electrophysiology of Neural Cell Structures Generated by the Inkjet Printing Method.</a> Biomaterials. 27 (19), 3580-3588 (2006).</li>
<li>Calvert, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inkjet+Printing+for+Materials+and+Devices%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Mater%22%5BJournal%5D)">Inkjet Printing for Materials and Devices.</a> Chem Mater. 13 (10), 3299-3305 (2001).</li>
<li>Chang, C. C., Boland, E. D., Williams, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct%E2%80%93Write+Bioprinting+Three%E2%80%93Dimensional+Biohybrid+Systems+for+Future+Regenerative+Therapies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biomed+Mater+Res+B+Appl+Biomater%22%5BJournal%5D)">Direct–Write Bioprinting Three–Dimensional Biohybrid Systems for Future Regenerative Therapies.</a> J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 98 (1), 160-170 (2011).</li>
<li>Li, M. G., Tian, X. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Brief+Review+of+Dispensing%E2%80%93Based+Rapid+Prototyping+Techniques+in+Tissue+Scaffold+Fabrication%3A+Role+of+Modeling+on+Scaffold+Properties+Prediction%5BTitle%5D)+AND+%22Biofabrication%22%5BJournal%5D)">A Brief Review of Dispensing–Based Rapid Prototyping Techniques in Tissue Scaffold Fabrication: Role of Modeling on Scaffold Properties Prediction.</a> Biofabrication. 1 (3), 1-10 (2009).</li>
<li>Bouhadir, K. H., Lee, K. Y., Alsberg, E., Damm, K. L., Anderson, K. W., Mooney, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Degradation+of+Partially+Oxidized+Alginate+and+its+Potential+Application+for+Tissue+Engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol+Prog%22%5BJournal%5D)">Degradation of Partially Oxidized Alginate and its Potential Application for Tissue Engineering.</a> Biotechnol Prog. 17 (5), 945-950 (2001).</li>
<li>Rowley, J. A., Madlambaya, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alginate+Hydrogels+as+Synthetic+Extracellular+Matrix+Materials%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Alginate Hydrogels as Synthetic Extracellular Matrix Materials.</a> Biomaterials. 20 (1), 45-53 (1999).</li>
<li>Smith, C. M., Christian, J. J., Warren, W. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterizing+Environmental+Factors+that+Impact+Viability+of+Tissue%E2%80%93Engineered+Constructs+Fabricated+by+a+Direct%E2%80%93Write+Bioassembly+Tool%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">Characterizing Environmental Factors that Impact Viability of Tissue–Engineered Constructs Fabricated by a Direct–Write Bioassembly Tool.</a> Tissue Engineering. 13 (2), 373-383 (2007).</li>
<li>Ozbolat, I., Yu, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioprinting+Towards+Organ+Fabrication%3A+Challenges+and+Future+Trends%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Trans+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Bioprinting Towards Organ Fabrication: Challenges and Future Trends.</a> IEEE Trans Biomed Eng. 60 (3), 691-699 (2012).</li>
<li>Peltola, S. M., Melchels, F. P., Grijpma, D. W., Kellomaki, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Review+of+Rapid+Prototyping+Techniques+for+Tissue+Engineering+Purposes%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">A Review of Rapid Prototyping Techniques for Tissue Engineering Purposes.</a> Annals of Medicine. 40 (4), 268-280 (2008).</li>
<li>Malda, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((25th+Anniversary+Article%3A+Engineering+Hydrogels+for+Biofabrication%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Mat%22%5BJournal%5D)">25th Anniversary Article: Engineering Hydrogels for Biofabrication.</a> Adv Mat. 25 (36), 5011-5028 (2013).</li>
<li>Murphy, S. V., Atala, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+Bioprinting+of+Tissues+and+Organs%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotech%22%5BJournal%5D)">3D Bioprinting of Tissues and Organs.</a> Nat Biotech. 32 (8), 773-785 (2014).</li>
<li>Jia, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+Alginate+as+Bioink+for+Bioprinting%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">Engineering Alginate as Bioink for Bioprinting.</a> Acta Biomaterialia. 10 (10), 4323-4331 (2014).</li>
<li>Forty, R. A., Steinberg, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Differential+Adhesion+Hypothesis%3A+a+Direct+Evaluation%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">The Differential Adhesion Hypothesis: a Direct Evaluation.</a> Developmental Biology. 278 (1), 255-263 (2005).</li>
<li>Wang, L., Shansky, J., Borselli, C., Mooney, D., Vandenburgh, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+and+Fabrication+of+a+Biodegradable%2C+Covalently+Crosslinked+Shape%E2%80%93Memory+Alginate+Scaffold+for+Cell+and+Growth+Factor+Delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Tis+Eng+Part+A%22%5BJournal%5D)">Design and Fabrication of a Biodegradable, Covalently Crosslinked Shape–Memory Alginate Scaffold for Cell and Growth Factor Delivery.</a> Tis Eng Part A. 18 (19-20), 2000-2007 (2012).</li>
<li>El–Sherbiny, I. M., Yacoub, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydrogel+Scaffolds+for+Tissue+Engineering%3A+Progress+and+Challenges%5BTitle%5D)+AND+%22Global+Cardiology+Science%2C+%26+Practice%22%5BJournal%5D)">Hydrogel Scaffolds for Tissue Engineering: Progress and Challenges.</a> Global Cardiology Science, & Practice. 3 (38), 316-342 (2013).</li>
<li>Smith, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three%E2%80%93Dimensional+BioAssembly+Tool+for+Generating+Viable+Tissue-Engineered+Constructs%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">Three–Dimensional BioAssembly Tool for Generating Viable Tissue-Engineered Constructs.</a> Tissue Engineering. 10 (9–10), 1566-1576 (2004).</li>
<li>Ozbolat, I. T., Chen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+a+%E2%80%98Multi-arm+Bioprinter%E2%80%99+for+Hybrid+Fabrication+of+Tissue+Engineering+Constructs%5BTitle%5D)+AND+%22Robotics+and+Computer%E2%80%93Integrated+Manufacturing%22%5BJournal%5D)">Development of a ‘Multi-arm Bioprinter’ for Hybrid Fabrication of Tissue Engineering Constructs.</a> Robotics and Computer–Integrated Manufacturing. 30 (3), 295-304 (2014).</li>
<li>Kolesky, D. B., Truby, R. L., Gladman, A. S., Busbee, T. A., Homan, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-Dimensional+Bioprinting+of+Vascularized%2C+Heterogeneous+Cell%E2%80%93Laden+Tissue+Constructs.+Adv+Mater.+X%5BTitle%5D)+AND+%22Adv+Mater%22%5BJournal%5D)">Three-Dimensional Bioprinting of Vascularized, Heterogeneous Cell–Laden Tissue Constructs. Adv Mater. X.</a> Adv Mater. X, x-y (2014).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

