Name: 出芽酵母の老化複製の連続高分解能顕微鏡観察 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-08-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 41 s
Description: 学ぶ出芽酵母の老化複製をマイクロ流体デバイスを用いて連続高分解能顕微鏡観察する手法。Saccharomyces cerevisiaeの単一細胞を寿命全体にわたり追跡し、形態変化とタンパク質発現を可視化します。

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私たちは、ミトコンドリアの形態を達成すると、セル負荷プロトコルとマーカス·デGoffauとGuille Zamparの最初のバージョンを作成するためのローラのシッパーズに感謝したいと思います。

1。シリコンウェーハモールドの生産と準備マイクロ流体チップは、ソフトリソグラフィーによって生成されたシリコンウェハ型から作成される。これらのウェーハは、マイクロ流体チップを製造するために何回も再使用することができる。それはそれぞれのウェハの製造はマイクロフルイディクス6に特化した基により行われることが望ましい。 ウェハはネガ型フォトレジスト二つの異なる層、SU-8 7を用いた2段階フォトリソグラフィ工程で行われる。チャネルは、最上層（;高さ10μmのSU-8 2010）で作られているのに対し、;底層が細胞捕捉領域（高さ3-4μmのSU-8 2002）を生成するために使用される。ウェハ製造プロセスの印象がHuang ら 8に見出すことができる。マイクロ流体チップの図面は著者と同様に、それぞれのウェーハを取得する方法についてのアドバイスから得ることができる。 <ol><li>ウェハが得られると、タフタグintの一枚をカットメスと入口チャネルとmicropad配列（ 図2A）との間のチャネル構造の上にわずかにウェハ上に慎重に置きますと3ミリメートルで約0.5mmのO薄いストリップ。これは、セルのロード中に使用されることはありませんそれぞれのチップに大きな追加チャネルの形成をもたらすが、マイクロ流体デバイスの安定動作のためにも重要であろう。 </li><li>アルミ箔の二重層のガラスシャーレをカバーし、ペトリ皿にウェハを置く。アルミ箔は、ウエハとペトリ皿の間で実行されてからPDMSを防ぐことができます。 PDMSは、ウェハやガラスシャーレの間でクリープない場合は、ウェハは、ペトリ皿に永久的に固定となります。ウェハはまだ使用可能ですが、それが壊れたときにガラスシャーレを交換することはできませんとPDMSその後切り取るする必要があります。 </li></ol> 2。マイクロ流体チップの生産<ol><li>空のプラスチックを置きバランスと風袋バランスにカップ。プラスチックカップ（直径12cmのガラスシャーレ用）に40グラムPDMSベースを注ぐ。 4ミリリットル約1:10、 すなわちのAW / wの割合で使い捨てピペットでPDMS硬化剤を追加します。 </li><li>数分間徹底的にPDMSと硬化剤を混ぜる。これは、硬化剤をピペットするために使用された使い捨てプラスチックピペットを用いて行うことができる。それは混合物が十分にウエハの上に注ぐ前に混合することが重要である。悪い混合は重合しないPDMSの一部の原因となります。 </li><li>ガラスシャーレにおけるウェハの上にPDMSを注ぐ。 </li><li>硬化剤とPDMSの混合は、PDMS混合物中の気泡形成をもたらす。これらの泡は、PDMSが重合する前に削除する必要があります。 PDMSは、真空ポンプに接続されたデシケーター中でペトリ皿を配置することにより、ウエハの上に注ぐ後に脱気することができる。このセットアップでは、混合物からすべての気泡を除去するために約30分かかります。 </li><li>重合番目さらに1時間65℃で、その後1時間と、120℃のホットプレートの上にウェハとペトリ皿を配置することによって、電子PDMS。 </li><li>ガラスシャーレからウエハと重合PDMSと一緒にアルミホイルを外します。