Name: 出芽酵母の複製寿命の測定 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-06-25T00:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 41 s
Description: 学ぶ出芽酵母の母細胞の複製寿命測定法。顕微鏡操作と細胞追跡を用いて老化遺伝子を探索し、単細胞真核生物の老化メカニズム解明に貢献する研究手法です。

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この作品は、エリソン医学財団からMKとBKKへの助成金によって支えられている。 MKは、高齢化のエリソン医学財団新奨学生です。私たちは、撮影時の支援をSoumya Kotireddyに感謝します。

パート1：複製の寿命解析のための準備菌株とプレートこのセクションでは、複製寿命の実験と寿命解析のための酵母細胞の調製のための固体YEPDプレートの準備について説明します。 <ol><li>適切な無菌操作を使用して、培養の酵母細胞および複製寿命解析のために使用されるYEPD寒天プレート（1％酵母エキス、2％バクト - ペプトン、2％寒天、2％グルコース）を準備。あなたは、寿命の実験で分析するすべての4から5株のために少なくとも2枚を準備する必要があります。プレートは、少​​なくとも2日間の寿命の実験の前に準備し、寿命のアッセイを開始する前に乾燥させる必要があります。実験はプレートを注ぐの4-5日以内に開始されない場合は、冷蔵インキュベーター内に配置し、dessicationを防ぐためパラフィルムやプラスチックでラップする必要があります。 </li><li> YEPD寒天プレート上に単一のコロニーのために凍結ストックとストリークから酵母株を取り外します。最大6系統まで簡単に同じ大きさの扇形のウェッジに板を分割することによって同じYEPDプレートにストリークすることができます。 </li><li> 2日間、30℃で細胞をインキュベートする。 </li><li>新鮮なYEPDプレート上にインキュベーターと単一コロニーからのパッチの細胞から細胞を取り除きます。二つの異なるコロニーからの2つのパッチが各菌株に生成される必要があります。この時点では、分析対象の菌株は、解析部は、個々の菌株の身元がわからないどこに複製寿命の実験は、&quot;ブラインド&quot;が実行されるようにコーディングする必要があります。 </li><li>次の夜まで30でパッチが適用され、コード化された細胞℃でインキュベートする。 </li><li>複製寿命の解析に使用される実験的な板となる新鮮なYEPDプレートに各符号化された株からの細胞と軽くパッチの細胞を、取り外します。細胞は、YEPDプレート（図1）の左側の縦線に沿ってパッチを適用する必要があります。プレート当たり約3〜5のパッチはそれぞれのパッチから20セルの複製寿命の解析を想定し、最適です。これは彼らのその後の複製寿命を制限する可能性が、細胞は一晩のインキュベーションの間に厚く成長させる原因となります、新鮮なYEPDプレートに多数のセルを転送する（どちらが望ましい）必要はありません。 </li><li>ベンチの上に一晩たてのパッチを適用したプレートをインキュベートする。 </li></ol>パート2：複製の寿命解析のための位置のセル。 このセクションでは、酵母のプレート上の細胞とどのように複製の寿命解析のための処女の娘細胞を取得するために配置する方法について説明します。この時点から、すべてのプレートがdessicationを防ぐために、解剖を受ける場合を除き、parafilmedされるべきである。 <ol><li>酵母に適したマイクロダイセクション装​​置を装備した顕微鏡を使用して、パッチを適用したセルに遠位プレート上に位置する最初のパッチを適用した菌株から約50細胞を移す。あなたの顕微鏡ステージが傾斜している場合、これらの階調は、細胞は、その後の反復中に見つけることは容易であることを保証するために使用することができます。ツァイスのAxioscope 40、最初のパッチを適用した菌株からの細胞は、座標90 × 10で配置することができるとそこから垂直に配列した。 </li><li>繰り返し寒天表面に触れることにより、細胞の針をきれいにし、寒天表面から針を強制することで、寒天に穴を作成します。この穴は、解剖し、娘細胞の除去のその後の反復中にプレート上に向けますあなたにマーカーとして機能します。穴の中に酵母細胞を得るために、または彼らが成長するとコロニーを形成しないように注意してください。 </li><li>直接穴の上に、垂直方向に各セルの位置（図1）の間に1〜3針の直径（〜100μM）で、20の等間隔の位置に個々の酵母細胞を合わせます。すべてのいくつかの細胞は、1つではなく複数行の同じ位置で互いに隣接する2つのセルを置きます。導入細胞のいずれかの分割に失敗した場合、これは、処女の娘のセルの選択時に冗長性が可能になります。 </li><li> 第 10 回と行の11 番目の位置の間に、寒天で7〜8穴の水平方向の系列を作成。これは解剖と娘細胞の除去の以降の反復中に、プレート上に向けますあなたにマーカーとして機能します。穴の酵母細胞を得るために、または彼らが成長するとコロニーを形成しないように注意してください。 </li><li>同じ軸に沿って垂直に配列のセルに続けて、プレート上の各パッチの手順2.1から2.4を繰り返します。ステップ2.2の場合は、作成された穴の数は、パッチ番号（最初のパッチ用の穴、第二の2つの穴、等）に対応している必要があります。 </li><li>一度細胞をパラフィルムは、30のプレートとインキュベートは℃で約2時間、各パッチに配列されています。 </li><li>実験における各プレートの手順2.1から2.6を繰り返します。 </li></ol>パート3：寿命解析のための取得処女の娘細胞このセクションでは、各セルは、処女の娘として始まるようにすることで、寿命の解析を開始するセル。 <ol><li>インキュベータからプレートを取り外し、アレイの細胞のほとんどは細胞分裂を受けていることを確認してください。追加の時間は細胞分裂が完了できるようにするために必要な場合は、インキュベーターにプレートを返します。 </li><li>第一アレイのセルから始めて、穏やかに接続されたセルの上に針を置くことによって母細胞から娘細胞を切り離すために針を使用してください。それは、針が細胞に休んでいる間に、顕微鏡ベースの側をタップすると便利な場合があります。 </li><li>母細胞と任意の追加の娘細胞を交換すると一時的に脇に移動させる垂直線で分離された娘細胞を、置きます。 </li><li>アレイのセルの各々3.2と3.3を繰り返します。細胞の分裂に失敗した場合は、ステップ2.3に位置付け冗長な細胞の一つから娘細胞を取る。終了すると、寿命のプレートに垂直配向各パッチのための20の娘細胞が必要です。 </li><li>山に母細胞と余分な娘細胞のすべてを収集し、パッチ付近（&quot;墓場&quot;）に戻ってそれらを転送する。遠くmicrocoloniesと地元の栄養素の枯渇の形成を防止するために寿命の解析を起こしている細胞から不要な細胞を維持することが重要です。 </li><li>パラフィルムで約2時間、30℃でプレートをインキュベート。 </li><li>実験における各プレートの手順3.2から3.6を繰り返します。 </li></ol>パート4：個々の細胞の複製能力を測定する<ol><li>寿命のデータシートを準備します。寿命のデータシートは、各行が個々の母細胞に対応し、各列は、年齢の点（図2）に対応するシンプルなグリッドにすることができます。分析する菌株の数に応じて各データシートにラベルを付けます。 </li><li>インキュベータからプレートを取り外し、アレイ細胞のほとんどは、少なくとも1つの細胞分裂を受けていることを確認してください。追加の時間は細胞分裂が完了できるようにするために必要な場合は、インキュベーターにプレートを返します。 </li><li>最初のプレートの最初のアレイのセルから始めて、視覚的に母と娘細胞（s）を観察し、発生したセルの分割数を決定します。母は、セルの配置の特徴的なパターンに基づいて、生産しているか、多くの娘細胞を判別することは簡単です。寿命のスコアシート上の適切なボックスに、母細胞により産生される娘細胞の数を記録。 </li><li>ステップ3.2で説明したように母細胞から娘細胞を切り離すために針を使用してください。 </li><li>垂直線内での位置の母細胞を保持し、脇に一時的に娘細胞（複数可）を移動する。 </li><li>アレイの各セルのためのステップ4.3から4.5を繰り返します。 </li><li>破棄された娘細胞のすべてを収集し、オリジナルのパッチの近くにある&quot;墓地&quot;、に移動します。 </li><li>パラフィルム30でプレートとインキュベートします2〜3時間のためのC。 </li><li>実験における各プレートの手順4.3から4.8を繰り返します。 </li><li>すべての母細胞が分裂を停止するまで繰り返し、4.2から4.9を繰り返します。母細胞の年齢として、細胞周期の進行が遅くなり、それは年齢の点の間の時間の長い期間のためのプレートをインキュベートすることが望ましいでしょう。プレートを4℃で一晩置くことができます。 </li></ol>パート5：代表的な結果。 複製寿命の実験によって生成される生データは、各年齢ポイント（図2）でそれぞれ母細胞により産生される娘細胞に対応するリストの番号です。スコアシートの各列を合計することによって、各母細胞のための複製の寿命が得られる。同じ実験群から母細胞のためのデータは、生存曲線（図3A）を生成すると、平均寿命、平均寿命のスパン、および標準偏差などの統計計算を実行するためにプールすることができます。このようなWilcoxonの順位和検定などのノンパラメトリック検定は、、寿命に大きな違いは、実験群の間で検出されたかどうかを決定するために実行することができます。実験が正しく動作するときに、生存曲線は、生存に比較的急速に減少し、曲線のフラット化から後で年齢を続けて低い早期死亡率とシグモイドSHAPを示すゴンペルツ-メイカム速度とほぼ一致している必要があります。この範囲の変化の外側が報告されているが、ほとんどの野生型株は、20〜30世代の範囲内の複製寿命の値を持ちます。 <img src="/files/ftp_upload/1209/1209fig1.jpg" alt="図1" /> <img src="/files/ftp_upload/1209/fig1.2.jpg" alt="図1.5" /> 図1。典型的な複製の寿命のプレートの図 。酵母細胞のマイクロダイセクションを開始する前に、夕方は、3〜5株が軽くプレートの片側に沿って垂直線のYEPDプレート（赤箱）の表面にパッチが適用されます。一晩成長に続いて、各菌株から約30個々の細胞を20の位置を含む行に垂直に配列される。ライフスパンanalysisはこれらの初期の細胞から得られたVバージンの娘細胞に実行されます。実験（例えば、不要な娘細胞）中にマイクロダイセクションから得られた余分な細胞は、コロニーが形成される栄養素のローカル枯渇を避けるために、遠く離れた実験的な細胞から離れている&quot;墓場&quot;（灰色の楕円形）に配置されます。 <img src="/files/ftp_upload/1209/1209fig3.jpg" alt="図2" /> 図2。複製寿命タリーシート。複製寿命の実験からの生データが表示されます。各行は、単一の酵母の母細胞に対応し、各列は、年齢の点に対応しています。各ボックスに入力した番号は、その年齢時点でその母細胞により産生される娘細胞の数です。各菌株は、酵母細胞を解剖し、個々に分析される株の同一性の知識がないようにコード化された番号が付いています。二十細胞はそれぞれの菌株を検定されています。 <img src="/files/ftp_upload/1209/1209fig2.jpg" alt="図3" /> 図3。複製寿命の実験から代表的な生存と成長曲線。（A）の生存曲線は、（B）の成長曲線をプロットすることによって得られる（細胞分裂の数。複製年齢の関数としてまだ生きている母細胞の割合をプロットして得られる年齢の点の関数として与えられたひずみによって生じる娘細胞の平均数はこの例では、歪＃2が長い長寿命ですが、遅いなどの成長プロットの減少初期勾配から明らかなように、成長を続けている。

