0 閲覧数 • 3:14 分 • July 8th, 2025
ドーナツ型のポリ-D-リジンでコーティングされた多孔質シルク足場をマルチウェルプレートに入れます。
培養培地を添加して足場を水和し、細胞の付着を促進します。
余分な媒体を吸引します。足場に神経細胞懸濁液を播種し、インキュベートします。
コーティングされた表面と足場の細孔は、高密度の細胞付着のための大きな表面積を提供し、効率的な栄養素と老廃物の拡散を促進します。
付着していない細胞を取り除き、細胞外マトリックスタンパク質であるコラーゲンを加えます。
コラーゲン重合のためにインキュベートします。このプロセスにより、多孔質足場上のゲル状の 3D マトリックス内に細胞が埋め込まれます。
メディアを追加します。培養し、定期的に培地の半分を交換して、細胞を乱すことなく栄養素を補充します。
培養内では、神経細胞体は絹足場に固定されたままであり、軸索はコラーゲンマトリックスを介して成長し、3D軸索ネットワークを形成します。
この区画化された細胞体と軸索の局在化により、3D脳のような偏光神経組織モデルが形成されます。
細胞培養フード内に、滅菌鉗子、細胞培養培地、およびオートクレーブ滅菌した足場のペアを置きます。96ウェルプレートを包装から取り出し、中に入れます。足場を播種するには、まず、ウェルごとに1つの滅菌足場を96ウェルプレートに入れます。細胞培養培地を加えて足場を浸漬し、組織培養インキュベーターで摂氏37度でインキュベートして少なくとも30分間平衡化します。
インキュベーション後、足場から余分な培地を吸引します。次に、足場あたり100マイクロリットルの神経基底培地中の6つのラット皮質ニューロン細胞に2倍10を加えます。プレートをインキュベーターに戻し、細胞が足場に付着するまで一晩放置します。翌朝、付着していない細胞を注意深く吸引し、200マイクロリットルの新鮮な細胞培養培地と交換します。摂氏37度で短時間インキュベートします。
次に、ウェルから培地を吸引します。滅菌鉗子を使用して、細胞を含む足場を96ウェルプレートの空のウェルに移します。次に、各足場に、100マイクロリットルの希釈したばかりの氷冷3ミリグラムのラットテールコラーゲン溶液を加えます。
細胞を摂氏37度のインキュベーターに戻して、コラーゲンを30分間重合させます。インキュベーターからプレートを取り出し、ウェルあたり100マイクロリットルの予熱細胞培養培地を加えます。プレートをインキュベーターに戻し、細胞増殖の希望の期間、各ウェルの培地の半分を毎日新鮮な培地に交換します。
本記事では、多孔質シルク足場を用いて、脳に類似した3次元極性神経組織モデルを作製する方法について解説します。このプロセスでは、神経細胞を足場に播種し、それらをコラーゲンマトリックスに埋め込むことで、軸索ネットワークの形成を可能にします。
この3D極性神経組織モデルは、生理学的に適切な軸索ネットワーク形成を通じて、神経標的のメカニズム的なリスク低減を可能にし、早期創薬を支援します。シルク・コラーゲン・スキャフォールドシステムは、神経接続性およびネットワークの完全性に対する化合物の影響を評価するための再現可能なプラットフォームを提供します。本モデルは、in vitroの簡便さとin vivoのような組織構造を橋渡しし、前臨床段階における標的バリデーションの予測信頼性を向上させます。
本手法は、ターゲットバリデーションからリード化合物同定に至る創薬の連続的なプロセスに適合しており、in vivo試験の前段階として生物学的に意義のある中間ステップを提供します。
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最終更新:22 8月 2026