L&#39;obiettivo principale di ingegneria dei tessuti è quello di colmare il divario tra la carenza di organi e le esigenze di trapianto attraverso lo sviluppo di sostituti biologici in grado di ripristinare, mantenere, o migliorare functio tessuto nativo. Questo ha portato alla realizzazione di ponteggi diretta con un complesso, anatomicamente corretta geometria esterna e controllo preciso sul geometr interna. Bioprinting tridimensionale è una metodologia utilizzata per generare costrutti tridimensionali di varie dimens...

L&#39;ingegneria dei tessuti utilizza i principi della biologia e ingegneria nello sviluppo di sostituti funzionali a mantenere, ripristinare o migliorare tessuto nativo e. La capacità di generare costrutti biomimetici tridimensionali su richiesta faciliterebbe progressi scientifici e tecnologici in ingegneria dei tessuti, così come nei sensori basati su celle, droga / proiezione tossicità, modelli di tessuto o di tumore, e altri. L&#39;organizzazione tridimensionale dei costrutti tissutale è un componente fondamentale del metodo di fabbricazione perché deve strettamente mimare l&#39;interazione altamente organizzato di cellule e matrice extracellulare in tessuto nativo. Scaffold tridimensionali biodegradabili e di forma che formano sono fattori critici nel generare nuovi costrutti di tessuto perché le cellule migrano per formare uno strato bidimensionale di celle, ma non hanno la capacità di crescere in favorita tridimensionale. L&#39;impalcatura serve come base temporanea per cellulareattaccamento e la proliferazione, quindi deve essere costruito con materiali porosi controllabile e biodegradabilità, e sufficiente integrit meccanica. I materiali scaffold non dovrebbero essere citotossici o creare una risposta avversa dall&#39;host. Gli idrogel sono stati comunemente usati nelle tecniche di ingegneria tissutale, e per la loro idrofilia, gli idrogel consentire scambio fluido e gas in tutta la structur. Grazie alla combinazione di diverse idrogeli, le proprietà del idrogel sintetizzato sono modificabili per soddisfare le richieste di applicazione distinti. L&#39;approccio di ingegneria tissutale convenzionale prevede la creazione di acellulari scaffold sacrificali porosi che sono seminati con cellule post-fabricatio. Sono state impiegate molte tecniche, come ad esempio la fibra bonding, colata di solvente, e fondere stampaggio, ma rivelato minimamente successo per applicazioni di ingegneria tissutale. Metodi leganti di fibre consentono di fibre da allineare in forme specifiche, ma sono solo in grado di produrre patibolo molto sottile. Metodi di fusione di solventi prodotte costrutti altamente porosi, tuttavia la membrana più grande prodotto è stato solo 3 mm thic. Pertanto, la creazione costrutti tridimensionali non è possibile utilizzando queste tecniche. Tecniche di stampaggio Melt rivelate efficaci nel produrre scaffold tridimensionali, ma tali temperature elevate, sono necessari materiali biologici non possono essere utilizzati nel procedimento di produzione. Ponteggi seminate post-fabbricazione sono limitate nella loro capacità di soddisfare i requisiti di ingegneria dei tessuti per la produzione di scaffold tridimensionali con microstrutture predefinite o controllabili e. Un altro grosso problema con le tecnologie impalcatura seeding solidi è la carenza di vascolarizzazione e poveri meccanico. Bioprinting è stata estesa a tre dimensioni attraverso l&#39;uso di,, gel termo-reversibile biodegradabili atossici per superare gli svantaggi della convenzionale. Alcuni del solido a forma libera fabbricazione techniques attualmente in fase di impiegati sono bioprinting ea getto d&#39;inchiostro di stampa laser assistita. Tecniche bioprinting laser assistita utilizzano una sorgente laser impulsata, piastra segnale, e un substrato di ricezione per generare tridimensionale. Tuttavia, questa tecnica è limitata a causa della bassa produttività, bassa vitalità cellulare, e può produrre solo disposizioni limitate di strutture fabbricate perché solo prepolimeri photocrosslinkable possono essere utilizzati per formare un idrogel reticolato. Stampa a getto d&#39;inchiostro è stato sviluppato come un metodo senza contatto che riproduce i dati di immagine digitali su un substrato depositando inchiostro picolitri. Tuttavia, la stampa a getto d&#39;inchiostro non produce un&#39;alta risoluzione costrutto, costruisce esperienza rapida denaturazione proteica, e molte delle cellule sono lisati durante la deposizione. Attualmente, sono stati sviluppati nuovi metodi di produzione di additivi bioprinting. In questi sistemi cellule, proteine, fattori di crescita e idrogel biomimetici sono tipicamente integrati in mater matriceIALS durante il processo di fabbricazione e contestualmente depositata tramite attuatori controllati dal computer per generare costrutti cellulari carichi basati impalcatura-tridimensionali che imitano da vicino la microarchitettura di natale. Gli idrogeli cellule cariche costituiscono il bioink, che può essere eterogenea, costituita da più tipi di cellule, o omogenea. Additivo sistemi produttivi deposito bioink goccia a goccia o layer-by-layer con siringhe monouso e suggerimenti su una fase controllata da computer in grado di muoversi nelle direzioni x, ye z. Attraverso software, l&#39;architettura di scaffold stampati può essere facilmente manipolato a seconda delle esigenze dell&#39;applicazione. A differenza delle tecniche tradizionali, tecnologie mediche tridimensionali (risonanza magnetica per immagini, tomografia computerizzata) possono essere incorporati nei disegni, generando costrutto paziente-specifici. Questi metodi consentono anche la possibilità di produrre sostituzioni vascolarizzati perché costrutti sono prodotti con un più alto ldensità cellulare Ocal, permettendo interazioni cellula-cellula e migliorare la probabilità di post-impianto Surviva. La stampante Palmetto è personalizzato costruito un sistema