<ol><li>Kaeberlein, M., Burtner, C. R., Kennedy, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+developments+in+yeast+aging%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Genet%22%5BJournal%5D)">Recent developments in yeast aging.</a> PLoS Genet. 3, (2007).</li>
<li>Kaeberlein, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKaeberlein%2C+M+%22Handbook+of+models+for+human+aging%22">Handbook of models for human aging</a>. Conn, P. M. , Elsevier Press. Boston. 109-120 (2006).</li>
<li>Smith, E. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+evidence+for+conserved+longevity+pathways+between+divergent+eukaryotic+species%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Res%22%5BJournal%5D)">Quantitative evidence for conserved longevity pathways between divergent eukaryotic species.</a> Genome Res. 18, 564-570 (2008).</li>
<li>Steinkraus, K. A., Kaeberlein, M., Kennedy, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Replicative+aging+in+yeast%3A+the+means+to+the+end%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Cell+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Replicative aging in yeast: the means to the end.</a> Annu Rev Cell Dev Biol. 24, 29-54 (2008).</li>
<li>Murakami, C. J., Burtner, C. R., Kennedy, B. K., Kaeberlein, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+high-throughput+quantitative+analysis+of+yeast+chronological+life+span%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gerontol+A+Biol+Sci+Med+Sci%22%5BJournal%5D)">A method for high-throughput quantitative analysis of yeast chronological life span.</a> J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 63, 113-121 (2008).</li>
<li>Jiang, J. C., Jaruga, E., Repnevskaya, M. V., Jazwinski, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+intervention+resembling+caloric+restriction+prolongs+life+span+and+retards+aging+in+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Faseb+J%22%5BJournal%5D)">An intervention resembling caloric restriction prolongs life span and retards aging in yeast.</a> Faseb J. 14, 2135-2137 (2000).</li>
