0 閲覧数 • 3:53 分 • September 26th, 2025
遺伝子組み換え細菌のコロニーを液体培地に接種することから始めます。
これらの細菌は、外膜である外部保護層に蛍光融合タンパク質を発現します。
細菌が細胞間コミュニケーションに関与する膜結合ナノ構造である細胞外小胞(EV)を放出するためにインキュベートし、蛍光タンパク質を組み込みます。
培養物をボトルに移し、低速で遠心分離して細胞をペレット化します。
EV、細胞タンパク質、細胞破片を含む上清を移します。高速で遠心分離し、破片を含む上清を除去します。
上清を膜を通してろ過し、残っている細菌や破片を除去します。
寒天にサンプルを接種し、インキュベートします。細菌のコロニー形成がないことは、細菌が存在しないことを確認します。
溶液を半透膜と遠心分離機を備えた限外ろ過装置に移し、より小さなタンパク質を除去しながらEVを捕捉します。
濃縮されたEVをチューブに集めて下流分析を行います。
まず、滅菌ループを使用して、大 腸菌 の単一コロニーを250〜1000ミリリットルのルリアベルタニまたはLBブロスに接種します。次に、培養物を振とうインキュベーターで毎分300回転、摂氏37度で好気的にインキュベートします。48時間のインキュベーション後、細胞培養物を洗浄した500ミリリットルのポリプロピレン遠心分離機ボトルに移し、大容量の固定角ローターで摂氏4度、5,000倍Gで15分間遠心分離することにより、細菌培養培地を清澄化します。
上清を清潔な遠心分離機ボトルに移し、10,000 倍 G で 15 分間遠心分離機に注ぎます。次に、上清を適切なサイズの0.2ミクロンのポリエーテルスルホン真空駆動フィルター装置に移し、ろ過装置を真空壁供給装置に接続します。ろ過率が大幅に低下した場合は、ろ過されていない材料を新しい装置に移動します。
ろ過された培地は、摂氏4度で一晩保存することも、すぐにさらに処理することもできます。生細胞の完全な除去を確認するには、ろ過した上清のアリコートを適切な寒天プレートに広げ、細菌株に最適な条件でインキュベートした後、コロニーがないことを確認します。ろ過培地を100ミリリットルの容量で濃縮するには、90ミリリットルのろ過培地を100キロダルトンの分子量カットオフで遠心限外ろ過装置のリザーバーにロードし、上部リザーバー内の培地の体積が0.5ミリリットル未満に濃縮されるまで、摂氏4度および2,000倍Gのスイングバケットローターで培地を15〜30分間隔で遠心分離します。
残りのろ過培地をリザーバーに補充するには、デバイスの底部にあるフロースルーを取り外してバランスを取り戻します。リザーバー内の濃縮培地の粘度が目に見えて増加した場合は、培地をPBSで希釈し、遠心分離によって再濃縮して、分子量カットオフの100キロダルトンよりも小さい非細胞外小胞またはEVタンパク質を減らします。次に、濃縮培地を低タンパク質結合チューブに移し、摂氏4度で一晩保存します。
本記事では、蛍光融合タンパク質を発現する遺伝子組み換え細菌から細胞外小胞(EVs)を単離する方法について説明します。このプロセスでは、生存細胞を確実に除去し、後続の解析のためにEVsを濃縮するため、複数の遠心分離およびろ過工程が含まれます。
細菌由来の細胞外小胞(EV)の単離は、ターゲットの検証やフェノタイプスクリーニングに利用可能な、膜由来ナノ粒子のスケーラブルな供給源を提供することで、初期創薬におけるメカニズム解明に伴うリスク軽減を可能にします。本手法は、標準化され再現性のあるEV濃縮を通じてアッセイ開発を支援し、後続の機能解析におけるばらつきを低減します。これにより、本技術は、予測精度の向上した細菌由来治療薬やワクチン候補を評価するためのトランスレーショナルツールとして位置付けられます。
本手法は、細菌由来EVをメカニズム解析のプローブまたはデリバリービークルとして利用することで、初期のターゲットバリデーションからリード化合物の同定に至るディスカバリーの連続的なプロセスに適合します。また、精製され定量可能なEV画分を提供することで、機能的リードアウトのためのスクリーニングワークフローを可能にします。このプロセスは、濃縮されたEVの蛍光検出または生化学的検出による分析をサポートし、異なる条件下での比較分析を容易にします。さらに、本プロトコルはスケーラビリティに優れ、多様な細菌株で標準化されているため、企業での再利用も可能です。
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最終更新:22 8月 2026