0 閲覧数 • 2:38 分 • April 28th, 2025
マウスの脳から採取した細動脈内皮チューブを、連続的なバッファーフローのあるチャンバー内に固定します。
チャンバーを記録セットアップに配置します。
カルシウム感受性蛍光色素を導入します。細胞に色素を取り込むためにインキュベートします。
洗浄して、内部化されていない染料を取り除きます。
内皮細胞に電極を挿入し、静止膜電位を記録します。
細胞内カルシウムの色素への結合を促進するために、浴の温度を生理学的温度まで上げます。
色素を励起し、蛍光を測定して、ベースラインの細胞カルシウムレベルを定量します。
内皮細胞上の特定のGタンパク質共役受容体に結合する薬剤を導入し、シグナル伝達カスケードを開始します。
このカスケードは、小胞体から細胞質にカルシウムイオンを放出し、カルシウム色素の結合と蛍光を強化します。
細胞質カルシウムレベルの上昇もカリウムチャネルを活性化し、カリウムイオンの流出を促進し、膜電位を低下させます。
データを記録します。
蛍光の増加と膜電位の低下は、機能的な内皮管を示しています。
内皮膜電位を測定するには、4倍の対物レンズを通して見ながら、マイクロマニピュレーターを使用して、動脈内皮管の細胞のすぐ上に鋭い電極の先端を慎重に配置します。徐々に倍率を400倍に上げ、必要に応じて電極先端の位置を変更します。マイクロマニピュレーターを使用して、鋭利な電極の先端を内皮管の細胞の1つにそっと挿入し、電位計を使用してVMの記録を開始します。
内皮安静時 VM がマイナス 30 ミリボルトからマイナス 40 ミリボルトまで安定したら、実験目的ごとに目的の薬剤を適用します。原形質膜または目的の細胞小器官の蛍光トラッカーを内皮チューブに摂氏37度で15〜30分間ロードします。新鮮な超融合生理的塩溶液で細胞を洗浄し、それぞれの色素の励起波長で顕微鏡下で生細胞を画像化します。
本論文では、マウス脳から採取した細動脈内皮細胞の静止膜電位を記録する方法について解説します。この手法では、カルシウム感受性蛍光色素を用いて細胞内カルシウム濃度を測定し、内皮管の機能的状態を評価します。
単離したマウス細動脈内皮におけるカルシウムダイナミクスと膜電位の定量分析は、初期段階のターゲットバリデーションに関連する血管シグナル伝達メカニズムを調査するための堅牢なプラットフォームを提供します。このアプローチにより、薬理学的調節に対する機能的な内皮反応を予測する信頼性が得られ、血管生物学および神経血管領域の創薬ポートフォリオにおいて、リスクを調整した意思決定を支援することが可能になります。
この手法は、初期のターゲットバリデーションからリード化合物の同定、そして血管機能の前臨床評価に至るまでの創薬プロセスの全工程に組み込まれます。
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最終更新:22 8月 2026