Name: 赤血球上の抗体誘導性補体活性化の定量的検出のための方法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-29T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 29 s
Description: 学ぼう、赤血球上の抗体誘導性補体活性化をフローサイトメトリーと分光光度法で定量的に検出する方法。この技術は従来法より感度が高く、免疫学・血液学研究に有用です。

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1。ブロメライン処理した赤血球の準備<ol><li> 1X PBS（2-5分間664×gの遠心分離）で3回0に型指定された赤血球を洗浄します。 </li><li> 37℃で10分間、0.5％ブロメライン溶液を2倍量のパックされたRBCの1の体積をインキュベート</li><li>細胞は1×PBSで3回洗浄します。 </li><li>細胞は、少なくとも1週間1×PBS中で4℃で3％の溶液として保存することができる。 </li></ol> 2。 FACSによる赤血球上のC3、C4の堆積分析<ol><li> 56℃で30分間サンプルを加熱することによって患者の血清（または他の抗RBC抗体源）の必要量を、熱不活性化</li><li>ブロメライン処理した赤血球のVBG 3回洗浄する。 - （5mMのベロナール、150mMのNaCl、0.05％ゼラチン液pH7.4）およびVBG + +（VBG - + 2mMのMgCl 2 + 10mMのCaCl 2）に再懸濁し得0.5％溶液。 </li><li>ガラスパール（fで丸底プレートには、次のコンポーネントをピペットまたは適切な混合）：25μlの0.5％赤血球、37.5μlの新鮮なAB血清（補体源）と37.5μL200μg/ mlの抗C5。抗C5は高価であり、入手が困難な場合があります。一つはC5-/C6-/C7-またはC8-欠損血清の代わりに、AB血清および抗C5の使用を検討して可能性があります。 </li><li> 0.1から33パーセントの最終濃度になるようにウェルあたり患者血清を追加します。正しい熱不活性化AB血清を用いによりウェル当たり血清濃度の違いのために。よく150μL/の最終容量を得るためにVBG + +を追加します。 ELISA箔との緊密なプレート。 </li><li>振とうしながら37℃で1.5〜2時間インキュベートする。 </li><li> PBS +0.5％BSA（2分間664×gの遠心分離）でRBCを3回洗浄する。 </li><li> 1μg/ mlの終濃度になるようPBS + 0.5％BSA中で（凝集を低減するために）蛍光標識した抗C3および抗C4モノクローナル抗体またはそれらのFabフラグメントを追加する。ここでは、カスタム抗C3-アレクサフルーア488を開発し、抗C4-アレクサフルーア647モノクローナル抗体が使用され、テサロニケの選択電子蛍光標識は、FACSによってC3及びC4の同時検出を可能にする。 </li><li>穏やかに振盪しながら、室温で30〜45分間インキュベートする。 </li><li> PBS +0.5％BSAで洗浄赤血球3X。 </li><li> PBS +0.5％BSA中に再懸濁赤血球150μLと（FACS分析の前にガラスパールを取り除くために）新しいプレートにそれらをピペット。 </li><li> FACS分析を行う。スキャッタプロットFSC-Aのダブレットとは別の単一細胞は、単一の赤血球上にゲートを設定し、蛍光シグナル（ 例えば 、FITCとAPC）のための適切な検出チャネルを選択します。 </li><li>蛍光強度中央値を使用して結果を定量化する。 </li></ol>注：これは、（ 例えば、蛍光標識抗IL6標識マウスIgG1）アイソタイプコントロールを使用することが可能である。しかしながら、それは、患者血清（AB血清のみ）なしで、または補体源（熱不活性化AB血清および熱不活性化患者血清）なしで赤血球をインキュベートすることによって、例えば、真の陰性対照を含むことが推奨されるDそして同じ抗C3-アレクサフルーア488および抗C4-アレクサフルーア647抗体でこれらを染色。これらの異なるコントロールは、典型的には、同じ、否定的な結果を与えるが、これは、赤血球12例におけるアイソタイプコントロールよりも多くの有効なコントロールを提供します。 3。定量的溶血アッセイ<ol><li> 56℃で30分間サンプルを加熱することによって患者の血清（または他の抗RBC抗体源）の必要量を、熱不活性化</li><li> VBGを洗浄赤血球3X -一度VBG + +と。 </li><li> （適切な混合用）ガラスパールと丸底プレートには、次のコンポーネントをピペット：35μlの3％赤血球、25μlの新鮮なAB血清（補体源）と1から50パーセントの患者の血清。熱不活性AB血清を用いて、血清濃度の差を補正。よく150μL/の最終容量を得るためにVBG + +を追加します。 ELISA箔との緊密なプレート。 </li><li>振とうしながら1.5〜2時間、37℃でインキュベートする。 </li><li> C言語減少減速（2〜3分で完全に停止するなど減速）で5分間664×gでentrifugeプレート。 </li><li>慎重に新しいマイクロタイタープレートに90μlの上清をピペット。なお、気泡を防止し、無傷の細胞沿っ取ることを防止するために、この段階で重要である。 </li><li>適切な分光光度計でA414/690を測定します。 </li><li>純水でサンプルRBCの溶解の割合として溶解を表現しています。 </li></ol>