アルミ箔とウェハの背面から重合したPDMSの薄い残留層をはがし。ウェハの上にPDMSの層を慎重に持ち上げて、ウエハから分離​​することができる。 </li><li>ベンチの上に逆さまに（上向きにチャンネル）PDMS層を置き、メスで慎重にPDMSに刻印シングルチップ設計を切り取る。後でカバーガラスへのチップの取り付けを改善するためのチャネルのエッジの周りにPDMSの約3ミリメートルを保持するようにしてください。 </li><li>ストレートな方法でPDMSを介してすべての道20ゲージルアースタブを押して入口、出口及びサイドチャネル（ 図2A）の末端PDMSにパンチ穴を開けます。 </li></ol> PDMSチップを確認してください穴をパンチしながらまだベンチに逆さまに横たわっている。これは、チャネルの閉塞を引き起こす可能性チャネルの内側に付着PDMSを防ぎます。 <ol start="9"><li>各穴をパンチした後、再びスタブを抜く前に、ピンセットでルアースタブにPDMSの列を削除します。 PDMS列は、他の背後に滞在し、ちょうどパンチ穴をブロックすることができます。 </li><li>その上にセロハンテープを配置し、直ちに再びテープを除去することにより、ダスト粒子と残留PDMSからチップの表面を清掃します。同様にチップが添付されますようにカバーガラスを清掃してください。 </li><li>卓上型UV-オゾンクリーナーのUVランプ下洗浄チップとカバーガラスを置きます。一緒に結合する必要がある側面がランプに直面しなければならない。 </li><li> PDMSを露出させ、6-8分間UV光にガラスをカバーし、その後直接互いの上に露出面を配置することによって、カバーガラス上にチップを置く。 </li><li>優しくチップの側面の周りにタップカバーガラスにPDMSの付着を促進し、気泡を除去した。これはmicropadsも同様にカバーガラスに取り付けるために原因とチャネル構造の上でタップしないでください。 </li><li> 60分間100℃のホットプレート上で、新たに作られたマイクロ流体セットアップを置きます。少しPDMSチップのエッジを持ち上げることを試みることによって、カバーガラスとPDMSチップの間の結合の強さをテストします。 PDMSブロックがガラス表面から持ち上げることができない場合は、結合が成功し、チップを使用する準備ができている。 </li></ol> 3。セルの読み込みのためにチップを準備するマイクロ流体デバイスの故障は、潜在的に顕微鏡に媒体の漏洩を引き起こす可能性があります。これを回避するためには、金属ホルダ及び/又は使用PDMSはマニキュア又はエポキシ接着剤でガラスを満たすチップの側面を封止する勧告である。 PDMSチップがカバーガラスに十分に接着されていない場合には、これは、媒体の漏れを防止する。また、チューブ接続は、媒体の漏れを回避するために、同様の方法で、挿入点の周囲に確保することができる。漏れの場合、シリンジポンプのスイッチを切り自家製水センサーは余分な安全対策として使用できます。特に、マイクロ流体チップ用に設計された金属ホルダの図面は、著者から得ることができる。 <ol><li>チップのガラスと防水シールを作成するためのホルダーの金属部分の間にシリコーンゲルで、金属製のホルダーにマイクロ流体チップを置きます。ガラスを壊さないように、静かにナットをねじ込みます。 </li><li>細い管（ 約 5〜15センチメートル長い）サイドチャネルチップの出口チャネルに接続します。ピンセットを使用することは、簡単にパンチ穴にチューブを挿入することができる。 </li><li>培地で50ミリリットルルアーロックシリンジを埋める、注射器から空気を除去し、シリンジフィルター、20ゲージルアースタブ、短い太管（ 約長さ2cm）と細い管に順次接続します。ていることを確認し、薄い浴槽eはシリンジポンプおよび顕微鏡ステージとの間の距離に及ぶことが十分な長さである。 </li><li>細い管が完全培地で満たされるまで早送り、シリンジポンプ、ポンプを注射器を置きます。 </li><li>チップの入口チャネル内にシリンジに接続細いチューブを押して、10μL/分（ 図2B）でのチップを通して培地を流す。チップ（ペトリ皿になど ）を残し培地を収集します。大型サイドチャネルと出口チャネルを作ったタフ·タグ間の抵抗差のため、媒体は、サイドチャネルを介して実行されます。 </li><li>顕微鏡ステージにチップを置き、パッド上顕微鏡のフォーカスを設定。 </li></ol>オイルは、実験の時間経過にわたって乾燥されないため、油浸対物レンズの使用は、水浸対物レンズとより好ましい。 顕微鏡に応じてfは保持に問題がある可能性があります実験の最初の時間の間にocus。それは、細胞をロードし、実験を開始する前に、落ち着くことができますので、顕微鏡のステージで1〜2時間のためにチップを残しすることをお勧めします。 4。マイクロ流体チップに酵母細胞のロード<ol><li> 20ゲージルアースタブと太管（ 約 3センチメートル）に5ミリリットルルアーチップシリンジを接続します。 </li><li>チップにロードされる細胞培養のサンプルを取る。 </li></ol>ローディングのための好ましい細胞数は、1mlあたり1〜5×10 6細胞の間である。高い細胞数との文化は、ロード前に希釈する必要があります。細胞を最初に水で洗浄し、ローディング前に同様のグルコース割合を含有する最少培地に再懸濁されている場合にYPD培養細胞は、細胞の積載効率が何倍も向上させることができるとき。チップの動作時には、YPD培地を再度安全に使用することができる。 <ol start="3"><li>目に細胞懸濁液の約1ミリリットルをロードeは、注射器と注射器からすべての空気を除去する。 </li><li> 0.5μL/ minにシリンジポンプの流量を減少させる。ロード中に、シリンジポンプ（ステップ4.5）によって強制低いと継続的流れは、サイドチャネル（ 図2C）を経由して非付着細胞を押し出します。 </li><li>出口チャネルのチューブに細胞懸濁液の入った注射器を接続する。優しく注射器のプランジャーを押してセルをロードします。入ってくると眼経由micropads下やコンピューターの画面を経由してセトリング細胞を守ってください。 </li><li>十分な細胞がパッドの下に落ち着くまで、プランジャーへの圧力を維持する。最適負荷は、パッドごとの1-3のセルです。細胞がランダムにパッドの下に落ち着くように、それはいくつかのパッドは、任意のセルが含まれていないと他のパッドが完全に細胞で満たされていることが非常に一般的です。 </li><li>セルローディングと出口チャネルの薄いチューブからそれに接続されている太管に使用注射器を外し、サイドチャンネルをフラッシュ高流量（10μL/分）で数分のためannelは、気泡および/ ​​またはまだチップ（ 図2B）を終了しなかった細胞を除去する。細胞は、サイドチャネルから除去されない場合は、サイドチャネルに成長し始めると、後に実験を妨害することができる。 </li><li>バックダウン0.5μL/ minまで、シリンジポンプの流れを入れて、その端（ 図2D）でカテーテルプラグを含む太管（ 約長さ5cm）に接続することにより、サイドチャネルを閉鎖。 </li><li> 1-5μL/分の最終的な流量に流量を増加。流量は、培地および酵母株によって異なる場合があります。 </li><li>実験の目的に適した顕微鏡やカメラの設定でムービーを開始します。顕微鏡ステージの速度は油が従うことができるような低速に設定されていることを確認します。複製寿命、画像セルごとに10分の決定のために。ハロゲンにより放出される紫外光の微量から細胞を保護するために、DIC取得中に使用されているランプは、それが光路に追加のUVフィルタを配置することをお勧めします。蛍光顕微鏡を使用する場合は、光毒性効果を回避するためにそれほど頻繁に画像細胞（20分毎など ）に好適である。実験の開始時にロードされたすべての細胞が死んでいる時に実験は通常の条件下で5日を要した、完成されています。これは、定期的に実験中の画像の焦点を確認し、必要に応じて調整することをお勧めします。 </li></ol>

