Name: シングル酵母細胞中のMAPK誘導発現の時間的な定量 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-04T23:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 59 s
Description: 学ぶ 酵母単細胞におけるMAPK経路活性化に伴う遺伝子発現の時間的定量法。ライブ細胞顕微鏡とフローサイトメトリーを組み合わせることで、個々の細胞の応答と集団レベルの動態を詳細に解析できます。

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著者らは、これらの方法が開発されており、チューリッヒ連邦工科大学の生化学研究所のマティアスピーターと彼のグループに感謝します。この作品は、スイス国立科学財団によってサポートされています。

1。顕微鏡測定<ol><li>酵母で合成培地5mlに植菌。 </li><li> 30℃で一晩細胞を成長させる。 </li><li>翌朝一晩培養物のOD 600を測定します。 </li><li> 600 0.05にOD 5ミリリットル合成培地中で一晩培養を希釈します。 </li><li>少なくとも4時間、30℃で希釈した培養を育てる。 </li><li>合成培地に集中して3倍（0.6 M）のNaCl溶液を調製する。 </li><li> PBSにコンカナバリンA（ConAを）の1 mg / mLの溶液を調製する。 </li><li>ろ液〜ウェルスライドにConAを溶液200μl。 </li><li> 30分間放置してみましょう。 </li><li>のConA溶液を除去。 </li><li>ウェルに150μlのH 2 Oを追加します。 </li><li> H 2 Oを削除</li><li>細胞培養のOD 600を測定します。 </li><li> 1.5ミリリットルマイクロチューブに= 0.02 OD 600で細胞培養液300μlを準備します。 </li><li> 45秒間、水浴中で細胞を超音波処理する。 </li><li>渦簡単にマイルcrotube。 </li><li> 45秒間、水浴中で細胞を超音波処理する。 </li><li>簡単に渦マイクロチューブ。 </li><li>ウェルに、細胞培養液200μlを加える。 </li><li>細胞がウェルの底に沈殿させるために30分待ちます。 </li><li>顕微鏡上でうまくスライドを配置します。 </li><li>記録される蛍光チャンネル用照明設定を選択します。 </li><li> （：細胞の適切なセグメンテーションを可能にするために、焦点面下の3程度やや焦点のうち、1）2明視野画像の照明設定を選択します。 </li><li>タイムラプス測定のための時間間隔を選択します。 </li><li>画像への視野を選択します。 </li><li>数フレームの取得を開始します。 </li><li> 0.6MのNaClを培地100μlを追加し、取得を一時停止します。 </li><li>画像を再開する。 </li></ol> 2。フローサイトメトリー測定<ol><li>酵母で合成培地5mlに植菌。 </li><li>一晩30℃で成長する。 </li><li>対策OD一晩培養の600翌朝。 </li><li> OD 600 0.1に5ミリリットル合成培地中で一晩培養を希釈します。 </li><li> 0.2〜0.4のOD 600に到達するために、少なくとも4時間、30℃で成長する。 </li><li> H 2 Oにシクロヘキシミド溶液1 mg / mlのを準備します</li><li>合成培地に集中して3倍（0.6 M）のNaCl溶液を調製する。 </li><li>測定対象の各時点での0.6 MのNaCl培地100μlで1 1.5ミリリットルマイクロチューブを準備します。 </li><li>時間0で、各マイクロチューブに細胞培養液200μlを加える。 </li><li> 30℃で振とうしながらインキュベート</li><li>時刻tでの、マイクロチューブに30μlのシクロヘキシミドを追加します。 </li><li>すべての希望する時点について、手順2.11。 </li><li>少なくとも45分間、すべてのマイクロチューブをインキュベートし、振とうしながら30℃まで3時間。 </li><li> 400μlのPBSでFACSチューブを準備します。 </li><li> 1分間水浴中で細胞を超音波処理する。 </li><li>簡単に渦マイクロチューブ。 </li><li>息子1分間水浴中で細胞をicate。 </li><li>簡単に渦マイクロチューブ。 </li><li>各マイクロチューブからそれに対応する、FACSチューブに100μlの細胞培養を追加します。 </li><li>検出のために488nmの励起レーザーと30分の530 nmのバンドパスフィルタを選択します。 </li><li>テスト非発現し、完全に彼らは検出器の感度の範囲に入るかどうかを確認するためにサンプルを表現する。 </li><li>取得した各サンプルについて、10,000個の細胞を測定します。 </li></ol>