<ol><li>Zeerleder, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autoimmune+haemolytic+anaemia+-+a+practical+guide+to+cope+with+a+diagnostic+and+therapeutic+challenge%5BTitle%5D)+AND+%22Neth.+J.+Med%22%5BJournal%5D)">Autoimmune haemolytic anaemia - a practical guide to cope with a diagnostic and therapeutic challenge.</a> Neth. J. Med. 69 (4), 177-184 (2011).</li>
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<li>Barros, M. M. O., Blajchman, M. A., Bordin, J. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Warm+autoimmune+hemolytic+anemia%3A+recent+progress+in+understanding+the+immunobiology+and+the+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Transfus.+Med.+Rev%22%5BJournal%5D)">Warm autoimmune hemolytic anemia: recent progress in understanding the immunobiology and the treatment.</a> Transfus. Med. Rev. 24 (3), 195-210 (2010).</li>
<li>Endoh, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimal+prewarming+conditions+for+Rh+antibody+testing%5BTitle%5D)+AND+%22Transfusion%22%5BJournal%5D)">Optimal prewarming conditions for Rh antibody testing.</a> Transfusion. 46 (9), 1521-1525 (2006).</li>
<li>Wouters, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((C1-esterase+inhibitor+concentrate+rescues+erythrocytes+from+complement-mediated+destruction+in+autoimmune+hemolytic+anemia%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">C1-esterase inhibitor concentrate rescues erythrocytes from complement-mediated destruction in autoimmune hemolytic anemia.</a> Blood. 121 (7), 1242-1244 (2013).</li>
<li>Arndt, P. A., Garratty, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Critical+Review+of+Published+Methods+for+Analysis+of+Red+Cell+Antigen-Antibody+Reactions+by+Flow+Cytometry%2C+and+Approaches+for+Resolving+Problems+with+Red+Cell+Agglutination%5BTitle%5D)+AND+%22Transfus.+Med.+Rev%22%5BJournal%5D)">A Critical Review of Published Methods for Analysis of Red Cell Antigen-Antibody Reactions by Flow Cytometry, and Approaches for Resolving Problems with Red Cell Agglutination.</a> Transfus. Med. Rev. 24 (3), 172-194 (2010).</li>
</ol>

著者らは、開示することは何もありません。

上記のアッセイは、再現性と堅牢である。それらは、実施が容易であり、それは（96ウェルプレート）で同時に多数のサンプルを用いてそれらを行うことができる。したがって、このアプローチはまた、ELISAロボットシステム、例えば 、完全に自動化されたシステムに適しているであろう。現在使用される技術とは対照的に、これらのアッセイは定量的であり、これは、補体阻害剤の効果の研究において、例えばを助ける。さらに、解釈は、現在使用されたアッセイを改良したもので客観的である。 両アッセイは、1重要なステップがあります。これらは1イベントとしてカウントされますので、凝集したRBCは、人為的に高いシグナルを与えるので、FACS分析において重要なのは、単一の赤血球にゲートにある。低濃度は依然として良好なシグナルを与えるので、それは、低い患者の血清中濃度を用いて凝集を防止するためにも優れている。溶血アッセイでは、慎重に上清aを転送するために重要である新しいプレートにFTERのインキュベーションは、RBCのキャリーオーバーするので（意志の気泡のような）信頼性の低い信号につながる...