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<li>Zhang, Y., Luo, C., Zou, K., Xie, Z., Brandman, O., Ouyang, Q., Li, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single+cell+analysis+of+yeast+replicative+aging+using+a+new+generation+of+microfluidic+device%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Single cell analysis of yeast replicative aging using a new generation of microfluidic device.</a> PLoS One. 7 (11), e48275(2012).</li>
</ol>

著者は、彼らが競合する経済的利益を持っていないことを宣言します。

ここで説明したマイクロ流体の方法は、それが継続的な高分解能イメージングとの組み合わせで酵母複製寿命データのシンプルかつ自動生成を可能にするような研究を老化の重要な新しいツールです。これらの属性は、古典的な解剖法の実験的な可能性の上に大きな改善ですが、まだ考慮する必要がある方法のいくつかの制限があります。 micropad下に保持し、すべてのセルは、チップ（ 例えば、隣接セルの出芽細胞はそれから離れてプッシュすることができるから洗い流されるべき一定の確率があります決定複製寿命が母細胞の保持の効率性の影響を受ける可能性があることに注意してくださいmicropad）​​。セルの統合された確率が増加寿命と増加を洗い流すことができます。これにより、短命の細胞は長命細胞よりも洗い流される前に、そのライフサイクルを完了した可能性が高い。実際、同様のリチウム<html> fespanデータは、古典的なマイクロダイセクション法11-13と同様にマイクロ流体セットアップ4で生成された無関係ではない場合は、この潜在的な問題は、わずかであるこ...

出芽酵母は、研究1のエージングのための重要なモデル生物である。最近、酵母細胞の老化複製を勉強するまで、各芽を手動母細胞2,3から削除された解剖の方法を必要とする骨の折れるプロセスであった。この問題を解決するために、我々は、最近、それらの全体の寿命にわたって4個々の母細胞を追跡することができる新規なマイクロ流体セットアップを提示した。 我々のマイクロ流体チップでは、酵母細胞は、エラストマーベースのソフトmicropads（ 図1参照）の下に閉じ込められている。媒体の連続的な流れは、離れて、新たに形成された娘細胞を洗浄し、新鮮な栄養素を細胞を提供する。単一の実験では、最大50の母細胞は、彼らの全体の複製寿命を通して完全に自動化された方法で監視できます。マイクロ流体チップの優れた光学的性質のために、それは同時に、酵母細胞生物学のさまざまな側面（ 例えば、監視することが可能である</em&gt;の蛍光タンパク質）を用いて。 古典的な解剖の方法に比べ、マイクロ流体セットアップはかなりの利点を提供します。それは全体の高齢化実験中に定義された、一定の環境を確保します。それは高価な特殊な機器を必要とせず、自動焦点と時間経過の能力だけでなく、細胞培養のための温度制御を搭載した任意の顕微鏡上で実行することができます。マイクロ流体チップの生産と操作は数日以内に学習することができる。さらに、細胞が対数増殖期培養直接、母細胞のビオチン化を必要とする別の最近公開されたマイクロ流体法5、以上の利点からロードすることができる。高分解能イメージング、ここに記載した方法と組み合わせることで徐々に変化を測定するために使用することができる細胞形態では、酵母中のタンパク質の発現および局在は前例のない方法で老化。のための能力単一細胞の長期モニタリングはまた、酵母細胞周期の研究のためのユニークな可能性を提供する。 この方法は、最近、この原稿が審査に入ったままの状態で公開されたプロトコル16から、ビオチンを除去するために最適化されています。