<li>Kaeberlein, M., Kirkland, K. T., Fields, S., Kennedy, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sir2-independent+life+span+extension+by+calorie+restriction+in+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">Sir2-independent life span extension by calorie restriction in yeast.</a> PLoS Biol. 2, E296-E296 (2004).</li>
<li>Lin, S. J., Defossez, P. A., Guarente, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Requirement+of+NAD+and+SIR2+for+life-span+extension+by+calorie+restriction+in+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Requirement of NAD and SIR2 for life-span extension by calorie restriction in Saccharomyces cerevisiae.</a> Science. 289, 2126-2128 (2000).</li>
<li>Kaeberlein, M., Kennedy, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Large-scale+identification+in+yeast+of+conserved+ageing+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Mech+Ageing+Dev%22%5BJournal%5D)">Large-scale identification in yeast of conserved ageing genes.</a> Mech Ageing Dev. 126, 17-21 (2005).</li>
<li>Kaeberlein, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+yeast+replicative+life+span+by+TOR+and+Sch9+in+response+to+nutrients%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Regulation of yeast replicative life span by TOR and Sch9 in response to nutrients.</a> Science. 310, 1193-1196 (2005).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>寒天</td><td>試薬</td><td>Fisher Scientific</td><td>DF0145-17-0 (214530)</td><td></td></tr><tr><td>バクトペプトン</td><td>試薬</td><td>Fisher Scientific</td><td>DF0118-17-0 (211677)</td><td></td></tr><tr><td>酵母エキス</td><td>試薬</td><td>Fisher Scientific</td><td>DF0886-17-0 (288620)</td><td></td></tr><tr><td>グルコース</td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

出芽酵母の複製寿命の測定

Measuring Replicative Life Span in the Budding Yeast

老化は細胞成分と死亡率をもたらす細胞内小器官の進行性の悪化によって特徴付け変性過程です。出芽酵母<em&gt;サッカロマイセスセレビシエ</em&gt;老化の生物学を研究するために広く使用されており、酵母の寿命のいくつかの決定は、ワーム、ハエ、マウスなどを含む多細胞真核生物で保存されることが示されている<sup&gt; 1</sup&gt;。容易に定量加齢に伴う表現型の欠如のために、酵母の老化は、一般的な用法の異なる2つの寿命のパラダイムで、さまざまなコンテキストで細胞の寿命を測定することによって、ほぼ独占的に検定されています<sup&gt; 2</sup&gt;。時系列寿命は、母細胞は非分裂、静止のような状態で生存できる時間の長さを指し、そして多細胞真核生物で有糸分裂後の細胞の老化のモデルとして機能するように提案されている。複製寿命は、対照的に、老化への事前の母細胞により産生される娘細胞の数を意味し、有糸分裂活性細胞の老化のモデルを提供すると考えられている。ここでは、出芽酵母の母細胞の複製寿命を測定するための一般的なプロトコルを提示する。複製寿命アッセイの目的は、何回、各母細胞の芽を決定することです。母と娘細胞は容易にそのようなツァイスのAxioscope 40または他の同等のモデルとして標準的な光学顕微鏡を（総合倍率160X）、使用経験のある研究者によって区別す​​ることができます。母細胞から娘細胞の物理的な分離は、光ファイバの針を装備した手動マイクロマニピュレーターを用いて実現されます。典型的な実験室酵母株は、母20〜30の娘細胞を生成し、一つの命のスパン実験では2-3週間必要です。

この記事では、酵母の母細胞の複製寿命を測定するための一般的なプロトコルを提示する。

加齢は、細胞成分および細胞小器官の漸次的な劣化を特徴とする退行性プロセスであり、最終的に死に至る。出芽酵母の...