赤血球（RBC）に対する抗体は、レシピエント赤血球上に存在しない抗原を発現する赤血球の輸血によって誘導することができる。これらのアロ抗体は、以下の輸血5時に補体活性化に起因する重篤な急性溶血性輸血反応を引き起こす可能性があります。自己免疫性溶血性貧血（AIHA）において、患者は、自分自身の赤血球に対する自己抗体を有する。これは、脾臓および/ ​​または肝臓6,7における補体受容体を介して補体を活性化することが自己抗体の場合には食細胞上のFcγ受容体と赤血球に結合したIgGの相互作用を介して細胞の加速クリアランスにつながる。血管内溶血をもたらし劇補体活性化は、稀ではあるが、多くの場合致命的である。加速、急性貧血ので、潜在的に致命的な組織低酸素のいずれかで同種もしくは自己抗体の結果によって誘導された媒介赤血球の破壊を補完します。 AIHAにおける自己抗体はdependin、暖かいと冷たい抗体に分類されている彼らは赤血球（それぞれ37℃以下）に結合し、最適な温度にグラム。暖かい抗体は、IgGアイソタイプおよびIgMアイソタイプ8,9の寒抗体の通常です。 AIHAは例えば lymphoprolyferative疾患、結合組織疾患、固形腫瘍、感染症や薬物への二次的であり得るが、症例の50％においてAIHAは特発9です。 γグロブリン（ 例えば、。のIgGまたはIgM）の検出、患者の赤血球に結合した補体は、半定量的な直接抗グロブリン（クームス）試験（DAT）によって行われる。 DATにおいて、患者RBCは抗IgGまたは抗C3dのとインキュベートする。 RBC凝集の発生が取り付けられ、補体成分の存在を実証またはIgG結合。同種または患者の血清中の自己抗体の検出は、間接抗グロブリン試験（IAT）を用いて行われる。 IATでは、ブロメライン処理した試験RBCは、患者の血清とインキュベートし、洗浄した後、抗HとインキュベートするIgGのUMAN。ケース赤血球に凝集が発生し、患者血清中の抗赤血球に存在するIgGで感作されています。赤血球に対するIgM抗体は、直接患者血清とブロメライン処理した試験RBCのインキュベーションで凝集につながる。直接クームス試験やIATにおける赤血球凝集反応を視覚的に試験管内の目によって、またはサイズ1によって凝集し、単一RBCを分離する小さなセファデックスカラムにサンプルをロードすることによって、どちらかに評価される。 赤血球上の補体活性化を測定するために、別の頻繁に使用される技術は、ブロメライン処理したRBC 10の（補体媒介）溶血を誘発する患者血清の容量が評価された溶血アッセイ1、である。遠心分離後の上清が原因で放出されたヘモグロビンを赤色に染色し、無色のままである場合は負であると考えられる場合に試験が陽性として注目されている。抗グロブリン試験や溶血アッセイの両方が最高出せるので、半定量的であるMの希釈はテストがまだ正である示されている。 抗グロブリン試験や溶血アッセイは、日常の診断に使用されている堅牢なアッセイである。これらのアッセイは、半定量的および補体阻害剤の有効性を評価する際に、必要に応じて、彼らは、赤血球上の補体活性化の微妙な違いを研究するのに適していないアッセイを行う技術者の経験に依存しているので。したがって、我々は我々がこの論文で説明赤血球に（オート）抗体による補体活性化を決定するために、2の定量的アッセイを開発した。 まず、赤血球上の補体C3およびC4の活性化フラグメントの沈着（ 図1A）を測定するためのアッセイを開発した。このアッセイにおいて、ヒトブロメライン処理したタイプ0 RBCは、熱不活性化患者血清（抗RBC抗体源）、新鮮なAB血清（補体源）および抗C5モノクローナル抗体（エクリズマブ）と共にインキュベートする。この社の間に患者血清は抗RBC抗体を活性化補完が含まれている場合ubation、C3、C4の沈着が発生します。下流の補体活性化によりRBC溶解を防ぐために、ブロッキング抗C5モノクローナル抗体が添加される。次に、赤血球上のC3およびC4沈着は、それぞれC3およびC4と反応する蛍光標識されたモノクローナル抗体またはFabフラグメントを用いてFACSによって検出される。単一の赤血球上のゲーティングは、結果の信頼性を確保することが重要である。この技術の利点は、カスケードの初期段階で、補体活性化、患者材料の小さな体積が必要であることを含んで評価し、この方法は、再現可能かつ定量的である。 C3およびC4の両方を見てのさらなる利点は、区別は、古典経路およびレクチン経路の活性化（C3とC4の沈着の両方）および代替経路の活性化（C3のみ堆積）の間に行うことができることである。代わりに、未処理のRBCのブロメライン処理したRBCの使用は、感度を増加させると言う。 第二のアッセイは、現在使用されて溶血アッセイ（ 図1B）に基づいている。ヒトブロメライン処理したタイプ0 RBCは、熱不活性化患者血清（抗RBC抗体源）と新鮮なAB血清（補体源）と共にインキュベートする。補数を患者抗RBC抗体によって活性化されている場合は、用量依存性のRBC溶解は、ヘモグロビンの放出につながるが発生します。放出されたヘモグロビンの量は、無傷の断片化RBCをスピンダウンした後、上清中の414 nmでの吸光度を測定することによって定量化される。吸光度が発生した溶血の量と相関する。現在使用されるアッセイとは対照的に、このプロトコルは、客観的な、非常に再現性およびアッセイの解釈者に依存しない溶血の定量値を可能にします。 これらの方法の適用はAIHAにおける補体阻害剤としてのC1-阻害剤の使用の可能性は11秒であった、に記載されているtudied。