<table><tr><tbody><td colspan="4">REAGENTS</strong</td></tr><tr><td>>DC Sylgard 184エラストマーMavom </td><td>bv</td><td>1060040</td><td>このパッケージには、PDMSベースとPDMS硬化剤が含まれています。</td></tr><tr><td>ガラスシャーレ 120/20 mm </td><td>VWR インターナショナル</td><td>391-2850</td><td></td></tr><tr><td>カバーグラス 22x40 mm </td><td>CBN Labsuppliers BV</td><td>190002240</td><td></td></tr><tr><td>タフタグ </td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>Z359106</td><td></td></tr><tr><td>アルミホイル </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>プラスチック使い捨てカップ </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>セロロジカルピペット 5 ml </td><td>VWR インターナショナル</td><td>612-1245</td><td></td></tr>スコ<tr><td>ッチテープ</td><td>VWRインターナショナル</td><td>819-1460</td><td></td></tr><tr><td>ベイシロンペースト(GEバイエルシリコーン)</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>85403-1EA</td><td></td></tr><tr><td>PTFEマイクロボアチューブ、0.012インチID x 0.030インチOD</td><td>コールパー</td><td>マーEW-06417-11</td><td>と呼ばれる細いチューブ</td></tr><tr><td>タイゴンマイクロボアチューブ、0.030インチID x 0.090インチOD</td><td>コールパー</td><td>マーEW-06418-03</td><td>太いチューブと呼ばれる</td></tr>メス <tr><td> </td><td>VWR インターナショナル</td><td>233-5334</td><td></td></tr><tr><td>50 ml ルアーロック シリンジ </td><td>BD</td><td>300137</td><td></td></tr><tr><td>5 ml シリンジ、ルアー チップ </td><td>VWR インターナショナル</td><td>613-1599</td><td></td></tr><tr><td>ピンセット </td><td>VWR インターナショナル</td><td>232-2132</td><td></td></tr><tr><td>20 ゲージ ルアー スタブ </td><td>Instech Solomon</td><td>LS20</td><td></td></tr><tr><td>シリンジフィルター(細孔径0.20 &mu;m) </td><td>Sigma-Aldrich</td><td>16534K</td><td></td></tr><tr><td>ステンレス製カテーテル プラグ、20 ga x12 mm </td><td>Instech Solomon</td><td>SP20/12</td><td></td></tr><tr><td>シャーレ </td><td>VWR International</td><td>391-0892</td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> EQUIPMENT</strong</td></tr><tr><td>>Benchtop UV-Ozone クリーナー </td><td>NOVA Scan</td><td>PSD-UVT</td><td></td></tr><tr><td>ハーバード ポンプ 11 エリート </td><td>ハーバード装置</td><td>70-4505</td><td></td></tr><tr><td>SU-8シリコンマスターモールド(ウェーハ)</td><td></td><td></td><td>自作。詳細については、責任著者にお問い合わせください </td></tr><tr><td>バランス</td><td>ザルトリウスコーポレーション</td><td>ED4202S</td><td></td></tr><tr><td>真空ポンプ </td><td>KNF ノイバーガー</td><td>N022 AN.18</td><td></td></tr><tr><td>デシケーター </td><td>VWR インターナショナル</td><td>467-2115</td><td></td></tr><tr><td>ホットプレート </td><td>VWR インターナショナル</td><td>460-3267</td><td></td></tr><tr><td>オプション: カバーガラス用メタルホルダー (22x40 mm) </td><td></td><td></td><td>自力;詳細については、責任著者</td></tr><tr><td>(蛍光)顕微鏡、60倍対物レンズ、オートフォーカス、タイムラプス機能、できれば自動(電動XY制御)ステージNikon </td><td></td><td>Eclipse Ti-E</td><td></td></tr></tbody></table>にお問い合わせください。

出芽酵母の老化複製の連続高分解能顕微鏡観察

Continuous High-resolution Microscopic Observation of Replicative Aging in Budding Yeast