<ol><li>Gasch, A. P., Spellman, P. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genomic+expression+programs+in+the+response+of+yeast+cells+to+environmental+changes%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+biology+of+the+cell%22%5BJournal%5D)">Genomic expression programs in the response of yeast cells to environmental changes.</a> Molecular biology of the cell. 11 (12), 4241-4257 (2000).</li>
<li>de Nadal, E., Zapater, M., Alepuz, P. M., Sumoy, L., Mas, G., Posas, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+MAPK+Hog1+recruits+Rpd3+histone+deacetylase+to+activate+osmoresponsive+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">The MAPK Hog1 recruits Rpd3 histone deacetylase to activate osmoresponsive genes.</a> Nature. 427 (6972), 370-374 (2004).</li>
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<li>Wu, J. -Q., Pollard, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Counting+cytokinesis+proteins+globally+and+locally+in+fission+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Counting cytokinesis proteins globally and locally in fission yeast.</a> Science. 310 (5746), 310-314 (2005).</li>
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<li>Pelet, S., Rudolf, F., Nadal-Ribelles, M., de Nadal, E., Posas, F., Peter, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transient+activation+of+the+HOG+MAPK+pathway+regulates+bimodal+gene+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Transient activation of the HOG MAPK pathway regulates bimodal gene expression.</a> Science. 332 (6030), 732-735 (2011).</li>
<li>de Nadal, E., Casadome, L., Posas, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+the+MEF2-like+transcription+factor+Smp1+by+the+stress-activated+Hog1+mitogen-activated+protein+kinase%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Biology%22%5BJournal%5D)">Targeting the MEF2-like transcription factor Smp1 by the stress-activated Hog1 mitogen-activated protein kinase.</a> Molecular and Cellular Biology. 23 (1), 229-237 (2003).</li>
<li>Elowitz, M. B., Levine, A. J., Siggia, E. D., Swain, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stochastic+gene+expression+in+a+single+cell%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Stochastic gene expression in a single cell.</a> Science. 297 (5584), 1183-1186 (2002).</li>
<li>Pelet, S., Dechant, R., Lee, S. S., van Drogen, F., Peter, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+integrated+image+analysis+platform+to+quantify+signal+transduction+in+single+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Integrative+biology+%3A+quantitative+biosciences+from+nano+to+macro%22%5BJournal%5D)">An integrated image analysis platform to quantify signal transduction in single cells.</a> Integrative biology : quantitative biosciences from nano to macro. 4 (10), 1274-1282 (2012).</li>
<li>Carpenter, A. E., Jones, T. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CellProfiler%3A+image+analysis+software+for+identifying+and+quantifying+cell+phenotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+biology%22%5BJournal%5D)">CellProfiler: image analysis software for identifying and quantifying cell phenotypes.</a> Genome biology. 7 (10), R100(2006).</li>
<li>Chernomoretz, A., Bush, A., Yu, R., Gordon, A., Colman-Lerner, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+Cell-ID+1.4+with+R+for+microscope-based+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Current+protocols+in+molecular+biology%22%5BJournal%5D)">Using Cell-ID 1.4 with R for microscope-based cytometry.</a> Current protocols in molecular biology. Chapter 14, Unit 14.18(2008).</li>
<li>Dimopoulos, S., Mayer, C., Rudolf, F., Stelling, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automatic+Single+Cell+Segmentation+in+a+Variety+of+Microscopy+Images%5BTitle%5D)+AND+%22Current+protocols+in+molecular+biology%22%5BJournal%5D)">Automatic Single Cell Segmentation in a Variety of Microscopy Images.</a> Current protocols in molecular biology. , (2012).</li>
<li>Miyawaki, A., Nagai, T., Mizuno, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+protein+fluorophore+formation+and+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Chemical+Biology%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of protein fluorophore formation and engineering.</a> Current Opinion in Chemical Biology. 7 (5), 557-562 (2003).</li>
<li>Hersen, P., McClean, M. N., Mahadevan, L., Ramanathan, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Signal+processing+by+the+HOG+MAP+kinase+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Signal processing by the HOG MAP kinase pathway.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (20), 7165-7170 (2008).</li>
<li>Pepperkok, R., Ellenberg, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+fluorescence+microscopy+for+systems+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+reviews+Molecular+cell+biology%22%5BJournal%5D)">High-throughput fluorescence microscopy for systems biology.</a> Nature reviews Molecular cell biology. 7 (9), 690-696 (2006).</li>
</ol>