<table><tbody><tr><td>PBS</td><td>フレゼニウス・カビ</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>BSA</td><td>シグマ</td><td>B-4287</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>バルビタール</td><td>ファグロン</td><td>0261</td><td>この化学物質は薬物規制の対象となります。</td></tr><tr><td>ナトリウムバルビタール</td><td>ファグロン</td><td>0263</td>この<td>化学物質は、薬物規制の対象となります。</td></tr><tr><td>ゼラチン</td><td>メルク</td><td>1.0470.0500</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>塩化ナトリウム</td><td>メルク</td><td>1.06404.1000</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>塩化マグネシウム</td><td>メルク</td><td>1.05833.0250</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>塩化カルシウム</td><td>メルク</td><td>1.0238.0500</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>ダイライト488アミン反応性染料</td><td>ピアス</td><td>46402</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>ダイライト650アミン反応性染料</td><td>ピアス</td><td>62265</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>&アルファ;C5(エクリズマブ)</td><td>アレクシオンファーマシューティカルズ</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>FACS(Canto)</td><td>BD</td><td></td><td>適切なレーザーを搭載したFACSであれば、どのようなものでも使用することができます。</td></tr><tr><td>分光光度計(例:ムルチスカンスペクトル)&nbsp;</td><td>Thermo Labsystems</td><td>1500-193</td><td>適切な波長範囲の任意の分光光度計を使用可能</td></tr><tr><td>BD FACSDiva software v 6.1.2</td><td>BD</td><td>643629</td><td>互換性のある FACS 解析ソフトウェアを使用可能</td></tr><tr><td>Bromelain&nbsp;</td><td>サンキン</td><td>K1121</td><td>&nbsp;</td></tr></tbody></table>

赤血球上の抗体誘導性補体活性化の定量的検出のための方法

Methods for Quantitative Detection of Antibody-induced Complement Activation on Red Blood Cells

赤血球（RBC）に対する抗体は、活性化の肝臓における補受容体を介して加速されたクリアランス（血管外溶血）を生じるか、RBCの血管内溶解をもたらすを補完する可能性があります。補体活性化につながる赤血球抗原に対する同種抗体（ 例えば ABO）または自己抗体（自己免疫性溶血性貧血、AIHAに見られるように）潜在的に有害であるとすることができます-血管内溶解をもたらす場合は特に-致命的な1。現在、原因のRBC ON（自動） -抗体に補体活性化は、RBCまたはRBC溶解1-4を反映した非定量溶血アッセイによる補体沈着を反映したクームス試験を使用することにより、in vitroで評価される。しかしながら、補体阻害剤の有効性を評価するためには、定量的な技術を有することが必須である。ここでは、そのような2つの手法を説明します。まず、患者の血清中の抗体により誘導される赤血球上C3及びC4沈着を検出するためのアッセイは、プレsented。このために、FACS分析を蛍光標識した抗C3または抗C4抗体とともに使用される。次に、定量的溶血アッセイが記載されている。このアッセイでは、患者血清により誘導される補体媒介性溶血が放出されたヘモグロビンの分光光度検出を利用して測定される。これらのアッセイの両方が抗体誘導性の補体活性化の研究を容易にする、非常に再現性および定量的である。

図2Aは、赤血球のための代表的な散布図を示しています。 FSC-プロット（P1） - シングル赤血球に適しゲーティングはデFSC-Wで見ることができます。通常、RBCの約95％がこのP1のゲート（単セル）内に入るが、患者血清中の高い割合が使用される場合、これは、抗IgMのRBCは、患者血清中に存在する場合は特に、70〜80％に低下することができる。 C4沈着にAIHA患者血清の効果についての代表的な結果を図2B及び図2CにおけるC3沈着に示されている。これらの図から分かるように、より多くの患者の血清は予想されるように、より多くの補体沈着をもたらす。不思議なことに、補体の堆積は、2つの異なる正のピークで発生します。赤血球は、単一のドナーから採取されたので、これはおそらく、赤血球集団の不均一性が原因ではありません。我々はまだこの現象の原因を調べている。 図2D及び2Eの demonstraC4（ 図...