我々は、単一出芽酵母細胞は、それらの全体の寿命にわたって追跡することができるという簡単なセットアップマイクロ流体の使用を実証する。マイクロ流体チップはmicropadsの配列を使用して母と娘細胞間の大きさの違いを利用する。 micropadとカバーガラスとの間の距離は、酵母細胞（3-4ミクロン）の直径に類似しているため、ロード時に、細胞は、これらのmicropadsの下に閉じ込められている。ローディング手順の後、培地を継続的に小さいサイズのためにパッドの下に保持されない新興の娘細胞、うち定数と定義された実験全体を通して環境だけでなく、フラッシュを作成するだけでなく、チップを通してフラッシュされます。セットアップはとても効率的に50個々の細胞まで、単一の実験では5日の完全に自動化された方法で監視されたり、必要であれば、長くすることができ母細胞を保持します。また、チップの優れた光学特性が高いことができ全体の老化のプロセスの間に細胞の分解能イメージング。

このプロトコルでは、細胞を直接中間指数培養物からマイクロ流体チップにロードされる。マイクロ流体チップに捕捉された細胞の年齢分布をロードする前培養と同様であるか否かを確認するために、細胞芽傷を可視化するためにFITCに抱合小麦凝集素（WGA-FITC）で染色した。 図3に見られるように、マイクロ流体チップのmicropads下での細胞の捕捉は、特定の年齢の細胞に付勢されていない。 複製寿命が単に単一母細胞によって産生される芽の数をカウントすることによって決定することができる。このデータは、生成さ芽数に対する生存細胞の割合をプロットすることによって寿命曲線に変換される。例えばKaeberlein らによって行われるような統計的検定は 、 図9には 、異なる実験からの寿命のデータを比較するために使用することができる。 図4は、寿命曲線の一例を示しているWT BY4741酵母株と2変異体（SIR2Δ、FOB1Δ）で得られた。 ...

ここではそれらの完全な複製および/または時系列の寿命の間に単一の出芽酵母細胞の連続的かつ高分解能顕微鏡イメージングを可能にするマイクロ流体装置の動作を説明する。

We demonstrate the use of a simple microfluidic setup, in which single budding yeast cells can be tracked throughout their entire lifespan. The ...