著者は、彼らが競合する経済的利益を持っていないことを宣言します。

顕微鏡検査 ConAを持つウェルの治療は、細胞の適切な画像化を確保するための重要なステップです。のConAをPBS（5 mg / ml）を、低溶解性を有するため、濾過工程は、フィルタリングされていない溶液中に存在し、撮像を妨害する大きな凝集物を除去することができる。細胞が処理された表面に比較的強く付着し、誘導溶液の添加は、刺激の前と後の継続的な追跡を可能にし、細胞の局在を乱すべきではありません。細胞は一定流量7,15に供されたこの処置はまた、チャネルまたは微小流体デバイスを流すために適用することができる。ウェルを適切に処理した後に水でリンスされていない場合、細胞は、溶液中のConAを細胞に直接結合し、ガラス表面に強い結合を形成することを妨げるためと考え、ガラスに適切に付着しない。洗浄工程の後、ウェルを3ドライ残ることができる -著しくガラスへの細胞の結合に影響を与えることなく、細胞の添加の前に4時間。 蛍光チャネルのための露光時間の選択は、実験の成功のための重要な設定である。細胞の蛍光が経時にわたって増加するの...

伝達カスケードを介したシグナル伝達は、多くの場合、タンパク質の発現で絶頂に達する。この発現プロファイルの特徴付けは、生物学的経路の機能を理解する上で重要な要素です。アップレギュレートされたタンパク質およびその活性化の動態のスペクトルの同定は、例えば、マイクロアレイ、ノーザンブロットまたはウェスタンブロット1-3のような様々な技術によって達成することができる。しかしながら、これらの技術は、細胞の集団全体の応答を平均化する。タンパク質の発現の微調節を理解するためには、単一細胞レベルでの測定値を収集することが望ましい。理想的には、これらの測定は、根本的な経路の数学モデルを開発するために適し定量的データを提供すべきである。 顕微鏡およびフローサイトメトリー、理想的な定量的な単一細胞の測定値を提供するのに適している二つの技術、である。蛍光タンパク質とタンパク質の内因性のタグ付けはできるBeは、それらの発現レベル4を定量するために使用。タンパク質の末端における大きな蛍光部分の付加は、それを非機能的にすることができるので、それは、蛍光構築物の発現を駆動するプロモーターに基づいて、特定の発現レポーターを生成するために、多くの場合望ましい。このレポータータンパク質は、セルラーシステムに対して外因性であるため、セルに行われているシグナル伝達事象に影響を与えることはない。 顕微鏡法およびフローサイトメトリーの両方が広く酵母シグナリング分野で使用されてきた。例として、コールマン·ラーナーらは相関単一細胞では、酵母接合シグナル伝達カスケード5のノイズを定量化するために顕微鏡によって具体的かつ構成的に発現記者を交配の発現、Acarのと制御ネットワークを研究するフローサイトメトリーを使用し、同僚GAL遺伝子6の発現を制御する。以前の研究7において、我々はcombinatiを使用している出芽酵母では高浸透圧グリセロール（HOG）経路からの発現の出力を研究するため、これら2つの技術の上。このマイトジェン活性化プロテインキナーゼ（MAPK）経路は、超浸透圧ストレスによって誘発される。それは、およそ300の遺伝子の発現を生じる転写プログラムを誘導するために、細胞の核に移行しHOG1 MAPKの活性化をもたらす。このプロセスを研究するために、我々は、四重ビーナス蛍光タンパク質（STL1のp-QV）の発現を駆動STL1プロモーター（HOG1活性8に応答して特異的に誘導される遺伝子）に基づく発現レポーターを設計した。測定はフローサイトメトリー、蛍光レポーターを表現する人口のほんの一部に中間ストレスレベル（0.1MのNaCl）で細胞の2集団が存在することを発見した。今後も、この動作を調査するために顕微鏡を使用し、タンパク質発現におけるこのノイズは本質的な要因9に支配されたことを発見した。我カップLDさらにHOG1活動の同様のレベルを有する細胞が著しく異なる発現の結果を表示できることを確認します。これら2つの技術の組み合わせは、私たちはストレス応答遺伝子の遅いリモデリングは、単一細胞レベル7での発現の結果に影響を与えたかを証明することができました。 本論文では、顕微鏡によるタンパク質発現の定量化の一例として、超浸透圧ショックにより誘導されたP STL1-QVレポーターの式を使用し、フローサイトメトリー。 0.2 MのNaClストレスを受ける同じ株を、両方の技術を用いて研究した。これは、私たちは、これらの2つの高度に補完的な技術のいくつかの重要な違いを強調することができます。