multi-dispenser tridimensionale che utilizza metodi di fabbricazione robotizzati programmabili per generare costrutti eterogenei tessuto tridimensionale (Figura 1). Esso consente l&#39;utilizzo di una pluralità di materiali in combinazioni uniche per produrre strutture eterogenee. L&#39;inizializzazione del bioprinter è uno dei passi più importanti nella bioprinting perché permette di impostare una serie di parametri per ottimizzare la stampabilità dei costrutti bioprinted. Il bioprinter comprende un processo di tipo batch con avvio, uso e arresto sequenze controllati da un controllore logico programmabile (PLC), che l&#39;utente opera attraverso un pannello di controllo touch screen interattivo (Figura 1, A). Per impedire la contaminazione biomateriali logici il bioprinter è racchiuso in un poli positivo-pressione (metilmetacrilato) (PMMA) camera con un arrestance particelle ad alta efficienza (HEPA) -filtered sistema di circolazione dell&#39;aria (Figura 1, B, C). L&#39;interno della stampante può essere sterilizzato usando le fonti di luce ultravioletta incorporate (Figura 1, D). Il componente centrale del bioprinter è un posizionamento robot completamente programmabile che può riproducibile collocare il puntale dispenser con una precisione di 10 micrometri (Figura 1, E). Ci sono tre dispenser, che sono in grado di depositare volumi piccoli come 230 nl utilizzando una vite rotante (Figura 1, F). Essi sono indipendentemente programmabili tramite computer separati che regolano i parametri di stampa per ciascun erogatore (Figura 1, G). Rotary-vite erogazione utilizza la rotazione di una vite motorizzata per spostare bioink giù una siringa e dalla punta della siringa. Questi distributori sono montati su un pneumaticoStrumento Nest controllata ly (Figura 2A, B), che consente al robot di cambiare erogatore montato sul braccio robotico asse Z sotto controllo programmata (Figura 1, H). Il robot XYZ riceve istruzioni per la stampa da un computer dotato di software di progettazione (Figura 1, I). Ogni programma contiene sedi di erogazione, le routine di calibrazione e protocolli-dispenser che cambia. La progettazione di costrutti generati costituito principalmente le coordinate XYZ dove ogni distributore depositerà materiale. Il bioprinter comprende due sensori ottici ottici (Figura 2C) che determinano le coordinate XYZ della fine punta della siringa. Tali sensori inviano informazioni al robot, che usa per calcolare le posizioni delle estremità punta dell&#39;erogatore coordinate. C&#39;è un laser spostamento supplementare (Figura 2D) che proietta un 633 nm diodo rosso raggio laser di dimensioni dello spot 30 x 100 micrometri per misurare la distanza con un accuracy di 0,1 micrometri. Quando il raggio è altamente focalizzato il robot determina la distanza Z della superficie di stampa. Questa misura, e sensori di luce ottica misurazione della estremità di punta in Z, permette di calcolare accurate Z coordinate usato per posizionare la punta dell&#39;erogatore rispetto alla superficie di stampa. I puntali si muovono lateralmente e verticalmente attraverso il sensore di luce ottica X-asse orientato per trovare i centri Y e Z, e lateralmente attraverso un sensore asse Y per trovare il centro dell&#39;asse X. La superficie di stampa è mappato utilizzando la formula per una superficie piana in spazio xyz: ax + by + cz = d per determinare dove la superficie è relativo alla posizione dell&#39;estremità ago erogatore. La fase di stampa (Figura 1, J) detiene un piatto Petri campione fino a 80 mm di diametro e utilizza un bagnomaria ricircolo per mantenere la temperatura impostata (Figura 1, K). Temperatura di fase può essere impostato in un intervallo compreso tra -20 e rimane stabile all&#39;interno. C&#39;è una fotocamera USB montatasul robot Z-braccio per fornire una vista ingrandita della punta di erogazione durante il processo di stampa (Figura 1, L). Vi è una seconda telecamera montata verso la parte superiore della camera di interni che fornisce una visione completa della bioprinter durante il processo di stampa (Figura 1, L). Un software di disegno progettazione assistita da computer determina il pattern di deposizione e permette all&#39;utente di generare goccioline incrementale distanziati e strutture complesse (Figura 3). Percorsi tridimensionali possono essere codificati manualmente nel software di progettazione compatibile con stampante o importati da un software separato computer-aided disegno di progetto (Figura 4, tabella 1). Il software compatibile con stampante consente variazioni di parametri di stampa, come il metodo di deposizione (deposizione singola gocciolina o percorso continuo deposizione), la geometria tridimensionale dei percorsi, velocità di deposizione, la distanza tra la fine punta della siringa e substtasso superficie di stampa, la quantità di tempo per depositare una goccia individuale, e l&#39;altezza e velocizzare la siringa viene sollevato tra la deposizione delle gocce. Ogni programma contiene XYZ sedi di erogazione, le routine di calibrazione punta e protocolli-dispenser che cambia per fornire un ambiente sterile, senza l&#39;intervento dell&#39;operatore, durante la stampa. Il controllore logico programmabile (PLC) del robot riceve istruzioni dal computer che esegue il software di progettazione e controlla la temporizzazione degli eventi dai controllori esterni (ad esempio, i dispensatori). Per fare questo, il PLC utilizza un meccanismo di loop per controllare i distributori , dispositivo di posizionamento robotico, e fattori ambientali. Tridimensionale bioprinting-scrittura diretta utilizzando una vite rotante, sistema di erogazione del liquido permette al processo di deposizione cellule per essere più efficiente, accurato e più facile rispetto ai metodi precedenti. Questo studio dimostra l&#39;bioprinter su misura è in grado di generare cell carico di costrutti idrogel con la vitalità delle cellule di alta.