ここでは、赤血球に対する抗体により誘導される補体活性化を測定するための2つのアッセイを記載する。現在のアッセイ以上の主要な利点は、それらの定量的かつ簡単に解釈する性質である。

Antibodies against red blood cells (RBCs) can lead to complement activation resulting in an accelerated clearance via complement receptors in the liver ...

本実験の全体的な目的は、患者血清中の赤血球（RBC）に対する抗体による補体活性化を評価することである。これは、赤血球を患者血清とともに、ブロッキング用抗C5抗体存在下でインキュベートし、RBC表面にC4およびC3の沈着を誘導することによって達成される。次に、RBCを蛍光標識した抗C4抗体および抗C3抗体で染色し、別の方法としてフローサイトメトリーを用いてRBC上の補体沈着量を分析することができる。抗C5不在下で、赤血球を患者血清とともにインキュベートし、補体媒介性の溶血を誘導します。その後、分光光度法を用いて細胞から放出されたヘモグロビンの量を測定することで、溶血した赤血球の割合を決定できます。日常的な診断に用いられる溶血試験や抗グロブリン試験などの既存の方法に対するこの新手法の主な利点は、定量的な性質を持ち、補体活性化におけるわずかな差異を検出できることです。当研究室のポストドクターであるElizabeth Brookが手順を実演します。まず、O型赤血球をPBSで3回洗浄し、その後、ペレットを0.5% Roma lane溶液で1:2の比率で37 °Cにて10分間インキュベートします。さらに細胞を3回洗浄した後、フローサイトメトリーにより赤血球上の補体沈着を分析するため、新鮮なPBSを用いて3%溶液として4 °Cで保存します。まず、必要量の患者血清を56 °Cで30分間加熱不活性化します。血清の加熱処理を行っている間に、Roma lane処理済みの赤血球をRoalバッファーで3回洗浄します。最後の洗浄が終わった後、ペレットをvbg plus plusで0.5%に希釈して再懸濁します。次に、ガラスパールを用いて、0.5% RBCs 25 µL、新鮮なAB血清 37.5 µL、および 200 µg/mL anti C5 37.5 µLを、96ウェル丸底プレートの各ウェルに加えます。その後、必要に応じて不活化AB血清で調整し、適切な濃度の不活化患者血清を各ウェルに加えます。また、陰性コントロールも含めてください。VBG++を用いて各ウェルの最終容量を150 µLにし、その後、プレートをEIAホイルで密閉し、37 °Cで1.5〜2時間振盪しながらインキュベートします。インキュベーション後、0.5% BSA添加PBSで細胞を3回洗浄し、次に1 µg/mLの蛍光標識抗C3および抗C4モノクローナル抗体で細胞をタグ付けします。室温で緩やかに振盪しながら30〜45分間インキュベートし、プレートを3回洗浄した後、赤血球（RBC）を1ウェルあたり150 µLの0.5% BSA添加PBSに再懸濁します。細胞懸濁液を新しい96ウェル丸底プレートに移し、プレートをフローサイトメーターにセットして、前方散乱光（FSC）プロットを用いてシングルセルをダブレットから分離します。単一の赤血球（RBC）にゲートを設定し、蛍光信号に適した検出チャンネルを選択します。定量的な溶血分析には、中央値蛍光強度（MFI）を用いて結果を定量化します。患者血清を加熱して活性化させ、先ほど示した通りにロメイン処理した赤血球を洗浄します。次に、前述のように補体および患者血清とともにRBCをインキュベートしますが、anti C fiveは加えず、減速設定を低くして664 GSで5分間遠心分離します。続いて、細胞が混入しないように注意し、気泡が発生しないようにしながら、上清90 µLを新しいマイクロタイタープレートに慎重に分注し、分光光度計を用いて414 nmから690 nmの吸光度を測定します。溶血率を、純水中でインキュベートしたRBCサンプルの溶血に対するパーセンテージとして算出します。この最初の図では、brola処理したRBCの代表的な散布図が示されており、単一RBCに適したゲーティングをここで確認できます。通常、RBCの約95%がこの単一細胞ゲート内に収まります。これらのヒストグラムは、自己免疫性溶血性貧血（aha）の影響に関する代表的な結果です。C4およびC3の沈着に対する患者血清の影響が予想通りに示されており、患者血清の量が増えるほど補体の沈着量も増加しています。興味深いことに、補体の沈着は2つの明確な陽性ピークとして現れています。赤血球は単一のドナーから採取されているため、これは赤血球集団の不均一性によるものではないと考えられますが、この現象の原因については現在も調査中です。C4およびC3沈着アッセイの再現性を示すために、サンプルの中央値蛍光強度がこれらの折れ線グラフにプロットされています。さまざまなAH H患者サンプルの沈着には大きなばらつきがあることに注意してください。最後に、RBCに対する自己抗体を含むahha患者血清サンプルの溶血アッセイによるデータがこれらのグラフで確認できます。抗C5などの適切な補体阻害剤を用いて血清サンプルでタイトレーションを行うと、明確で再現性のある曲線が得られます。このグラフに示されているように、溶血シグナルは滴定によって消失させることができます。このビデオを視聴することで、C3またはC4の沈着に関するフローサイトメトリー解析、あるいは定量的な溶血アッセイを用いて、赤血球特異的抗体による補体活性化を測定する方法について十分に理解できるはずです。