<table><tr><tbody><td colspan="4">Reagent</td></tr><tr><td>酵母 窒素ベース</td><td>ForMedium</td><td>CYN6202</td><td></td></tr><tr><td>CSM アミノ酸ミックス</td><td>ForMedium</td><td>DCS0011</td><td></td></tr><tr><td>Concanavalin A</td><td>GE Healthcare</td><td>17-0450-01</td><td></td></tr><tr><td>シクロヘキシミド</td><td>フルカ アルドリッチ Σ</td><td>C7698</td><td>有毒</td></tr><tr><td>ySP9</td><td></td><td></td><td>W303Mataleu2::LEU2-pSTL1-quadrupleV enus</td></tr><tr><td>pSP34</td><td></td><td></td><td>pRS305 pSTL1 (-800 -0) - quadruple V enus</td></tr><tr><td colspan="4">Material</td></tr><tr><td>Microscope</td><td>Nikon</td><td>Ti-Eclipse</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡制御ソフトウェア</td><td>Micro-manager</td><td>Ver 1.4.11</td><td></td></tr><tr><td>インキュベーションチャンバー</td><td>LIS</td><td>The Box</td><td></td></tr><tr><td>蛍光ライト出典</td><td>:Lumencor</td><td>SpectraX</td><td></td></tr><tr><td>カメラ</td>、<td>浜松</td><td>、フラッシュ、4.0</td><td></td></tr>、<tr><td>フローサイトメーター</td>、<td>BD</td>、<td>FACS、calibur</td><td></td></tr>、<tr><td>Sonicator、バス</td>、<td>テレソニック</td><td>、TUC-150</td><td></td></tr>、<tr><td>8ウェルスライド</td><td>、Thermo Lab-tek</td><td>155409</td><td></td></tr>、<tr><td>96ウェルプレート、</td><td>マトリックスバイオサイエンス</td><td>、MGB096-1-2-LG</td><td></td></tr>、<tr><td>FACSチューブ</td><td>BDファルコン</td><td>352054</td><td></td></tr></tbody></table>

シングル酵母細胞中のmapk誘導発現の時間的な定量

Temporal Quantification of MAPK Induced Expression in Single Yeast Cells

単一細胞レベルでの遺伝子発現の定量化は、集団レベルで実行される測定に不明瞭新規調節機構をが明らかになりました。二つの方法に基づいて、顕微鏡およびフローサイトメトリーは、このようなデータを取得することができる方法を示すために提示される。酵母における高浸透圧グリセロールMAPK経路の活性化の際に誘導される蛍光レポーターの発現は、例として使用される。各方法の具体的な利点が強調表示されます。フローサイトメトリーは、細胞（10,000）を多数測定し、蛍光タンパク質の成熟遅い速度の独立したタンパク質発現の動力学を直接測定を提供する。顕微鏡による生細胞のイメージングは​​、少数の細胞におけるレポーターの成熟した形での測定に限定された対照的である。しかし、この技術によって生成されたデータ·セットは、複数のレポーターの組合せ及び空間的及び時間的情報のおかげで非常に豊富であることができる個々の細胞から得られた。これら二つの測定法の組み合わせはシグナル伝達経路によってタンパク質発現の調節に関する新たな洞察を提供することができます。

顕微鏡検査発現レポーターSTL1のp-QV（ySP9 7）を有する酵母細胞は、ウェルスライドの底部に取り付けられ、顕微鏡下に置いた。細胞は、撮像セッションの過程の間に直接ウェルに応力媒体を添加することにより刺激した。これは、私たちは、経路誘導前の細胞のいくつかの画像を取得し、刺激後、彼らの運命をたどることができます。この場合、細胞を10分間の時間間隔で〜2時間追跡した。 図1Aは、誘導前に、非蛍光細胞の画像であり、発現レポーターを有する場合、図1Bは、ストレス後の同じ細胞を2時間を表示する誘導されて、蛍光となっています。 これらの画像中に存在する定量的な情報を抽出するために、複雑な画像解析処理が実行されなければならない。それは私のオブジェクトを定義するために、細胞のセグメンテーションが含まれていMAGE、あるフレームから次のフレームへのこれらのオブジェクトの追跡と、これらのオブジェクト（形状や強度特性）の特徴の採寸です。我々は...