<table><tbody><tr><td>Robot di posizionamento (JR2000 XYZ)</td><td>Janome&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Erogatori: SDAV Linear Drive SmartDispensers</td><td>Fishman Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sensori ottici di luce:&nbsp;</td><td>Keyensce</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Laser di spostamento: OD Mini</td><td>SICK</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bagno d'acqua a ricircolo: Polystat</td><td>Cole-Parmer</td><td>EW-12122-02</td><td></td></tr><tr><td>Telecamere USB: Dino-Lite Premier 5MP</td><td>AnMo Electrionics/YSC Technologies</td><td>AD7013MT</td><td></td></tr><tr><td>Software di progettazione per computer compatibile con la stampante: JR-C Points</td><td>Janome</td><td></td><td>Viene fornito con l'acquisto di Janome Robot</td></tr><tr><td>Software di disegno di progettazione assistita da computer: Visual PathBuilder</td><td>RatioServ</td><td></td><td>Può essere scaricato all'indirizzo: www.ratioserv.com/index.php/downloads</td></tr><tr><td>Stampante 3 cc Siringhe:&nbsp;</td><td>Fishman Corporation</td><td>122051</td><td></td></tr><tr><td>22 G Dispenser Tips</td><td>Fishman Corporation</td><td>Z520122&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro di calcio diidrato</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>10035-04-8</td><td></td></tr><tr><td>Cloruro di sodio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7647-14-5</td><td></td></tr><tr><td>Gelatina suina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>9000-70-8</td><td></td></tr><tr><td>Biossido di titanio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>13462-67-7</td><td></td></tr><tr><td>Alginato Protanal LF 20/40 (alginato di sodio)</td><td>FMC Biopolymer</td><td>9005-38-3</td><td></td></tr><tr><td>Acido cloridrico</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7647-01-0</td><td></td></tr><tr><td>Glicole etilenico</td><td>Mallinckrodt Baker, Inc</td><td>9300-01</td><td></td></tr><tr><td>Periodato di sodio</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7790-28-5</td><td></td></tr><tr><td>hADSC</td><td>Lonza</td><td>PT-5006</td><td>Conservare in fiale in azoto liquido fino al momento dell'uso.</td></tr><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle's Medium</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>11965-092</td><td>Caldo in 37 gradi C acqua prima dell'uso.</td></tr><tr><td>Tripsina/EDTA</td><td>Lonza</td><td>CC-5012</td><td>Caldo in 37 gradi C acqua prima dell'uso.</td></tr><tr><td>Calcein AM</td><td>Gibco Life Technologies</td><td>C3100MP</td><td>Negozio al buio a -80 &deg; C fino all'uso.</td></tr><tr><td>Kit per il saggio di vitalità dei mammiferi vivi/morti</td><td>Invitrogen Life Technologies</td><td>L-3224</td><td>Conservare al buio a -80 &deg; C fino all'uso.</td></tr><tr><td>MES idrato</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M2933</td><td></td></tr><tr><td>N-idrossisuccinimide</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>130672</td><td></td></tr><tr><td>1-etil-(dimetilamminopropil) carbodiimmide (EDC)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E1769&nbsp;</td><td>10 g</td></tr>Le <tr><td>tecnologie di vita con</td> <td>soluzione salina tamponata con fosfato, +calcio, +magnesio di Dulbecco</td><td>14040133</td><td>calde in 37 gradi C acqua prima dell'uso.</td></tr>Le <tr><td>tecnologie Life</td> Life con <td>tampone con fosfato, -calcio e magnesio di Dulbecco</td><td>14190144</td><td>calde in 37 gradi C acqua prima dell'uso.</td></tr><tr><td>RGD Peptidi Peptidi</td><td></td><td></td><td></td>internazionali</tr><tr><td>Alexa Fluor 546 Colorazione falloidina</td><td>Invitrogen Life Technologies</td><td>A22283</td><td>Conservare a -20 &deg; C fino all'uso</td></tr> <tr><td>(4', 6-Diamidino-2-Fenilindolo, Dicloridrato) (DAPI) Stain</td><td>Life Technologies</td><td>R37606</td><td>Conservare a -20 &deg; C fino all'uso</td></tr></tbody></table>