この手順の全体的な目的は、単一の半倍数性酵母細胞をその複製寿命全体にわたって追跡することです。最初のステップは、マイクロパッドの配列を含むマイクロ流体チップを作製することです。次に、酵母細胞をマイクロ流体チップに導入します。マイクロパッドの下の領域の高さが酵母細胞の直径と同程度であるため、細胞はそこに沈降します。その後、捕捉された酵母細胞の上に新鮮な培地を連続的に流し、出現した娘細胞を培地の流れで洗い流します。明視野および蛍光顕微鏡を用いて、老化する酵母細胞で起こり得る細胞または細胞小器官の形態、タンパク質発現、およびタンパク質局在の変化を可視化します。従来のマイクロダイセクション法に対する本手法の主な利点は、労力が少なくて済み、個々の酵母細胞の全生存期間にわたる長期的な連続顕微鏡観察が可能である点にあります。この手法は複製老化に関する知見を得るために有用であるだけでなく、長期間にわたる連続的な顕微鏡観察を必要とする研究にも利用可能です。一般的に、この手法に不慣れな方は、マイクロ流体チップの作製における特定のステップで細心の注意を払う必要があるため、苦労することがあります。また、マイクロ流体チップへの細胞の導入には、ある程度の経験が必要となる場合があります。シリコンウェハーモールドはソフトリソグラフィーによって作製されます。作製の詳細については、付随するプロトコルを参照してください。テフロンテープを約0.5 mm × 3 mmの細い帯状に切り出します。メスを用いて、ストリップをシリコンウェハーモールド上の、インレットチャネルとマイクロパドレの間のチャネル構造のわずかに上に慎重に配置します。次に、ガラス製ペトリ皿をアルミホイルの二重層で覆い、その中にウェハーを入れます。アルミホイルは、マイクロ流体チップの作製中にPDMSがウェハーとペトリ皿の間に入り込むのを防ぎます。マイクロ流体チップの作製手順を開始するために、空のプラスチックカップを天秤に載せ、風袋引きを行います。プラスチックカップに 40 grams の PDMS ベースを注ぎます。PDMS 硬化剤を重量比 1:10 の割合で添加します。この場合、約 4 milliliters に相当します。使い捨てプラスチックピペットを用いて数分間十分に撹拌します。後のPDMSの重合を適切に行うために、混合液を十分に混ぜ合わせることが重要です。ガラス製シャーレに入れたウェハーの上にPDMSを注ぎます。シャーレ内のPDMS混合液には多くの気泡が含まれているため、脱気が必要です。PDMSを配置した後、気泡がすべて消失するまで約30分間、真空ポンプに接続したデシケーター内にペトリ皿を置きます。ウェハを載せたペトリ皿をホットプレートに置き、120 °Cで1時間、続いて65 °Cでさらに1時間加熱してPDMSを重合させます。2時間後、ガラス製のペトリ皿からアルミ箔ウェハと重合したPDMSを取り出します。ウェハの背面からPDMSに貼り付いたアルミホイルを剥がします。次に、ウェハの上端からPDMS層を慎重に持ち上げます。PDMS層をチャネルが上を向くようにベンチに伏せて置き、メスを用いて、PDMSに転写されたシングルチップのデザインに沿って慎重に切り出します。チャネルの周囲に約3 mmのPDMSを残すようにしてください。次のステップは、この図に示すように、入口、出口、およびサイドチャネルの末端にあるPDMSに穴を開けることです。穴を開けるには、20ゲージのルアースタブをPDMSに真っ直ぐに押し込みます。スタブを引き抜く前に、ルアースタブ内のPDMSカラムを除去します。これも同様に、PDMSカラムが新しく打ち抜いた穴を塞ぐのを防ぐためです。すべての穴の打ち抜きが完了したら、チップの表面にセロハンテープを貼り、すぐに剥がすことで、塵や残留PDMSを取り除いて洗浄します。同様に、チップを貼り付けるカバーガラスを洗浄します。チップとカバーガラスをベンチトップ型UVオゾンクリーナーのUVランプの下に配置し、接合させる面をランプに向けて6〜8分間UV光に曝露させた後、曝露させた面同士を重ね合わせます。チップの側面を軽く叩いて、PDMSのカバーガラスへの密着を促進し、気泡を除去します。マイクロパッドがカバーやガラスに付着する可能性があるため、チャネル構造の上部を叩かないでください。作成したマイクロ流路セットアップをホットプレートに載せ、100 °Cで1時間加熱します。その後、PDMSチップの端を軽く持ち上げて、カバーガラスとPDMSチップの接合状態を確認します。持ち上がらない場合は接合に成功しており、チップが使用可能な状態です。細胞をロードするためにマイクロ流体チップを準備するには、チップのガラス部分とホルダーの金属部品の間にシリコーンゲルを挟み、チップを金属ホルダーに設置します。防水シールを作成するため、ガラスを破損させないようナットをゆっくりと締めます。