出芽酵母のCroce Visiは、老化の生物学を研究するために広く利用されてきました。本記事では、酵母母細胞の複製寿命を測定するための一般的なプロトコルを紹介します。こんにちは。私はワシントン大学生化学科のBrian Kennedy研究室のKristen Steffenです。本日は、酵母母細胞の複製寿命を測定する手順をご紹介します。当研究室では、酵母細胞の寿命に影響を与える遺伝子を研究するためにこの手順を用いています。それでは、始めていきましょう。複製寿命実験および寿命解析用の酵母細胞の調製には、YEPD固体培地プレートを準備する必要があります。適切な無菌操作を用いて、これらのYEPDアガープレートを調製してください。寿命実験で解析する4〜5株につき、少なくとも2枚のプレートを準備してください。これらのプレートは、寿命実験の少なくとも2日前に準備し、寿命アッセイを開始する前に乾燥させておく必要があります。プレートを注いでから4〜5日以内に実験を行わない場合は、乾燥を防ぐため、パラフィルムまたはプラスチックで包み、冷蔵インキュベーターに入れて保存してください。凍結保存ストックから酵母菌株を取り出し、単一コロニーが得られるようにストリークします。YEPD寒天プレートに塗布します。プレートを等しい大きさのパイ状に分割することで、最大6株まで同一のYEPDプレートにストリークすることができます。細胞を30 °Cで2日間培養します。インキュベーション後、細胞をインキュベーターから取り出し、単一のコロニーから新しいYEPDプレートに細胞をパッチします。この際、複製寿命試験をブラインドで行うため、解析対象の菌株をコーティングしておく必要があります。これにより、分取者が個々の菌株の正体を把握できないようにします。次に、パッチ塗布したコート細胞を30 °Cで翌日の夕方までインキュベートします。細胞を取り出し、各コート株の細胞を新しいYEPDプレートに軽くパッチ塗布します。これらが、複製寿命の測定に使用する実験用プレートとなります。解析用細胞は、YEPDプレートの左側に沿って垂直線上にパッチして配置します。1枚の新しいYEPDプレートに過剰な細胞を転写しないでください。細胞数が多すぎると、一晩の培養中に細胞が過剰に増殖し、複製寿命に影響を与えるため、1プレートあたり約3〜5パッチとするのが最適です。各パッチから20個の細胞を用いて複製寿命解析を行うこととし、これで寿命実験の準備がすべて整いました。あとはベンチトップで一晩インキュベートするだけです。そして明日、酵母細胞をプレート上に配置し、複製寿命解析のための処女娘細胞を回収するためのマイクロダイセクションを開始します。酵母に適したマイクロディセクション装置を備えた顕微鏡を使用します。最初のパッチ株から約50個の細胞を、プレート上のパッチした細胞から離れた位置に転移させます。顕微鏡ステージに目盛がある場合は、その目盛りを利用することで、その後の反復操作時に細胞を容易に見つけることができます。細胞が針に付着してしまうことがあり、不適切なタイミングで脱落すると問題となる場合があります。針が清潔で細胞が付着していないことを確認するため、寒天表面に繰り返し接触させてください。その後、針を寒天表面に押し込み、寒天に穴を開けます。この穴は、その後の解剖およびドッターによる細胞除去の繰り返し操作において、プレート上の位置を特定するためのマーカーとして機能します。穴の中に酵母細胞が入らないように注意してください。入ってしまうと、穴の直上で細胞が増殖し、コロニーを形成してしまいます。個々の酵母細胞を垂直に整列させ、細胞位置間に針の直径1〜3本分相当の間隔を空けて、20箇所の等間隔な位置に配置します。数個の細胞ごとに、列の同じ位置に1個ではなく2個の細胞を隣り合わせに配置します。これにより、処女娘細胞の選別時に冗長性を確保できます。移殖した細胞のいずれかが列の10番目から11番目の位置の間で分裂しなかった場合は、アガーに7〜8個の穴を水平に並べて作成します。これは、その後の解剖および娘細胞の除去において、プレート上の位置を確認するためのマーカーとして機能します。ここでも、酵母細胞が穴に入らないように注意してください。細胞が入ると増殖してコロニーを形成してしまいます。プレート上の各パッチに対してこの手順を繰り返し、同じ軸に沿って細胞を垂直に配列させていきます。AERに穴を開ける際は、パッチ番号に合わせて穴の数を設定することが重要です。具体的には、最初のパッチには1つの穴を、2番目のパッチには2つの穴を開けます。各パッチに細胞を配列させた後、プレートにパラフィルムを貼り、30 °Cで約2時間インキュベートします。ここから先は、解剖操作を行う場合を除き、すべてのプレートにパラフィルムを貼付しておくようにしてください。乾燥を防ぐため、各プレートについてこの手順を繰り返します。