viabilità di bioprinted cellulari costruisce utilizzando un dispenser stampante cartesiana tre

Viability of Bioprinted Cellular Constructs Using a Three Dispenser Cartesian Printer

L'ingegneria tissutale ha centralizzato la sua attenzione sulla costruzione di sostituti per tessuti non funzionali o danneggiati. L'utilizzo del bioprinting tridimensionale nell'ingegneria tissutale ha generato nuovi metodi per la stampa di cellule e matrici per fabbricare costrutti di tessuti biomimetici. Il metodo di fabbricazione a forma libera solida (SFF) sviluppato per il bioprinting tridimensionale utilizza un approccio di produzione additiva depositando goccioline di cellule e idrogel strato per strato. La fabbricazione del bioprinting dipende dal posizionamento specifico dei materiali biologici in architetture tridimensionali e i costrutti stampati dovrebbero imitare da vicino la complessa organizzazione delle cellule e delle matrici extracellulari nei tessuti nativi. Questo articolo evidenzia l'uso della stampante Palmetto, un bioprinter cartesiano, nonché il processo di produzione di costrutti vitali e spazialmente organizzati, consentendo contemporaneamente il controllo dei fattori ambientali. Questa metodologia utilizza la progettazione assistita da computer e la produzione assistita da computer per produrre queste geometrie specifiche e complesse. Infine, questo approccio consente la produzione riproducibile di costrutti fabbricati ottimizzati da parametri di stampa controllabili.

I risultati dimostrano la bioprinter è in grado di depositare idrogel cellulari carichi in specifiche posizioni tridimensionali accuratamente e coerentemente con il software assistita da computer. Questi software determinano il posizionamento di ciascuna gocciolina e controllano molti dei parametri di erogazione (Figura 3,4). La ripetibilità del bioprinter per depositare in modo appropriato biomateriali è fondamentale per il suo successo nelle applicazioni di ingegneria tissutale. <p class="jove_con...

Un bioprinter cartesiano è stato progettato e fabbricato per consentire la deposizione di più materiali in geometrie precise e riproducibili, consentendo anche il controllo dei fattori ambientali. Utilizzando il bioprinter tridimensionale, è possibile stampare e riprodurre facilmente costrutti complessi e fattibili.

Viabilità di Bioprinted cellulari Costruisce Utilizzando un dispenser stampante cartesiana Tre

Tissue engineering has centralized its focus on the construction of replacements for non-functional or damaged tissue. The utilization of ...