チップのサイドチャネルとアウトレットチャネルに細いチューブを接続します。ピンセットを使用すると、パンチ穴にチューブを挿入しやすくなります。50 mLのルアーロックシリンジに培地を満たします。シリンジ内から空気を抜き、別のシリンジに順次接続します。20ゲージのルアースタブ、短く太いチューブ、および細いチューブでろ過します。シリンジをシリンジポンプにセットし、細いチューブ内が完全に培地で満たされるまでポンプを高速で回します。シリンジに接続された細いチューブをチップの入口チャンネルに挿入し、10 µL/minの流速で培地をチップ内に流します。チップから流出する培地をペトリ皿で回収します。培地はサイドチャネル経由で流出します。これは、大きなタフタグで作られたサイドチャネルとアウトレットチャネルとの間に抵抗差があるためです。チップを顕微鏡ステージに置き、パッドに顕微鏡の焦点を合わせてください。この手順を開始するには、5 mL ルアーチップシリンジを20ゲージのルアースタブと太いチューブに接続します。チップにロードする細胞懸濁液を約1 mL、シリンジに充填します。ロード時の推奨細胞数は、1×10⁶～5×10⁶ cells/mLです。シリンジポンプの流量を0.5 µL/minまで下げます。この手順で最も困難なのは、マイクロチップへの細胞のロードです。通常、これにはある程度の習熟が必要です。細胞懸濁液を入れたシリンジを、流出チャネルのチューブに接続します。シリンジのプランジャーを押し、細胞をロードします。接眼レンズまたはコンピュータ画面を通して、細胞が流入し、マイクロパッドの下に沈降する様子を慎重に観察してください。パッドの下に十分な数の細胞が沈降するまで、プランジャーに圧力をかけ続けます。最適な負荷量は、パッドあたり1〜3個の細胞です。細胞充填に使用したシリンジを取り外し、気泡やチップからまだ排出されていない細胞を除去するため、高流量でサイドチャネルを数分間フラッシュします。シリンジポンプの流量を再び0.5 µL/minまで下げ、末端にカテーテルプラグが入った太いチューブを接続してサイドチャネルを閉じます。シリンジポンプの流量を、最終的に1〜5 µL/minまで上げます。流量は、培地や酵母株によって異なる場合があります。実験の目的に適した顕微鏡およびカメラの設定で動画撮影を開始します。これは、YPD培地で増殖する野生型E細胞単一のタイムラプス動画の例です。培地の画像は10分ごとに撮影されており、表示されているスケールバーは5 µmを表しています。細胞は死滅するまでに合計30個の出芽を行います。複製寿命は、単一の母細胞によって形成された出芽数をカウントすることで決定できます。このデータは、生存細胞の割合を出芽数または世代数に対してプロットすることで、寿命曲線として変換されます。この図は、野生型酵母株と2つの変異株で得られた生存期間曲線の例を示しています。SER2遺伝子の欠損は生存期間の短縮をもたらし、FOB1遺伝子の欠損は生存期間の延長をもたらします。マイクロ流体デバイスを用いることで、加齢に伴うミトコンドリア形態の変化を解析することが可能です。ミトコンドリアに標的化したILV 3G FPを発現するBY 7 42野生型酵母細胞を用いて、老化実験を行いました。この図では、単一細胞におけるミトコンドリア形態の老化に伴う変化の代表例を白矢印で示しています。すべての画像は同一のスケールで表示されており、スケールバーは5 µmを表しています。2番目のタイムラプス動画は、加齢に伴うミトコンドリア形態を観察した実験において、ILV 3G FPを発現している単一の細胞を示したものです。画像は30分ごとに撮影されており、スケールバーは5 µmを表しています。最後の図は、同一の細胞群において、最初の出芽前、10回出芽後、および死滅前の異なる複製年齢で観察されたミトコンドリア形態を示しています。管状、断片化した管状、スポット、および大きなスポットの各形態クラスの例示画像が含まれています。中年期の細胞に見られる形態変化は、細胞分裂を継続的にモニタリングすることで以前に報告されたものと類似しています。この手法は、酵母細胞はなぜ老化するのか、どのような表現型の変化が起きているのか、そしてそれらが酵母の複製寿命にどのように影響するのかといった、酵母の複製老化における重要な疑問に答えるのに役立ちます。このビデオを視聴することで、独自のマイクロチップを作成し、基本的にあらゆる蛍光顕微鏡を用いて細胞の複製老化を研究する方法を習得できます。

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

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