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Developmental Biology
Generazione di topi modificati geneticamente attraverso la microinjection of oocytes
Generazione di topi modificati geneticamente attraverso la microinjection of oocytes
JoVE Journal
Developmental Biology
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JoVE Journal Developmental Biology
Generation of Genetically Modified Mice through the Microinjection of Oocytes

Generazione di topi modificati geneticamente attraverso la microinjection of oocytes

Full Text
21,863 Views
10:19 min
June 15, 2017

DOI: 10.3791/55765-v

Fabien Delerue1, Lars M. Ittner1

1Transgenic Animal Unit, Mark Wainwright Analytical Centre,University of New South Wales

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol outlines the procedures for generating genetically modified mice through the microinjection of oocytes. It emphasizes the importance of quality control and genotyping strategies in both classic transgenesis and CRISPR-mediated gene targeting.

Key Study Components

Area of Science

  • Genetics
  • Transgenesis
  • Gene Targeting

Background

  • Microinjection is a key technique for creating genetically modified organisms.
  • It allows for both random integration of transgenes and targeted gene editing.
  • Quality control is crucial for successful outcomes in genetic modifications.
  • CRISPR technology enhances precision in gene targeting.

Purpose of Study

  • To provide a detailed protocol for microinjection in mouse oocytes.
  • To assist researchers in generating genetically modified mice efficiently.
  • To highlight the latest advancements in microinjection techniques.

Methods Used

  • Preparation of single guide RNA using selected target sequences.
  • Synthesis of a linear DNA template from the PX330 plasmid.
  • Creation of a master mix for PCR amplification.
  • Direct microinjection of oocytes for gene modification.

Main Results

  • Successful generation of genetically modified mice in approximately six weeks.
  • Demonstration of effective quality control measures.
  • Validation of genotyping strategies for confirming modifications.
  • Enhanced understanding of microinjection techniques.

Conclusions

  • Microinjection is a reliable method for creating genetically modified mice.
  • Quality control and genotyping are essential for successful outcomes.
  • This protocol can serve as a valuable resource for researchers in genetics.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of microinjection?
Microinjection allows for direct injection into mouse oocytes, facilitating both random integration and targeted gene editing.
How long does it take to generate genetically modified mice?
Genetically modified mice can be generated in as little as six weeks using this protocol.
What is the role of quality control in this process?
Quality control ensures the success of genetic modifications and the reliability of results.
What techniques are emphasized in this protocol?
The protocol emphasizes microinjection techniques and CRISPR-mediated gene targeting.
Who can benefit from this protocol?
Researchers and technical staff involved in mouse genetics and gene targeting can benefit from this protocol.

La microinezione di ovociti del mouse è comunemente utilizzata sia per il transgenesi classico ( cioè l'integrazione casuale dei transgeni) sia per il targeting del gene mediato da CRISPR. Questo protocollo riesamina gli ultimi sviluppi della microinjection, con particolare attenzione alle strategie di controllo della qualità e genotipizzazione.

L'obiettivo generale di questo protocollo è quello di descrivere le procedure necessarie per la generazione di successo di topi geneticamente modificati mediante microiniezione di ovociti. Questo protocollo può aiutare i ricercatori e il personale tecnico coinvolto sia nel campo della genesi dei topi, ma anche nel targeting genico. Il vantaggio principale di questa tecnica è che si basa sull'iniezione diretta di ovociti di topo, sia per l'integrazione casuale, ma anche per il targeting genico, consentendo la generazione di topi geneticamente modificati in appena sei settimane.

Per preparare un singolo RNA guida, dopo aver selezionato le due sequenze target desiderate e aver realizzato i primer secondo il protocollo di testo, sintetizzare un modello di DNA lineare diluendo il plasmide PX330 a 10 nanogrammi per microlitro in acqua priva di nucleasi. Preparare un master mix, aggiungendo alla fine la polimerasi, e tenere in ghiaccio. Quindi mescolare e dividere la soluzione in otto provette per PCR.

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