L'obiettivo generale di questa procedura è generare costrutti contenenti cellule vitali con una geometria complessa utilizzando una biostampante 3D. Questo risultato si ottiene innanzitutto isolando cellule staminali del tessuto adiposo umano dalla coltura. Successivamente, le cellule vengono mescolate con un bioinchiostro di alginato ossidato coniugato con RGD appena preparato.Nell'ultimo passaggio, il LA cellulare nel biomateriale viene estruso mediante biostampa. Infine, la microscopia confocale viene utilizzata per analizzare la vitalità, la proliferazione e la migrazione delle cellule biostampate. Il vantaggio principale di questo procedimento rispetto ai metodi esistenti, come la formazione di scaffold e il semina cellulare, è che con il nostro metodo è possibile posizionare direttamente le cellule e gli aggregati cellulari esattamente dove devono trovarsi per formare il tessuto.La procedura di oggi sarà dimostrata da Sarah Grace Dennis, una studentessa laureata del mio laboratorio. Iniziare seminando 350.000 cellule stromali di tessuto adiposo umano in una fiasca T75 trattata con 15 millilitri di TMEM a basso contenuto di glucosio per l'espansione in un incubatore per colture cellulari. Quando la coltura raggiunge l'80% di confluenza, rimuovere il mezzo e risciacquare le cellule con cinque millilitri di DPBS senza calcio e magnesio.Quindi incubare le cellule in cinque millilitri di tripsina e DPBS per due minuti a 37 gradi Celsius; quando le cellule si sono staccate, arrestare la reazione enzimatica con tre millilitri di mezzo di coltura cellulare e trasferire le cellule in un tubo conico da 50 millilitri. Successivamente, centrifugare le cellule e risospendere il pellet in due millilitri di mezzo di coltura cellulare. Poi contare le cellule, trasferire un'aliquote di 1,3 × 10⁶ cellule in un tubo conico da 15 millilitri e centrifugare nuovamente le cellule.Sospendere il pellet in un millilitro di bioinchiostro appena preparato, avendo cura di distribuire in modo omogeneo le cellule in tutta la soluzione acquosa di alginato. Successivamente, caricare le cellule in una siringa sterile da tre millilitri compatibile con la stampante e avvitare una punta di plastica sterile da 22 gauge. Accendere ora la biostampante, ciascun computer del dispenser e il bagno a circolazione d'acqua.Impostare manualmente la temperatura del bagno a quattro gradi Celsius per il meccanismo di azionamento e i parametri di stampa per ogni dispenser sul relativo computer del dispenser. Impostare il volume di erogazione a 230 nanolitri, il numero di passi indietro a zero e la velocità di erogazione a 10 microlitri al secondo. Quindi aprire il software di progettazione e il programma per visualizzare il display della telecamera USB sul computer.Successivamente, inserire manualmente le coordinate per un reticolo di punti 5 per 5 con uno spazio di 2,4 millimetri tra le gocce. Salvare il programma e inviarlo al robot. Quindi posizionare una piastra di Petri contenente gelatina e biossido di titanio sul piatto della stampante a quattro gradi Celsius e chiudere e bloccare la porta della camera.Utilizzando il controllore logico programmabile, attivare le sorgenti di luce ultravioletta per sterilizzare la camera. Dopo 90 secondi, aprire la camera e caricare la siringa contenente la sospensione di cellule stromali del tessuto adiposo umano nella pistola uno, chiudere e bloccare la porta della camera e utilizzare il controllore logico programmabile per accendere il sistema del ventilatore. Attendere 30 secondi affinché la