実験において、寿命解析を行う際は、各細胞が必ず処女娘細胞として開始するようにすることが重要です。まず、プレートをインキュベーターから取り出し、アレイ細胞の大部分が細胞分裂を起こしていることを確認します。ここでは、以前に整列させた細胞がありますが、インキュベーター内で2時間経過した後、細胞が分裂し始めていることがわかります。ここで、大きな方の母細胞と、それに付着している処女娘細胞が確認できます。この処女娘細胞を、寿命測定の開始細胞として使用します。細胞分裂を完了させるためにさらに時間が必要な場合は、プレートをインキュベーターに戻してください。最初のアレイ細胞から開始します。針を付着した細胞の上にそっと置き、娘細胞を母細胞から分離させます。ニードルを細胞の上に置いた状態で、顕微鏡ベースの側面を軽く叩くと効果的な場合があります。次に、切り離した娘細胞を、母細胞および追加の娘細胞があった垂直方向の細胞列に配置し、それらは一時的に脇へ移動させます。これらの手順を、アレイ内の各細胞について繰り返します。細胞分裂が起こらなかった場合は、テスト細胞の隣にある予備細胞から娘細胞を1つ採取してください。完了後、寿命測定プレート上の各パッチに対して、垂直に並んだ20個の娘細胞が確保されているはずです。すべての母細胞と余分な娘細胞をまとめて、パッチ付近にある「墓場（graveyard）」と呼ばれる領域に移動させてください。マイクロコロニーの形成や局所的な栄養分枯渇を防ぐため、寿命解析を行う細胞から不要な細胞を遠ざけておくことが重要です。細胞を分離させた後、プレートを30 °Cで約2時間インキュベートします。実験に使用する各プレートについて、これらの手順を繰り返します。個々の細胞の複製能を測定するために、寿命データシートを準備する必要があります。寿命データシートは、各行が個々の母細胞に対応し、各列が年齢（世代）に対応する単純なグリッド形式で作成できます。解析する株数に応じて、各データシートに適切にラベルを付けてください。まず、プレートをインキュベーターから取り出し、アレイ細胞の大部分が少なくとも1回の細胞分裂を経ていることを確認します。細胞分裂が完了するまでさらに時間が必要な場合は、プレートをインキュベーターに戻してください。最初のプレートの最初のアレイ細胞から順に、親細胞と娘細胞を視覚的に観察し、細胞分裂が何回行われたかを確認します。一般的に、細胞配置の特徴的なパターンに基づいて、親細胞がいくつの娘細胞を産生したかを判断することは容易です。この例では、そこに2つの細胞があり、それらが同じ大きさで、かつどちらも親細胞より小さいため、産生された細胞数を非常に簡単に確認できます。親細胞によって産生された娘細胞の数を、寿命スコアシートの適切な欄に記録してください。次に、前述の方法に従い、ニードルを用いて娘細胞を母細胞から切り離します。ニードルを付着した細胞の上にそっと置き、ニードルを細胞に当てたまま顕微鏡のベース側面を軽く叩きます。母細胞は垂直線上の位置に保持し、娘細胞を一時的に脇へ移動させます。これらの手順をアレイ内の各細胞に対して繰り返します。最後に、除去したすべての娘細胞を回収し、元のパッチ付近に設けた墓場（グラビアード）へと移動させます。プレートをパラフィルムで密封し、30 °Cで2〜3時間インキュベートします。娘細胞の除去とインキュベートを繰り返します。実験における各プレートの手順です。すべての母細胞が分裂を停止するまで、この全工程を繰り返します。母細胞が老化するにつれて細胞周期の進行が遅くなるため、以降の齢（age point）の間隔では、プレートをより長い時間インキュベートすることが望ましくなります。また、プレートを4 °Cで一晩保存することも可能です。複製寿命実験によって得られる生データは、各年齢時点で各母細胞によって産生された娘細胞数に対応する数値のリストです。ここに示す通りです。スコアシートの各行を合計することで、各母細胞の複製寿命が得られます。同一実験群の他の細胞からのデータを統合して、生存曲線を生成し、統計計算を行うことができます。曲線は概ねゴンペルツ・メイクハム（Gompertz-Makeham）動力学と一致し、初期の死亡率は低く、その後生存率が比較的急速に低下し、高齢になると曲線が平坦化するというシグモイド形状を示すはずです。以上で、酵母の複製寿命実験の実施方法について説明しました。この手順を行う際は、細胞が低温下にない限り分裂し続けることを覚えておくことが重要です。そのため、翌朝に計数すべき娘細胞が過剰にならないよう、プレートを4°Cで一晩保存してください。以上で完了です。ご視聴ありがとうございました。皆様の実験の成功をお祈りいたします。

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