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このビデオでは、T細胞エフェクター機能の抗体を介した活性化を測定するアッセイを実演しています。HAを発現するトランスフェクションされた哺乳動物細胞にインフルエンザウイルスのヘマグルチニン(HA)特異的モノクローナル抗体を添加すると、HAとの免疫複合体が形成されます。Fc受容体を発現する遺伝子操作T細胞とルシフェラーゼレポーターを導入すると、T細胞は抗体-HA複合体によって活性化され、この活性化はルシフェラーゼ基質を添加して産生された生物発光を測定することによって検出されます。...

HA抗体によるFc媒介エフェクター機能の活性化の測定

このビデオは、母乳食細胞による抗体依存性細胞食作用(ADCP)を測定するアッセイを示しています。抗原-抗体複合体に結合した蛍光標識マイクロスフェアを母乳から単離した細胞懸濁液と組み合わせ、食作用性白血球による抗体依存性細胞食作用を誘導します。一般的な白血球抗原(CD45)に対する抗体で細胞を標識すると、フローサイトメトリーを使用して、マイクロスフェア陽性の生存貪食性白血球の蛍光強度を測定し、ADCP活性のレベルを示します。...

食細胞による抗体依存性細胞貪食作用を測定するためのin vitroアッセイ

単球単層アッセイ(MMA)は、哺乳類の末梢全血から得られた単離された初代単球を利用して、Fcγ受容体(FcγR)を介した食作用を評価するin...

Fcγ受容体媒介食作用を評価するために、単球単層アッセイの使用

ここでイメージの単一食イベントに回転ディスク共焦点顕微鏡を用いたマウス腹腔マクロファージの方法について述べる。他の貪食細胞に、プロトコルを拡張できます。...

マウスのマクロファージによる貪食のコマ撮りの 3 D イメージング

この方法の目的は、赤血球CR1密度が知られている3人の被験者と比較することによって、任意の被験体の赤血球中のCR1密度を決定することである。この方法は、フィコエリスリン(PE)を用いて増幅系に結合した抗CR1モノクローナル抗体による被験者の赤血球の免疫染色後のフローサイトメトリーを使用する。...

フローサイトメトリーを用いた赤血球補体受容体1の測定

除核された赤血球のタンパク質活性化の動的変化を捉えることは、後の評価のために急性刺激に対する動的変化を保存するなど、方法論的な課題をもたらします。提示されたプロトコルは、関連するタンパク質変化の保存と分析、およびその後の検出を可能にするサンプル調製および染色技術について説明しています。...

赤血球タンパク質の動的変化の免疫染色ベースの検出

私たちは、輸血医学および免疫学における赤血球同種抗体の臨床的関連性をより正確に予測するためにマクロファージを使用する既存の単球単層アッセイ(MMA)の機能強化と更新された方法を開発しました。このアッセイは、単球マクロファージアッセイ(M-MA)と呼ばれています。...

単球マクロファージアッセイを用いた赤血球抗体の意義の予測

学ぼう、赤血球上の抗体誘導性補体活性化をフローサイトメトリーと分光光度法で定量的に検出する方法。この技術は従来法より感度が高く、免疫学・血液学研究に有用です。

赤血球上の抗体誘導性補体活性化の定量的検出のための方法

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