pressione interna si equilibri, quindi eseguire il programma contenente il percorso geometrico e i parametri di stampa per tutta la durata del processo di stampa.Guardare il display della telecamera USB sul computer per verificare una stampa accurata e uniforme. Per quantificare la vitalità delle strutture biostampate, immergerle in una soluzione colorante appena preparata. Successivamente, posizionare le strutture in frigorifero per 15 minuti al buio per permettere al colorante di fissarsi.Quindi, utilizzando un'immagine al microscopio confocale, se le strutture colorate appaiono gialle o verdi, classificarle come cellule vive; se rosse, le cellule sono morte. Come dimostrano questi risultati, la biostampa consente il deposito di cellule e idrogeli in specifiche posizioni tridimensionali in modo preciso e ripetibile, grazie a un software computerizzato. Il software determina la posizione di ciascuna goccia e controlla numerosi parametri per l'erogazione.Uno dei requisiti di una tecnica di bioprinting di successo è che le cellule rimangano vitali. Le cellule stampate con inchiostro bio di acido alginico, come appena dimostrato, sono state analizzate un'ora e otto giorni dopo la stampa: l'8% delle cellule appariva verde e vitale al giorno zero e il 95% al giorno otto. Come indica la colorazione rossa, poche cellule morte sono state osservate in entrambi i momenti temporali, confermando l'idoneità dell'inchiostro alternativo per il bioprinting.Inoltre, l'inchiostro di alginato coniugato con RGD migliora l'adesione delle cellule alle strutture stampate, portando a una maggiore diffusione e proliferazione cellulare, come quantificato in tre aree distinte dell'idrogel al giorno zero e al giorno otto. In questo caso, la qualità della coniugazione del peptide RGD sull'inchiostro bioattivo ginnet è stata confrontata con l'utilizzo dell'inchiostro bioattivo ginnet da solo al giorno otto. La diffusione cellulare osservata nel campione colorato con ginnet coniugato con RGD ha indicato l'incorporazione riuscita del peptide nel ginnet, un fenomeno chiaramente assente nei campioni di biostampa non coniugati dopo lo sviluppo.Questa tecnica ha aperto la strada ai ricercatori nel campo dell'ingegneria tissutale per esplorare la produzione additiva come mezzo per assemblare costrutti viventi ingegnerizzati.

viability-bioprinted-cellular-constructs-using-three-dispenser

Research

Ricerca

JoVE Journal

Bioengineering

Bioingegneria

I metodi descritti in questo documento mostrano come convertire una stampante a getto d'inchiostro di commercio in un bioprinter con polimerizzazione UV simultanea. La stampante è in grado di costruire la struttura del tessuto 3D con cellule e biomateriali. Lo studio ha dimostrato qui costruito un neocartilage 3D.

Umana Cartilagine Tessuto Fabrication Uso tridimensionale Tecnologia Inkjet Printing

Descriviamo un insieme di protocolli che, insieme, forniscono un bioink idrogel tessuto-mimando con le quali costrutti di tessuto 3-D funzionali e vitali possono essere bioprinted per l'utilizzo in applicazioni di screening in vitro.

Bioprinting Cellularized Costruisce Utilizzando un tessuto-specifici idrogel Bioink

Questo protocollo descrive una metodologia di bioprinting che utilizza un sistema di deposito robotico automatizzato che incorpora segnali di guida topografici incisi con la deposizione di precisione di una cella contenente idrogel bioink. Le celle stampate vengono consegnate direttamente alle caratteristiche incise e sono in grado di percepirle e orientarsi con esse.