フローサイトメトリーおよび顕微鏡検査に基づいて、二つの相補的な方法は、酵母におけるMAPK経路の活性化によって誘導される遺伝子発現の動態を、単一細胞レベルで、定量化を可能にする提示されている。

シングル酵母細胞中のMAPK誘導発現の時間的な定量

The quantification of gene expression at the  single cell level uncovers novel regulatory mechanisms obscured in measurements  performed at the population ...

本実験の全体的な目的は、単一細胞レベルでミトゲン活性化プロテインの発現量を定量化することである。これを達成するため、STL1プロモーターによって制御され、Hog1 MAPKの活性化に特異的な蛍光発現レポーターであるquadruple Venusを保持する酵母株を作製した。蛍光タンパク質の発現量は、顕微鏡上で細胞に直接ストレスを負荷し、蛍光の出現をリアルタイムで観察する生細胞顕微鏡アッセイ、または、マイクロチューブ内で細胞にストレスを負荷し、特定の時点でタンパク質合成を停止させるフローサイトメトリーのいずれかによって定量化できる。cyclo heideを添加することで、ライブセル顕微鏡観察では一度に少数の細胞しか解析できませんが、個々の細胞の運命を直接観察し、他の細胞特性と相関させることが可能です。一方、フローサイトメトリーでは、多数の細胞におけるmitogen activated proteinの発現を一度に評価できます。この手法は、どのタンパク質が遺伝子発現の調節に関与しているかなど、シグナリング分野における重要な疑問を解決するのに役立ちます。この手法は酵母の経路に関する知見を提供できますが、適切なレポーターの発現が可能であれば、他のシグナル伝達カスケードにも適用できます。生細胞顕微鏡観察に向けて細胞を準備するため、まず5 mLの合成培地に酵母を接種し、30 °Cで一晩培養します。翌朝、一晩培養した培養液のOD 600を測定し、その後、合成培地5 mLを用いてOD 600が0.05になるように希釈します。希釈した培養液を30 °Cでさらに少なくとも4時間培養します。次に、調製したばかりのコンカナバリンA溶液約200 µLをウェルスライドにろ過します。30分後、コンカナバリンA溶液を取り除き、150 µLの水をウェルに加えます。その後、水を取り除き、細胞の調製が終わるまでウェルを乾燥させます。細胞培養液のOD 600を再度測定し、1.5 mLマイクロチューブを用いてOD 600が0.02となるように細胞を希釈し、300 µL分得します。ウォーターバス内で細胞を45秒間ソニケーションします。マイクロチューブを短時間ボルテックスした後、再度ソニケーションとボルテックスを行います。次に、200 µLの細胞をウェルスライドに加え、細胞がウェルの底に沈降するまで約30分間待機させた後、スライドを顕微鏡にセットします。続いて、記録する蛍光チャネルと2枚の明視野像の照明設定を選択し、適切な細胞セグメンテーションが行えるよう、明視野設定の一方を焦点面より約3 µm下に調整します。その後、タイムラプス測定の時間間隔を設定し、イメージング用の視野を選択します。数フレームのキャプチャを開始し、その後キャプチャを一時停止して、調製したばかりの0.6 molar 塩化ナトリウム培地を 100 µL 添加します。そしてイメージングを再開し、フローサイトメトリーによる測定に向けて細胞を準備します。まず、酵母を 5 mL の合成培地に接種し、30 °C で一晩培養します。翌朝、一晩培養した培養液の OD 600 を測定し、その後、細胞懸濁液を 5 mL の合成培地で OD 600 が 0.1 になるように希釈します。培養液を30 °Cで少なくとも4時間培養し、OD 600が0.2から0.4に達するようにします。次に、タイムゼロで測定する各タイムポイント用に、調製したばかりの0.6 M 塩化ナトリウム 100 µLを1.5 mLマイクロチューブに加えます。各マイクロチューブに細胞 200 µLを加え、30 °Cで振盪しながら培養液をインキュベートします。次に、各実験タイムポイントにおいて、調製したばかりの cyclo heide 30 µLをマイクロチューブに加えます。マイクロチューブのインキュベーション中に、各マイクロチューブに対応する各faxチューブに PBS 400 µLを加えます。インキュベーション後、マイクロチューブを短時間ボルテックスし、デモンストレーションした通りに、ウォーターバスを用いて細胞を1分間ソニケーションします。次に、各マイクロチューブから100 µLの細胞培養液を、フローサイトメーターの対応するファクスチューブに加えます。適切な励起および検出設定をロードし、非発現サンプルおよび完全発現サンプルをテストして、それらが検出感度の範囲内にあることを確認します。最後に、これらの画像のように、TL1プロモーターの制御下で四重静脈タンパク質発現リポーターを保持し、ウェルスライドの底面に接着させた酵母細胞をストレス培地の直接添加によって刺激し、各サンプルにつき10,000個の細胞を測定します。たった今実演したように、細胞を10分間隔で約2時間モニタリングし、刺激の前後で画像を収集しました。活性化した細胞におけるレポーターの蛍光発現に注目してください。これらの画像に含まれる定量的な情報を抽出するためには、ここで複雑な画像解析プロセスを行う必要があります。酵母定量解析プラットフォームで得られた結果を示す。各赤色のトレースは、単一細胞における平均蛍光強度の時間的変化を表している。青色の線は、同一ウェルの5つの異なる視野から取得した5つのタイムラプス動画の20フレームにわたってセグメント化および追跡された500個以上の細胞の中央値を示している。水色の領域は、ある時点におけるすべての測定強度の第25および第75パーセンタイルを表している。フローサイトメトリーを用いて同一レポーターの発現ダイナミクスを調べるため、5〜10分間隔の異なる時点で酵母細胞培養液にシクロヘキシミドを添加した。この薬剤は新規タンパク質の合成を阻害しますが、すでに発現している蛍光タンパク質の成熟は妨げられません。したがって、ヒストグラムの右方へのシフトによって可視化されるタンパク質発現量は、蛍光タンパク質の成熟に伴う問題を回避して、Cycl H添加時の時点で定量することができます。このグラフでは、顕微鏡またはフローサイトメトリーで測定した発現レポーターのダイナミクスを比較しています。顕微鏡による測定では、ストレス培地の添加から30〜40分後に蛍光信号が上昇しますが、フローサイトメトリーによる測定では、刺激後10〜15分の間にすでにタンパク質が産生されていることが明確に示されており、蛍光タンパク質の成熟が緩やかであることが証明されています。どちらの手法でも、これらの簡単な実験において単一細胞の情報にアクセスすることが可能ですが、3つの生物学的反復間の変動は、顕微鏡観察やフローサイトメトリーで観察される単一細胞応答の大きな変動に比べると小さいものです。これらの手順に従った後、遺伝子発現の閾値はどれくらいか、といった追加の疑問に答えるために、上述のような応答測定などの他の方法を実施することができます。このビデオを視聴することで、顕微鏡またはフローサイトメトリーを用いて単一細胞レベルでのタンパク質発現を測定する方法について、十分に理解できるはずです。

