マウス細動脈内皮におけるカルシウム動態と膜電位変化の解析

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マウスの脳から採取した細動脈内皮チューブを、連続的なバッファーフローのあるチャンバー内に固定します。

チャンバーを記録セットアップに配置します。

カルシウム感受性蛍光色素を導入します。細胞に色素を取り込むためにインキュベートします。

洗浄して、内部化されていない染料を取り除きます。

内皮細胞に電極を挿入し、静止膜電位を記録します。

細胞内カルシウムの色素への結合を促進するために、浴の温度を生理学的温度まで上げます。

色素を励起し、蛍光を測定して、ベースラインの細胞カルシウムレベルを定量します。

内皮細胞上の特定のGタンパク質共役受容体に結合する薬剤を導入し、シグナル伝達カスケードを開始します。

このカスケードは、小胞体から細胞質にカルシウムイオンを放出し、カルシウム色素の結合と蛍光を強化します。

細胞質カルシウムレベルの上昇もカリウムチャネルを活性化し、カリウムイオンの流出を促進し、膜電位を低下させます。

データを記録します。

蛍光の増加と膜電位の低下は、機能的な内皮管を示しています。

内皮膜電位を測定するには、4倍の対物レンズを通して見ながら、マイクロマニピュレーターを使用して、動脈内皮管の細胞のすぐ上に鋭い電極の先端を慎重に配置します。徐々に倍率を400倍に上げ、必要に応じて電極先端の位置を変更します。マイクロマニピュレーターを使用して、鋭利な電極の先端を内皮管の細胞の1つにそっと挿入し、電位計を使用してVMの記録を開始します。

内皮安静時 VM がマイナス 30 ミリボルトからマイナス 40 ミリボルトまで安定したら、実験目的ごとに目的の薬剤を適用します。原形質膜または目的の細胞小器官の蛍光トラッカーを内皮チューブに摂氏37度で15〜30分間ロードします。新鮮な超融合生理的塩溶液で細胞を洗浄し、それぞれの色素の励起波長で顕微鏡下で生細胞を画像化します。

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Last updated: 27 June 2026