Tecnica Automated robotica erogazione di orientamento della superficie e Bioprinting di celle

Questo protocollo descrive la bioprinting 3D del tessuto cardiaco senza l'uso di biomateriali. Le zone cardiache 3D bioprinted espongono l'integrazione meccanica dei sferoidi dei componenti e sono altamente promettenti nella rigenerazione del tessuto cardiaco e come modelli 3D di malattie cardiache.

Creazione di tessuto cardiaco che mostra l&#39;integrazione meccanica degli spheroidi usando la biopittura 3D

Forniamo un protocollo generalizzato basato su una strategia di multimateriali microfluidici per un letto vascolare di microfibrous, dove un tipo di cellula secondaria potrebbe essere ulteriormente seminato nello spazio interstiziale di questa struttura di microfibrous per generare organoids e tessuti vascolarizzati di ingegneria.

Vascularized microfluidic multimateriali per l'ingegneria dei tessuti e Organoids

Cartilagine e pelle analoghi erano bioprinted utilizzando un bioink nanocellulose-alginato basato. Il bioinks erano cellularizzati prima della stampa tramite un'unità di miscelazione passiva di passaggio singolo. I costrutti sono stati dimostrati per essere uniformemente cellularizzati, hanno alta attuabilità e mostre favorevoli marcatori di differenziazione.

Multimateriali di cartilagine e pelle tessuto analoghi utilizzando un romanzo passivo unità tecnica di miscelazione per Bioink Precellularization

Abbiamo sviluppato un modello di cancro al seno eterogeneo costituito da cellule del tumore e del fibroblasto immortalate incorporate in un bioink di alginato/gelatina bioprintable. Il modello ricapitola il microambiente tumorale in vivo e facilita la formazione di sferoidi multicellulari tumore, producendo la comprensione dei meccanismi di tumorigenesi di guida.

Bioprintable alginato/gelatina idrogel 3D In Vitro sistemi modello inducono la formazione di sferoide di cella

I lembi ingegnerizzati richiedono una rete vascolare funzionale incorporata. In questo protocollo, presentiamo un metodo per fabbricare un lembo di tessuto stampato in 3D contenente una rete vascolare gerarchica e le sue anastomosi microchirurgiche dirette all'arteria femorale di ratto.

Fabbricazione di lembi vascolari ingegnerizzati utilizzando tecnologie di stampa 3D

La lavorazione a taglio durante la formazione di idrogel provoca la produzione di sospensioni di microgel che si tagliano sottili ma si ristrutturano rapidamente dopo la rimozione delle forze di taglio. Tali materiali sono stati utilizzati come matrice di supporto per la bioprinting di strutture complesse e cariche di cellule. Qui vengono descritti i metodi utilizzati per produrre il letto di supporto e i bioink compatibili.

Gel fluidi di agarosio formati dalla lavorazione a taglio durante la gelificazione per la bioprinting 3D sospesa

Questo studio introduce un nuovo bagno di sospensione sub-microgel di κ-carragenina, che mostra notevoli proprietà di transizione reversibile di inceppamento-sbloccaggio. Questi attributi contribuiscono alla costruzione di tessuti e organi biomimetici nel bioprinting 3D incorporato. La stampa di successo di tessuti simili al cuore/all'esofago con alta risoluzione e crescita cellulare dimostra applicazioni di bioprinting e ingegneria tissutale di alta qualità.

Bioprinting incorporato di strutture simili a tessuti utilizzando il terreno sub-microgel di κ-carragenina

Gli estratti solubili della membrana basale sono le matrici biologiche più utilizzate nella ricerca sul cancro, ma il loro complesso comportamento reologico rende difficile la loro biostampa con i sistemi di bioprinting disponibili in commercio. Questo lavoro presenta una strategia di bioprinting personalizzata per produrre costrutti di matrici pure con una buona fedeltà di forma sia in strati singoli che multipli.

Progettazione e validazione di una biostampante ad estrusione volumetrica per la biostampa di estratto solubile di membrana basale per la ricerca traslazionale

Scopri la biostampa 3D di costrutti cellulari vitali con geometrie complesse utilizzando cellule stromali del tessuto adiposo umano e bioinchiostro di alginato. Questo metodo consente un posizionamento preciso delle cellule per applicazioni di ingegneria tissutale.

Viabilità di Bioprinted cellulari Costruisce Utilizzando un dispenser stampante cartesiana Tre

Esplora altri video