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JoVE Journal

Biology

生物学

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S の酵母酵母の低酸素応答中に時間をかけての mRNA のレベルを測定

ここで説明されているプロトコルは、4-チオウラシルが付いた酵母から精製した新しく合成された mRNA のゲノムワイドな定量化に基づいています。このメソッドは、mrna から非 mRNA 合成を測定することができ、したがって、RNA のポリメラーゼ II...

酵母4 チオウラシルの定量化とラベリング代謝新しく合成された mRNA RNA ポリメラーゼ II の活性のためのプロキシとして

タイムラプス顕微鏡は、出芽酵母の減数分裂を研究するための貴重なツールです。このプロトコルでは、細胞周期同期、タイムラプス顕微鏡、および標的タンパク質の条件付き枯渇を組み合わせて、減数分裂染色体分配中の特定のタンパク質の機能を研究する方法を実証する方法について説明しています。...

S. cerevisiaeの減数分裂を研究するためのタイムラプス顕微鏡とタンパク質のステージ特異的核枯渇の使用

このプロトコルは、酵母細胞周期停止とオプションの放出の2つの方法を詳述し、 S.

出芽酵母における細胞周期依存過程の操作と解析

学ぶ 酵母単細胞におけるMAPK経路活性化に伴う遺伝子発現の時間的定量法。ライブ細胞顕微鏡とフローサイトメトリーを組み合わせることで、個々の細胞の応答と集団レベルの動態を詳細に解析できます。

シングル酵母細胞中のMAPK誘導発現の時間的な定量

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