0 閲覧数 • 3:37 分 • July 8th, 2025
ミジンヌクレオチドの合成代替物であるIdUを保有し、すでにDNAに組み込まれているがん細胞から始めます。これらの細胞が複製ストレスに遭遇すると、DNA合成が停止し、露出した一本鎖DNA領域内のIdUが明らかになります。
細胞を固定し、界面活性剤分子を加えて細胞膜を透過性にします。
BSAを添加して、非標的抗体結合部位をブロックします。
IdU標識一本鎖DNAと相互作用する抗IdU抗体を導入します。
抗IdU抗体を標的とする緑色の蛍光色素標識二次抗体を追加します。結合していない抗体を除去します。
核を染色する蛍光色素を含む封入剤を含むスライドにカバーガラスを置きます。
蛍光顕微鏡で青い核を観察します。
緑色の蛍光病巣は、一本鎖DNAに結合する抗体を表します。
病巣の数をカウントして、複製ストレスのレベルを定量化します。
24ウェルプレートのウェルに配置されたポリ-L-リジンカバーガラスに1ミリリットルの細胞懸濁液を加え、標準条件下で培地中で細胞を増殖させます。1回の集団倍増後、プレートから既存の培地を吸引し、その後の2つの集団倍増のために10マイクロモルのIdUで細胞をパルスします。
細胞を採取するには、培地を氷上で氷冷した0.5%PBSTxで5分間交換します。細胞の固定には、PBSTxを吸引し、細胞を室温で3%パラホルムアルデヒドと15分間インキュベートします。PBSで3〜4回洗浄した後、さらに使用するまで固定細胞を摂氏4度に保ちます。
固定後、氷上で0.5%PBSTxを使用して細胞を5分間透過処理し、カバーガラス全体を覆うようにします。室温で1ミリリットルの0.2%PBSTで細胞を3〜4回洗浄した後、PBSTを吸引し、PBSで作った5%BSAを室温で30分間用いてサンプルをブロックします。
免疫染色の場合は、平底のタッパーウェアに濡れたペーパータオルを置き、加湿チャンバーを準備します。24ウェルプレートの蓋をパラフィルムで覆います。加湿チャンバーに入れ、プレートの蓋にカバーガラスを置きます。カバーガラスの上部に、60マイクロリットルの希釈抗BrdUマウス一次抗体を追加します。
あるいは、抗体の乾燥を減らし、使用する量を減らすには、希釈した抗体をパラフィルムに一滴置き、カバーガラスをその上に裏返します。その後、摂氏37度で1時間インキュベートします。インキュベーション後、一次抗体を吸引します。
カバーガラスを24ウェルプレートに戻し、0.2%PBSTで4回洗浄します。前述のように、希釈した二次抗体をカバーガラスに加え、室温で暗所で1時間インキュベートします。顕微鏡スライドにラベルを付け、DAPI封入剤でスライドにカバーガラスを取り付けます。封入剤を硬化または硬化させる必要がある場合は、スライドを室温で暗所で 24 時間保管してください。
本記事では、IdU取り込み法および免疫蛍光染色法を用いて、がん細胞における複製ストレスを定量化する方法について詳しく解説します。このプロセスでは、細胞の固定および透過処理を行い、続いて抗体染色と蛍光顕微鏡観察を行うことで、DNAフォーカスを可視化および計数します。
免疫蛍光法を用いてがん細胞における複製ストレスを定量化することで、DNA合成の阻害を直接的かつ再現可能な形で読み取ることができ、腫瘍学パイプラインにおける初期段階のターゲットバリデーションおよびメカニズムのデリスキングを支援します。この手法により、複製阻害剤に対する細胞応答を精密に測定することが可能となり、創薬の重要な転換点において予測の信頼性を高めることができます。また、標準化されたアウトプットにより、プログラム間での比較やDNA損傷応答ターゲットのポートフォリオ・トリアージが容易になります。
この免疫蛍光法に基づいた定量化手法は、創薬から前臨床試験に至る一連の流れに組み込まれており、DNA複製ストレス調節因子のターゲット検証とリード化合物の同定の両方を支援します。
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最終更新:29 8月 2026